Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах Текст научной статьи по специальности «Ветеринарные науки»

Электронное научное издание Альманах Пространство и Время Т. 12. Вып. 2 • 2016

Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time vol. 12, issue 2 Elektronische wissenschaftliche Auflage Almanach 'Raum und Zeit' Bd. 12, Ausgb. 2.

Человек и среда обитания

УДК 599.323.4

Геворкян И.С.

Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами

на животноводческих комплексах

Геворкян Ирина Сергеевна, зооинженер, младший научный сотрудник ФБУН НИИ Дезинфектологии Роспотребнадзора

ORCIDID https://orcid.org/0000-0001-9350-9372

E-mail: [email protected]; [email protected]

Настоящая работа посвящена проблеме повышения эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами в сельском хозяйстве, в первую очередь животноводстве. С этой целью автором были проведены эксперименты на крысах Rattus norvegicus Berk. и домовых мышах Mus musculus L и выполнен сравнительный анализ эффективности химических и механических средств борьбы с мышевидными грызунами.

По результатам исследования были выбраны и экспериментально опробованы наиболее действенные и экономически целесообразные средства борьбы с мышевидными грызунами, а также выявлены наименее эффективные средства борьбы с ними.

Ключевые слова мышевидные грызуны; серые крысы; чёрные крысы; домовые мыши; инфекционные заболевания; борьба с грызунами; родентициды1; репелленты; механические ловушки.

1 Родентициды — средства от грызунов (мышей, крыс).

Актуальность поисков наиболее эффективных и наименее затратных методов борьбы с мышевидными грызунами2

2 Мышевидные грызуны — собирательное название мелких грызунов семейства мышиных (Muridae) и семейства хомяковых (Cricetidae), вредящих народному хозяйству. Вред, наносимый мышевидными грызунами, частично компенсируется поеданием ими различных вредных для сельского хозяйства насекомых. Кроме того, в дикой природе эти зверьки являются важным элементом пищевой цепи — естественным и питательным кормом для многих животных (соболей, горностаев, куниц, лисиц, волков, и др.), благополучие которых существенно зависит от численности популяций мышевидных грызунов.

обусловлена, прежде всего, прямым участием этих видов в распространении ряда заболеваний, особо опасных как для сельскохозяйственных животных, так и для человека. Мышевидными грызунами переносятся такие опасные болезни, как чума, брюшной тиф, паратифы, энцефалит, бешенство, туберкулез, туляремия и др. Паразитирующие на мышевидных грызунах блохи и клещи, питаясь кровью больных животных-хозяев, передают возбудителей заболеваний домашним животным и человеку [Вашков и др. 1974; Покровский, Большаков 1979; Мешкова и др. 1986; Мешкова, Шутова 1990; Хляп, Маликова 1992; Тимошков и др. 2004; Матросов и др. 2005; Рыльников 2006.а; Попков и др. 2007; Ракитин и др. 2007; Ша-балина 2008; Каршин и др. 2010; Марченко, Семёнов, Рудь 2010; Кадиров и др. 2011; Тощигин б/даты размещения].

Грызуны являются распространителями также различных глистных заболеваний домашних животных и человека. Возбудитель болезни может проникнуть в организм млекопитающих через пищу, раны, царапины на коже. Заражение инфекциями происходит также с пылью при просеивании зерна или муки, перекладке стогов, которые ранее были заселены больными грызунами.

Man and Living Environment / Mensch und Lebensraum

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

Чем больше популяция грызунов, тем выше угроза возникновения эпизоотии среди них, следствием чего становится заражение больными мышевидными грызунами продуктов питания, фуража и воды, что в свою очередь приводит к эпизо-отиям среди сельскохозяйственных животных и эпидемиям среди людей. Печально знаменитая «чёрная смерть», разразившаяся в Европе в 1348 г. и в несколько раз сократившая её население, обязана своим появлением именно мышевидным грызунам [Супотницкий, Супотницкая 2006]. Полностью уничтожить последних, особенно в сельской местности, невозможно (следует также помнить об опасности полного уничтожения какого бы то ни было элемента пищевой цепи), но освободить места обитания и хозяйствования человека, прежде всего строения, или снизить в них численность грызунов — вполне достижимая задача, и решалась она на протяжении всей истории человеческой цивилизации (рис. 1, 2).

Рис. 1. Крысолов. Рис. 2. Дератизация во время эпидемии бубонной чумы в Сиднее.

Гравюра А. Боссе, 1602 Фото 1900

Самым главным здесь становится создание неблагоприятных условий для их обитания, что предполагает систематическое проведение различных профилактических мероприятий в жилых домах и на земельных участках, в строениях для птицы или рогатого скота. Грызуны должны быть по возможности лишены пищи и мест, удобных для устройства их нор и убежищ.

Борьба с грызунами в строениях, где содержатся сельскохозяйственные животные или домашняя птица, представляет особую задачу. В этих строениях использование отравленных приманок требует особой осторожности. В таких случаях, когда невозможно массовое применение затравок в местах обитания и перемещения грызунов, приходится комбинировать химические средства (затравки, ядовитые порошки и т.д.) с механическими (давилки, капканы, клеевые ловушки и т.д.). Это очевидным образом показывает актуальность подобного рода исследований.

Подбор эффективных комбинаций химических, механических и биологических способов дератизации для применения в практике борьбы с мышевидными грызунами в животноводческих хозяйствах предполагает предварительное осуществление:

— классификации и сравнительного анализа методов ратификации, традиционно применяемых в сельском хозяйстве;

— определения и обоснования набора химических препаратов (отравляющих веществ) и механических приспособлений (ловушки, давилки, капканы), используемых в практике борьбы с мышевидными грызунами в животноводческих хозяйствах;

— исследования эффективности выбранного набора химических препаратов (отравляющих веществ) и механических приспособлений (ловушки, давилки, капканы);

— разработки методик и рекомендаций для практического применения выбранного набора химических препаратов (отравляющих веществ) и механических приспособлений.

Однако для адекватного понимания данных задач представляется целесообразным несколько более подробно остановиться на характере ущерба, наносимого мышевидными грызунами животноводству, их существующей классификации, а также дать самый краткий очерк основных этапов борьбы против этих вредителей в России.

Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time vol. 12, issue 2 Elektronische wissenschaftliche Auflage Almanach 'Raum und Zeit' Bd. 12, Ausgb. 2.

Man and Living Environment Mensch und Lebensraum

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

1. Краткое введение в проблему 1.1. Ущерб, причиняемый животноводству мышевидными грызунами

Наибольший ущерб животноводству приносят синантропные грызуны (от греч. sin —вместе и antrhopos — человек) — серая и черная крысы, домовая и полевая мыши (рис. 3, 4).

Рис. 3. А — серая крыса, или пасюк (Rattus nor-vegicus).

Б — чёрные, или корабельные крысы (Rattus rattus).

Рис. 4. А — домовая мышь (Mus musculus).

Б — полевая мышь (Apodemus agrarius).

Экономический ущерб, причиняемый грызунами, велик и разнообразен. Они уничтожают и портят продукты питания и фуража, истребляют всходы сельскохозяйственных культур. Так, одна серая крыса за год съедает 20—24 кг продуктов в перерасчете на зерно и в 10 раз большее количество продуктов загрязняет. Мышевидные грызуны портят постройки (повреждая стены, полы, перекрытия, перегородки и т.д.), гидротехнические сооружения, грызут и нарушают изоляцию электрических, телефонных кабелей и различного электрооборудования (рис. 5, 6).

Рис. 5. Мышиные норы. Фото с сайта http://westervilleartsline.blogspot.ru/2013/06/new

house-mouse-holes.html

Рис. 6. Повреждения, причиненные крысами. Фото с сайта http://birmingham.ridacritter.com/rat-mouse-control.php

Излюбленным местом обитания грызунов являются животноводческие помещения, которые заселены ими практически на 100%, одновременно создавая угрозу механических повреждений и повышая эпидемические риски [Вашков и др. 1974; Тощигин б/даты размещения], при этом опасность исходит как от синантропных грызунов (крысы, мыши), так и от диких (различные виды полевок, степные грызуны и т. д.). Грызуны могут переносить около 200 возбудителей различных инфекционных и инвазионных болезней человека и домашних животных. Они сами болеют некоторыми инфекционными болезнями (чума, туляремия, бруцеллез, бешенство, лептоспироз, трихинеллез и др.). Синантропные грызуны

Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time vol. 12, issue 2 Elektronische wissenschaftliche Auflage Almanach 'Raum und Zeit' Bd. 12., Ausgb. 2.

Man and Living Environment Mensch und Lebensraum

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

способствуют распространению болезней животных самой различной этиологии. Передача заразного материала от вредителей животным производится через загрязненные больными грызунами корма и воду, при поедании животными трупов крыс и мышей, через обитающих на них паразитов.

На сегодняшний день научная классификация крыс такова:

Домен (Надцарство): Ядерные организмы (Эукариоты) (Eucariota).

Царство: Животные (Animalia, Zoobiota).

Подцарство: Настоящие многоклеточные животные (Eumetazoa).

Раздел: Двусторонне-симметричные (Bilateria). Подраздел: Вторичноротые (Deuterostomia).

Надтип: Хордарии (Chordaria).

Тип: Хордовые (Chordata).

Подтип: Позвоночные (Черепные) (Vertebrata (Craniata)).

Инфратип (группа): Челюстноротые (Gnathostomi).

Надкласс: Четвероногие (Tetrapoda).

Класс: Млекопитающие (Mammalia Linnaeus, 1758).

Подкласс: Настоящие звери (Theria Parker et Hauswell, 1879). Грандотряд: Грызунообразные (Glires).

Отряд: Грызуны (Rodentia).

Подотряд: Мышеобразные (Myomorpha).

Семейство: Мышиные (Muridae).

Подсемейство: Мышиные (Murinae).

Род: Крысы (Rattus).

Род Крысы (Rattus) включает виды Серая крыса (Rattus norvegicus)и Чёрная крыса (Rattus rattus), а также ещё около 70 ныне живущих видов, разделяемых на несколько групп. Ещё несколько видов вымерло в историческое время.

Серая крыса, или пасюк (Rattus norvegicus) — это самая крупная крыса фауны России: длина её тела 17—25 см (без хвоста), масса 140—390 г. Хвост всегда короче тела, достигая в длину до 19,5 см. Морда сравнительно тупая и широкая; ушная раковина небольшая (рис. 3А). В настоящее время пасюки являются доминирующим представителем рода Крысы (Rattus) в Европе и Северной Америке. Серые крысы имеют первостепенное эпидемическое значение как природные носители не менее 20 опасных инфекций (из них 8 смертельны для человека): желтушного лептоспироза (болезнь Вейла), криптоспоридиоза, лихорадки Ку, сыпного тифа и псевдотуберкулёза, а также чумы (хотя, в отличие от чёрной крысы, пасюки переносят её реже). Их укусы вызывают болезнь содоку3. Серые крысы — основной источник

3 Содоку (синонимы: болезнь от укуса крыс, лихорадка от укуса крыс, стрептобациллез, гаверхильская лихорадка,

Sodocu, streptobacillosis) объединяет два сходных по клинической картине заболевания, обусловленные спирохетой (Spirillum minus) и стрептобациллой (Streptobacillus moniliformis). Первое из них называлось содоку, второе — стреп-тобациллезом, гаверхильской лихорадкой. Объединяет их наличие укуса крысы в анамнезе и сходная клиническая симптоматика. Спирохета Spirillum minus чувствительна к пенициллину и тетрациклину. Стрептобацилла Streptobacillus moniliformis чувствительна к пенициллину, стрептомицину, тетрациклину. От человека к человеку заболевание не передается.

