CC BY
66
33. Gross J., Carlson R.I., Brauer A.W. et al. Isolation, characterization, and distribution of an unusual pancreatic human secretory protein // J. Clin. Invest. 1985. Vol. 76. P. 2115-2126.
34. Gronborg M., Bunkenborg J., Kristiansen T.Z. et al. Comprehensive proteomic analysis of human pancreatic juice // J. Prote-ome Res. 2004. Vol. 3. N5. P. 1042-1055.
35. Harada H., Takeda M., Tanaka J. et al. The fine structure of pancreatic stones as shown by scanning electron microscopy and X-ray probe microanalyser // Gastroenterol. Jpn. 1983. Vol. 18. N6. P. 530-537.
36. Iovanna J.L., Frigerio J.M., Dusetti N. et al. Lithostathine, an inhibitor of CaCO3 crystal growth in pancreatic juice, induces bacterial aggregation // Pancreas. 1993. Vol. 8. N5. P. 597-601.
37. Iovanna J.L., Dagorn J.C. The multifunctional family of secreted proteins containing a C-type lectin-like domain linked to a short N-terminal peptide // Biochim. Biophys. Acta. 2005. Vol. 1723. N 1-3. P. 8-18.
38. Jin C.X., Naruse S., Kitagawa M. et al. Pancreatic stone protein of pancreatic calculi in chronic calcified pancreatitis in man // J. of pancreas. 2002. Vol. 3. N2. P. 54-61.
39. Juhasz J.A., Best S.M., Auffret A.D., Bonfield W. Biological control of apatite growth in simulated body fluid and human blood serum // J. Mater. Sci. Mater. Med. 2008. Vol. 19. N4. P. 1823-1829.
40. Kaneko K., Ando H., Seo T. et al. Proteomic analysis of protein plugs: causative agent of symptoms in patients with choledo-chal cyst // Dig. Dis. Sci. 2007. Vol. 52. N8. P. 1979-1986.
41. Keel M, Harter L., Reding T. et al. Pancreatic stone protein is highly increased during posttraumatic sepsis and activates neutrophil granulocytes // Crit. Care Med. 2009. Vol. 37, N5. P. 1642-1648.
42. Kiji T., Dohi Y., Takasawa S. et al. Activation of regenerating gene Reg in rat and human hearts in response to acute stress // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2005. Vol. 289. N1. P. H277-H284.
43. Kimura T., Fukui H., Sekikawa A. et al. Involvement of REG Ialpha protein in the regeneration of ductal epithelial cells in the minor salivary glands of patients with Sjogren's syndrome // Clin. Exp. Immunol. 2009. Vol. 155. N1. P. 16-20.
44. Kobayashi S., Akiyama T., Nata K. et al. Identification of a receptor for reg (regenerating gene) protein, a pancreatic beta-cell regeneration factor // J. Biol. Chem. 2000. Vol. 275. N15. P. 1072310726.
45. Laurine E., Gregoire C., Fandrich M. et al. Lithostathine quadruple-helical filaments form proteinase K-resistant deposits in Creutzfeldt-Jakob disease // J. Biol. Chem. 2003. Vol. 278. N51. P. 51770-51778.
46. Lee B.I., Mustafi D., Cho W., Nakagawa Y. Characterization of calcium binding properties of lithostathine // J. Biol. Inorg. Chem. 2003. Vol. 8. N3. P. 341-347.
47. Levine J.L., Patel K.J., Zheng Q. et al. A recombinant rat regenerating protein is mitogenic to pancreatic derived cells // J. Surg. Res. 2000. Vol. 89. N1. P. 60-65.
48. Liu J.L., Cui W., Li B., Lu Y. Possible roles of reg family proteins in pancreatic islet cell growth // Endocr. Metab. Immune Disord. Drug Targets. 2008. Vol. 8. N1. P. 1-10.
49. Mahurkar S., Bhaskar S., Reddy D.N. et al. Comprehensive screening for reg1alpha gene rules out association with tropical calcific pancreatitis. // World J. Gastroenterol. 2007. Vol. 13. N44. P. 5938-5943.
50. Multigner L., Sarles H., Lombardo D., De Caro A. Pancreatic stone protein. II. Implication in stone formation during the course of chronic calcifying pancreatitis // Gastroenterology. 1985. Vol. 89. N2. P. 387-391.
