CC BY
22
СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ БИОЛОГИЯ, 2018, том 53, № 3, с. 475-484
УДК 631.576.33:577.15.004.14:577.152.3 doi: 10.15389/agrobiology.2018.3.475rus
ОГРАНИЧЕННЫЙ ПРОТЕОЛИЗ КАК СПОСОБ СНИЖЕНИЯ АЛЛЕРГЕННОСТИ ЗАПАСНЫХ ГЛОБУЛИНОВ СЕМЯН
(обзор)
А.М. КЕРДИВАРЭ
По данным SDAP (структурная база данных аллергенных белков), запасные 11S и 7S глобулины семян арахиса, сои и некоторых других растений являются аллергенами. Структурной основой доменов двудоменных субъединиц 11S и 7S глобулинов служит ß-баррель, соединенный с группой a-спиралей. В процессе эволюции в аминокислотных последовательностях запасных глобулинов за пределами структурного модуля ß-баррель-а-спирали появились протяженные неупорядоченные вставки с повышенной чувствительностью к протеолитической атаке. Эти вставки определяют закономерности ограниченного протеолиза запасных глобулинов в прорастающих семенах и in vitro. В настоящем обзоре анализируются экспериментальные данные, полученные при исследовании ограниченного протеолиза запасных глобулинов семян арахиса (Arachis hypogaea L.), сои (Glycine max L.) и некоторых других растений. Установлено, что ограниченный протеолиз 11S глобулина арахиса (A. Cherdivarä с соавт., 2017) приводит к разрушению С-концевой области a-цепей, включая участок, образующий группу a-спиралей. Три из четырех антигенных детерминант (IgE эпитопов), идентифицированных в субъединице арахиса Ara h3 (P. Rabjohn с соавт., 1999), принадлежат к этой области. То есть ограниченный протеолиз приводит к существенному снижению аллергенности субъединицы Ara h3. Присутствие IgE эпитопов в гомологичных участках консервативных последовательностей a-спиралей большинства других субъединиц 11S глобулина арахиса, неидентичных Ara h3, весьма вероятно. Следовательно, ограниченный протеолиз не только субъединицы Ara h3, но и всей гетерогексамерной молекулы 11S глобулина арахиса может сопровождаться существенным снижением его аллергенности. Перспективы снижения аллергенности 11S глобулина сои посредством ограниченного протеолиза не столь однозначны. С одной стороны, ограниченный протеолиз субъединицы Gly m G1 приводит к разрушению С-концевой области a-цепей (A. Shutov с соавт., 2012), где присутствуют оба идентифицированных IgE эпитопа (T.A. Beardslee с соавт., 2000). С другой, — только один из IgE эпитопов, идентифицированных в субъединице Gly m G2 (R.M. Helm с соавт., 2000), может быть удален при ограниченном протеолизе этого белка (A. Shutov с соавт., 1993). При ограниченном протеолизе ряда других 11S глобулинов семян также наблюдается отщепление области a-спиралей a-цепей. Высокая консервативность этой области в первичной структуре 11S глобулинов позволяет предполагать присутствие во многих из них IgE эпитопов, подобных идентифицированным в 11S глобулинах арахиса и сои. Перспективы снижения ограниченным проте-олизом аллергенности 7S глобулинов семян также благоприятны. Ограниченный протеолиз 7S глобулина арахиса Ara h1 начинается с полного расщепления неупорядоченного N-концевого удлинения (A. Cherdivar с соавт., 2016), в последовательности которого присутствует третья часть идентифицированных в этом белке IgE эпитопов (D.S. Shin с соавт., 1998). Последующий ограниченный протеолиз приводит к разрушению другой неупорядоченной области N-концевого домена, где идентифицирован еще один из IgE эпитопов Ara h1. Совокупность рассмотренных в настоящем обзоре сведений о структурах запасных глобулинов семян и об IgE эпитопах, идентифицированных в их аминокислотных последовательностях, свидетельствует о перспективности использования ограниченного протеолиза как способа существенного снижения аллергености запасных 11S и 7S глобулинов семян различных растений, которые используются в пище напрямую или в качестве добавок к пищевым продуктам.
Ключевые слова: запасные глобулины семян, протеолиз, аллергенность, IgE эпитопы, Arachis hypogaea L., арахис, Glycine max L., соя.
Основную часть пищевых растительных белков представляют собой запасные белки семян. Подавляющее число запасных белков семян входит в состав двух консервативных семейств — 7S (вицилины) и 11S глобулинов (легумины) (1). Их аминокислотные последовательности унаследованы от вицилино- и легуминоподобных белков споровых растений (2). В свою очередь, последние произошли от бактериальных оксалатдекар-боксилаз (3). Все эти белки принадлежат обширному суперсемейству ку-пинов, объединяющему десятки функционально разнообразных семейств белков, в структуре которых присутствует ß-баррель из антипараллельных
Р-стрендов (4).
Третичная структура субъединиц олигомерных молекул оксалатде-карбоксилаз и запасных глобулинов дополнена группой а-спиралей (2). В субъединицах этих белков присутствуют два домена, каждый из которых образован структурным модулем p-баррель-а-спирали. Двудоменная структура оксалатдекарбоксилаз сформировалась на раннем эволюционном этапе в результате дупликации этого модуля, присутствующего в их однодо-менном бактериальном предшественнике (3).
В процессе эволюции в аминокислотных последовательностях запасных глобулинов семян, в целом консервативных, появились протяженные вариабельные гидрофильные вставки, вынесенные на поверхность их олигомерных структур (2, 3). Эти вставки определяют чувствительность нативных молекул запасных глобулинов к быстрому ограниченному про-теолизу, с которого и начинается их деградация в прорастающих семенах и in vitro (2). Последующий массированный протеолиз запасных глобулинов происходит по поочередному механизму (5), приводящему к полному разрушению их молекул (3).