заражения сальмонеллёзами и эризипелоидом работников пищевой промышленности; причём, заражение происходит через продукты, загрязнённые выделениями больных крыс. Для серых крыс характерна высокая степень заражения гельминтами, в том числе двумя видами цепней, опасных для человека [Шутова 1999; Collares-Pereira et al. 1997, 2000; Meerburg et al. 2009; Parshad 1999; Panagiotakopulu 2004].

Чёрная, или корабельная, крыса (Rattus rattus) в среднем мельче серой крысы. Взрослые особи имеют длину тела 15—22 см и массу 132—300 г. Хвост чёрной крысы густо покрыт волосами; обычно он длиннее тела, до 28,8 см (133% длины тела). Мордочка у неё уже, а ушные раковины больше и круглее, чем у пасюка (рис. 3Б). В России встречается не повсеместно. Этот теплолюбивый, по происхождению тропический вид, на большей части ареала связан с жилищами человека, причём предпочитает приморские города и населённые пункты по берегам крупных рек. Временных переселений в природные биотопы, как пасюк или домовая мышь, она не совершает. Экономический вред, наносимый чёрной крысой, сходен с тем, который приносит серая крыса: она уничтожает и портит продукты питания, повреждает здания, мебель и т.п. К ядам чёрная крыса более стойка, чем серая крыса. Чёрная крыса является разносчиком таких опасных инфекций, как чума, различные лептоспирозы, висцеральный лейшманиоз, сальмонеллёз, трихинеллёз, псевдотуберкулёз (иерсиниоз), содоку, и др. [Шутова 1999 Catanach 2001; Marriott 2002; Parshad 1999; Panagiotakopulu 2004; Tollenaere et al. 2011; Van Dyck 1996].

1.2. Общие сведения о научной классификации крыс и мышей и переносимых ими заболеваниях

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

Подсемейство Мышиные (Murinae), куда входит род Крысы (Rattus), представляет собой одну из самых многочисленных таксономических единиц среди семейств млекопитающих4. Это подсемейство насчитывает 519 видов, объединённых

4 За исключением семейства Хомяковых (Cricetidae), состоящего из 580 видов.

в 121 род. В том числе, оно включает в себя род Домовые мыши (Mus), а также род Лесные и полевые мыши (Apodemus).

Домовая мышь (Mus musculus) — это мелкий длиннохвостый зверёк рода Домовые мыши (Mus), с длиной тела от 6,5 до 9,5 см. Хвост домовой мыши составляет не менее 60% по отношению к длине тела, покрыт роговыми чешуйками, расположенными кольцеобразно, и редкими короткими волосками. Вес тела находится в пределах от 12 до 30 г. Уши округлые, небольшие. Шкурка у неё тёмная или буровато-серая; брюшко — от пепельно-серого до белого (рис. 4А). Домовая мышь является синантропным видом. Благодаря способности к сосуществованию с человеком домовые мыши распространились по всему миру и ныне являются одним из самых многочисленных видов млекопитающих. На данный момент описано около 130 разновидностей домовой мыши, которых объединяют в 4 основных подвида. Домовые мыши являются переносчиками многих инфекций, опасных для человека: псевдотуберкулёза (иерсиниоза), везикулярного риккетсиоза, лептоспирозов, эризипелоида, туляремии, чумы. Ряд инфекций передаётся через их мочу и кал, другие — через кровососущих членистоногих, легко переходящих от мышей к человеку. Согласно одной из работ, переносимый мышами вирус MMTV (опухоли молочных желез мышей), видимо, способен вызывать рак молочной железы у человека ["Mouse stirs up..." 2004].

Полевая мышь (Apodemus agrarius) является представителем рода Лесные и полевые мыши (Apodemus). Обычно она крупнее домовой мыши. Длина тела полевой мыши достигает до 12,5 см, длина хвоста составляет около 70% от длины её тела. Окраска спины — охристо-сероватая, брюшной стороны тела — светло-серая. Посередине спины проходит темная полоска (рис. 4Б).

Полевая мышь распространена в Центральной и Восточной Европе, на юге Западной Сибири, в Китае (кроме южных частей), Монголии, Приморье, на Корейском полуострове и на острове Тайвань. Она предпочитает кустарниковые заросли и луга, в городах селится в садах, парках, на кладбищах; питается как растительной, так и животной пищей (насекомыми). Полевая мышь является одним из важнейших вредителей зерновых культур и переносчиком возбудителей клещевого энцефалита, туляремии, риккетсиоза, лихорадки Ку и др.

Таким образом, меры по освобождению мест обитания и хозяйствования человека (снижению в этих местах численность грызунов) должны быть обязательным звеном в системе противоэпизоотических и профилактических мероприятий [Тощигин 2005, б/даты обращения].

1.3. Основные этапы развития дератизации в России

Первоначально термин дератизация (от лат. rattus — крыса и отрицательной приставки de) обозначал «уничтожение крыс»; сегодня дератизация понимается как система профилактических и истребительных мероприятий, направленных на уничтожение или снижение численности грызунов, опасных в эпидемиологическом отношении и приносящих экономический ущерб5.

5 В проекте Федерального закона «О требованиях к безопасности дезинфекционных средств, процессов их производства, испытания, хранения, перевозки, реализации, применения и утилизации» дератизация определяется как «устранение (умерщвление, отпугивание) грызунов, имеющих эпидемиологическое, санитарно-гигиеническое значение или приносящих экономический ущерб» [Федеральный закон... б/даты размещения].

В истории развития дератизации в России выделяют 5 периодов [Тощигин 2000, 2005, б/даты обращения]. На первом, длившемся примерно до середины XIX столетия, основными средствами борьбы были кошки, собаки, другие прирученные хищники и различного типа ловушки. Эффективность этих способов оказалась весьма незначительной, что потребовало поиска иных, более надежных средств.

Второй период (1850—1900) тесно связан с развитием химии и бактериологии, в рамках которых изыскивались средства борьбы в виде приманок с ядами или бактериями, но эти приманки оказываются опасными не только для грызунов, но и для полезных животных.

Третий период дератизации, с 1900 по 1950 гг., проходит под знаком усовершенствования химических средств борьбы и завершается открытием новых ядов кумулятивного, хронического действия, токсичных для грызунов, но мало опасных для людей и полезных животных.

Для четвертого периода (1950—1975) характерны поиски наиболее совершенных форм организации истребительных работ; завершается данный этап созданием концепции сплошной систематической дератизации и удачными опытами практически полного уничтожения грызунов в небольших населенных пунктах и на отдельных участках городов.

Начавшийся в 1975 г. пятый период дератизации стал временем комплексного использования разработанных ранее средства борьбы. Добавление к ним новых средств и форм борьбы с грызунами продиктовано поиском наиболее резуль-

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

тативных комбинированных методов дератизации.

История отечественной дератизации городов начинается с первых лет ХХ в., когда В.А. Белиловским6 и Н.Ф. Гамалеей

6 Белиловский Вениамин Александрович (1866—?) — врач, доктор медицины, статский советник, участник Белого движения; в 1918—1920 гласный Архангельской городской думы, с 1919 Главноуполномоченный по эвакуации в Мурманском крае. В эмиграции в Норвегии.

было начато изучение причин возникновения чумы в Одессе (1902) [Белиловский, Гамалея 1903.а, б; Белиловский и др. 1904] и разработаны первые научно обоснованные меры по ее локализации. Под руководством Н.Ф. Гамалеи специальными отрядами была проведена огромная работа по дератизации Одессы: зараженные приманки разбросаны в 12 431 доме и на каменоломнях близ города, уничтожены (сожжены) сооружения на Привозной площади, где были обнаружены чумные крысы, проведена полная дератизация всех портовых сооружений, а также судов, находившихся в это время в порту; за период эпидемии было уничтожено около 40 000 крыс [Васильев К.Г., Сегал 1960] (рис. 7, 8).

Рис. 7. Слева — Николай Фёдорович Гамалея (1859—1949), врач, микробиолог и эпидемиолог, почётный член АН СССР (с 1940), академик АМН СССР (1945) фото 1900-х гг. (АРАН. Ф. 691. Оп. 2. Д. 102. Л. 3); справа — Одесский градоначальник гр. П.П. Шувалов и санитарный отряд во главе с Н.Ф. Гамалеей. Слева и справа на первом плане — отряд крысоловов. Фото из статьи И.М. Шнайдера

«Борьба с чумной заразой в Одессе», опубликованной в журнале «Нива» в 1902 г.

Рис. 8. Привозная площадь, где были обнаружены чумные крысы (слева), и сожжение её третьего корпуса в ходе противочумных мероприятий 1902 г. Фото из статьи И.М. Шнайдера «Борьба с чумной заразой в Одессе», 1902 г.

Однако уже первые опыты выявили сложности, возникавшие при уничтожение крыс. На территории порта крысы отказались есть отравленную приманку из зерна со стрихнином, и для этой цели пришлось применить мелко резанные мясо и рыбу, смешанные с фосфором. В домах для борьбы с крысами применили наименее опасную для людей приманку — хлеб, зараженный микробами крысиного тифа (штамм Исаченко) [Тощигин 2000, 2005, б/даты обращения]. В качестве ядов применяли стрихнин, мышьяк, фосфор, углекислый барий, а из продуктов — муку, творог, пшеницу, рис.

В декабре 1917 г. в Петрограде, затем в Москве, Одессе, Томске и Харькове были организованы государственные дезинфекционные учреждения; особое внимание уделялось проведению противоэпидемических мероприятий на фронтах Гражданской войны (подробнее см. [Санитарно-эпидемиологическая деятельность... б/даты размещения; Тощигин 2000,

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

2005, б/даты обращения]). Для разработки мероприятий по борьбе с эпидемиями, обобщения опыта этой борьбы и создания соответствующей научной базы для решения практических вопросов Наркомздравом РСФСР в период с 1918 по 1921 гг. было созвано 5 Всероссийских съездов бактериологов, эпидемиологов и санитарных врачей, рассматривавших итоги научных исследований и практические аспекты борьбы с инфекционными заболеваниями. В мае 1924 г. состоялся Восьмой Всесоюзный съезд бактериологов, принявший решение о необходимости проведения планомерной, систематической борьбы с грызунами. Первоначально истребительные работы проводились силами нескольких не объединенных между собой организаций: отделом борьбы с вредителями (ОБВ), Российским обществом Красного креста (РОКК) и Обществом содействия обороне и авиационно-химическому строительству (Осоавиахим). На объектах пищевой промышленности дератизацией занималась специальная станция Главхладопрома. С 1940 г. все руководство борьбой с грызунами взяло на себя Министерство здравоохранения СССР. Были организованы отделы по борьбе с грызунами во всех санитарно-эпидемиологических и дезинфекционных станциях. Методическое руководство этой работой было поручено Центральному НИИ Дезинфекции, образованному в 1933 г. [Тощигин 2000, 2005, б/даты обращения].