51. Nabi G., N'Dow J, Hasan T.S. et al. Proteomic analysis of urine in patients with intestinal segments transposed into the urinary tract // Proteomics. 2005. Vol. 5. N6. P. 1729-1733.
52. Ochiai K., Kaneko K., Kitagawa M. et al. Activated pancreatic enzyme and pancreatic stone protein (PSP/reg) in bile of patients with pancreaticobiliary maljunction/ choledochal cysts // Dig. Dis. Sci. 2004. Vol. 49. N11-12. P. 1953-1956.
53. PatardL., Lallemand J.Y., Stoven V. An insight into the role of human pancreatic lithostathine // JOP. 2003. Vol. 4. N2. P. 92-103.
54. Rodgers A.L., Spector M. Pancreatic calculi containing brushite: ultrastructure and pathogenesis // Calcif. Tissue Int. 1986. Vol. 39. N5. P. 342-347.
55. Sanchez D., Gmyr V, Kerr-Conte J. et al. Implication of Reg I in human pancreatic duct-like cells in vivo in the pathological pancreas and in vitro during exocrine dedifferentiation // Pancreas. 2004. Vol. 29. N1. P. 14-21.
56. Sarles H. Pancreatic lithogenesis // Ann. Gastroenterol. Hepatol. (Paris). 1986. Vol. 22. N1. P. 37-40.
57. Sekikawa A., Fukui H., Fujii S. et al. Possible role of REG Ialpha protein in ulcerative colitis and colitic cancer // Gut. 2005. Vol.
54. N10. P. 1437-1444.
58. Sekikawa A., Fukui H., Suzuki K. et al. Involvement of the IL-22/REG Ialpha axis in ulcerative colitis // Lab. Invest. 2010. Vol. 90. N3. P 496-505.
59. Sennello J.A., Fayad R., Pini M. et al. Interleukin-18, together with interleukin-12, induces severe acute pancreatitis in obese but not in nonobese leptin-deficient mice // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008. - Vol. 105. N23. P. 8085-8090.
60. Viterbo D., Callender G.E., DiMaio T. et al. Administration of anti-Reg I and anti-PAPII antibodies worsens pancreatitis // JOP. 2009. Vol. 10. N1. P. 15-23.
61. Wang J., Koyota S., Zhou X. et al. Expression and localization of regenerating gene I in a rat liver regeneration model // Bio-chem. Biophys Res Commun. 2009. Vol. 380, N3. P 472-477.
62. Weiss I.M. et al. Purification and characterization of perlucin and perlustrin, two new proteins from the shell of the mollusc Haliotis laevigata // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2000. Vol. 267. №1. P. 17-21.
63. Yoshino N., Ishihara S., Rumi M.A. et al. Interleukin-8 regulates expression of Reg protein in Helicobacter pylori-infected gastric mucosa // Am. J. Gastroenterol. 2005. Vol. 100. N10. P. 2157-2166.
64. Yuan R.H., Jeng Y.M., Chen H.L. et al. Opposite roles of human pancreatitis-associated protein and REG1A expression in hepatocellular carcinoma: association of pancreatitis-associated protein expression with low-stage hepatocellular carcinoma, beta-catenin mutation, and favorable prognosis // Clin. Cancer. Res. 2005. Vol. 11. N7. P. 2568-2575.
65. Zelensky A.N., Gready J.E. C-type lectin-like domains in Fugu rubripes // BMC Genomics. 2004. Vol. 5.P 1-51.
66. Zenilman M.E., Magnuson T.H., Swinson K. et al. Pancreatic thread protein is mitogenic to pancreatic-derived cells in culture // Gastroenterology. 1996. Vol. 110. N4. P. 1208-1214.
PANCREATIC LECTINS: “TWO-FACES JANUS” OF PANCREAS A.K. MARTUSEVICH, ZH. G. SIMONOVA, N.F. KAMAKIN Kirov State Medical Academy
This article considers structure, properties and biological function of one of the most famous C-type lectins - lithostathine. Its potential role in chronic pancreatitis pathogenesis is discussed. It is stated, that lithostathine may have binary function for calcite crystallization, regulating intrapancreatic crystallostasis. It is supposed, that lithosta-thine is one of the numerous physiological modulators of biological fluid crystallogenic properties both in human and animal organisms.
Key words: lithostathine, C-type lectins, crystallization, crystal-lostasis, chronic pancreatitits.
