CC BY
54
Д. А. ДОМЕНЮК1, С. Н. ГАРАЖА1, Е. Н. ИВАНЧЕВА1, Н. И. ПИВОВАРОВА1, А. А. ПОПОВ1
ОЦЕНКА КОЛОНИЗАЦИИ МЕТАЛЛОАКРИЛОВЫХ ЗУБНЫХ ПРОТЕЗОВ
_ V V
УСЛОВНО-ПАТОГЕННОЙ МИКРОФЛОРОИ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ IN-VITRO
кафедра ортопедической стоматологии Ставропольской государственной медицинской академии, Россия, 355017, г. Ставрополь, ул. Мира, 310. E-mail: Litvinala@mail.ru, тел. 8-918-870-12-05
Методами сравнительной оценки выживаемости тест-культур исследована колонизация условно-патогенными микроорганизмами (S.aureus, E.coli, St.pyogenes, P.aeruginosa, C.albicans) акриловых материалов, используемых для облицовки зубных протезов: гибридных и микронаполненных композиционных пластмасс «Sinfony» (3M-ESPE), «Artglass» («Heraeus Kulzer»), а также полимерных материалов на основе монофункционального метакрилата «Vitapan Monopast» («Vita»), «Син-ма-М» («Стома»).
Установлено, что полированный композиционный гибридный материал «Sinfony» (3M-ESPE) светового типа полимеризации при выраженной гидрофобности, высокой однородности поверхности и практически полном отсутствии пористости обладает наименьшими показателями колонизации условно-патогенной микрофлорой среди акриловых пластмасс.
Ключевые слова: колонизация, микрофлора, жизнеспособность, интенсивность, численность.
D. A. DOMENYUK1, S. N. GARAZHA1, E. N. IVANCHEVA1, N. I. PIVOVAROVA1, A. A. POPOV1
METALLOACRYLIC TOOTH ARTIFICIAL LIMBS COLONIZATION ESTIMATION OF CONDITIONAL-PATHOGENIC MICROFLORA IN IN-VITRO EXPERIMENT
department of orthopedic stomatology Stavropol State Medical Academy,
Russia, 355017, Stavropol city, Mira street, 310. E-mail: Litvinala@mail.ru, тел. 8-918-870-12-05
Comparative estimation of test cultures methods survival rate investigate colonization of conditional-pathogenic microorganisms (S.aureus, E.coli, St.pyogenes, P.aeruginosa, C.albicans) of acryl materials used for facing of tooth artificial limbs: the hybrid and micro filled composite plastic «Symfony» (3M-ESPE), «Artglass» («Heraeus Kulzer»), and also polymeric materials on the basis of mono functional methacrylate «Vitapan Monopast» («Vita»).
It is established, that the polished composite hybrid material «Symfony» (3M-ESPE) of polymerisation light type at the expressed water repellency, high uniformity of a surface and practically full absence of porosity, possesses the least indicators of colonization of conditional-pathogenic microflora among acryl plastic.
Key words: colonization, microflora, viability, intensity, number.
Полость рта человека представляет собой уникальную экологическую систему для самых разнообразных микроорганизмов, формирующих аутохтонную (постоянную) микрофлору. Богатство пищевых ресурсов, постоянная влажность, оптимальные значения рН и температуры создают благоприятные условия для адгезии, колонизации и размножения различных микробных видов. Многие условно-патогенные микроорганизмы из состава нормальной микрофлоры (Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeroginosa и др.) играют существенную роль в этиологии и патогенезе кариеса, заболеваний па-родонта и слизистой оболочки полости рта [5].
Способность к проникновению условно-патогенной микрофлоры из дефектов слизистой оболочки полости рта, местных нагноительных очагов и тканей протезного ложа в кровяное русло является чрезвычайно опасной для организма. Не соответствующие клиническим требованиям зубные протезы, кариозные полости, десневые карманы и др. способствуют пер-систенции условно-патогенных микроорганизмов. Их местное воздействие обусловлено выделением бактериальных токсинов, способствующих развитию или поддержанию уже имеющегося воспалительного процесса. Кроме того, под влиянием токсинов снижается
устойчивость тканевых структур протезного ложа к механическим воздействиям. Это обусловливает формирование очагов хронической инфекции с последующей сенсибилизацией и высокой степенью риска развития общих аутоиммунных заболеваний. Недостаточность или извращенный характер иммунологических реакций в сочетании с длительной колонизацией условно-патогенной микрофлоры, вызывающей повреждения тканей полости рта, приводят к развитию тяжелых патологических процессов (пародонтопатий) [4].