В семенах арахиса (6-8), сои (9-11) и многих других культурных растений, используемых в пищевом рационе, — орехов (12-14), миндаля (15) и горчицы (16), запасные 7S и 11S глобулины являются аллергенами. Эта информация, а также ряд дополнительных сведений внесены в базу данных SDAP (Structural database of allergenic proteins) (http://fermi.utmb.edu/) (17). В некоторых из запасных глобулинов — 7S глобулинах арахиса (18) и чечевицы (19), 11S глобулинах арахиса (20), сои (21, 22) и гречихи (23) — идентифицированы антигенные детерминанты (IgE эпитопы), ответственные за IgE связывание. Многие из IgE эпитопов принадлежат областям последовательностей запасных глобулинов с повышенной чувствительностью к протеолитической атаке, что показывает принципиальную возможность снижения аллергенности запасных глобулинов семян посредством их ограниченного протеолиза.
В настоящем обзоре для подтверждения этой гипотезы проанализированы экспериментальные данные, полученные при исследовании ограниченного протеолиза запасных глобулинов семян арахиса (Arachis hypogaea L.), сои (Glycine max L.) и некоторых других растений.
Ограниченный протеолиз 11S глобулинов и IgE эпитопы, идентифицированные в их последовательностях. Структура а-цепей субъединицы Ara h3 (pdb|3c3v) 11S глобулина арахиса (24), типичная для 11S глобулинов семян сои (25, 26) и ряда других растений (27, 28), образована p-баррелем из антипараллельных Р-стрендов BCDEFGHI, соединенных с группой а-спиралей h1, h2, h3, и дополнена p-стрендами Z, A'-A, E'-F' и J-J', а также а-спиралями h0 и h1'. Три гидрофильные неупорядоченные области в а-цепях 11S глобулинов потенциально чувствительны к ограниченному протеолизу (2): петля между p-стрендами E и F (E'-F'), петля между p-баррелем и а-спиралями и С-концевой участок (рис. 1, табл. 1, соответственно области а, б и в).
Для 11S глобулинов характерна следующая последовательность реакций ограниченного протеолиза (2). Процесс начинается с отщепления чувствительной к протеолизу гидрофильной С-концевой области (см. рис. 1, табл. 1, область в). Дальнейшее действие протеиназ приводит к расщеплению петли между p-баррелем и а-спиралями (см. рис. 1, табл. 1, область б). В зависимости от индивидуальных особенностей структуры 11S глобулина и специфичности протеиназы петля между p-стрендами E и F может либо оставаться интактной, либо расщепляться (см. рис. 1, табл. 1,
область а). Положение точек расщепления a-цепей 11S глобулинов опре-
д
Oils.
7Л'MiHl'.i ">ГГ' a r-( H'lhr J- hIh2h3J'4 0 40 80 120 160 200 240 280 320
Номера аминокислотных остатков
Рис. 1. Третичная структура a-цепи 11S глобулина арахиса (Arachis hypogaea) Ara h3 (pdb|3c3v).
А — ленточная диаграмма. Неупорядоченные области (а, б, в) в а-це-пях 11S глобулинов потенциально чувствительны к ограниченному протеолизу (2). Стрелкой отмечена пептидная связь N325-G326, расщепляющаяся при созревании молекулы Ara h3. Остаток Cys88 участвует в формировании дисульфидной связи между а- и ß-цепями. Темные участки диаграммы соответствуют последовательностям IgE эпитопов 1-4.
Б — доступная растворителю площадь аминокислотных остатков ASA (accessibility surface area) в последовательности а-цепи. Приведенные значения ASA (31), выраженные в Â2, соответствуют средним величинам, рассчитанным для групп из 10 остатков в аминокислотной последовательности а-цепи. График соответствует модельной четвертичной структуре гомогексамера Ara h3, построенной при использовании в качестве шаблона мономера pdb|3c3v (31). Стрелками обозначено положение точек расщепления а-цепи при ограниченном гидролизе трипсином (32). Цифрами показано положение IgE эпитопов 1-4 в аминокислотной последовательности Ara h3.
Вторичная структура
A'A-BCD---E---FGHIJ.....hl h2h3J'----
а б в
i **i **i
i i i i i i i
i i* i* i i** i i i i i
Субъединица
Протеиназа
1. Точки расщепления а-цепей при ограниченном делено по результатам протеолизе запасных 11S глобулинов семян сои Gly- ^концевого секвени-cine max Gly m G1-G5, арахиса Arachis hypogaea Ara рования фрагментов (29, h3 и abl14270 (ARAhy), подсолнечника Helianthus an- 30) или по совокупно-nuus aaa33374 (HELan), овса Avena sativa aaa32720 сти косвенных данных (AVEsa), кедра Pinus sibirica caa77569 (PINsi) и (специфичность проте-тапшы CM-to maxima pdb|2e9q (CUCma) иназы, последователь-
ность формирования фрагментов и их молекулярные массы). О потенциальной чувствительности к ограниченному протеолизу неупорядоченных областей (см. рис. 1, а, б, в) в аминокислотных последовательностях 11S глобулинов свидетельствует их относительно вы-
Gly m G1-G5 Gly m G2 Gly m G2 Gly m G5 Ara h3 ARAhy HELan AVEsa PINsi CUCma
Папаин (30) Трипсин (34) Трипсин (32) Папаин (35) Папаин (31) Трипсин (32) Папаин (36) Папаин (37) Папаин (38) Папаин (39)
Примечание. Разрушающийся при ограниченном протеолизе участок h1h2h3J' выделен подчеркиванием. Звездочками отмечено положение IgE эпитопов, идентифицированных в субъединицах 11S глобулинов сои Gly m Gl (21) и Gly m G2 (22) и арахиса Ara h3 (20).
сокая доступность растворителю ASA, показанная на примере Ara h3 (см. рис. 1, Б).