УДК 614.64
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ВОЗМОЖНОСТЕЙ ЗАМЕНЫ АЦЕТОНА СПИРТОМ ИЛИ ИЗОПРОПАНОЛОМ В КАЧЕСТВЕ ДЕГИДРАТАТОРА В ТЕХНОЛОГИИ ПЛАСТИНАЦИИ
И.Э. БОРЗЯК, А.К. УСОВИЧ*
Технологический процесс пластинации включает многомесячную обработку препаратов при минусовой температуре, использование в качестве дегидрататора легковоспламеняющегося вцетона. Проведен эксперимент разных режимов дегидратации для определения качественной импрегнации силиконом. Исследованы 6 серий препаратов (кусочки мышечной ткани с участком сухожилия, размером 10х10х10 мм), помещенных на 7 сут. в дегидрататоры при разных условиях. Ключевые слова: пластинация, силикон, дегидратация, ацетон, этанол, изопропанол.
Пластинация (полимерное бальзамирование) возникла усилиями преподавателя анатомии Гейдельбергского Университета Гунтера фон Хагенса (Gunther von ^gens) в 70 годах ХХ столетия как новое научное направление на стыке анатомии и химии для изготовления эстетичных, гигиеничных анатомических препаратов для учебного процесса, научных исследований, анатоми-
* Бюро судебно-медицинской экспертизы департамента здравоохранения г. Москва, УО «Витебский государственный медицинский университет»
ческих музеев и научно-просветительских медицинских выставок [4,14]. G. von Hdgens использовал и усовершенствовал методы своего соотечественника В. Шпальтегольца (W. Spalteholz) по пропитыванию тканей анатомических препаратов вязкими веществами для их просветления. G. von HEgens применил новые вещества: силикон, эпоксидную смолу, полиэфирные пластмассы, назвав этот процесс «пластинация», и запатентовал эти методы, но сроки действия патентов истекли в конце 90 годов ХХ столетия.
Весь технологический процесс пластинации основывается на общеизвестных принципах изготовления гистологических и просветлённых препаратов: вначале производится фиксация тканей биологических объектов, затем их обезвоживание, пропитывание реакционноспособным полимером (силикон) и после придания препарату требуемой формы - отверждение полимера [13,10,11,13]. Обезвоживание тканей фиксированного препарата является ключевым этапом технологии пластинации, так как обеспечивает создание условий возможности пропитывания тканей полимерным материалом [6-8,11,15]. Силикон, которым затем пропитывают препараты, не смешивается с водой и не может заместить воду в тканях препаратов, пока она не выйдет из тканей. Силикон может «войти» (пропитать) в ткань только тогда, когда вода «выйдет» из тканей. Принцип пластинации - это замена воды в тканях на полимер. Вода может испариться, т.е. выйти из тканей при высокой температуре (+100° С). Но при этом происходит термическое разрушение тканей. Необходимо другое, промежуточное, вещество, которое бы «выходило» (испарялось) из тканей при более низкой температуре, термически не разрушающей ткани. Такими веществами являются ацетон и этиловый спирт, которые неограниченно смешиваются с водой и могут заместить воду в тканях. Полное обезвоживание тканей препаратов способствует полному пропитыванию тканей полимерным материалом. Не полностью обезвоженная ткань в дальнейшем подвергается процессу высыхания, что приводит к уменьшению объёма ткани, то есть к сморщиванию или ретракции тканей препарата. Во всех известных технологиях силиконовой пластинации этиловый спирт используется только для предварительной дегидратации [2,3,6,8,10-15]. На заключительном этапе перед погружением в силикон препараты находятся в охлаждённом ацетоне. Недостатком существующих методов пластинации является необходимость работы с легковоспламеняющимся и имеющим низкую температуру кипения (около 57° C) aцетона, наличие больших вакуумных ёмкостей и холодильных камер. Поэтому в последние годы в различных странах выполняются исследования возможности замены ацетона другими веществами и проведения процесса пластинации при комнатной температуре [5,9,16]. Целью нашего исследования явилось выяснение возможности замены ацетона менее взрывоопасными обезвоживающими веществами без использования вакуума при комнатной температуре на этапе замены дегидрататора силиконом в технологическом процессе пластинации.
