CC BY
5
выше, чем окружности плеча. У мальчиков четко проявлялась противоположная тенденция. Динамика этих показателей по полугодиям не имела каких-либо закономерностей ни у мальчиков, ни у девочек.
Размеры таза у девочек увеличились на протяжении учебного года, но более значительно во втором полугодии.
Темп повышения функциональных показателей (ЖЕЛ, силы обеих кистей) был более высоким в первом полугодии, а становой силы достоверно выше во втором. Следует обратить внимание на тот факт, что у учениц 8-х классов в течение учебного года снижались показатели ЖЕЛ и силы кистей.
Таким образом, следует отметить, что в течение учебного года в основном происходит возрастание морфофунк-циональных показателей у учащихся 4—8-х классов, но имеются определенные возрастно-половые различия в ин-
тенсивности этнх процессов. Имеются также различия в темпах повышения морфологических и функциональных показателей. Увеличение темпа прироста массы тела по сравнению с темпом роста тела в длину, более выраженноеАо втором полугодии, н снижение темпа возрастания ряла функциональных показателей в это время учебного года мы склонны объяснять снижением двигательной активности детей к концу учебного года.
ЛИТЕРАТУРА
1. Грибан В. Г., Мельников В. Л.— В кн.: Вопросы физиологии сердечно-сосудистой системы школьников. М., 1980, с. 55—61.
2. Хрипкова А. Г. Возрастная физиология. М., 1978.
Поступила 15.10.83
УДК 614.73:546.711.02.541-074
Н. В. Винцукевич, /О. А. Томилин, Л. Д. Пидоренко
ОПРЕДЕЛЕНИЕ КОНЦЕНТРАЦИИ "Мп В ПРОБАХ РАСТИТЕЛЬНОГО МАТЕРИАЛА И ПОЧВЫ
Николаевская областная санэпидстанция
Радиоактивный распад ыМп происходит путем электронного захвата, сопровождающегося испусканием фотонов с максимальной энергией 0,835 МэВ. В этом энергетическом диапазоне ■у-излученни находятся у_Л11ННи и таких радионуклидов, как '"Се, иСо, 1,0Ад и др. (Еу|ПЯХ, '"Се 0,796 МэВ, мСо 0.810 МэВ, "»Ай 0,884 МэВ) [2]'" Энергетическое разрушение современной отечественной -у-спектР°-метрической аппаратуры со сцинтилляционным детектором (10—11 %), который в настоящее время в отличие от полупроводникового более доступен для санэпидстанций, не позволяет без радиохимического выделения радионуклида из пробы достаточно точно определить его концентрацию в различных объектах внешней среды.
Один из методов радиохимического выделения 54Мп, используемый нами для определения содержания радионуклида в образцах почвы и растительного материала, основан на экстрагировании днэтилдитиокарбамата мащдцда' четыреххлористым углеродом. Метод включает большое число операций, что увеличивает вероятность потерь элемента. Особенно заметен этот недостаток метода при работе с пробами, содержащими небольшие количества радионуклида (менее 10-10 Ки/кг). Кроме того, для проведения экстракции требуется большой набор дефицитных реактивов [2, 41.
В связи с этим при анализе проб растительного материала и почвы на содержание в них |овЯи, '"Се и 6,Мп мы попытались отделить последний от других элементов осаждением с каким-либо носителем. Для данной цели необходимо было подобрать такой реактив, который отделял бы марганец от других элементов, причем после однократного осаждения, и позволял проводить радиометрию осадка после минимального числа химических операций. По нашему мнению, таким реактивом мог бы служить хлорат калия, который осаждает марганец из кипящих азотнокислых растворов в виде его двуокиси [3].