Отщепляемый С-концевой участок, охватывающий область а-спиралей h1h2h3 и p-стренда J' (см. табл. 1), разрушается до коротких пептидов, что характерно не только для Ara h3 (31), но и для других 11S глобулинов (2). Следует отметить, что N-концевая область а-цепи Ara h3,
как и всех исследованных 11S глобулинов (2), нечувствительна к протео-литической атаке. Три из четырех IgE эпитопов, идентифицированных в субъединице 11S глобулина арахиса Ara h3 (20) (см. рис. 1, табл. 1), принадлежат к С-концевой области a-цепи, разрушающейся при гидролизе папаином (31). То есть ограниченный протеолиз субъединицы Ara h3 может привести к существенному снижению ее аллергенности.
В состав гетерогексамерной молекулы 11S глобулина арахиса входят девять субъединиц, весьма консервативных в С-концевой области a-цепей, где присутствуют три из четырех IgE эпитопов Ara h3 (см. рис. 1, 2, табл. 1). О потенциальной способности к связыванию IgE каждой из последовательностей других субъединиц 11S глобулина арахиса, гомологичных второму и третьему IgE эпитопам Ara h3, можно судить по результатам определения PD-индексов (property-based peptide similarity index for two sequences) (40). Метод основан на сопоставлении физико-химических свойств каждой из аминокислот последовательности IgE эпитопа, идентифицированного в белковом аллергене, с каждой из аминокислот близкого по первичной структуре участка последовательности исследуемого белка. По мере возрастания различий между сравниваемыми участками этих последовательностей величина PD индексов увеличивается от 0 (последовательности идентичны) до предельной величины, равной 10, выше которой присутствие соответствующего IgE эпитопа маловероятно (40).
Присутствие второго и третьего IgE эпитопов Ara h3 (см. рис. 1, Б) в гомологичных участках последовательностей шести из восьми субъединиц 11S глобулина арахиса, неидентичных Ara h3 (31), весьма вероятно (величина соответствующих PD-индексов не превышает 2,9). Наконец, последовательности четвертого IgE эпитопа Ara h3 (см. рис. 1, Б) и соответствующих предполагаемых IgE эпитопов в двух других субъединицах 11S глобулина арахиса (aag01363 и abf93402) идентичны. То есть ограниченный протеолиз не только субъединицы Ara h3, но и всей гетеро-гексамерной молекулы 11S глобулина арахиса может сопровождаться существенным снижением его аллергенности.
А1 А2 Gl G2
Al А2 Gl G2
Al A2 Gl G2
hl'
185 eflryqqqsrqsrrrslpyspyspqsqprIqeerefsprgqhsr r
185 eflryqqqsrqsrrrslplspyspq--pg qedrefspqgqhgrir
172 eflkyqq-eqgghqsq------------- --------------к
170 eflkyqqqqqggsqsq------------- --------------kl
-к -к -к . -к -к -k .
hl
h2
h3
229 е r agqeeeheggnifsgftpeflaqafqvddrqivqnlrgenese 227 e r agqeqeneggnifsgftseflaqafqvddrqivqnlrgenese 188 gîk HQQEEENEGGSILSGFTLEFLEHAFSVD-kqiaknlqgenege 187 gîk-i-qqeeenegsnilsgfapeflkeafgvn-mqivrnlqgeneee ■k-k.-k.-k-k -к.-к-к-к. -к-к-к ± ± -к . -к-к . -к-к . -к-к-к-к -k
Рис. 2. Аминокислотные последовательности С-концевой области а-цепей 11S глобулинов арахиса Arachis hypogaea (A1 — pdb|3c3v, A2 — abl14270) и сои Glycine max (G1 — pdb|1fxz; G2 — baa00154). Цифры слева соответствуют нумерации аминокислотных остатков в полных последовательностях субъединиц. В нижних строчках показаны идентичные аминокислотные остатки (*) и их консервативные (:) и полуконсервативные (.) замещения. Стрелки соответствуют пептидным связям, расщепляемым трипсином (29, 32, 34) и папаином (Î) (30, 32). Жирным шрифтом выделены последовательности IgE эпитопов, подчеркиванием — аминокислотные остатки Arg и Lys повышенной доступности растворителю (ASA >100 Е) в модельных олигомер-ных структурах А1 и G1.
Перспективы снижения аллергенности 11S глобулина сои посредством ограниченного протеолиза не столь однозначны. С одной стороны, ограниченный протеолиз субъединицы Gly m G1 приводит к удалению
274 еqgaiVTVRIGGLRILSPDRK rgadeeeeYDEDEYEYDEEDRRRGR
272 eqgaivtvk gglrilspdrk sp-deeeeydedeyaeeerqqdrrr 232 dkgaivtvk gglsvikpptd eqqqrpqeeeeeeedekpqckgkdk 230 dsgaivtvk GGLRVTAPAMRÍKPQ---qeeddddeeeqpqcvetdk
участка a-спирали h1h2h3-p-CTpena J', где присутствуют оба идентифицированных IgE эпитопа (см. табл. 1, рис. 2). Наличие двух соответствующих IgE эпитопов в гомологичных последовательностях субъединиц Gly m G3, Gly m G4 и Gly m G5 не исключено (PD-индексы от 0 до 5,9). С другой стороны, только один из IgE эпитопов, идентифицированных в 11S глобулине сои Gly m G2 (см. табл. 1), может быть удален при его ограниченном протеолизе папаином (см. рис. 2). При этом присутствие соответствующего IgE эпитопа в гомологичных участках последовательностей других субъединиц 11S глобулина сои маловероятно (величина PD-индексов близка к 10).
Ограниченный протеолиз 7S глобулинов и IgE эпитопы, идентифицированные в последовательности 7S глобулина арахиса Ara hi. N- и С-концевые домены субъединиц 7S глобулинов структурно эквивалентны a- и р-цепям 11S глобулинов, но отличаются от последних по нескольким признакам (41): область междоменного линкера в 7S глобулинах не расщеплена, в их структурах отсутствует междоменная дисульфидная связь. В 7S глобулинах известной третичной структуры из семян канавалии (42), фасоли (43), сои (44), вигны (45, 46) и сосны (47) присутствует ряд неупорядоченных областей, потенциально чувствительных к ограниченному протеолизу (2) (табл. 2, рис. 3).