Материалы и методы исследования. В качестве обезвоживающего и обезжиривающего вещества в альтернативу ацетону мы использовали этанол (технический этиловый спирт) и изопропанол. Этанол (температура кипения 78,15°C, смешивается с водой) является известным средством, используемым в гистологической технике, при просветлении препаратов как обезвоживающее и обезжиривающее средство. Стоимость этанола ~ на 50% ниже ацетона. Изопропанол (температура кипения 82,4°C, смешивается с водой) по своим химическим характеристикам также обладает дегидратирующими свойствами. Изопропанол взят в качестве альтернативы этанолу, т.к. он не пригоден для употребления в качестве спиртсодержащей жидкости (в связи с требованием руководства медицинских ведомств по ограничению применения этанола). Стоимость изопропанола ~ равна стоимости ацетона.
В исследовании мы выясняли возможность замещения этанола и изопропанола силиконом в тканях анатомических препаратов тела человека. Процесс обезвоживания должен происходить медленно, во избежание уменьшения в размерах (сморщивания) мягких тканей препаратов. Они не должны приобрести твёрдость или другую окраску.
Работа выполнена на препаратах трупов человека, переданных на кафедру анатомии человека на основании соответствующих нормативных документов Республики Беларусь. Для того чтобы ускорить время исследования, мы взяли для эксперимента кусочки человеческих тканей, которые были уже обезвожены и обезжирены в ацетоне по обычной технологии, т.е. обезвожены при минусовой
температуре и обезжирены при комнатной температуре. Для исследования взяты кусочки (10x10x10 мм) мышечной ткани с участком сухожилия. Процесс предварительного обезвоживания и обезжиривания выполнялся по нижеприведенному алгоритму.
1. Чистый ацетон 98-99% наливали в ёмкость из нержавеющей стали, или стекла, чтобы объём ацетона превышал объём препаратов в 10 и более раз. Эту ёмкость помещали в холодильник охлаждали до -23° -25°С.
2. Подготовленные к обезвоживанию анатомические препараты помещали в холодный ацетон. В него помещают такое количество препаратов, чтобы температура ацетона не повысилась выше -14° -15° С. При наличии ещё готовых препаратов и места в ёмкости их необходимо поместить в неё только при новом охлаждении ацетона до -23° -25°С.
3. Ежедневно осуществляли перемешивание холодного ацетона. Перемешивание ацетона в ёмкости с препаратами проводится с целью активного омывания ацетоном всей поверхности препарата и уравновешивания концентрации ацетона вокруг препаратов и в остальных участках сосуда. Эта процедура значительно сокращает сроки обезвоживания.
4. Постоянный контроль за работой холодильника и температурой ацетона в сосуде.
5. Каждые сутки проводится измерение концентрации воды в ацетоне с помощью ацетонометра. При понижении концентрации ацетона до 82-85% необходимо заменить его на концентрированный ацетон. Для этого сначала необходимо покрыть препараты в сосуде белой (неокрашенной) тканью, а затем очень быстро перекачать этот ацетон в другую ёмкость. При откачивании ацетона необходимо следить за состоянием препаратов. Вследствие низкой температуры кипения, ацетон очень быстро начинает испаряться с поверхности препаратов, если они не находятся уже в холодном ацетоне. Ацетон испаряется также и в поверхностных слоях тканей препаратов, но так как эти пары ацетона не могут пройти через слои ткани, то они скапливаются в ткани в виде многочисленных мельчайших пузырьков. Место скопления таких пузырьков выглядит, как участок препарата белого цвета, в результате отражения света стенками пузырьков. Исходя из этого, необходимо, откачивая ацетон, постоянно орошать препараты ацетоном. Новая порция ацетона, заливаемого в сосуд с препаратами, должна быть охлаждена не менее чем до -10°С. Лучшим способом замены ацетона в сосуде является перемещение препаратов из сосуда с высоким содержанием воды в сосуд с новым ацетоном, охлаждённым до -22° -23°С.
6. Последующие замены ацетона необходимо производить до тех пор, пока его концентрация не будет оставаться на уровне 98-99% не менее трёх суток.
Всего для обезвоживания одного препарата необходимо в 6-8 раз больше ацетона, чем масса самого препарата.
Половина экспериментальных препаратов после извлечения из охлаждённого ацетона была выдержана в течение 7 суток в этаноле или изопропаноле при минусовой температуре (-20-25оС), а половина - при комнатной температуре (~ +20оС). После пропитывания препаратов этанолом и изопропанолом они были перенесены в силикон.