Микрофлора ротовой полости представлена аэробными, анаэробными и факультативно-анаэробными микроорганизмами, концентрация которых в 1 мл слюны составляет 107-108 колониеобразующих единиц (КОЕ) [10].
Наиболее многочисленной группой микроорганизмов в полости рта являются зеленящие маловирулентные стрептококки. Обладая высокой адгезивной активностью, стрептококки адсорбируются как на поверхности зубов, так и на эпителиальных клетках слизистой оболочки. Их способность к синтезу вязких полисахаридов из сахарозы с образованием декстра-нов и леванов способствует образованию зубных бляшек и сдвигом рН в кислую сторону, что приводит
Кубанский научный медицинский вестник № 7 (112) 2009 УДК 615.462.03:616.314-089.28].076.7
Кубанский научный медицинский вестник № 7 (112) 2009
к декальцинации зубной эмали [9]. Наибольшее значение в развитии кариеса имеют стрептококки ротовой полости (Streptococcus mutans, Streptococcus sanguis), лактобактерии и актиномицеты (Actinomyces viscosus), ферментирующие углеводы с образованием большого количества молочной кислоты, сохраняя жизнеспособность при критических значениях рН среды [11]. При формировании микробной бляшки и зубного камня особая роль принадлежит актиномицетам, альфа-стрептококкам, лактобактериям, вейллонеллам и нитевидным бактериям. Кроме того, компонентами зубной бляшки являются эндотоксины, ферменты, гемотоксины, кислоты и другие субстанции, также являющиеся причиной заболеваний пародонта [6].
Сохранение устойчивых качественных показателей металлоакриловых реставраций в отдалённые сроки невозможно без обоснованного выбора материала, особенно при гипосаливации, повышенной минерализации и склонности к образованию зубного налёта. Сопоставление данных о видовом составе и степени бактериальной обсеменённости условно-патогенной микрофлорой групп акриловых пластмасс позволит не только выявить материал, наименее подверженный колонизации, но и определить факторы, влияющие на адгезию условно-патогенных микроорганизмов. Это сохранит конструкционную целостность реставрации, улучшит общее гигиеническое состояние полости рта, а также уменьшит или полностью исключит развитие воспалительных или аллергических реакций со стороны организма в целом, что обеспечит стабильность отдалённых клинических результатов, повысив тем самым эффективность проводимого ортопедического лечения [2].
По литературным данным, микроорганизмы в той или иной степени могут подвергнуть колонизации полимерные материалы [3]. Доказано также, что скорость образования зубных отложений находится в прямой зависимости не только от природы бактериальных адгезивов, определяющих фиксирующую способность микроорганизмов к поверхности зубных протезов, но и от степени шероховатости материала [8]. Однако подверженность акриловых пластмасс, применяемых для облицовки зубных протезов, колонизации условно-патогенной микрофлорой, а также факторы, определяющие уровень бактериальной обсеменённости, в литературе не описаны.
Использование метода оценки колонизации условно-патогенной микрофлорой в эксперименте in-vitro образцов акриловых пластмасс позволит получить значимые для клинической практики данные о бактериальной обсеменённости акриловых материалов.
Важно отметить, что конструкционные материалы, используемые в ортопедической стоматологии, в том числе и облицовочные акриловые пластмассы, не должны подвергаться колонизации представителями условно-патогенной микрофлоры.
Цель исследования - оценка колонизации металлоакриловых зубных протезов условно-патогенной микрофлорой в эксперименте in-vitro.