2. Точки расщепления N-концевого домена при Вариабельное N-
ограниченном протеолизе запасных 7S глобулинов концевое удлинение N-семян арахиса Arachis hypogaea Ara h1, сои Glycine концевого домена (см. max Gly m a, Gly m a', Gly m p и фасоли Phaseolus табл. 2, область а), ха-vulgaris (PHAvu) рактерное для 7S глобу-
линов конвицилинового типа, проявляет наибольшую чувствительность к протеолизу (2). Область между a-спи-ралью h3 и р-стрендом J' (см. табл. 2, область б), неупорядоченная не во всех 7S глобулинах, относительно коротка; сведений об ее чувствительности к протеолизу не имеется. Исключение составляет 7S глобулин арахиса Ara h1, у
которого эта область удлинена (48, 49) и расщепляется при гидролизе папаином (см. табл. 2, см. рис. 3, Б). Неупорядоченная область междоменного линкера чувствительна к протеолизу во всех исследованных 7S глобулинах (2) (см. табл. 2, область в). Наконец, известна чувствительность к ограниченному протеолизу удлиненной петли между р-стрендами E и F в С-концевом домене 7S глобулинов (2).
В субъединице 7S глобулина арахиса Ara h1, проявляющей наибольшую аллергенность среди запасных глобулинов семян (59), установлено присутствие 21 IgE эпитопа (18). IgE эпитопы 1-3 принадлежат N-кон-цевой последовательности, удаляемой посттрасляционно (60). IgE эпитопы 4-9 (см. рис. 3, А), локализованные в чувствительной области N-кон-цевого удлинения (см. рис. 3, Б, область а), которое изобилует остатками, соответствующими субстратной специфичности папаина (61), удаляются
Вторичная структура Субъединица
............Z-A'ABCDEFGHIJ-h1-h2-h3--J'h4- а б в Протеиназа
А А А А А А
Папаин (50) In vivo (51) C2 (52) Трипсин (32) C2 (52) In vivo (51) CPPh (53) Трипсин (54) In vivo (55) CPPh (53, 56, 57) Трипсин (58) C2 (52) LLP (56, 57)
Примечание. Звездочками отмечено положение IgE эпитопов, идентифицированных в субъединице арахиса Ara h1 (18). С2 и CPPh — эндогенные папаиноподобные протеиназы из прорастающих семян соответственно сои и фасоли.
Ara h1 Gly m a
Gly m a'
Gly m р
PHAvu
при начальной атаке этим ферментом (50). Последующее действие папаи-на приводит к разрушению чувствительной области между a-спиралью h3 и p-стрендом J' (см. табл. 2, область б), специфично удлиненной в последовательности Ara hi, где локализован IgE эпитоп 13 (см. рис. 3, A).
Рис. 3. Структура N-концевого домена 7S глобулина арахиса Ara h1 (pdb|3smh).
А — ленточная диаграмма третичной структуры. Неупорядоченные области а, б и в показаны штриховыми линиями. Темные участки диаграммы соответствуют последовательностям IgE эпи-топов 4-13 в зрелой молекуле Ara hi (18).
Б — первичная структура. Неупорядоченные области: а — N-концевое удлинение, б — между a-спиралью h3 и p-стрендом J', в — С-концевая область. Стрелки соответствуют пептидным связям, расщепляемым папаином (50). Подчеркиванием выделены аминокислотные остатки с повышенной доступностью для растворителя (ASA > 100 Е), соответствующие субстратной специфичности папа-ина (61). Эти остатки присутствуют в кристаллической структуре олигомера pdb|3smh, а также его модели (pdb|3s7e в качестве шаблона) (50) в областях б и в. Жирным шрифтом показаны последовательности IgE эпитопов 10-13.
Следует отметить относительно высокую доступность для растворителя у участка a-спиралей h1-h3, — в 3,5 раза выше, чем ASA у остальной части N-концевого домена Ara h1. Поэтому заманчиво попытаться подобрать условия ограниченного протеолиза, обеспечивающие разрушение этого потенциально чувствительного участка a-спиралей, где присутствуют IgE эпитопы 11 и 12 (см. рис. 3, А).
Субъединицы 7S глобулина арахиса в составе его гетеротримерной молекулы чрезвычайно консервативны. Весьма вероятно, что IgE эпитопы, идентифицированные в Ara h1, присутствуют и в других субъединицах этого белка: соответствующие PD-индексы не превышают 2,5. Ограниченный протеолиз папаином приводит к существенному снижению аллерген-ности всей гетероолигомерной молекулы 7S глобулина арахиса в связи с удалением более чем третьей части IgE эпитопов.
Таким образом, приведенные в настоящем обзоре результаты исследований ограниченного протеолиза 11S и 7S глобулинов арахиса, сои и некоторых других растений свидетельствуют о перспективности использования этого метода для существенного снижения аллергенности запасных глобулинов семян.
ЛИТЕРАТУРА
1. Dunwell J.M. Structure, function, and evolution of vicilin and legumin seed storage proteins. In: Biotechnology of biopolymers - from synthesis to patents /A. Steinbtchel, Y. Doi (eds.). Wiley-VCH Verlag GmbH & Co. KGaA, Weinheim, 2005: 967-997.
2. Shutov A.D., Wilson K.A. Seed storage globulins: their descent from bacterial ancestors and mechanisms of degradation. In: Globulins: biochemistry, production and role in immunity /S.D. Milford (ed.). Nova Science Publishers, NY, 2014: 71-104.
3. Rudakova A.S., Cherdivar A.M., Wilson K.A., Shutov A.D. Seed storage globulins: origin and evolution of primary and higher order structures. Biochemistry (Moscow), 2015, 80: 1354-1361 (doi: 10.1134/S000629791510017X).
4. Dunwell J.M., Culham A., Carter C.E., Sosa-Aguirre C.R., Goodenpugh P.W. Evolution of functional diversity in the cupin superfamily. Trends Biochem. Sci., 2001, 26: 740-746 (doi: 10.1016/S0968-0004(01)01981-8).