В разработку вопросов борьбы с крысами внесли свой вклад такие отечественные исследователи, как Н.М. Дукель-ская, Д.С. Айзенштадт, В.Г. Полежаев, Л.А. Кирин, П.И. Никитин и др. Первый успех принесло применение новых ядов — «Крысида» и фосфида цинка, которые оказались менее опасными в обращении, чем применявшиеся ранее стрихнин, мышьяк, фосфор [Вашков и др. 1974; Полежаев 1961]. В результате стало возможным проводить обработки на относительно большей площади и большем количестве объектов. В Центральном научно-исследовательском институте дезинфекции (ЦНИИД) был синтезирован новый яд — зоокумарин (аналог зарубежного варфарина), а во Всесоюзном научно-исследовательском институте защиты растений (ВИЗР) — ратиндан (дифенацин). Оба этих яда оказались намного менее опасными в обращении, нежели все предыдущие, и сделали возможным применение отравленных приманок на всех без исключения объектах, включая пищевые, лечебные, детские и сельскохозяйственные, т.е. сделать дератизацию действительно сплошной — во всех местах, где есть грызуны.

Уже с 1920-х гг. борьба с грызунами включает профилактические и истребительные мероприятия. Первые имеют ведущее значение в общем комплексе дератизационных работ. Они направлены на то, чтобы лишить грызунов убежищ и затруднить им доступ к пище. Это достигается в населенных пунктах улучшением санитарного содержания и санитарно-технического состояния территорий и отдельных объектов. Для лишения грызунов запасов пищи на полях, сенокосах и т. д. используют агротехнические мероприятия [Вашков и др. 1974; Покровский, Большаков 1979; Мешкова и др. 1986; Мешкова, Шутова 1990; Хляп, Маликова 1992; Тощигин 2000, 2005, б/даты размещения; Тимошков и др. 2004; Матросов и др. 2005; Рыльников 2006.а; Попков и др. 2007; Ракитин и др. 2007; Марченко, Шабалина 2008; Каршин и др. 2010; Семёнов, Рудь 2010; Кадиров и др. 2011].

Истребительные мероприятия слагаются из трех основных методов:

— химического, являющегося главным методом истребления грызунов, основанным на применении отравленных приманок и газообразных веществ,

— физического — использования механических и физических орудий для лова и уничтожения грызунов,

— биологического, предполагающего использование естественных врагов грызунов (кошек, собак, птиц) и различных микробов, вызывающих гибель грызунов, но безопасных для людей и домашних животных [Тра-ханов 1967].

2. Существующие способы борьбы с мышевидными грызунами 2.1. Профилактические мероприятия

Санитарные мероприятия включат очистку строений, дворов и других территорий от мусора, поскольку он служит для грызунов либо источником корма, либо убежищем.

Особенно большое значение имеет соблюдение порядка и чистоты в пищепродуктовых предприятиях, на продовольственных складах и, в первую очередь, на мясокомбинатах, холодильниках и скотобойнях. Важно, чтобы пищевые отходы были недоступны для крыс и мышей и содержались в специальной таре. Мусор и отбросы из жилых и производственных помещений должны систематически удаляться.

Одной из важнейших санитарных мер борьбы с грызунами является применение рациональных способов обезвреживания отбросов и мусора путем сжигания, компостирования, переработки в биотермических камерах, где это возможно, а также путем устройства и правильной эксплуатации и содержания свалок

Санитарно-технические мероприятия имеют целью преградить доступ грызунам в различные здания: жилые дома, пищевые предприятия, складские помещения и др. Эти мероприятия должны предусматриваться еще при проектировании и строительстве новых сооружений, а также при осуществлении капитального и текущего ремонта эксплуатируемых.

Защита от грызунов предусматривает чаще всего полное исключение возможности проникновения этих животных в определенные места окружающей среды, а не создание не приемлемых условий для них на всей местности. Речь прежде

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

всего идет о защите жилых и хозяйственных построек. Например, защита домов от грызунов должна лишать их доступа внутрь зданий, возможности перебираться из комнаты в комнату и проникать в различные полости в материалах, где они могли бы строить гнезда. Такая защита заключается просто в том, чтобы найти все отверстия диаметром более 6 мм (это наименьшее отверстие, через которое может пролезть молодая мышь) и закрыть их подходящим непроницаемым для грызунов материалом.

Технические мероприятия включают также обивку жестью дверей, заделку щелей, бетонирование и цементирование полов, облицовку стен кафелем, установку металлических сеток в окнах и других проемах, через которые могут проникать грызуны.

Санитарные и санитарно-технические мероприятия в сельских жилых помещениях, в подсобных постройках на дворовых территориях, а самое главное, в животноводческих помещениях для скота и птиц, а также в помещениях для хранения зерновых и других продуктов имеют те же цели и достигаются теми же способами, что и для городских населенных пунктов [Вашков и др. 1974; Дератизация в населенных пунктах... 2012; Траханов 1967].

2.2. Химический метод борьбы с мышевидными грызунами

Сущность химического метода дератизации состоит в уничтожении грызунов ядовитыми веществами — родентицида-ми (от лат. rodentis — грызущий и caedo — убиваю). Эти вещества действуют при поступлении в кишечник или легкие (фумиганты). Химический метод основан на применении ядов, которые добавляют к различным продуктам и жидкостям (приманочный метод). Применяется и бесприманочный метод — опыление ядами нор, путей движения и мест концентрации грызунов, применение ядовитых пен, липких веществ и ядовитых газов. Химический метод прост в применении и высокоэффективен.

Химический метод является основным при борьбе с грызунами [Вашков и др. 1974.; Дератизация в населенных пунктах... 2012; Инструкция по борьбе с мышевидными грызунами 1973; Методы лабораторных исследований... 2011; Тощигин 2000, 2005, б/даты размещения; Траханов 1967, 1973; Яковлев, Бабич 2011]. Он подразделяется на следующие способы:

— ингаляционные, основанные на использовании ингаляционных родентицидов (фумиганты — используются при газации на объектах хранения зерна, фуража, при обработке подвижного состава воздушного, водного, железнодорожного транспорта (фосфин, метилбромид и др.). Большинство используемых газов тяжелее воздуха, поэтому они легко проникают в места, заселенные грызунами);

— кишечные, основанные на использовании кишечных родентицидов (родентицидные приманки и покрытия на основе этилфенацина, дифацинона, зоокумарина, трифенацина, тетрафенацина, бромадиолона, бродифакума).

Формы применения дератизационных препаратов разнообразны. Это могут быть порошки, состоящие из одного препарата или из смеси яда с различными инертными наполнителями (тальк, крахмал, дорожная пыль и т. д.), растворы и суспензии, пасты на жировой основе, парафинированные брикеты, галеты, сухарно-мучные смеси и др.

По характеру происхождения яды делятся на растительные и синтетические. Наибольшее распространение во всем мире получили многочисленные препараты синтетического происхождения. Основным их преимуществом являются возможность получения больших партий стандартного и стабильного препарата, относительная доступность и дешевизна сырья, высокий эффект при их применении. Все синтетические родентициды объединяются в две большие группы, каждая из которых характеризуется спецификой действия входящих в нее препаратов на животный организм: это — препараты острого и хронического действия (антикоагулянты).

Яды острого действия вызывают гибель грызунов после однократного поедания приманки. К ним относятся: кремне-фтористый натрий, углекислый барий, соединения мышьяка, желтый фосфор, фосфид цинка, и другие неорганические соединения, а также органические растительные яды: сциллирозид (препарат красного морского лука); органические синтетические яды: крысид, тиосемикарбазид, промурит, фторацетамид, фторацетат бария, фторацетат натрия, моно-фторин, глифтор, шоксин (норбомид), вакор и др.

В большинстве случаев эти яды начинают вызывать симптомы отравления с первого же часа после попадания в организм. Однако с быстрым развитием процесса отравления (краткий латентный период) связано и возникновение настороженности у грызунов, отказ других особей от поедания приманки с ядом, вызвавшим отравление, или даже с любым другим препаратом. Для того чтобы преодолеть реакцию избегания отравленной приманки, следует чередовать пищевую основу, аттрактанты, а также яды. Наилучший результат приманки с ядами острого действия дают в тех случаях, когда грызунам сначала некоторое время предлагают корм без яда, а затем такой же корм с ядом. Этот прием получил название предварительного прикорма.

Из многочисленной группы ядов острого действия наибольшее распространение получил фосфид цинка, который, попадая в желудок, реагирует с соляной кислотой и выделяет фосфористый водород, проникающий в кровь, мозг и действующий на дыхательный центр. При рекомендуемой инструкцией концентрации в приманке (3%) этот яд относительно менее опасен, чем многие другие, и не вызывает вторичных отравлений у хищников, съевших отравленных грызунов.

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

Яды хронического (кумулятивного) действия характеризуются длительным латентным периодом, медленным развитием процесса отравления при регулярном введении в организм очень малых доз. Эти препараты аккумулируются (накапливаются) в организме животного и постепенно приводят к значительным биохимическим и патологоанатомическим изменениям и гибели. Наибольшую долю среди ядов хронического действия составляют антикоагулянты крови из группы кумарина — варфарин (зоокумарин), кумахлор, дикумарол и др. — и индадиона (дифенацин, фентолацин и др.).

В 1938 г. группа химиков, работавших в лаборатории Университета Висконсина, выделила из испорченного сена и описала вещество, вызывающее кровотечения у животных. Это был 3,3'-метиленбис-(4-гидроксикумарин), который позже был назван дикумаролом. По механизму действия дикумарол является антагонистом витамина К, тормозит биосинтез протромбина и проконвертина. Дикумарол является производным кумарина, который присутствует во многих растениях и обусловливает сладкий запах свежескошенной травы или сена. Кумарины, в частности, присутствуют подмареннике душистом и в меньшем количестве в лакрице, лаванде и в различных других видах. Сам по себе кумарин не влияет на свёртывание крови, но может быть вначале метаболизирован различными грибами в соединения, такие как 4-гидроксикумарин, а далее (в присутствии естественного формальдегида) в дикумарол, который обладает антикоагу-лянтными свойствами.

Продолжение работ над созданием более мощных кумаринподобных антикоагулянтов для использования в качестве яда для грызунов привело к синтезированию в 1948 г. варфарина.

Открытие соединений кумарина, а позже и индандиона привело к настоящему перевороту в дератизации. При однократном попадании в организм грызуна небольших количеств этих ядов симптомы отравления практически не проявляются. Однако при многократном потреблении антикоагулянтов их токсичность значительно возрастает в результате накопления яда в организме, вызывающего нарушения свертывающего механизма крови, что сопровождается увеличением проницаемости сосудов, кровоизлияниями во многих внутренних органах и кожных покровах и последующую гибель.