Материалы и методы
В эксперименте использованы бактериальные культуры, охватывающие широкий спектр представителей условно-патогенной микрофлоры: Staphylococcus
aureus wood 95, Escherichia coli B, Streptococcus pyogenes 5, Pseudomonas aeroginosa 573, Candida
albicans. Обоснованием выбора в качестве тест-штаммов бактерий P. aeruginosa и представителей дрожжеподобной флоры С. albicans явились результаты собственных исследований и литературные источники. Данные микроорганизмы могут быть причиной возникновения гнойно-воспалительных заболеваний в полости рта, длительное время сохранять жизнеспособность и даже при отсутствии питательных веществ размножаться на поверхности полимерных материалов. S. aureus и St. pyogenes выбраны как типичные представители условно-патогенной микрофлоры, которые при определенных обстоятельствах способны вызвать абсцессы и флегмоны одонтогенного происхождения, а E. coli является санитарно показательным микроорганизмом [12].
Сущность метода заключалась в сравнительной оценке выживаемости микроорганизмов пяти клинически значимых видов (S. aureus, E. coli, St. pyogenes, P. aeroginosa и С. albicans) на поверхностях образцов акриловых пластмасс, используемых в ортопедической стоматологии. Из современной международной классификации акриловых пластмасс нами были выделены композиционные пластмассы (КП) (ISO-4049-88), а также полимерные материалы (ПМ) на основе монофункционального метакрилата (ММА) для изготовления коронок и мостовидных протезов (ISO-100477) [1]. КП представлены гибридным композиционным материалом световой полимеризации «Sinfony» (3M-ESPE) и микронаполненным композиционным материалом световой полимеризации «Artglass» («Heraeus Kulzer»). ПМ на основе ММА представлены «Vitapan Monopast» («Vita») горячего способа отверждения в глицерине и «Синма-М» («Стома») горячего способа отверждения в воде.
При присоединении облицовочного материала к сплаву был использован комбинированный метод. Отмоделированные на огнеупорной модели восковые репродукции размером 40*40*0,5 мм с предварительно нанесёнными на каждую из сторон образца ретенцион-ными шариками (100-200 мкм) были отлиты из кобальтохромового сплава «Remanium Star» (DENTFURUM). После удаления формовочной массы, литников и механической обработки была проведена пескоструйная обработка (размер частиц Al2O3 50 мкм) при давлении два бара. Для присоединения к сплаву материала «Sinfony» («3М-ESPE») применяли адаптированную систему «Rocatec» («3М-ESPE»), световую полимеризацию проводили в фотополимеризаторе «Rocatecter» («3М-ESPE»). Для присоединения к сплаву материала «Artglass» («Heraeus Kulzer») использовали систему сцепления «Kevloc», световую полимеризацию проводили в фотополимеризаторе «UNI XS» («Heraeus Kulzer»). Облицовочный акриловый материал наносился на обе стороны образца. ПМ на основе ММА «Vitapan Monopast» («Vita») и «Синма-М» («Стома») были изготовлены методом горячего отверждения в глицерине и воде соответственно согласно инструкции фирмы-производителя. Образцы имели полированную и матовую стороны. Полировку проводили сначала муслиновым полировальным кругом с применением пемзы с водой, после чего - полировочной пастой до зеркального блеска. Для каждого материала было изготовлено и исследовано по 10 образцов, всего - 40 образцов.