5. Rupley J.A. Susceptibility to attack by proteolytic enzymes. Method. Enzymol., 1967, 11: 905-917.
6. Hourihane J.O. Peanut allergy — current status and future challenges. Clin. Exp. Allergy, 1997, 27: 1240-1246 (doi: 10.1111/j.1365-2222.1997.tb01167.x).
7. Kleber-Janke T., Crameri R., Appenzeller U., Schlaak M., Becker W.M. Selective cloning of peanut allergens, including profilin and 2S albumins, by phage display technology. Int. Arch. Allergy Imm., 1999, 119: 265-274 (doi: 10.1159/000024203).
8. Al-Muhsen S., Clarke A.E., Kagan R.S. Peanut allergy: an overview. Can. Med. Assoc. J. (CMAJ), 2003, 168: 1279-1285.
9. Helm R.M., Cockrell G., Connaughton C., Sampson H.A., Bannon G.A., Beilinson V., Livingstone D., Nielsen N.C., Burks A.W. A soybean G2 glycinin allergen. 1. Identification and characterization. Int. Arch. Allergy Imm., 2000, 123: 205-212 (doi: 10.1159/000024445).
10. Krishnan H.B., Kim W.S., Jang S., Kerley M.S. All three subunits of soybean beta-conglycinin are potential food allergens. J. Agr. Food Chem., 2009, 57: 938-943 (doi: 10.1021/jf802451g).
11. Wang T., Qin G.X., Sun Z.W., Zhao Y. Advances of research on glycinin and p-conglycinin: a review of two major soybean allergenic proteins. Crit. Rev. Food Sci., 2014, 54: 850-862 (doi: 10.1080/10408398.2011.613534).
12. Beyer K., Grishina G., Bardina L., Grishin A., Sampson H.A. Identification of an 11S globulin as a major hazelnut food allergen in hazelnut-induced systemic reactions. J. Allergy Clin. Immunol., 2002, 110: 517-523 (doi: 10.1067/mai.2002.127434).
13. Wang F., Robotham J.M., Teuber S.S., Sathe S.K., Roux K.H. Ana o 2, a major cashew (Ana-cardium occidentale L.) nut allergen of the legumin family. Int. Arch. Allergy Imm., 2003, 132: 27-39 (doi: 10.1159/000073262).
14. Sharma G.M., Irsigler A., Dhanarajan P., Ayuso R., Bardina L., Sampson H.A., Roux K.H., Sathe S.K. Cloning and characterization of an 11S legumin, Car i 4, a major allergen in pecan. J. Agr. Food Chem, 2011, 59: 9542-9552 (doi: 10.1021/jf2017447).
15. Willison L.N., Tripathi P., Sharma G., Teuber S.S., Sathe S.K., Roux K.H. Cloning, expression and patient IgE reactivity of recombinant Pru du 6, an 11S globulin from almond. Int. Arch. Allergy Imm, 2011, 156: 267-281 (doi: 10.1159/000323887)
16. Palomares O., Cuesta-Herranz J., Vereda A., Sirvent S., Villalba M., Rodrigues R. Isolation and identification of an 11S globulin as a new major allergen in mustard seeds. Annals of Allergy, Asthma and Immunology, 2005, 94: 586-592 (doi: 10.1016/S1081-1206(10)61138-6).
17. Ivanciuk O., Schein C.H., Braun W. SDAP: database and computational tools for allergenic proteins. Nucleic Acids Res., 2003, 31: 359-362 (doi: 10.1093/nar/gkg010).
18. Shin D.S., Compadre C.M., Maleki S.J., Kopper R.A., Sampson H., Huang S.K., Burks A.W., Bannon G.A. Biochemical and structural analysis of the IgE binding sites on Ara h 1, an abundant and highly allergenic peanut protein. J. Biol. Chem., 1998, 273: 13753-13759 (doi: 10.1074/jbc.273.22.13753).
19. Vereda A., Andreae D.A., Lin J., Shreffler W.G., Ibanez M.D., Cuesta-Herranz J., Bardina L., Sampson H.A. Identification of IgE sequential epitopes of lentil (Len c 1) by means of peptide microarray immunoassay. J. Allergy Clin. Immunol., 2010, 126: 596-601 (doi: 10.1016/j.jaci.2010.06.023).
20. Rabjohn P., Helm E.M., Stanley J.S., West C.M., Sampson H.A., Burks A.W., Bannon G.A. Molecular cloning and epitope analysis of the peanut allergen Ara h 3. J. Clin. Invest., 1999, 103: 535-542 (doi: 10.1172/JCI5349).
21. Beardslee T.A., Zeece M.G., Sarath G., Markwell J.P. Soybean glycinin G1 acidic chain shares IgE epitopes with peanut allergen Ara h 3. Int. Arch. Allergy Imm., 2000, 123: 299-307 (doi: 10.1159/000053642).
22. Helm R.M., Cockrell G., Connaughton C., Sampson H.A., Bannon G.A., BeilinsonV., Nielsen N.C., Burks A.W. A soybean G2 glycinin allergen. 2. Epitope mapping and three-dimensional modeling. Int. Arch. Allergy Imm., 2000, 123: 213-219 (doi: 10.1159/000024446).
23. Yoshioka H., Ohmoto T., Urisu A., Mine Y., Adachi T. Expression and epitope analysis of the major allergenic protein Fag e 1 from buckwheat. J. Plant Physiol., 2004, 161: 761-767 (doi: 10.1016/j.jplph.2004.01.010).
24. Jin T., Guo F., Chen Y.W., Howard A., Zhang Y.Z. Crystal structure of Ara h 3, a major allergen in peanut. Mol. Immunol., 2009, 46: 1796-1804 (doi: 10.1016/j.molimm.2009.01.023).
25. Adachi M., Takenaka Y., Gidamis A.B., Mikami B., Utsumi S. Crystal structure of soybean pro-glycinin A1aB1b homotrimer. J. Mol. Biol, 2001, 305: 291-305 (doi: 10.1006/jmbi.2000.4310).