Малые количества антикоагулянтов, находящиеся в приманке, практическое отсутствие вкуса и неприятного запаха не вызывают у грызунов настороженности, не распознаются ими в приманке, и зверьки охотно и, что весьма важно, повторно поедают отравленную приманку практически в тех же количествах, что и продукты без яда.

Не менее важной особенностью антикоагулянтов можно считать и сравнительно медленное развитие явлений отравлений, вследствие чего у грызунов не образуется условно-рефлекторных связей, т. е. они не связывают болезненных ощущений с поеданием приманки. Этим в первую очередь и объясняется отсутствие настороженности к данным препаратам. Симптомы отравления, если судить по поведению зверьков, не очень болезненны и слабо или совсем не отражаются на их аппетите [Бочаров, Крючков 1990; Вашков и др. 1974; Дератизация в населенных пунктах... 2012; Заева и др. 2004; Инструкция по борьбе с мышевидными грызунами 1973;; Матросов и др. 2005; Рыльников 1998, 2006.а, б; Симецкий и др. 1994; Тощигин 2000, 2005, б/даты размещения; Траханов 1967, 1973; Шутова и др. 1986; Яковлев, Бабич 2011].

В настоящее время в практике дератизации широко применяются следующие способы [Дератизация в населенных пунктах... 2012; Тощигин б/даты размещения]:

— пищевые отравленные приманки — яд смешивают с пищевым продуктом, достаточно привлекательным для грызунов;

— жидкие отравленные приманки — использование растворов или суспензий ядов в воде, молоке и тому подобных жидкостях;

— опыление — применение порошковидных ядов для опыления выходов из нор, троп и путей перемещения грызунов, гнездового материала и т. д.;

— газация — подача в помещение или нору грызунов ядов в газообразном состоянии.

Среди всех этих способов наиболее универсальным является применение пищевых отравленных приманок. Отравленные приманки условно можно разделить по содержанию влаги в пищевой основе на сухие и увлажненные, причем последние поедаются значительно лучше, но быстрее портятся. Во всех случаях лучше всего поедаются только свежие, доброкачественные продукты.

Поедаемость грызунами пищевой основы отравленных приманок в значительной мере зависит от состава и обилия кормов в привычных для них условиях обитания. На объектах с однородной кормовой базой наиболее предпочитаемой является пищевая основа, которая восполняет недостаток отдельных компонентов их рациона. Так, на мясокомбинатах грызуны испытывают явный дефицит углеводов. Применение мучных затравок с сахаром очень эффективно приманивает грызунов. На складах зерна, муки, крупы грызуны питаются высококалорийными кормами, содержащими большую часть необходимых компонентов, однако здесь имеется недостаток влаги, поэтому в таких местах наиболее эффективными оказываются жидкие приманки — молоко, вода с сахаром. Как правило, добавка к пищевой основе ат-трактантов (5—10% сахара или 3% растительного масла) значительно улучшает ее поедаемость грызунами [Шутова 1990; Шутова и др. 1986].

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

Приманки раскладывают в ходы нор, приманочные ящики или открыто после определения вида грызунов и выяснения их мест обитания. Отравленные приманки раскладывают в обитаемые, или так называемые «жилые норы», т. е. в те отверстия и щели, которыми пользуются грызуны. Приманки раскладывают как можно глубже в выходы нор и щелей, кладут их в бумажных пакетиках или «фунтиках». Приманки с медленно действующим и накапливающимся в организме зоокумарином необходимо раскладывать 3—4 дня подряд или 2—3 раза через день.

Раскладка отравленных приманок в приманочные ящики также эффективна, как и предыдущий способ. Кроме того, он безопасен для окружающих. Приманочные ящики должны быть чистыми, без посторонних запахов, их не следует окрашивать. Приманку кладут на дно ящика. Ставят ящики около мест выхода грызунов, по их тропам, которые чаще всего проходят вдоль стен, в тихих, укромных местах. Через 2—3 дня после раскладки приманки ящики проверяют, или оказывается, что грызуны поедают приманку, то добавляют той же приманки [Вашков и др. 1974; Дератизация в населенных пунктах... 2012; Рыльников 1998].

В складских и производственных помещениях, где находится мало людей, и нет домашних животных, можно открыто раскладывать отравленные приманки с зоокумарином, ратинданом и другими малоопасными для людей и домашних животных родентицидами. Приманки лучше помещать в бумажные пакетики или «фунтики». Такие «фунтики» оставляют в тех же местах, где ставят приманочные ящики [Бочаров, Крючков 1990; Гигиенические нормативы содержания пестицидов.; Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов... 2013; Кадиров и др. 2011; Каршин и др. 2010; Рыльников 1998, 2006.б; Шутова и др. 1986; Яковлев, Бабич 2011].

Брикеты парафинированные — одна из форм подачи отравленной пищевой приманки. В состав брикетов входит 50% парафина, 4% растительного масла, 3—10% родентицида и пищевая основа (зерно или сухарная крошка) до 100%.

Пасты представляют собой липкую композицию, на основе вазелина, родентицида, аттрактантов (растительного масла) и талька. Соотношение этих компонентов в пасте может быть различным. Применяют пасты для создания ядовитых покрытий (истребительных площадок), отравленных приманок, обмазывания входных отверстий нор грызунов.

Жидкие отравленные приманки. Крысы поглощают большое количество влаги, в связи с чем в качестве приманок используется, например, вода. В местах, где грызуны не находят воды, ставят поилки с водой, опыленной родентицидами. Поглощая опыленную ядом воду, крысы проглатывают родентицид. Яды, применяемые для опыления, должны не растворяться в воде и быть легкими (с малой относительной плотностью). Растворяемые в воде родентициды не применяют в жидких приманках, т. к. грызуны различают ядовитые растворы и обычно не пьют их. Тяжелые препараты (с большой относительной плотностью) при этом способе применения неэффективны: крысы аккуратно спивают лишь верхний слой воды и не берут находящийся в осадке родентицид.

Опыление. Этот способ основан на том, что мышевидные грызуны, проходя по опыленным местам, пачкают ядовитым порошком мех, лапки, морду. При облизывании грызунами своих наружных покровов яд попадает в рот и затем проглатывается. При отряхивании яд может попасть и в легкие. В отличие от приманочного способа, когда успех во многом определяется тем, насколько сыты грызуны и как привлекают их приманки, опыление является более эффективным способом, т. к яд проникает в организм как голодных, так и сытых грызунов. Из родентицидов для опыления наиболее приемлемы зоокумарин, ратиндан, фосфид цинка. Опылению подвергают выходы из нор, тропы, мусоропри-емники и другие места, где обнаруживают помет, погрызы. Однако, при недостаточной эффективности опыления этот способ приводит к интенсивному загрязнению поверхностей, разносу яда зверьками и возможности попадания яда на пищевые продукты. Значительное меньшее загрязнение среды получается при использовании искусственных убежищ — ящиков с отверстиями или трубок, наполненных гнездовым материалом (соломой, сеном, ватой, бумагой) пропыленным ядом. Сами по себе искусственные убежища не всегда привлекают грызунов, поэтому в них целесообразно класть приманку [Дератизация в населенных пунктах... 2012].

Газация. Для борьбы с грызунами было испытано множество газов: сернистый газ, углекислый газ, окись углерода, хлор, хлорпикрин, цианистый водород, фосфористый водород, окись этилена. Все ядовитые газы вызывали полную гибель животных при условии, что зверьки не могли уйти из отравленной зоны. Время их гибели при этом составляло от нескольких минут до нескольких часов. Но такой же высокой токсичностью перечисленные газы обладают по отношению к людям и другим животным, что требует очень больших затрат и усилий по обеспечению безопасности при обработке. Перед газацией строений из них удаляют людей, останавливают производство и тщательно герметизируют все отверстия. Обработку газом проводить нельзя, если поблизости есть жилые дома и предприятия. Второй недостаток газации — отсутствие остаточного действия после окончания обработки. Обработанные помещения могут быть повторно заселены грызунами. Третий недостаток — высокая стоимость обработки.

В настоящее время газацию применяют только для обработки специальных объектов: судов, самолетов, вагонов, элеваторов, реже — холодильников. Безусловным достоинством этого метода является способность газов одномоментно уничтожить практически всех грызунов в закрытых помещениях и других емкостях со сложной внутренней архитектурой, где применение других способов невозможно или неэффективно.

Все яды условно могут быть объединены в группы соединений, обладающих общими для них свойствами. Но каждый

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

препарат или его рабочая форма имеет и присущие ему особенности.

Для проведения дератизационных работ применяются родентициды острого, подострого и хронического действия [Вашков и др. 1974; Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов... 2013; Дератизация в населенных пунктах... 2012; Инструкция по борьбе с мышевидными грызунами 1973; Методы лабораторных исследований... 2011; Тощигин 2005, б/даты размещения; Траханов 1967, 1973; Яковлев, Бабич 2011].

К родентицидам острого действия, вызывающим гибель грызунов через короткий промежуток времени (от минут до часов), относятся фумиганты (при оптимальных концентрациях в воздухе) и часть кишечных ядов.

К родентицидам подострого и хронического действия относятся яды медленного действия. Применение таких родентицидов позволяет не допускать избегания грызунами приманок. Используемые на сегодня родентициды подострого и хронического действия делят на две группы: антикоагулянты и аналоги витамина D.

Анти коа гул я нты крови непрямого действия снижают свертываемость крови и вызывают утончение и хрупкость стенок кровеносных сосудов, что приводит к разрыву сосудов, внутреннему кровотечению и смерти. Антикоагулянты подразделяются на 2 поколения.

— а нти коа гул я нты первого поколения (зоокумарин, дифацинон, этилфенацин, трифенацин, тетрафена-цин дифенацин, хлорфасинон) характеризуются высоким значением летальной дозы (т.е. количества яда, необходимого для гибели). Поэтому отравление грызунов достигается лишь при неоднократном поедании приманки.

— а нти коа гул я нты второго поколения (дифетиалон, дифенакум, бромадиолон, бродифакум, флокума-фен, тетрафенацин) намного токсичнее для грызунов, и гибель зверьков достигается после однократного поедания приманки. В обоих случаях гибель наблюдается через несколько суток, т.к. необходимо время для развития механизмов нарушения свертываемости крови. Антикоагулянты обладают кумулятивным свойством — яд накапливается в организме, что усиливает его действие.

Витамин D и его производные. При поступлении их в организм происходит выделение кальция из костей в кровь. Избыток кальция откладывается на стенках кровеносных сосудов, что приводит к закупорке, разрыву, внутренним кровоизлияниям и смерти.

Антикоагулянты первого поколения наиболее эффективны против крыс и полевок. Антикоагулянты второго поколения почти одинаково эффективны против крыс, мышей и полевок.

По содержанию действующего вещества (ДВ) родентициды подразделяются на концентраты, готовые формы выпуска или приготовленные формы применения.

По способу применения они подразделяются на родентицидные приманки и родентицидные покрытия (пены, дусты, пасты).