На каждую из сторон образца наносили по 0,2 мл смеси (суспензии) из микроорганизмов. Исходная концентрация микроорганизмов составляла 4*105 - 5*105
Колонизация условно-патогенной микрофлорой образцов композиционных пластмасс <^^опу» и «Artglass» (в КОЕ на 1 см2)
Материал (поверхность) Вид микроорганизмов Время исследования (сутки)
1-е 3-и 7-е 14-е 28-е
«Sinfony» (3M-ESPE) (полированная) S. aureus 2*103 2Х101 0 0 0
Е. coli 2*102 5Х101 0 0 0
St. pyogenes 1,4*103 1,2x101 0 0 0
P. aeruginosa 2*103 8,2x102 4,6x102 2x102 1,2x102
С. albicans 4*102 3,6x101 0 0 0
«Sinfony» (3M-ESPE) (матовая) S. aureus 2,6*103 3,7x101 0 0 0
Е. coli 3,2*102 7,5x101 0 0 0
St. pyogenes 2,6*103 1,8x101 0 0 0
P. aeruginosa 3,2*103 9,6x102 6,2x102 4,1x102 2,3x102
С. albicans 5,7*102 5,3x101 1,2x101 0 0
«Artglass» («Heraeus Kulzer») (полированная) S. aureus 2,4*103 2,6x101 0 0 0
Е. coli 2,8*102 8,4x101 0 0 0
St. pyogenes 1,7*103 1,5x101 0 0 0
P. aeruginosa 2,6*103 9,4x102 5,8x102 2,6x102 1,5x102
С. albicans 4,5х102 4x101 0 0 0
«Artglass» («Heraeus Kulzer») (матовая) S. aureus 3,2х103 4,5x101 0 0 0
Е. coli 3,5х102 8,4x101 0 0 0
St. pyogenes 3,4х103 2,3x101 0 0 0
P. aeruginosa 3,7х103 1,2x103 8,6x102 6,3x102 3,2x102
С. albicans 6,8х102 7,4x101 1,8x101 0 0
КОЕ/мл. Суспензию равномерно распределяли по поверхности образцов стерильным шпателем.
Контаминированные тест-микроорганизмами образцы помещали на 28 суток в стерильные чашки Петри, а чашки Петри - в микроклиматическую камеру, где поддерживались оптимальные для роста микроорганизмов параметры среды (90-99% влажности при t0 370 С).
Оценку количественного содержания микроорганизмов на образцах материалов проводили в 1-е, 3-и, 7-е, 14-е и 28-е сутки эксперимента. Для этого после истечения указанных сроков образцы дважды последовательно отбалтывали в 5 мл стерильного физиологического раствора. Первое отбалтывание было приравнено к ополаскиванию (смыванию) микроорганизмов с поверхности металлоакриловых зубных протезов. Высевы проводили после второго отбалтывания в 5 мл стерильного физиологического раствора из десятикратных разведений на различные питательные среды по общепринятым методикам в соответствии с действующими нормативными микробиологическими приказами [7]. Посевы инкубировали при t0 370 С в течение 24 час. и при t0 25-300 С в течение 48 час. - при выращивании грибов.
После истечения необходимых в эксперименте сроков был произведён подсчет колоний на 1 см2 питательной среды.
Статистический анализ результатов исследования проведен с использованием программ BIOSTAT, «STATISTIKA 6,0 for Windows» фирмы «Stat Soft, Inc.». За достоверные различия в сравнении средних величин в парных сравнениях использовался t-критерий Стьюдента при р<0,05. Если распределение изучаемых параметров не соответствовало нормальному (Гауссо-
вому) распределению, применялся непараметрический метод и сравнение велось по критерию Уилкоксона-Манна-Уитни. Корреляционный анализ производился с использованием коэффициентов корреляции Пирсона. При малом числе наблюдений, когда общая статистическая совокупность дробилась на группы, достоверность результатов рассчитывалась с использованием одностороннего варианта точного критерия Фишера. Различия признавались значимыми при доверительной вероятности р<0,05.
Результаты и обсуждение
Результаты исследований колонизации гибридного композиционного материала «Sinfony» (3M-ESPE) и микронаполненного композиционного материала «Artglass» («Heraeus Kulzer») условно-патогенной микрофлорой представлены в таблице 1.
Данные, полученные при оценке колонизации условно-патогенной микрофлорой гибридных и микронапол-ненных КП, свидетельствуют, что среди использованных тест-штаммов только бактерии вида P. aeruginosa сохранялись на тестируемых материалах до конца эксперимента. Наиболее значительное снижение количества бактерий P. aeruginosa происходит на образце «Sinfony» (полированный) на 3-и сутки исследования. Число жизнеспособных бактерий P. aeruginosa по сравнению с первоначальной колонизацией снизилось более чем в четыреста раз и составило 8,2*102 КОЕ/ см2. Дальнейшее снижение численности P. aeruginosa к 28-м суткам исследования было менее интенсивным. Количество P. aeruginosa по сравнению с результатами 3-х суток исследования уменьшилось в шесть раз и составило 1,2*102 КОЕ/см2.