26. Adachi M., Kanamori J., Masuda T., Yagasaki K., Kitamura K., Mikami B., Ursumi S. Crystal structure of soybean 11S globulin: glycinin A3B4 homohexamer. PNAS USA, 2003, 100: 73957400 (doi: 10.1073/pnas.0832158100).
27. Tandang-Silvas M.R., Carrazco-Pena L., Barba de la Rosa A.P., Osuna-Castro J.A., Utsumi S., Mikami B., Maruyama N. Expression, purification and preliminary crystallization of amaranth
28
29
30.
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
11S proglobulin seed storage protein from Amaranthus hypochondriacus L. Acta Crystallogr. F, 2010, 66: 919-922 (doi: 10.1107/S1744309110021032).
Tandang-Silvas M.R.G., Fukuda T., Fukuda C., Prak K., Cabanos C., Kimura A., Itoh T., Mikami B., Utsumi S., Maruyama N. Conservation and divergence on plant seed 11S globulins based on crystal structures. Biochim. Biophys. Acta, 2010, 1804: 1432-1442 (doi: 10.1016/j.bbapap.2010.02.016).
Shutov A.D., Kakhovskaya I.A., Bastrygina A.S., Bulmaga V.P., Horstmann C., Müntz K. Limited proteolysis of ß-conglycinin and glycinin, the 7S and 11S storage globulins from soybean (Glycine max (L.) Merr.): structural and evolutionary implications. Eur. J. Biochem., 1996, 241: 221-228 (doi: 10.1111/j.1432-1033.1996.0221t.x).
Shutov A., Rudakova A., Rudakov S., Kakhovskaya I., Schallau A., Maruyama N., Wilson K. Limited proteolysis regulates massive degradation of glycinin, storage 11S globulin from soybean seeds: an in vitro model. J. Plant Physiol., 2012, 169: 1227-1233 (doi: 10.1016/j.jplph.2012.06.004). Cherdivara A., Rudakova A., Rudakov S., §utov A. Alergenul Ara h3, globulina de rezervä din seminjele de arahide. 1. Proteoliza limitata cu papaina [Allergen Ara h3, storage 11S globulin from peanut seeds. 1. Papain limited proteolysis]. Studia Universitatis Moldaviae, seria §tiin}e reale gi ale naturii, 2017, 1(101): 37-40 (in Romanian).
Cherdivar A., Rudakova A., Rudakov S., §utov A. Alergenul Ara h3, globulina de rezerva din seminjele de arahide. 2. Proteoliza limitata cu tripsina [Allergen Ara h3, storage 11S globulin from peanut seeds. 2. Typsin limited proteolysis]. Studia Universitatis Moldaviae, seria §tiin}e reale gi ale naturii, 2017, 1(101): 41-45 (in Romanian).
Cherdivar A., Rudakova A., §utov A. Globulinele de rezerva 7S din seminje ca alergeni. Imu-noreactivitatea oncruci§at ontre globulinele de rezerva 7S §i 11S [Storage 11S globulins as allergens. Cross-immunoreactivity between storage 7S and 11S globulins]. Studia Universitatis Moldaviae, seria §tiin}e reale gi ale naturii, 2016, 1(91): 56-60 (in Romanian).
Shutov A.D., Senyuk V.I., Kakhovskaya I.A., Pineda J. High molecular mass products of hydrolysis of soybean glycinin by trypsin. Biochemistry (Moscow), 1993, 58: 174-182. Rudakova A., Rudakov S., Kakhovskaya I., Wilson K., Yagasaki K., Utsumi S., Shutov A. Limited proteolysis controls massive degradation of glycinin, storage 11S globulin from soybean seeds. Materialele simpozionului najional «Agrobiodiversitatea vegetalä on Republica Moldova: evaluatea, conservarea gi utilizarea» [Vegetable agrobiodiversity in the Republic of Moldova: evaluation, conservation and use. Materials of national symposium]. Chi§inau, 2008: 396-402. Макаева Э., Лаптева Н., Рудакова А., Рудаков С., Каховская И., Шутов А. 11S глобулин подсолнечника: кинетика ограниченного и кооперативного протеолиза папаином. [Makae-va E., Lapteva N., Rudakova A., Rudakov S., Kakhovskaya I., Shutov A. Sunflower seed 11S globulin: kinetics of papain limited and co-operative proteolyses]. Studia Universitatis Moldaviae, seria §tiin}e reale gi ale naturii, 2009, 1(21): 24-28 (in Russ).
Shutov A.D., Rudakova A.S., Klimova N.V., Lapteva N.A., Makaeva E.F., Wilson K. Limited proteolysis of oat 11S globulin by papain. Studia Universitatis Moldaviae, seria tiin e reale i ale naturii, 2014, 1(71): 85-90.
Лаптева Н., Макаева Э., Рудаков С., Рудакова А., Каховская И., Шутов А. Смешанный тип протеолиза 11S глобулина кедра папаином. [Lapteva N., Makaeva E., Rudakov S., Kakhovskaya I., Shutov A. Mixed-type papain proteolysis of cedar 11S globulin]. Studia Universitatis Moldaviae, §tiin}e reale gi ale naturii, 2010, 6(36): 9-13 (in Russ).
Rudakova A.S., Rudakov S.V., Kakhovskaya I.A., Shutov A.D. 11S storage globulin from pumpkin seeds: regularities of proteolysis by papain. Biochemistry (Moscow), 2014, 79: 820-825 (doi: 10.1134/S0006297914080100).
Ivanciuk O., Midoro-Horiuti T., Schein C.H., Xie L., Hillman G.R., Goldblum R.M., Braun W. The property distance index PD predicts peptides that cross-react with IgE antibodies. Mol. Immunol., 2009, 46: 873-883 (doi: 10.1016/j.molimm.2008.09.004).
Lawrence M.C. Structural relationships of 7S and 11S globulins. In: Seed proteins /P.R. Shewry, R. Casey (eds.). Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, 1999: 517-541.