По физико-химическим свойствам они подразделяются следующим образом:

— пены — влажные, насыщенные воздухом жидкие массы;

— дусты — порошкообразные смеси ДВ с нейтральными наполнителями (крахмал, тальк, каолин);

— гели — желе в жидком состоянии, содержат ДВ, гелеобразователь, воду, аттрактанты;

— жидкости — растворы ДВ в воде, масле, спирте, этиленгликоле и т.п.;

— пасты — густые мягкие массы, содержащие ДВ, пастообразующее вещество (обычно вазелин), пластификатор (обычно тальк); они удобны для изготовления родентицидного покрытия;

— твердые конкреции (зерно, гранулы, блоки);

— мягкие брикеты (тестообразная масса).

Родентицидные приманки можно разделить на следующие виды. Сухие приманки:

— зерновые — цельное, дробленое зерно, крупы, а также их смеси;

— порошкообразные — пшеничная (овсяная, ячменная) мука в смеси с антикоагулянтом крови непрямого действия и добавлением 5-10% сахара и овсяных хлопьев. Эффективны в большей части объектов, особенно против крыс;

— брикеты парафинированные — зерновая смесь в отвердевшем парафине. Они высоко устойчивы во влажной среде;

— гранулы — измельченная зерновая смесь после формования экструдером;

— капсулированная приманка — приманка заключена в несъедобную оболочку для защиты от поедания человеком и нецелевыми видами животных;

— мягкие брикеты — мука с добавлением твердых и жидких растительных масел, 5% сахара. Одни из наиболее

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

привлекательных для зерноядных грызунов.

Влажные приманки — смесь измельченного хлеба или каши с добавлением мяса или рыбы (20%) и яда острого действия.

Жидкие приманки — например, раствор сахара (5—10%) в воде, пиво, молоко и др., разливаемые в поилки в местах, где имеется недостаток влаги. На поверхность раствора тонким слоем наносят концентрат индандиона (дифаци-нон, тетрафенацин, этилфенацин) в растительном масле или растворяют там водорастворимые родентициды, такие как натриевая соль зоокумарина (варфарина), натриевая соль дифацинона.

Концентраты родентицидов в виде растворов и гелей наиболее удобны для приготовления родентицидных приманок, тогда как дусты целесообразно использовать для опыливания путей перемещения грызунов и тампонирования нор. Ду-сты требуют повышенных мер предосторожности при работе с ними. Область их применения также ограничена.

Важным условием проведения качественной дератизации является использование свежеприготовленной приманки из продукта, предпочитаемого грызунами на данном объекте. Для привлечения грызунов к готовым приманкам добавляют различные виды аттрактантов. В качестве основного средства борьбы необходимо применять долго сохраняющиеся приманки с антикоагулянтами. В некоторых случаях бывает необходимо применение приманок со скоропортящимися, но хорошо поедаемыми продуктами (мясо, рыба, каша, хлеб). Приманки с остродействующими родентицидами следует применять только в период осеннего пика численности и весеннего размножения грызунов, а также по эпидемиологическим показаниям.

При изготовлении и применении родентицидов следует придерживаться рекомендаций [Дератизация в населенных пунктах... 2012], представленных в таблице 1.

Таблица 1

Требования к изготовлению и применению пищевых родентицидных приманок*

Допускается Не допускается* *

1. Предостерегающая окраска серого или черного цвета для приманок с ядами острого действия. 2. Другие цвета — для приманок с ядами кумулятивного действия. 3. Содержание добавок горького вкуса. 4. Форма выпуска или применения, принятая для родентицидных приманок. 5. Порционная упаковка с предупреждающими надписями. 6. Раскладка в КИК с маркировкой «токсично». 1. Использование в качестве пищевой основы: — недробленых семян (подсолнуха, тыквы, ядер орехов); — сухарей, вафель, брикетов, напоминающих халву, шоколад и др. кондитерских изделий в целом и раскрошенном виде), вспученной и экструди-рованной кукурузы, риса, зерен, чипсов и т.д. 2. Указания на принадлежность к пищевым продуктам (например, «тесто-сырные брикеты» и т.п.) на этикетках и в инструкции по применению.

Примечания:

Ответственность за качество родентицидных средств несет производитель; ответственность за возможные последствия от применения форм выпуска родентицидов несут лица, проводящие дератизацию;

**КАТЕГОРИЧЕСКИ ЗАПРЕЩЕНО при дератизации в детских учреждениях.

Из химических средств наиболее часто для дератизации применяют антикоагулянты. Антикоагулянты имеют определенное преимущество перед остродействующими ядами. Они применяются в таких малых дозах, которые практически безопасны для животных при случайном поедании ими отравленных приманок; кроме того, имеют надежное противоядие — витамин К. Тем самым, антикоагулянты менее опасны при дератизации животноводческих ферм. Положительным качеством этих веществ является и то, что их можно применять в пищевых и водных приманках, методом опыливания, в виде ядовитой пены и липких веществ.

Для предупреждения отравления животных и человека все отравленные приманки должны внешне резко отличаться от пищевых продуктов. Это достигается их окрашиванием красителями в различные цвета.

2.3. Химические методы борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

Химическая дератизация в свинарниках. Свиньи наиболее чувствительны к антикоагулянтам. Зооку-марин и его натриевая соль в дозе 1 мг/кг живой массы при многократном потреблении вызывает гибель животных, особенно поросят после кастрации, когда у них повреждены кровеносные сосуды. При однократном потреблении яд смертелен в дозе 15 мг/кг. Менее токсичен для свиней дифенацин.

При случайном отравлении животных антикоагулянтами следует немедленно применить лечение, заключающееся в назначении раз в день животному противоядия — витамина К (викасол) по 1—3 мг/кг, внутримышечно, глюконата кальция по 10—20 мл, внутримышечно, глюкозы 20%-ной по 50—100 мл, подкожно, а также сердечных средств. Курс лече-

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

ния 6—8 дней. При наличии в рационе свиней большого количества люцерны, люцерновой муки, капусты, рыбной муки, содержащих много витамина К (от 2 до 100 мг/кг), следует увеличить расход антикоагулянтов в приманках в 2—3 раза, так как витамин К действует противоположно антикоагулянтам.

Расстановку подвесных кормушек, приманочных ящиков, поилок и кормушек из отрезков труб производят в местах наибольшего скопления грызунов, на путях их движения или в местах вероятного проникновения в помещении комплексов. В служебных и вспомогательных помещениях, в кормоцехах, в складах, где не производят ежедневной влажной уборкой расставляют приманочные ящики, кормушки и поилки.

В свинарниках-маточниках, откормочниках и в других помещениях, где содержатся свиньи разных возрастов и ежедневно производят гидросмыв, используют подвесные кормушки, укрепляя их на арматуре оборудования и других путях движения грызунов.

Химическая дератизация в коровниках. Крупный рогатый скот устойчив к антикоагулянтам. Яд в дозах 100—200 мг при многократном попадании в организм несмертелен для них, как и разовая доза 1—5 г. При случайном отравлении для устранения гипопротромбинемии животным переливают кровь с нормальным количеством протромбина и проводят лечение с использованием витамина К, глюконата кальция, глюкозы, а также сердечных средств [Вашков и др. 1974; Матросов и др. 2005; Рыльников 2006.а, б; Траханов 1967, 1973; Цыганова 2012].

2.4. Физические методы борьбы с мышевидными грызунами

Среди различных физических способов уничтожения грызунов наиболее распространенным является применение ловушек и капканов, которые можно разделить на два основных типа [Вашков и др. 1974]:

— живоловки — ловушки, верши;

— убивающие — плашки и капканы.

Ловушки и капканы применяют как в помещениях, так и вне их. Отлов грызунов дуговыми капканами принципиально отличается от отлова ловушками с приманками тем, что основан не на привлечении зверьков, а на использовании стереотипа их передвижений в наиболее часто посещаемых ими местах. Этот способ уничтожения грызунов безопасен для людей и домашних животных. К положительным сторонам следует отнести и то, что результаты применения орудий лова (т. е. эффективность) выявляются (в отличие от химических и бактериологических средств) сразу. Благодаря объективности и наглядности его применяют не только для уничтожения грызунов, но и при обследовании объектов с целью установления наличия грызунов и их вида.

Применение ловушек малопригодно для уничтожения популяции грызунов, но оно пригодно для ликвидации небольшого числа особей, которые не взяли отравленную приманку. Наиболее результативно отлов грызунов можно провести, если их длительно приучать к ненастороженным ловушкам, обновляя приманку в течение 7—10 и более дней, затем насторожить их и в короткое время провести отлов.

Среди других физических средств уничтожения заслуживает внимания применение электрических устройств — «электродератизаторов». Подобные электроустройства могут быть полезны для защиты объектов от грызунов, где нет людей и животных.

Многочисленные попытки применить ультразвуковые установки для уничтожения грызунов (крыс) не дали положительных результатов. Для отпугивания крыс эти устройства также малопригодны [Амендола и др. 2007; Вашков и др. 1974].

Определенный интерес представляют предложенные Д.Ф. Трахановым механические пены, применяемые без ядов и вызывающие удушение зверька в течение 1 мин. Данный способ, по мнению его автора, пригоден для обработки нор вместо ядовитых газов [Траханов 1967, 1973].

К механическим средствам истребления следует также отнести применение липких масс для вылова грызунов. Обычно используют канифоль и касторовое масло в соотношении 2:1, литографский лак, густую патоку или другие клейкие вещества. Для отлова мышей массу наносят тонким слоем на плотную бумагу или картон, а для вылова крыс намазывают слоем 2—3 мм листы картона, фанеры или толя размером примерно 50 х 30 см. Эти листы раскладывают по тропам грызунов, около их выходов из нор. Посередине листов кладут пахучую приманку. Обычно такие листы используются около 2 недель.

Механическим средством борьбы с грызунами является также заполнение водой их нор. Этот прием, в частности, применяют для уничтожения сусликов. При этом наибольший успех достигается при вливании в норы кипятка [Вашков и др. 1974; Тощигин б/даты размещения].

Все известные до настоящего времени физические способы уничтожения грызунов уступают по своей эффективности не только химическому, но и биологическому методам борьбы, т. к. не вызывают массовой гибели зверьков.

Несомненное преимущество физического метода дератизации высокая степень избирательности в отношении определенного вида, к тому же он не приводит к загрязнению среды пестицидами. В основном физический метод рекомендуется

Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time vol. 12, issue 2 Man and Living Environment

Elektronische wissenschaftliche Auflage Almanach 'Raum und Zeit' Bd. 12., Ausgb. 2. Mensch und Lebensraum

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

комбинировать с химическим и биологическим методами. В то же время он широко используется на объектах при таких работах, как определение эффективности проведенных мероприятий и учет численности грызунов [Вашков и др. 1974; Дератизация в населенных пунктах.... 2012; Тощигин б/даты размещения; Траханов 1967, 1973; Урбах 1964; Хляп, Маликова 1992]. Физический метод борьбы с грызунами включает в себя механический, электрический и акустический способы. Механический способ подразделяется на приемы, основанные на применении:

— живоловящих устройств и материалов (верши, дуговые капканы, клеевые площадки и др.);

— убивающих устройств (ловушки Геро, гильотины и пр.)