Кубанский научный медицинский вестник № 7 (112) 2009
Кубанский научный медицинский вестник № 7 (112) 2009
Колонизация условно-патогенной микрофлорой образцов полимерных материалов «Vitapan Monopast» и «Синма-М» (в КОЕ на 1 см2)
Материал (поверхность) Вид микроорганизмов Время исследования (сутки)
1-е 3-и 7-е 14-е 28-е
«Vitapan Monopast» («Vita») (полированная) S. aureus 2,6х104 3,2х102 0 0 0
Е. coli 2,4х103 4,1х102 0 0 0
St. pyogenes 2,2х104 2х102 0 0 0
P. aeruginosa 2,8х104 5,5х103 3,2х103 2,5х103 2х103
С. albicans 3,5х103 2,2х103 1,2х103 2х102 0
«Vitapan Monopast» («Vita») (матовая) S. aureus 3,3х104 3,7х102 0 0 0
Е. coli 2,8х103 5х102 0 0 0
St. pyogenes 3х104 2,6х102 0 0 0
P. aeruginosa 3,3х104 6,5х103 4х103 3,3х103 2,7х103
С. albicans 4,2х103 2,7х103 1,8х103 2,3х102 0
«Синма-М» («Стома») (полированная) S. aureus 3,1х104 3,6х102 0 0 0
Е. coli 3,5х103 8,2х102 0 0 0
St. pyogenes 4,2х104 5,7х102 0 0 0
P. aeruginosa 3,8х104 7,3х103 4,6х103 3,7х103 2,4х103
С. albicans 4,6х103 3,5х103 2,2х103 2,8х102 0
«Синма-М» («Стома») (матовая) S. aureus 4,4х104 4х102 0 0 0
Е. coli 5х103 9,4х102 0 0 0
St. pyogenes 4,8х104 7,4х102 0 0 0
P. aeruginosa 4,5х104 8,1х103 5,5х103 4,8х103 3,5х103
С. albicans 6,8х103 5,2х103 4х103 3,7х102 0
На других образцах снижение количества бактерий P. aeruginosa было менее значительным. Так, у «Sinfony» (матовый), «Artglass» (полированный) и «Artglass» (матовый) на 3-и сутки исследования число жизнеспособных бактерий P. aeruginosa по сравнению с первоначальной колонизацией снизилось более чем в триста раз и составило от 9,4х102 КОЕ/см2 до 1,2х103 КОЕ/см2. Последующее уменьшение количества P. aeruginosa к 28-м суткам исследования по сравнению с показателями 3-х суток достигло трёх раз и составило от 1,5х102 КОЕ/см2 до 3,2х102 КОЕ/см2.
S. aureus, Е. coli и St. pyogenes на всех изученных образцах сохраняли жизнеспособность только до 3-х суток исследования. Среди указанных тест-штаммов наиболее интенсивное снижение численности по сравнению с первоначальной колонизацией отмечено на образце «Sinfony» (полированный), где число высеваемых микроорганизмов уменьшилось более чем в две тысячи раз и составило от 1,2^101 КОЕ/см2 до 2Х101 КОЕ/см2. У образцов «Sinfony» (матовый), «Artglass» (полированный) и «Artglass» (матовый) число жизнеспособных бактерий S. aureus, Е. coli и St. pyogenes по сравнению с первоначальной колонизацией снизилось более чем в четыреста восемьдесят раз и составило от 1,5^101 КОЕ/см2 до 8,4х101 КОЕ/см2.
С. albicans на материалах «Sinfony» (полированный) и «Artglass» (полированный) сохраняли жизнеспособность до 3-х суток, а на образцах «Sinfony» (матовый) и «Artglass» (матовый) - до 7-х суток исследования. Наиболее значительное снижение числа С. albicans на 1-е сутки исследования происходило на образце «Sinfony» (полированный), где число жизнеспособных микроорга-
низмов по сравнению с первоначальной колонизацией уменьшилось в тысячу раз и составило 4х102 КОЕ/см2. У образцов «Sinfony» (матовый), «Artglass» (полированный) и «Artglass» (матовый) бактериальная обсе-менённость С. albicans на 1-е сутки исследования по сравнению с первоначальной колонизацией снизилась более чем в пятьсот восемьдесят раз и составила от 4,5х102 КОЕ/см2 до 6,8х102 КОЕ/см2.