Ko T.P., Ng J.D., McPherson A. The three-dimensional structure of canavalin from jack bean (Canavalia ensiformis). Plant Physiol., 1993, 101: 729-744 (doi: 10.1104/pp.101.3.729). Lawrence M.C., Izard T., Beuchat M., Blagrove R.J., Colman P.M. Structure of phaseolin in 2.2 Е resolution: implications for a common vicilin/legumin structure and the genetic engineering of seed storage proteins. J. Mol. Biol., 1994, 238: 748-776 (doi: 10.1006/jmbi.1994.1333). Maruyama N., Adachi M., Takahashi K., Yagasaki A., Kohno M., Takenaka Y., Okuda E., Nakagawa S., Mikami B., Utsumi S. Crystal structures of recombinant and native soybean ß-conglycinin ß-homotrimers. Eur. J. Biochem., 2001, 268: 3595-3604 (doi: 10.1046/j.1432-1327.2001.02268.x).
Itoh T., Garcia R.N., Adachi M., Maruyama Y., Tecson-Mendoza E.M., Mikami B., Utsumi S. Structure of 8S alpha globulin, the major seed storage protein of mung bean. Acta Crystallogr. D, 2006, 62: 824-832 (doi: 10.1107/S090744490601804x).
Fukuda T., Maruyama N., Salleh M.R., Mikami B., Utsumi S. Characterization and crystallog-
raphy of recombinant 7S globulins of Adzuki bean and structure-function relationships with 7S globulins of various crops. J. Agr. Food Chem., 2008, 56: 4145-4153 (doi: 10.1021/jf072667b).
47. Jin T., Wang Y., Chen Y.W., Fu T.J., Kothary M.H., McHugh T.H., Zhang Y. Crystal structure of Korean pine (Pinus koraiensis) 7S seed storage protein with copper ligands. J. Agr. Food Chem., 2014, 62: 222-228 (doi: 10.1021/jf4039887).
48. Chruszcz M., Maleki S.J., Majorek K.A., Demas M., Bublin M., Solberg R., Hurlburt B.K., Ruan S., Mattisohn C.P., Breiteneder H., Minor W. Structural and immunologic characterization of Ara h 1, a major peanut allergen. J. Biol. Chem., 2011, 286: 39318-39327 (doi: 10.1074/jbc.M111.270132).
49. Cabanos C., Urabe H., Tandang-Silvas M.R., Utsumi S., Mikami B., Maruyama N. Crystal structure of the major peanut allergen Ara h 1. Mol. Immunol., 2011, 49: 115-123 (doi: 10.1016/j.molimm.2011.08.004).
50. Cherdivar A., Rudakova A., Rudakov S., Shutov A. Proteoliza limitatä a alergenului Ara h1, globulina de rezervä 7S din semin^ele de arahide [Limited proteolysis of the allergen Ara h1, storage 7S globulin from peanut seeds]. Studia Universitatis Moldaviae, seria §tiin}e reale ¡i ale naturii, 2016, 6(96): 10-15 (in Romanian).
51. Kawai M., Susuki S., Asano M., Miwa T., Shibai H. Characterization of 30-kDa fragments derived from beta-conglycinin degradation process during germination and seedling growth of soybean. Bioscience, Biothechnology and Biochemistry, 1997, 61: 794-799 (doi: 10.1271/bbb.61.794).
52. Seo S., Tan-Wilson A., Wilson K.A. Protease C2, a cysteine endopeptidase involved in the continuing mobilization of soybean ß-conglycinin seed proteins. Biochim. Biophys. Acta, 2001, 1545: 192-206 (doi: 10.1016/S0167-4838(00)00277-6).
53. Zakharov A., Carchilan M., Stepurina T., Rotari V., Wilson K., Vaintraub I. A comparative study of the role of the major proteinases of germinated common bean (Phaseolus vulgaris L.) and soybean [Glycine max (L.) Merrill] seeds in the degradation of their storage proteins. J. Exp. Bot., 2004, 55: 2241-2249 (doi: 10.1093/jxb/erh247).
54. Shutov A.D., Rudakova A.S., Rudakov S.V., Kakhovskaya I.A., Schallau A.A., Wilson K.A., Maruyama N. Degradation of ß-conglycinin ß-homotrimer by papain: independent occurrence of limited and extensive proteolyses. Bioscience, Biothechnology and Biochemistry, 2013, 77: 2082-2086 (doi: 10.1271/bbb.130440).
55. Senyuk V., Rotari V., Becker C., Zakharov A., Horstmann C., Müntz K., Vaintraub I. Does an asparaginyl-specific cysteine endopeptidase trigger phaseolin degradation in cotyledons of kidney bean? Eur. J. Biochem., 1998, 258: 546-558 (doi: 10.1046/j.1432-1327.1998.2580546.x).
56. Rotari V.I., Senyuk V.I., Jivotovskaya A.V., Horstmann C., Vaintraub I.A. Proteinase A-like enzyme from germinated kidney bean seeds. Its action on phaseolin and vicilin. Physiol. Plantarem, 1997, 100: 171-177 (doi: 10.1111/j.1399-3054.1997.tb03469.x).
57. Rudakova A., Rudakov S., Lapteva N., Morari D., Stepurina T., Rotari V., Kakhovskaya I., Wilson K., Fukuda T., Utsumi S., Shutov A. In vivo and in vitro limited proteolysis of phaseolin: facts, suggestions and problems. Studia Universitatis Moldaviae, seria §tiin}e reale ¡i ale naturii, 2007, 1(01): 101-111.
58. Jivotovskaya A.V. Senyuk V.I., Rotari V.I., Horstmann C., Vaintraub I.A. Proteolysis of phaseolin in relation to its structure. J. Agr. Food Chem, 1996, 44: 3768-3772 (doi: 10.1021/jf960129l).
59. Pele M. Peanut allergens. Romanian Biothechnological Letters, 2010, 15: 5204-5212.
60. Wichers H.J., De Beyer T., Savelkoul F.J., van Amerongen A. The major peanut allergen Ara h1 and its cleaved-off N-terminal peptide; possible implications for peanut allergen detection. J. Agr. Food Chem., 2004, 52: 4903-4907 (doi: 10.1021/jf049697o).