Механические средства используют преимущественно на пищевых, детских и лечебных предприятиях как более безопасные по сравнению с химическими.

Электрический способ основан на применении устройств, убивающих электрическим разрядом. Акустический способ основан на применении устройств, отпугивающих грызунов ультразвуком.

Механический метод — самый древний и безопасный для окружающих метод борьбы с грызунами. Он заключается в использовании различных видов ловушек, давилок и капканов для вылова грызунов (рис. 9, 10). Преимущество механического метода перед другими способами заключается в его безопасности для человека и домашних животных.

щш.

41 •ЛЯЯгвЛ Jn

siMgS

ДМН'

§t|l

äUflMtey

Рис. 10. Виды ловушек: а — капкан для мышей; б — капкан для крыс; в — дуговой капкан для крыс; г — ловушка для мышей; д — ловушка для крыс типа «Верша».

Капканы и ловушки расставляют на привычные для крыс и мышей местах у нор, стен, на путях передвижений грызунов. На каждые 100 м2 ставят один капкан или на 150 — 200 м2 крысоловку. В качестве приманки в механических ловушках используют кусочки хлеба, политые растительным маслом, копченое и жареное сало, колбасу, сыр и т.д. В кры-

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

соловку кладут от 50 до 100 г, а в капкан-давилку — 3—6 г приманки. Наиболее распространенными орудиями лова являются пружинные капканы (давилки) для мышей и крыс, дуговые капканы для крыс, а также верши-ловушки для одновременного вылова нескольких грызунов.

Крысоловка « верша ». Ее делают из проволоки по принципу рыболовной верши. Длина ее 50, ширина — 30, высота — 24 см. Состоит из преддверия и собственно ловушки, где находится приманка. В преддверии имеется большое отверстие, через которое крысы могут свободно входить и выходить. Второе отверстие находится внутри и имеет вид усеченного конуса, закрытое опускающейся на противовесе площадкой. Оно и ведет в ловушку. Площадка под тяжестью крысы опускается вниз, крыса падает в другое отделение, а площадка принимает исходное положение и закрывает выход. Таким путем может попасть в ловушку до 10—15 крыс [Вашков и др. 1974; Широбокова, Громов 1975].

Успех в работе во многом определяется тем, где устанавливаются орудия лова, их состоянием и качеством используемой приманки. Ловушки и капканы следует помещать в привычных для грызунов местах: около нор, на путях передвижения, у стен. Предварительно орудия лова ставят с приманками незаряженными с целью приучения грызунов. Чтобы животные и птица не сбивали капканы и ловушки, их можно прикрывать ящиками с отверстиями или устанавливать в специально создаваемых узких проходах.

В качестве приманки применяют кусочки сала, мяса, хлеба, рыбы, овощи и другие продукты. Они должны быть свежими, без постороннего запаха. В ловушки-верши помещают 50—100 г приманки, в капканы — 3—5 г. Орудия лова должны быть чистыми, исправными, храниться в помещениях, где нет сильно пахнущих веществ. Перед применением их моют кипятком, а после просушивания смазывают качественным жиром. На каждые 10 кв м ставят один капкан или на 150—200 кв м одну вершу.

Могут использоваться также простейшие самодельные ловушки-самоловы. К ним относятся различные падающие площадки над емкостями, самоловы-вертушки, кадки-капканы, «ямы смерти» и др.

Самолов с качающимся мостиком. Для его устройства пригодны бочки, бачки, ведра и другие высокие сосуды. В них наливают примерно на одну треть воды (с не пахнущим дезинфектором или поваренной солью) и сверху на краю устраивают качающуюся площадку с приманкой. Под тяжестью грызуна, пытающегося достать приманку, мостик опускается, вредитель падает в воду, а мостик принимает первоначальное положение.

Самолов-вертушка. Изготавливается по такому же принципу, но вместо мостиков делаются вращающиеся жестяные барабаны или деревянные крестовины.

Кадка-западня. В бочку, бак или ведро наливают до половины воду с поваренной солью, сверху слоем 4 см насыпают шелуху (гречневую, льняную и др.) или измельченную солому. На поверхности этого слоя разбрасывают немного приманки (зерно, крупа, отруби, семена и др.). К кадке подставляют доску или лесенку, по которой грызуны могли бы взобраться наверх. Так как поверхность воды замаскирована, крысы и мыши становятся на плавающий слой шелухи с приманкой и проваливаются в воду.

«Яма смерти» глубиной 1—2 м устраивается вблизи свинарников, птичников, складов, выгребных ям. Верхняя часть ямы уже, чем дно. Внутри ее облицовывают камнем или кирпичом, на дно кладут приманку (сало, мясо, зерно и т. д.). Сверху яму закрывают решеткой, через которую могли бы проникать крысы. Такие ямы следует огораживать.

В зернохранилищах можно использовать в борьбе с мышами широкогорлые бутылки, смазанные внутри подсолнечным маслом. Их закапывают по горлышко в зерно [Вашков и др. 1974; Инструкция по борьбе с мышевидными грызунами 1973; Траханов 1973; Урбах 1964; Хляп, Маликова 1992].

2.5. Биологический метод борьбы с мышевидными грызунами

Для уничтожения грызунов с давних пор использовались хищники. К естественным врагам грызунов относятся кошки (особенно сиамские), собаки (в первую очередь пинчеры, таксы, фокстерьеры, овчарки и даже дворняжки), лисицы, горностаи, хорьки, куницы, ласки, ежи и некоторые другие млекопитающие, змеи (ужи, полозы), а также ночные, сумеречные и отчасти дневные хищные птицы (совы, сыч, коршуны, пустельги, канюки др.). Все эти животные, за исключением кошек и собак, уничтожают грызунов только в открытой природе.

Главной идеей бактериологического способа борьбы с грызунами, в том числе и с серой крысой, является создание эпизоотии в популяции крыс, приводящей к ее полной ликвидации. На протяжении многих десятков лет были испытаны штаммы сальмонелл Мережковского, Исаченко, Прохорова (штамм № 5170) и штамм NВK2C. Несмотря на постоянную работу по усовершенствованию бактериологического способа, его эффективность против серых крыс сильно колеблется — от 60 до 80%, а у оставшихся в живых крыс развивается иммунитет и при повторном применении бактерий эффективность падает. До настоящего времени не описано ни одного достоверного случая контактной эпизоотии, вызванной бактериями, применяемыми для истребления грызунов. Гибель зверьков отмечается только в случае поедания приманки с бактериальной культурой [Тощигин 2005, б/даты размещения].

Применение сальмонелл для дератизации приводит к интенсивному загрязнению среды и опасно для людей и животных.

Наилучшим вариантом применения бактерий оказалось добавление к приманке небольших количеств химических ядов, т.е. комбинированное применение химического и биологического методов. В комбинации с ядами антикоагулянта-

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

ми типа варфарина бактериальные приманки дают смертность грызунов до 95—100%. Тем не менее, комбинированный способ борьбы не уменьшает возможности загрязнения среды сальмонеллами, что ограничивает его применение [Вашков и др. 1974; Дератизация в населенных пунктах... 2012; Тощигин б/даты размещения].

2.6. Методика дератизационных работ

Дератизация — многоэтапный, сложный процесс, зависящий как от состояния территории и объектов, где необходимо уничтожить грызунов, так и от биологических особенностей последних. Процесс дератизации делится на несколько этапов: обследование; проведение комплекса профилактических и истребительных мероприятий; учет эффективности.

Работа всегда начинается с обследования, при котором выясняется санитарное содержание и санитарно-техническое состояние объекта и окружающей его территории; устанавливается наличие в данный момент на объекте грызунов; если они обнаруживаются, отмечается их вид; определяются места кормежки грызунов, принимаются меры по созданию условий, непригодных для проникновения и поселения грызунов в зданиях.

О состоянии объекта судят по наличию его заселенности грызунами [Вашков и др. 1974; Дератизация в населенных пунктах... 2012; Инструкция по борьбе с мышевидными грызунами 1973]: заселенным ими объект считают при наличии хотя бы одного из следующих признаков:

— выловлены грызуны;

— поедаются отравленные или неотравленные приманки;

— имеются другие объективные признаки наличия грызунов (заслеженные пылевые площадки; свежие экскременты, поврежденные продукты, тара или другие предметы);

— обнаруживаются ходы из жилых нор грызунов;

— имеются жалобы или указания на наличие грызунов.

Объект относят к свободным от грызунов при наличии не менее трех объективных признаков из следующих:

— грызуны не вылавливаются в течение 3 суток;

— не отмечается поедание приманок, в том числе отравленной;

— отсутствуют следы грызунов на полу или пылевых площадках;

— не обнаруживаются вскрытия грызунами выходов из нор после их заделки или устройства новых выходов;

— отсутствуют прочие следы жизнедеятельности грызунов (свежие погрызы, экскременты, кормящиеся или пробегающие грызуны и т. д.);

— отсутствуют жалобы жителей или администрации на наличие грызунов.

2.7. Основы организации дератизационных мероприятий

Проведение дератизации является обязательной частью комплекса санитарно-противоэпидемических мероприятий, направленных на предупреждение и снижение целого ряда инфекционных болезней. В зависимости от эпидемиологической значимости и местных условий (города, рабочие поселки, сельские населенные пункты, поля) борьба с грызунами может приобретать различные организационные формы [Вашков и др. 1974; Дератизация в населенных пунктах... 2012; Инструкция по борьбе с мышевидными грызунами 1973; Цыганова 2012]:

Очаговая дератизация. Проводится на отдельных участках или строениях, где были или имеются инфекционные болезни, в распространении которых могут принимать участие грызуны. Очаговая дератизация осуществляется эпизодически. Сущность ее сводится к уничтожению грызунов на ограниченных участках. Результаты такой работы всегда бывают временными.

Выборочная дератизация. Проводится в населенных пунктах, где борьба с грызунами находится в начальной стадии развития. При этой системе дератизацией охватываются лишь наиболее важные объекты — холодильники, мясо- и рыбозаводы, элеваторы, продовольственные склады, торговые, лечебные, детские, животноводческие учреждения. Выборочная дератизация малоэффективна, т.к. даже тщательная работа на отдельных объектах (из-за способности грызунов к миграции) не приводит к стойкому освобождению от них.

Сплошная одномоментная (разовая) дератизация. Осуществляется в отдельных населенных пунктах или участках 1-2 раза в год. При этой системе работ назначенный к проведению сплошной дератизации участок подвергают дератизационным мероприятиям в возможно короткий срок (7—12 дней). По окончании обработки объем работы уменьшают до первоначального (выборочного) охвата отдельных объектов. Результаты одномоментной дератизации временны, неустойчивы. В результате разовых обработок грызуны полностью не уничтожаются, а лишь на неко-

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

торое время уменьшается их численность. Благодаря высокой плодовитости численность грызунов очень быстро восстанавливается. В связи с недостаточной эффективностью выборочная и одномоментная сплошная формы дератизации могут существовать только как временные, переходные формы работ.