Анализ проводили следующим образом. Навеску золы (20—30 г при удельной активности золы ~пКи/г и 5—10 г при ~нКи/г) переносили в фарфоровую чашку и при 350 °С, периодически смачивая Н202, освобождали от остатков органических веществ. Естественное содержание марганца предварительно определяли из отдельной навески золы колориметрическим методом [2, 3). Носитель помещали в золу в виде раствора МпС12 из расчета 100—200 мг Мп2+ с учетом естественного содержания марганца в пробе. Содержимое чашки растворяли при кипячении в минимальном объеме азотной кислоты, добавляли равный объем воды и отфильтровали осадок. Фильтрат выпаривали до сиропо-
Я
образного состояния и прибавляли 50 мл разбавленной (1:1) азотной кислоты. Стакан покрывали часовым стеклом, для удаления окислов азота кипятили несколько минут и, поддерживая температуру, близкую к кипению, вводили в рас-
Зависимость скорости счета импульсов от препарата, содержащего "Мп, от количества внесенного в раствор носителя (активность 14Мп в пробе 0,8-10 8 Ки)
пробы Количество внесенного Ми3*. мг Скорость счета имп/мин Количество Мп мг ыделенного %
1 26,5 140,0 17,7 66,7
2 26,5 122,3 13,4 50,5
3 26,5 125,2 14,9 56,5
4 53,0 151,1 31,9 60,2
5 53,0 128,0 32,6 61,6
6 53,0 135,0 28,6 54,0
7 106,0 178,0 79,9 75,3
8 106,0 182,2 83,4 78,7 Р
9 106,0 170,0 75,8 71,6
10 212,0 177,0 171,0 80,6
11 212,0 181,7 152,8 72,1
12 212,0 174,2 146,7 69,2
13 318,0 170,4 216,2 67,9
14 318,0 177,0 210,1 66,1
15 318,0 173,5 234,0 73,6
16 530,0 169,5 343,9 64,9
17 530,0 165,8 332,3 62,7
18 530,0 175,1 414,9 78,3
19 742,0 160,6 561,8 75,7
20 742,0 169,6 448,9 60,5
21 742,0 171,7 529,7 71,4
22 1060,0 162,5 639,3 60,3
23 1060,0 157,8 757,9 71,5
24 1060,0 166,3 622,2 58,7
25 1590,0 150,0 923,8 58,1
26 1590,0 160,1 993,7 62,5
27 1590,0 155,5 1033,5 65,0
28 2120,0 152,2 1512,7 71,3
29 2120,0 145,7 1168,1 55,1
30 2120,0 159,4 1191,4 56,2
А =
SP
2,22-1013-1 -rjpQ-/?
Ки/кг,
100 30 60 10 60 50 40 30 20 ю
J_1_
J_L
I I_L
200 400 600 всю /ООО1200МОО ¡600юоо госо ггоо
Рис. 1. Зависимость скорости счета "Мп, выделенного на носителе Мп02, от количества носителя, внесенного в анализируемый раствор (активность мМп 0,8-10-* Ки).
[Ьь оси абсцисс — количество носителя, внесенного в раствор (в мг); ■(•»осн ординат — скорость счета импульсов от препарата Л (в иып/мин).
твор в течение 10—20 мин очень малыми порциями 5 г хлората калия. После прибавления всего хлората калия раствор продолжали кипятить, пока вспенивание почти не прекратится. Часовое стекло и стенки стакана обмывали небольшим количеством воды, прибавляли 40 мл холодной воды и быстро охлаждали раствор до 2—5°С. Затем переводы и быстро охлаждали раствор до 2—5°С. Раствор фильтровали через плотный фильтр, осадок промывали малыми порциями холодной воды. Осадок на фильтре подсушивали и озоляли при 350 °С. Затем переносили его на подложку и измеряли активность препарата на многомерном анализаторе АИ-1024 со сцинтилляционным детектором Nal (TI).
Химический выход носителя нельзя определить взвешиванием двуокиси марганца, так как осадок Мп02— химически неустойчивая форма, трудно доводимая до постоянной массы. Возможно также загрязнение осадка примесями кремния, вольфрама, железа и сурьмы, поэтому после определения активности препарата осадок растворяли в разбавленной (1:1) азотной кислоте ( — 10 мл) и измеряли выход марганца колориметрическим методом [2, 3].
Концентрацию 54Мп рассчитывали по следующему соот-шению:
2004œœoeoo,œowo,4aoi60o,eoozooo220o
где 5 — площадь фотопика с энергией 0,835 МэВ (в нмп/мин); 2,22-10|г — коэффициент перехода от распадов в 1 мин к кюри; 1 — квантовый выход у-линин 54Мп с энергией 0,835 МэВ; уквант на распад; т) — фотоэффективность спектрометра при регистрации у-квантов с энергией
190 ГвО ПО 160 I50
m /во 120 по
\lOO
Зависимость ско-счета импульсов
J_I_L
I
J_L
50 55 60 65 70 75 SO
Рис. 2. ростн
от полноты химического выделения носителя.
По оси абсцисс — количество носителя, выделенного из раствора (в %); по оси ординат — скорость счета импульсов от препарата (в нмп/мин).
Рнс. 3. Зависимость полноты химического выхода носителя от его количества, внесенного в раствор. По оси абсцисс — количество носителя, внесенного в раствор (в мг); по оси ординат — количество носителя, выделенного из раствора (в °к).
0.835 МэВ, имп/число у-квантов; Q —масса пробы (в кг); р — навеска золы (в г); р — химический выход марганца (в долях).