61. Schechter I., Berger A. On the size of the active site in proteases. I. Papain. Biochem. Bioph. Res. Co., 1967, 27(2): 157-162 (doi: 10.1016/S0006-291X(67)80055-X).
Universitatea de Stat din Moldova, Поступила в редакцию
Republic of Moldova, MD-2009, Chi^inäu, Mateevich str., 60, 7 Н0ЯбрЯ 2017 г0да
e-mail: [email protected] H
Sel'skokhozyaistvennaya biologiya [Agricultural Biology], 2018, V. 53, № 3, pp. 475-484
LIMITED PROTEOLYSIS AS A MEANS TO REDUCE THE ALLERGENICITY OF SEED STORAGE GLOBULINS
(review)
A.M. Cherdivarä
Moldova State University, Republic of Moldova, MD-2009, Chijinäu, Mateevich str., 60, e-mail alacherdiva-
[email protected] (H corresponding author)
ORCID:
Cherdivarä A.M. orcid.org/0000-0003-1276-4959
The author declares no conflict of interests
Received November 7, 2017 doi: 10.15389/agrobiology.2018.3.475eng
Abstract
According to SDAP (structural database of allergenic proteins, http://fermi.utmb.edu/), storage 11S and 7S globulins from seeds of peanut, soybean and some other plants are allergens. A p-barrel conjoined with a group of a-helices represents the structural basis of domains of the two-domain 11S and 7S seed storage globulins. During evolution, extended disordered inserts of enhanced susceptibility to proteolytic attack appeared in the amino acid sequences of storage globulins outside the p-barrel-a-helix structural module. Regularities of storage globulin limited proteolysis during seed germination and in vitro are determined by these inserts. In this review, available information on successive reactions of limited proteolysis specific to 11S and 7S globulins from peanut, soybean and some other plants is collected. It was demonstrated that limited proteolysis of 11S globulin from peanut (A. Cherdivara et al., 2017) calls forth destruction of a C-terminal region of a-chains, including the region forming the group of a-helices. Three of the four antigen determinants (IgE epitopes) identified in the peanut subunit Ara h3 (P. Rabjohn et al., 1999) belong to this region. Thus, the limited proteolysis leads to a significant decrease in the allergenicity level of the subunit Ara h3. The presence of IgE epitopes in homologous regions of conserved sequences of a-helices from most other subunits of the peanut 11S globulin, non-identical to Ara h3, is very probable. Thus, the limited proteolysis of not only the Ara h3 subunit, but also the whole hetero-hexamer molecule of peanut 11S globulin can be accompanied by a significant decrease in the level of its aller-genicity. Prospects for reducing allergenicity of soybean 11S globulin by limited proteolysis are not so unambiguous. On the one hand, the limited proteolysis of the subunit Gly m G1 leads to the destruction of the C-terminal region of the a-chains (A. Shutov et al., 2012), where both identified IgE epitopes are present (T.A. Beardslee et al., 2000). On the other hand, only one of the IgE epitopes identified in the Gly m G2 subunit (R.M. Helm et al., 2000) can be removed using limited proteolysis of this protein (A. Shutov et al., 1993). The detachment of the a-chain a-helices during limited proteolysis of several other 11S globulins was observed as well. A high degree of conservation of this region in the primary structures of 11S globulins allows suggesting the presence of IgE epitopes, similar to those identified in peanut and soybean 11S globulins, in many other storage proteins of the 11S globulin family. Prospects for the reduction of allergenicity of seed 7S globulins by limited pro-teolysis are advantageous as well. Limited proteolysis of peanut 7S globulin Ara h1 starts with complete destruction of a disordered N-terminal extension (A. Cherdivara et al., 2016), which contains one third of IgE epitopes identified in the amino acid sequence of this protein (D.S. Shin et al., 1998). Further limited proteolysis calls fourth destruction of another disordered region inside the N-terminal domain that contains an additional IgE epitope identified in the Ara h1 sequence. Summary information considered in the review on the structure of seed storage globulins, as well as on the IgE epitopes identified in their amino acid sequences, evidences the availability of limited proteolysis as a means of considerable reduction of the level of allergenicity, not only of peanut and soybean 11S and 7S globulins, but also of those from other plants whose seeds are used as food either directly or as additives to various food products.
Keywords: seed storage globulins, proteolysis, allergenicity, IgE epitopes, Arachis hypo-gaea L., peanut, Glycine max L., soybean.
Научные собрания
Х! МЕЖДУНАРОДНАЯ КОНФЕРЕНЦИЯ «БИОЛОГИЯ КЛЕТОК РАСТЕНИЙ in vitro
И БИОТЕХНОЛОГИЯ» (23-27 сентября 2018 года, г. Минск, Республика Беларусь)
Организаторы: Национальная академия наук Беларуси, Отделение биологических наук, Научно-практический центр по биоресурсам, Центральный ботанический сад ,Биологический факультет Белорусского государственного университета, Российская академия наук, Отделение биологических наук, Институт физиологии растений имени К.А. Тимирязева РАН, Биологический факультет Московского государственного университет имени М.В. Ломоносова, Научный совет РАН по физиологии растений и фотосинтезу. Конференция знаменует полувековую историю конференций, посвященных исследованию культивируемых in vitro клеток высших растений и 60-летие деятельности Отдела биохимии и биотехнологии растений ГНУ «Центральный ботанический сад НАН Беларуси». С 1968 года конференции проводились в Москве, Киеве, Ереване, Кишиневе, Новосибирске, Алма-Ате, Москве, Саратове, Звенигороде и Казани. Количество участников и значимость конференций в профессиональном сообществе исследователей культивируемых in vitro клеток растений и фитобиотехнологов постоянно растет. Эти конференции являются знаковыми событиями в научном мире, они способствует формированию и дальнейшему продуктивному развитию международного научного и научно-практического сотрудничества.
Контакты и информация: [email protected]