Важно учесть, что на всех исследованных образцах КП происходило интенсивное отмирание клеток условно-патогенной микрофлоры (S. aureus, Е. coli, St. pyogenes и С. albicans). Инициатором (активатором) реакции полимеризации и источником создания свободных радикалов у КП является ультрафиолетовый свет. Одномоментное и множественное высвобождение свободных радикалов способствует связыванию всех частиц неорганического наполнителя с полимерной матрицей по всей толщине материала. Полимеризация полифункциональных алифатических и циклоалифатических мономеров приводит к образованию материала с высокой структурной однородностью, сглаженной поверхностью при практически полном отсутствии пористости, сводя к минимуму количество свободного остаточного мономера. Высокая чистота поверхности и содержащиеся в органической матрице КП активные соединения, имеющие на поверхности гидрофобные (-ОН) группы, значительно снижают смачиваемость материала, уменьшая при этом способность к адгезии микроорганизмов из состава ротовой жидкости.
Результаты исследований колонизации полимерных материалов на основе ММА «Vitapan Monopast»
(«Vita») и «Синма-М» («Стома») условно-патогенной микрофлорой представлены в таблице 2.
Полученные результаты колонизации условно-патогенной микрофлоры ПМ на основе ММА указывают, что только культура P. aeruginosa сохранялась на тестируемых материалах до конца эксперимента. Наиболее значительное снижение количества бактерий P. aeruginosa происходит на образце «Vitapan Monopast» (полированный) на 3-и сутки исследования. Число жизнеспособных бактерий P. aeruginosa по сравнению с первоначальной колонизацией снизилось более чем в семьдесят раз и составило 5,5х103 КОЕ/см2. Последующее снижение численности P. aeruginosa к 28-м суткам исследования было менее интенсивным. Количество P. aeruginosa по сравнению с результатами 3-х суток исследования уменьшилось в два с половиной раза и составило 2х103 КОЕ/см2.
На других образцах снижение количества бактерий P. aeruginosa было менее выраженным. Так, у «Vitapan Monopast» (матовый), «Синма-М» (полированный) и «Синма-М» (матовый) на 3-и сутки исследования число жизнеспособных бактерий P. aeruginosa по сравнению с первоначальной колонизацией снизилось более чем в пятьдесят раз и составило от 6,5х103 КОЕ/см2 до 8,1х103 КОЕ/см2. Дальнейшее уменьшение количества P. aeruginosa к 28-м суткам исследования по сравнению с показателями 3-х суток достигло двух с половиной раз и составило от 2,4х103 КОЕ/см2 до 3,5х103 КОЕ/см2.
S. aureus, Е. coli и St. pyogenes на всех изученных образцах сохраняли жизнеспособность только до 3-х суток исследования. Среди выделенных тест-штаммов наиболее интенсивное снижение численности по сравнению с первоначальной колонизацией отмечено на образце «Vitapan Monopast» (полированный), где число высеваемых микроорганизмов уменьшилось более чем в тысячу двести раз и составило от 2х102 КОЕ/см2 до 3,2х102 КОЕ/см2. У образцов «Vitapan Monopast» (матовый), «Синма-М» (полированный) и «Синма-М» (матовый) число жизнеспособных бактерий S. aureus,
Е. coli и St. pyogenes по сравнению с первоначальной колонизацией снизилось более чем в четыреста двадцать раз и составило от 2,6х102 КОЕ/см2 до 9,4х102 КОЕ/см2.