Для выбора оптимальных параметров методики проведена серия анализов растворов с заведомо известной концентрацией мМп. В 30 стаканов вместимостью 100 мл налили по 50 мл разбавленной (1 : 1) азотной кислоты и внесли определенное количество (0,8-10~8 Ки) 54Мп. В каждые три стакана внесли соответственно по 0,25, 0,5,
1, 2, 3, 5, 7, 10, 15 и 20 мл раствора МпС12 с концентрацией марганца 106 мг/мл по Мпг+. Двуокись марганца осаждали по описанной ранее методике, активность препаратов измеряли на том же комплекте аппаратуры.
Результаты измерений скорости счета импульсов от препаратов, а также химические выходы носителя приведены в таблице. Как видно из графика (рис. 1), имеется определенная корреляционная зависимость между скоростью счета импульсов от препарата и количеством внесенного в испытуемый раствор носителя. Минимальное значение счета (122,3 нмп/мин) дает препарат, в который внесено 26,5 мг марганца. С увеличением количества внесенного носителя активность осадка растет, достигая максимума (170— 182,2 нмп/мин) в препаратах с химическим выходом носителя 100—300 мг, после чего скорость счета начинает заметно снижаться.
Сравнивая результаты радиометрии препаратов с величиной химического выхода носителя (рис. 2), можно заметить некоторую положительную корреляцию между счетно-стью препарат и полнотой выделения носителя из раствора. Заметно также (рис. 3), что максимальное осаждение марганца происходит при добавлении от 100 до 200 мг носителя. При уменьшении или увеличении этого количества носителя химический выход заметно снижается. Учитывая это, нам представляется наиболее целесообразным применить для анализируемой пробы в качестве носителя стабильный изотоп марганца из расчета 100—200 мг Мпг+ с учетом естественного количества марганца в пробе.
Таким образом, предлагаемый метод может быть использован в практической работе радиологической службы санэпидстанций при определении "Мп в пробах внешней среды, когда в них содержатся также и другие радионуклиды, успектры которых затрудняют расшифровку спектрограмм проб обычными математическими методами.
ЛИТЕРАТУРА
1. Гусев Н. Г., Дмитриев П. П. Квантовое излучение радиоактивных нуклидов. Справочник. М„ 1977.
2. Новиков Ю. В., Ласточкина К. О., Болдина 3. И. Мс-
тоды определения вредных веществ в воде водоемов. и др. М., 1966. 1
М„ 1981. 4. Унифицированные методы определения химических Щ-
3. Практическое руководство по неорганическому анали- ществ в почве. М., 1971,
зу./Гиллебранд В. Ф., Лендель Г. Э., Брайт Г. А. Поступила 07 оз 84
УДК 614.777:615.285.7:546.131+028.191:615.285.7
А. С. Саратиков, Е. М. Трофимович, А. Б. Бурова, Ф. И. Бурченкова, А. Н. Иордан, Н. Г. Кадычагова, Т. К. Никитенко, Г. В. Борисова,
Т. И. Горшенина
ОБОСНОВАНИЕ ПРЕДЕЛЬНО ДОПУСТИМОЙ КОНЦЕНТРАЦИИ ДИМЕТИЛОКТАДЕЦИЛБЕНЗИЛАММОН ИИХЛОРИДА В ВОДЕ ВОДНЫХ ОБЪЕКТОВ САНИТАРНО-БЫТОВОГО ВОДОПОЛЬЗОВАНИЯ
Томский медицинский институт
Днметилоктадеинлбснзнламмоннйхлорид (ДМОДБАХ) — СзбНздМС! — в виде 50±5 % спиртового раствора под названием «катионат-2Б» используется для дезинфекции животноводческих помещений и инкубационных яиц.
ДМОДБАХ — аморфное вещество желтоватого цвета, с резким запахом, температура плавления 50°С, растворим в воде и этаноле. Со сточными водами это соединение в концентрации 10—20 мг/дм3 может поступать в водоемы. Количество сточных вод составляет 11,9 т на 1т готового продукта. Планируемый объем производства 16—20 т в год.
В данной работе была поставлена задача изучить влияние ДМОДБАХ на водопользование и гигиеническое регламентирование его в воде водоемов по общепринятой схеме |3, 4].
ДМОДБАХ придает природной воде стандартного состава специфический запах; пороговая концентрация при 20 °С 0,1 мг/дм3. Хлорирование и нагревание до 60 С водных растворов ДМОДБАХ (до концентрации 20 мг/дм3) не изменяют интенсивность запаха. Соединение в концентрации до 1 мг не сообщает воде посторонний привкус и не вызывает ценообразование.