Для контроля и сравнения полученных результатов исследования параллельно подобные кусочки мышечной ткани с участком сухожилии были также перенесены в силикон после обезвоживания и обезжиривания ацетоном по обычной технологии при минусовой температуре (-20-25оС).
Для импрегнации препаратов нами использован силикон средней густоты с молекулярной массой 13600 и содержанием гидроксильных групп 0,2-0,3%. В качестве катализатора отверждения применялся дибутилтиндилаурат (1%), а в качестве от-вердителя силикона - тетраэтоксисилан. 1% дибутилтиндилаура-та смешивался с силиконом непосредственно перед закладкой препаратов в силикон.
В результате проведения через этанол и изопропанол в различных условиях были получены четыре серии экспериментальных препаратов:
- препараты, выдержанные в этаноле при минусовой температуре;
- препараты, выдержанные в этаноле при комнатной температуре;
- препараты, выдержанные в изопропаноле при минудовой температуре;
- препараты, выдержанные в изопропаноле при комнатной температуре.
Препараты, предназначенные для контроля и сравнения полученных результатов исследования, были разделены на две серии:
- препараты, проведенные через ацетон при минусовой температуре;
- препараты, проведенные через ацетон при комнатной температуре.
Каждая из серий препаратов, предназначенных для пропитывания силиконом, была разделена на две группы, одна из которых импрегнировалась в силиконе при минусoвoй температуре с использованием вакуума, вторая - при комнатной температуре без использования вакуума. Таким образом, было получено шесть групп препаратов, которые пропитывались силиконом при минусовой температуре и шесть групп, которые пропитывались силиконом при комнатной температуре (рис. 1). Каждая группа включала 10 идентичных по размерам препаратов. Для препаратов, проведенных через этанол, изопропанол и ацетон, на этапе импрегнации были использованы различные ёмкости с силиконом.
В связи с использованием в эксперименте небольших кусочков тканей (1 см3) процесс импрегнации (пропитывания препаратов силиконом) был укорочен и проводился в течение 14 суток. Для препаратов, которые прoпитывались силиконом при минусовой температуре, применяли вакуум, начиная с третьего дня пропитывания. После достижения полного вакуума (0 млб) препараты выдерживались под таким давлением в силиконе еще двое суток. Для препаратов, которые пропитывались ^ликоном при комнатной температуре, был применён метод ежедневного удаления около 20% объёма силикона из импрегна-ционной ёмкости с последующим добавлением в неё такого же объёма чистого (без дегидрататора) силикона.
Отверждение всех препаратов, контрольных в том числе, проводили в одной той же камере при одних и тех условиях в течение 24 часов с промежуточным контролем каждые 12 часов. Полное отверждение наступило только через 24 часа.
Результаты и их обсуждение. Контрольные препараты, которые были обезвожены в ацетоне и инфильтрированы силиконом как при минусовой, так и при комнатной температуре в вакууме и без него, после отверждения по своим качествам ничем не отличаются друг от друга: кусочки тканей (мышцы с соединительной тканью) мягкие; на их поверхности силикон не липкий; на срезе пучки мышечных волокон не жёсткие; пучки соединительнотканных волокон на срезе слегка определяются на ощупь; мышечная ткань имеет светло-коричневую окраску; кусочки тканей не изменились в размерах.
Препараты, проведенные через этанол и импрегнированные силиконом как при минусовой, так и при комнатной температуре в вакууме и без него, после отверждения мягкие на ощупь; пучки соединительнотканных волокон слегка жесткие на ощупь (незначительно жёстче контрольных), белого цвета; без запаха этанола; пучки мышечных волокон светло-коричневой окраски. На поверхности препаратов силикон не липкий.
Препараты, проведенные через изопропанол и импрегниро-ванные силиконом как при минусовой, так и при комнатной температуре в вакууме и без него, имеют выраженный запах изопропанола; тёмно-коричневую окраску; жёсткие на ощупь; на срезе мышечной ткани пучки мышечных волокон твёрдые, пучки соединительнотканных волокон жёсткие; кусочки тканей слегка уменьшены в размерах, на их поверхности силикон не липкий.
Выводы. В результате исследования установлено, что наиболее эффективной является отработанная технология дегидратации анатомических препаратов ацетоном при температуре -20-25оС. В то же время, отверждённые анатомические препараты небольших размеров, предварительно обезвоженные в ацетоне при температуре -20-25оС и проведенные перед импрегнацией силиконом через этанол, по свoим физическим свойствам практически ничем не отличаются от препаратов, проведенных через ацетон.