Сплошная систематическая дератизация — наиболее эффективная форма дератизационных мероприятий. Она предусматривает плановое систематическое осуществление комплекса дератизационных работ на протяжении всего года на всей территории города на всех его объектах, и предусматривает одновременное использование методов и средств борьбы во всех помещениях, зданиях, территориях и объектах, что исключает сохранение какой-то части популяции за счет миграционных процессов. Сплошная систематическая дератизация проводится, чаще всего, в крупных городах. В морских портах сплошная систематическая дератизация является обязательным санитарно-противоэпидеми-ческим мероприятием. Сплошная систематическая дератизация приводит либо к полному освобождению объектов от грызунов, либо к стойкому снижению численности грызунов до такой степени, когда они оказываются уже не в состоянии распространять инфекционные болезни.

Полевая дератизация в широких масштабах в настоящее время не проводится из-за угрозы нарушения экологических связей в природе. Поэтому при природно-очаговых заболеваниях с трансмиссивным механизмом передачи приходится использовать другие приемы борьбы (дезинсекция, вакцинация и т. д.). При нетрансмиссивных нозоформах6

6 Нозоморфоз — изменение признаков отдельной болезни — так называемой нозологической формы. Трансмиссивные болезни (лат. transmissio — перенесение на других) — заразные болезни человека и животных, возбудители которых передаются кровососущими переносчиками.

с источниками инфекции среди диких грызунов дератизация строится по принципам, изложенным выше, т.е. уничтожение грызунов в жилых и хозяйственных помещениях и прилегающих к ним территорий.

2.8. Определение эффективности дератизационных мероприятий

Основным показателем эффективности дератизации в населенном пункте является размер свободной от грызунов площади в данном месяце. Эффективность считается хорошей, если свободная площадь составляет в городе более 90%, удовлетворительной — от 80 до 90% и неудовлетворительной — менее 80% от обслуживаемой по договорам площади. Для сельских районов показатели эффективности соответственно ниже (более 80% — хорошо, 70—80% — удовлетворительно, ниже 70% — неудовлетворительно) [Дератизация в населенных пунктах... 2012; Попков и др. 2007].

Вторым показателем является количество свободных от грызунов строений, выраженное в процентах по отношению к общему числу зданий, подвергнутых дератизации. В городах эффективность считается хорошей, если свободно выше 90% строений, удовлетворительной — 80—90%, и неудовлетворительной — ниже 80%. В сельских населенных пунктах эти показатели составляют, соответственно, выше 80%, 80—70% и ниже 70%.

Третьим важным показателем эффективности является число заслеженных грызунами площадок в процентах от числа имеющихся: менее 5% — хорошо, от 5 до 10% — удовлетворительно, более 10% — неудовлетворительно. Учет посещаемых грызунами площадок проводится не реже одного раза в месяц.

Дополнительным показателем качества дератизации является количество грызунов — отдельно крыс и мышей, — пойманных на 1 000 кв м, определяемое 2 раза в год во время учета численности грызунов путём отлова их капканами.

Основным объективным способом определения наличия или отсутствия грызунов является использование контрольно-истребительных и контрольных площадок, которые устраивают в виде лотков из картона, фанеры или досок размером 30 х 15 х 2 см для крыс и 15 х 10 х 1 см для мышей. В лотки насыпают один из следующих составов слоем 1—2 мм:

— смесь муки или комбикорма с 10% сахарного песка и 3% зоокумарина (1:200);

— мучной смет (отходы муки) без яда, помещая в центре площадки хлебную гренку (контрольная площадка);

— тальк без яда, помещая в центре площадки хлебную гренку (контрольная площадка).

Строение считается заселенным грызунами при наличии следов хотя бы на одной площадке во время любого. осмотра, проведенного в данном месяце.

Для учета относительной численности грызунов в строениях площадью до 1 000 кв м площадки расставляют вдоль стен через каждые 4—5 м, а в строениях большей площади — реже, через каждые 8—10 м. Интенсивность заселения определяют путем деления числа всех площадок, посещенных грызунами, на общую площадь тех строений, где были обнаружены следы, и оценивают следующим образом: если заслежено более 5 площадок на 1 000 кв м, то считают, что грызунов много, если заслежено от 1 до 5 площадок: то количество грызунов принимают за умеренное, а если заслежено менее 1 площадки в расчете на 1 000 кв м контролируемой площади, то грызунов мало.

Второй этап учета проводят с помощью капканов во всех помещениях, где при учете площадками были обнаружены следы. В помещениях, заселенных крысами, расставляют по одному крысиному капкану на каждые 20 кв м, в засе-

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

леннх мышами — по одному мышиному на 10 кв м. Относительную численность каждого вида грызунов определяют делением общего числа пойманных зверьков одного вида на суммарную площадь строений, где таковые пойманы.

Численность вида оценивают следующим образом: если поймано крыс или мышей (отдельно) более 1 на 1 000 кв м, то считают, что грызунов много, если от 0,5 до 1,0 — умеренное количество, а если поймано менее 0,5 грызунов на 1 000 кв м контролируемой площади — то грызунов мало.

Анализ результатов применения различных методов и способов борьбы с грызунами, показывает, что успешными являются те из них, которые в наибольшей степени отвечают главным требованиям, в числе которых:

— полнота истребления популяции,

— длительное остаточное действие,

— безопасность применения для людей и домашних животных,

— экономичность.

3. Экспериментальные исследования эффективности родентицидных средств 3.1. Лабораторные животные, использованные в экспериментальных исследованиях

Целью предпринятого нами исследования являлся подбор эффективных комбинаций химических, механических и биологических способов дератизации для применения в практике борьбы с мышевидными грызунами в животноводческих хозяйствах.

Всего в ходе нашего исследования было задействовано 230 серых крыс Rattus norvegicus Berk. и 240 домовых мышей Mus musculus L. Крысы и мыши используемые в исследованиях получены в виварии испытательного лабораторного центра Московского городского центра дезинфекции. В испытаниях химических и механических средств борьбы с мышевидными грызунами было использованы 140 серых крыс и 140 домовых мышей, из которых 86 крыс и 96 мышей погибли в ходе экспериментов. В контроле было использовано 90 крыс и 100 мышей. Все контрольные животные остались живы.

В каждом опыте использовалось по 10 особей каждого вида (5 самцов и 5 самок). Животные содержались в стандартных условиях вивария испытательного лабораторного центра Московского городского центра дезинфекции. Масса тела грызунов определялась в начале и конце каждого опыта. Испытания родентицидных средств, проводились в условиях альтернативного кормления, сущность которого состоит в следующем: в течение первых трех дней от начала эксперимента животным предлагали контрольный корм (овсяная крупа) в двух одинаковых кормушках, ежедневно меняя их местами и регистрируя количество съеденного корма путем взвешивания. Далее, корм в одной из кормушек заменяли приманкой и продолжали опыт. Время экспозиции приманки — 14 суток. Воду животным давали неограниченно.

Одновременно с проведением опытов был поставлен контроль. С этой целью 10 животных, того же вида, как в опыте, содержали в условиях, идентичных содержанию подопытных особей, в течение того же срока. В качестве корма животные получали только овсяную крупу [Башенина 1975; Методы лабораторных исследований... 2011; Урбах 1999].

Таблица 2

Сведения о животных, непосредственно использованных в опытах

Параметры Серые крысы Домовые мыши

Общее количество животных каждого вида 140 140

Возраст животных 6 недель 5 недель

Количество самцов 70 70

Количество самок 70 70

Средняя масса тела животных 259,3 20,6

Минимальная масса тела животных 200,5 12,0

Максимальная масса тела животных 466,0 31,6

Средняя масса тела самцов 275,0 20,9

Средняя масса тела самок 243,8 20,4

Минимальная масса тела самцов 204,0 12,0

Минимальная масса тела самок 200,5 14,0

Максимальная масса тела самцов 466,0 31,6

Максимальная масса тела самок 366,0 29,7

Животные, не задействованные в текущих экспериментах, содержались в лаборатории в соответствии с требованиями нормативных документов [Геворкян 2014.а].

Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time vol. 12, issue 2 Elektronische wissenschaftliche Auflage Almanach 'Raum und Zeit' Bd. 12., Ausgb. 2.

Man and Living Environment Mensch und Lebensraum

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

3.2. Методы исследований химических средств борьбы с мышевидными грызунами

Требования к условиям эксперимента по оценке эффективности родентицидных средств.

Контролируемые показатели и обработка результатов

Чистота эксперимента по оценке эффективности родентицидных средств зависит от поддержания постоянных условий содержания животных на протяжении всего опыта. Лабораторное помещение, где проводят эксперименты, должно быть изолировано от других помещений вивария, иметь естественный световой режим, комнатную температуру (20— 22°С) и стабильную относительную влажность воздуха (50—60%).

Альтернативный корм и приманку раскладывают в разные кормушки по 100 г для крыс и по 50 г для мышей. Полного съедания кормов не допускают; при съедании 2/3 корма в кормушку добавляют новый, до первоначальной массы.

Кормушки ежедневно меняют местами для того, чтобы исключить привыкание грызунов к одному месту кормления.

В опыт отбирают здоровых грызунов, примерно одного возраста (2 — 6 месяцев) и массы тела (серые крысы 150—280 г; домовые мыши 20—30 г; серые полевки 18—28 г). Если не ставится задача проведения специальных исследований, то в опытах не используют беременных или лактирующих самок. Для экспериментов используют 6—10 особей одного вида.

Для изучения эффективности родентицидных средств в эксперименте наблюдения проводят до момента гибели животного, но не более 3 суток для родентицидов острого действия, 10 суток — для антикоагулянтов второго поколения и ядов смешанного действия (витаминов D2 и D3) и 14 суток — для антикоагулянтов первого поколения.

Действие отравленной приманки на грызунов определяют по трем основным параметрам — поедаемости приманки, количеству погибших особей и времени гибели.

Поедаемость определяют по количеству корма, съеденного грызуном в течение одних суток. С этой целью ежедневно взвешивают остаток корма в кормушке и определяют разницу между первоначальным весом корма и весом остатка [Методы лабораторных исследований... 2011; Нормативные показатели безопасности и эффективности... 1998; Приложение 20.1... 2013].

Исследование эффективности

готовых форм родентицидов острого и кумулятивного действия

Готовые формы родентицидов были использованы в виде зерновой приманки, гранул, мягких и парафиновых брикетов, капсул, галет, таблеток, паст с действующими веществами с определенной концентрацией. В процессе эксперимента выполнялся сравнительный анализ поедаемости отравленной приманки и альтернативного корма, определялся срок наступления гибели грызунов и их количество в процентах от общего числа используемых в опыте грызунов.

Критериями оценки эффективности готовых форм служили следующие показатели [Методы лабораторных исследований... 2011; Нормативные показатели безопасности и эффективности... 1998].

Для родентицидов острого действия:

— гибель в присутствии альтернативного корма мышей и крыс — не менее 80%; время гибели (сутки) — не более 3%;

— поедаемость готовой формы родентицидов или приготовленной стандартной отравленной приманки в присутствии альтернативного корма мышами и крысами — не менее 10% от суточного рациона.