ДМОДБАХ тормозит процесс биохимического потребления кислорода (БПК), причем наиболее интенсивно в первые сутки инкубации, однако к 15—20-м суткам БПК заметно увеличивается. Этот эффект, очевидно, связан с динамикой бактерицидного действия соединения. Соответствующие эксперименты по оценке сапрофитной микрофлоры воды показали, что количество жизнеспособных микроорганизмов в воде под действием ДМОДБАХ после 10 сут инкубации начинает возрастать. Пороговая концентрация по влиянию на санитарный режим водных объектов для ДМОДБАХ составляет 0,1 мг/дм3, константа скорости потребления кислорода воды [5] при окислении этого соединения в концентрации 5 мг/дм3—1,46. ДМОДБАХ относится к стабильным в воде веществам; в течение 2 сут его пороговая (по запаху) концентрация в воде увеличилась с 0,1 до 1 мг/дм3 и сохранялась на этом уровне до 5 сут. Изучение динамики перманганатной окисляемости воды при действии ДМОДБАХ подтверждает стабильность этого соединения в воде.
Таким образом. ДМОДБАХ тормозит самоочищение воды от органических загрязнений на стадии углеродистого окисления одновременно вызывая бактерицидный эффект, т. е. обладает одной из наиболее неблагоприятных форм воздействия специфических ингредиентов производственных сточных вод на санитарное состояние водных объектов. Обладающий значительной стабильностью ДМОДБАХ может вызвать отрицательные санитарные последствия водопользования населения из открытых водных объектов — приемников производственных сточных вод.
В опытах на белых мышах, крысах, морских свинках была изучена острая токсичность ДМОДБАХ при оральном введении в организм животных в водном растворе. ДМОДБАХ относится к веществам с умеренной острой токсичностью (III класс по ГОСТу 12.1.007—76); ЬОм, рас-
считанная по методу Литчфилда и Чилкоксона [1], составляет для белых мышей 800 мг/кг, для белых крыс 1500 мг/кг, для морских свинок 500 мг/кг.
Клиническая картина интоксикации характеризовал^ снижением двигательной активности и возбудимости, появлением у части животных птоза, диареи, повышенного диуреза. Гибель животных наступала преимущественно в течение первых 3 сут. Для сравнительной оценки видовой чувствительности животных к ДМОДБАХ рассчитаны ЬО50 при нанесении на поверхность тела, которая у млекопитающих находится в тесной связи с основным обменом (2]. ЬОм ДМОДБАХ составляет для мышей 2,09 мг/см-, для крыс 0,89 мг/см2, для морских свинок 0,40 мг/смг. При однократном нанесении ДМОДБАХ в виде 20% водной суспензии на кожу кроликов выявлено выраженное раздражающее действие: гиперемия, болезненность, уплотнение кожи, образование трещин. Однократное внесение I капли 12% водной суспензии в конъюнктивальный мешок глаза кролика приводило к развитию катарального конъюнктивита (блефароспазм, слезотечение, отечность век, гноетечение). Явления воспаления и помутнения глаза сохранялись в течение 20 дней.
ДМОДБАХ обладает умеренными кумулятивными свойствами: коэффициенты кумуляции по Лнму для белых крыс на уровнях ЬО]в, ЬЭвд и составляют 1,4, 2,3 и 2,7 соответственно.
Судя по результатам подострого токсикологического эксперимента на крысах длительностью 1,5 мсс, ДМОДБАХ в дозах 1/30 и 1/10 ЕЭм (50 и 150 мг/кг) угнетает экскру; торную функцию печени, нарушает деятельность почек, пдат вышает возбудимость ЦНС. Следовательно, по характеру биологического действия на организм ДМОДБАХ, как и другие третичные амины, относится к ядам, дающим ней-ротоксический эффект, повреждающим печень и почки.
На основании результатов острого и подострого экспериментов, а также данных расчетного метода прогнозирования минимальной недействующей дозы (МНД) (по формуле, рекомендуемой для хлорорганических соединений:
МНД = 1,16; ЬОю 5,495; МНД = 0,016 мг/кг) » хронический 6-месячный эксперимент взяты 3 дозы: 0,02, 0,2 и 2,0 мг/кг. Оценку хронической токсичности прозодили по следующим показателям: поведению и общему состоянию животных, динамике массы, СПП, ЭКГ, морфологическому составу периферической крови, активности щелочной фос-фатазы и аланинамннотрансферазы крови, экскреции БСФ, суточному диурезу, содержанию в моче белка, сахара, кре-атинина. По окончании эксперимента определяли весовые коэффициенты органов и проводили патологоанатомнче-ское исследование.
ДМОДБАХ в условиях длительного поступления в организм животных в дозе 2 мг/кг значительно подавлял экскреторную функцию печени, нарушал деятельность почек (появление белка в моче), повышал возбудимость ЦНС (снижение величины СПП). Введение дозы 0,2 мг/кгл сопровождалось усилением суточного диуреза, эпнзодиче-'