Следовательно, этанол легко замещается силиконом и может быть использован в технологическом процессе пластинации для окончательного обезвоживания и обезжиривания небольших по объёму анатомических препаратов как при комнатной, так и при минусовoй температурах в вакууме и без него.
Изoпропанол не может быть использован в качестве дегид-рататора в технологии пластинации, так как даже в предварительно обезвоженных в ацетоне при температуре -20-25оС анатомических препаратах объёмом 1 см3 и помещённых в изопропанол только перед импрегнацией силиконом не полностью замещается силиконом. Это приводит к изменению размеров (сморщиванию) препарата и ухудшению физических качеств и внешнего вида тканей анатомических препаратов.
Литература
1. Гайворонский И. В, Старчик Д.А., Григорян С.П., Ничи-порук Г.И. Новые методы бальзамирования биологических объектов // Науч. ведом. Белгородского ун-та. 2000. №2. С. 31-32.
2. Гайворонский И. В, Старчик Д.А., Григорян С.П. Полимерное бальзамирование - новая отечественная технология / [Электрон. ресурс]. Режим доступа: http://www.farosplus.ru/index.htm? /mtmi/mt_3_9/polimer_balzam.htm.
3. Старченко И.И., Прилуцкий А.К. Применение метода пластинации в стереоморфологических исследованиях // Вісник проблем біології і медицини (Полтава). 2006. Вип. 2. С. 420-422.
4. Старчик Д.А. История и перспективы развития полимерного бальзамирования человеческого тела // Biomedical and Biosocial Anthropology. 2004. №2. С. 82-84.
5. Brown M.A., Reed R.B., Henry R.W. Effects of Dehydration Mediums and Temperature on Total Dehydration Time and Tissue Shrinkage // J Int Soc Plastination. 2002. Vol. 1У. P. 28-33.
6. Henry R. Plastination - Dehydratation of specimens // J Int Soc Plastination. 1992. Vol. 6. № 1. P. 4-5.
I. Henry R. W. History and Principles of Dehydration // J Int Soc Plastination. 2001. Vol.16. P. 31-32.
8. Holladay S.D. Experiments in dehydration technique // J Int Soc Plastination. 1988. Vol. 2. № 2. P. П-20.
9. Jimenez R., Isaza O. Dehydration with alcohol at room temperature and use of locally available polymers to plastinate human tissue // J Int Soc Plastination. 2002. Vol.H. P. 6.
10. Miklosova M. The first experiences with make plastinated preparations // Slovensky LEKAR. 2002. №1-2. P. 35-3У.
II. Olry R. La plastination: bases ^oriques et modaltiis pratiques // Bull Soc Anat (Paris). 1992. Vol.16. P. 35-39.
12. Poterski R.S., Summerlee A.J.S., Miller G.C. A new method for preservation of lungs // J Int Soc Plastination. 1993. Vol. У. № 1. P. 13-15.
13. Sivrev D. New Technologies for Lung Conservation in Anatomical Museum. // Bul. Med. 1996. Vol.4. № 5-6. P. У0-У2.
14. von Hagens G, Tiedemann К., Kriz W. The current potential of plastination // Anatomy and Embryology. 19У8. Vol. H5. P. 411-421.
15. Hagens G. Dehydration in Plastination // Heidelberg Plas-tination Folder. 1986. P. 3-13.
16. Zheng T.Z. The Su Yi Chinese silicone for doing plastina-tion at room temperature // J Int Soc Plastination. 2005. Vol. 20. P. 31.
DETERMINING THE POSSIBILITY OF ACETONE OR ISOPROPANOLE SUBSTITUTION WITH SPIRIT AS A DEHYDRATOR IN PLASTINATION TECHNOLY
I.E. BORZYAK, A.K. USOVICH
Moscow Forensic Medical Examination Office of Health Department Vitebsk State Medical University
The technological process of plastination includes processing of preparations at negative temperature for many months using inflammable acetone as dehydrator. A various mode experiment of dehydration for determining qualitative impregnation with silicone was carried out. There were studied 6 series of preparations (pieces of muscular tissue with a part of tendon, 10x10x10 mm in size) placed for 1 day in dehydrator under various conditions.
Key words: plastination, silicone, dehydration, acetone, ethanol, isopropanole.