С. albicans на всех изученных образцах сохранял жизнеспособность до 14-х суток исследования. Наиболее значительное снижение числа С. albicans на 1-е сутки исследования происходило на образце «Vitapan Monopast» (полированный), где число жизнеспособных микроорганизмов по сравнению с первоначальной бактериальной обсеменённостью уменьшилось более чем в сто раз и составило 3,5х103 КОЕ/см2. У образцов «Vitapan Monopast» (матовый), «Синма-М» (полированный) и «Синма-М» (матовый) бактериальная обсеменённость С. albicans на 1-е сутки исследования по сравнению с первоначальной колонизацией снизилась более чем в пятьдесят раз и составила от 4,2х103 КОЕ/см2 до 6,8х103 КОЕ/см2.
Необходимо отметить, что на всех исследованных образцах ПМ на основе ММА происходило достаточно быстрое отмирание условно-патогенной микрофлоры (S. aureus, Е. coli, St. pyogenes и С. albicans). Тепловой (горячий) механизм полимеризации, связанный с разложением пероксид бензоила при нагревании, препятствует одномоментному высвобождению достаточного количества свободных радикалов, обеспечивающих
формирование высокомолекулярных полимерных цепей с образованием упорядоченной структуры. Нестабильные вторичные связи, создаваемые силами Ван-дер-Ваальса и удерживающие молекулы полимера в линейной конфигурации, способствуют формированию материала, обладающего структурной неоднородностью, высокой открытой пористостью и низкой чистотой поверхности. Это существенно повышает смачиваемость и гидрофильность материала, увеличивая при этом способность к адгезии микроорганизмов из состава ротовой жидкости.
Таким образом, предложенный метод оценки колонизации условно-патогенной микрофлорой в эксперименте in-vitro образцов акриловых пластмасс позволяет объективно и достоверно оценить уровень бактериальной обсеменённости акриловых материалов.
Все акриловые пластмассы подвержены колонизации условно-патогенными микроорганизмами. Степень колонизации зависит от химического состава, степени шероховатости поверхности материала, но в большей степени от вида бактериальных культур.
Наименьшими показателями бактериальной обсе-менённости условно-патогенными микроорганизмами среди акриловых пластмасс обладает полированный композиционный гибридный материал «Sinfony» (3М-ESPE). Световой тип полимеризации, выраженная гид-рофобность, высокая однородность при сглаженной поверхности и практически полное отсутствие пористости уменьшают адгезию бактериальных клеток, снижая тем самым колонизацию микрофлоры на поверхности материала.
ЛИТЕРАТУРА
1. Борисенко А. В. Композиционные пломбировочные и облицовочные материалы в стоматологии. - М.: Медицина, 2002. -С. 180-186.
2. Доменюк Д. А. Применение методов лазерной профило-метрии и сканирующей электронной микроскопии для оценки свойств поверхности стоматологических литейных сплавов неблагородных металлов // Российский вестник дентальной имплантологии. - 2007-2008. - № 1/4 (2) 17/20. - С. 44-49.
3. Каневская И. Г. Биологическое повреждение промышленных материалов. - Л.: Медицина, 1984. - С. 83-147.
4. Меньшиков В. В. Клиническая лабораторная аналитика. -М.: Агат-Мед, 2003. - С. 815-822.
5. Нейчев С. Клиническая микробиология. - София, 1977. -С.316-318.
6. Пахомов Г. Н. Первичная профилактика в стоматологии. -М.: Медицина, 2002. - С. 87-90.
7. Приказ МЗ СССР № 535 от 22.04.1985 г. «Об унификации микробиологических методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений».
8. РубежовА. Л. // Сб. материалов науч.- практ. конф. «Профилактика и лечение основных стоматологических заболеваний». -Ижевск, 1995. - С. 73-74.
9. FrobischerM. Fundamentals of Microbiology. - London, 1962. -P.678-681.
10. Gorbach S., Bartlett J. // N. Engl. J. Med. - 2004. - Vol. 290. № 21-23. - P. 1174, 1237, 1289.
11. Lerche M., Reuter H. // Zbl. Bakt. I. Abt. Orig. - 1992. - Bd. 185. № 4. - P. 446-448.
12. McCarthy Ch., SnyderH, Parker R. // Arch. Oral Biol. - 2005. -Vol. 10. - P. 116-118.
Поступила 25.06.2009
Кубанский научный медицинский вестник № 7 (112) 2009