Для антикоагулянтов I-го поколения:

— гибель в присутствии альтернативного корма мышей и крыс — 80%; время гибели, (сутки) — не более 14%;

— поедаемость готовой формы родентицидов или приготовленной стандартной отравленной приманки в присутствии альтернативного корма (кроме приманок для мышей на основе этилфенацина, зоокумарина, куматет-ралила) мышами и крысами — не менее 15% от суточного рациона;

— поедаемость готовой формы родентицидов или приготовленной стандартной отравленной приманки на основе этилфенацина, зоокумарина, куматетралила в присутствии альтернативного корма мышами — не менее 20% от суточного рациона.

Для антикоагулянтов II-го поколения:

— гибель в присутствии альтернативного корма мышей и крыс — не менее 90; время гибели (сутки) — не более 10%;

— поедаемость готовой формы родентицидов или приготовленной стандартной отравленной приманки в присутствии альтернативного корма мышами и крысами — не менее 15% от суточного рациона.

Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time vol. 12, issue 2 Elektronische wissenschaftliche Auflage Almanach 'Raum und Zeit' Bd. 12., Ausgb. 2.

Man and Living Environment Mensch und Lebensraum

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

Исследование эффективности отпугивающих химических соединений по выбору пути перемещения к пище

Эксперимент проводился в клетке, разделенной на две половины перегородкой с двумя отверстиями. Грызун из гнездовой половины клетки стремится через то или иное отверстие проникнуть в половину, где находится корм и вода. В эксперименте одно из отверстий закрывали экраном из фильтровальной бумаги, обработанной раствором репеллента, другое — закрывали необработанным экраном из фильтровальной бумаги. Экран заменяли новым при каждом повреждении. Наблюдения за поведением грызуна проводили ежедневно по два часа в течение трех дней в светлое время суток. Отмечали количество повреждений экрана каждого отверстия и переходов грызуна в кормовую половину. Эффективность репеллента оценивали по «коэффициенту повреждения» (КП). Коэффициент определяли по отношению числа повреждений грызуном преграды, обработанной репеллентом (Пр), к числу повреждений грызуном преграды не обработанной репеллентом (Пс).

Если КП меньше единицы, то испытываемое вещество обладает репеллентными свойствами. Наибольшей репеллент-ной активностью обладают химические соединения, «коэффициент повреждения» которых приближается или равен нулю. Испытываемое вещество не обладает репеллентными свойствами, если КП равен или больше единицы [Методы лабораторных исследований... 2011].

Исследование эффективности ультразвуковых родентицидных средств

по их влиянию на поедаемость корма

Определение эффективности ультразвукового излучателя (УЗИ) проводили в специально оборудованном полигоне, размером 5 х 10 м, разделённом на опытную и контрольную половины металлическим барьером-экраном. В каждой половине выставляли равное количество домиков-укрытий и кормушек таким образом, чтобы одна половина полигона являлась зеркальным отражением другой. Корм в кормушках всегда должен быть в избытке.

В опытной половине помещали устройство УЗИ так, чтобы кормушки попадали под действие ультразвукового излучения. Затем в опытную и контрольную половины полигона запускали равные группы грызунов по 3—5 особей в каждой группе. В течение трех суток грызуны адаптируются к новым условиям. В регистрационном журнале ежедневно отмечали количество съеденного ими корма в каждой половине полигона. По окончании периода адаптации в опытной половине полигона включали устройство УЗИ. Устройство остается включенным 5 суток. В течение этого времени в опытной и контрольной половинах полигона определяли ежедневную поедаемость корма грызунами.

Эффективность действия УЗИ на грызунов оценивали по поедаемости корма. Сравнивали количество съеденного корма в контрольной и опытной группах. Устройство УЗИ оценивали, как эффективное, если во время его действия поедаемость корма зверьками опытной группы составила не более 10% среднесуточного рациона, а разница в поедаемости корма с контрольной группой составляет не менее 40%.

Радиус действия УЗИ определяли опытным путем, устанавливая кормушки на различном расстоянии от источника излучения.

Исследование эффективности умерщвляющих устройств — давилок и капканов

Пружинные дуговые капканы (№ 0 и № 1) и давилки «Геро» относятся к механическим средствам отлова и умерщвления грызунов. Давилки «Геро» представляют собой деревянные плашки или металлические пластины, к которым прикреплена на пружине стальная дужка. Срабатывание механизма заряженной давилки «Геро» и придавливание грызуна дужкой к деревянному или металлическому основанию происходит при сдергивании грызуном приманки с крючка или при надавливании на трапик, соединенных со сторожком ловушки. Срабатывание дугового капкана происходит под тяжестью грызуна, при надавливании на диск устройства.

Оценку эффективности механических средств дератизации выполняли следующим образом. В начале эксперимента незаряженные устройства помещали в вольеры для привыкания грызунов к ним. Затем устройства приводили в рабочее состояние и оценивали их эффективность по количеству срабатываний запорного или убивающего механизма при контакте с ним грызуна и количеству грызунов, попавших в устройство.

Критерием оценки механического устройства при контактах с ним грызунов является эффективное срабатывание его не менее чем в 80% случаев.

(1)

3.3. Методы исследований механических средств борьбы с мышевидными грызунами

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

Исследование эффективности клейких масс и готовых клеевых ловушек

Испытание проводили в вольерах при одиночном или групповом содержании грызунов. Определение эффективности клейких масс осуществляли с помощью клеевых пластин, выполненных из материала, не впитывающего клей. Испытания на мышах проводили в вольерах размером 2 х 2 м. В вольер выпускали по 10 особей, затем опускали 5 подложек с клеем размером 15 х 15 см. В центр подложки помещали приманку в виде кусочка хлеба смоченного нерафинированным подсолнечным маслом.

Показателем эффективности клейкой массы является удерживание не менее 80% зверьков весом не более 100 г.

Исследование эффективности живоловок

Живоловки для мышей использовали оцинкованного железа с отверстиями, из металлической сетки, закрепленной на деревянной доске. Устройство имеет дверцу, которая захлопывалась при сдергивании мышью приманки с крючка.

Многоразовые живоловки (типа верш) изготовлены из металлической сетки. Грызуны попадали внутрь через отверстие с трапиком. Трапик срабатывал под тяжестью грызуна, который попадал в вершу, а трапик под действием пружины принимался первоначальное положение и закрывал выход грызуну. Оценку эффективности живоловок проводили по методике, используемой для испытания одноразовых механических устройств с учетом специфики многоразового попадания [Методы лабораторных исследований... 2011; Нормативные показатели безопасности и эффективности... 1998].

3.4. Химические средства борьбы с мышевидными грызунами,

описанные в исследованиях

Оценку эффективности средства в отношении грызунов проводили в лабораторных условиях в соответствии с «Методами лабораторных исследований и испытаний дезинфекционных средств для оценки их эффективности и безопасности» Р 4.2.2643. Результаты оценивали в соответствии с критериями, изложенными в сборнике «Нормативные показатели безопасности и эффективности дезинфекционных средств, подлежащие контролю при проведении обязательной сертификации» № 01-12/75-97. В период проведения опыта температура в помещении была равна 21 ± 0,5°С, относительная влажность — 56 ± 0,5%. Освещение рассеянное, без прямого солнечного света.

Действие отравленной приманки на грызунов определяются по трем основным параметрам: поедаемости приманки; количеству погибших особей и времени гибели.

В качестве действующих веществ для родентицидных средств использовали различные варианты химических соединений. Подробный состав родентицидных средств и способы приготовления являются коммерческой тайной и в дальнейшем в работе они обозначены как «образец» с указанием порядкового номера. Схема организации экспериментальных исследований по оценке эффективности химических родентицидных средств представлена в табл. 3.

Таблица 3

Схема организации эксперимента по оценке эффективности химических родентицидных средств

Назначение группы Количество животных в группе Родентицидное средство

Контрольная группа 10 Родентицид не применялся

Опытная группа 10 Образец №1 — зерно, бромадиолон

Опытная группа 10 Образец №2 — порошок, дифенацин

Опытная группа 10 Образец №3 — гранулы, флокумафен

Опытная группа 10 Образец №4 — парафиновые брикеты, бродифакум

Опытная группа 10 Образец №5 — концентрат, бромадиолон

Опытная группа 10 Образец №6 — порошок, бродифакум

Опытная группа 10 Образец №7 — репеллентные шарики, лавандиновое масло

Опытная группа 10 Образец №8 — гель, крысид

Опытная группа 10 Образец №9 — мягкие брикеты, бродифакум

Образец № 1

Средство родентицидное № 1 представляет собой готовую к применению зерновую приманку красного цвета. В состав средства в качестве действующего вещества входит антикоагулянт второго поколения бромадиолон — 0,005%, пищевая основа в виде зерна до 100%, также в состав приманки кроме зерна входит масло растительное, крахмал, сахар, краситель красный, битрекс.

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

Бромадиолон — мощный родентицид из второго поколения производных 4-гидроксикумарина, часто называется «су-пер-варфарином» из-за своей более высокой эффективности и способности накапливаться в печени отравленного животного. На момент первого появления на рынке Великобритании в 1980 г. показал свою эффективность против популяций крыс и мышей, выработавших устойчивость к антикоагулянтам первого поколения. Родентицид кишечного действия. Основным органом-мишенью является печень. Как и другие антикоагулянты крови, бромадиолон имеет отсроченный срок действия [Бочаров, Крючков 1990]. Вещество, попадая в организм животного, замедляет синтез протромбина в печени. Снижение свертываемости крови и повреждение стенок кровеносных сосудов приводит к гибели грызуна. Данное средство может использоваться в борьбе с крысами и мышами как внутри, так и вне помещений [Вашков и др. 1974; Геворкян 2014.6; Гигиенические нормативы содержания пестицидов... 2010; Государственный каталог пестицидов и агрохимика-тов... 2013; Методические указания по измерению концентраций бромадиолона... 2006].

Образец № 2

Средство родентицидное № 2 представляет собой мелкодисперсный порошок, окрашенный в синий цвет. ДВ — дифа-цинон (дифенацин) (0,5%). В качестве функциональных добавок используются окситетрациклина гидрохлорид (0,25%), краситель метиленовый синий (0,4%), полиэтиленгликоль (7,5%), битрекс (горечь; 0,01%), тальк (до 100%). Средство предназначено для приготовления отравленных приманок, родентицидных покрытий, тампонирования нор с целью борьбы с серыми и черными крысами, мышами, полевками и другими грызунами [Шутова и др. 1986; Геворкян 2014.в].

Дифенацин (ратиндан) — кристаллический порошок голубоватого цвета, не растворимый в воде. Обладает подобным с зоокумарином действием, но несколько сильнее. Состоит из 0,5%-ной смеси дифенацина (2-дифенилацетил-1,3-индадиона) с наполнителем (крахмал) в соотношении 1:199. Препарат используют для приготовления пищевых и водных приманок, а также для опиливания нор.

Пригоден для уничтожения всех видов грызунов, но наиболее чувствительны к нему серые крысы. При постепенном скармливании они погибают от суммарной дозы 2 мг на 1 кг веса. Смертельная доза для кошек 5 мг на 1 кг веса. У поросят ратиндан в разовой дозе 20 мг на 1 кг веса клинических изменений не вызывал.

Препарат смешивают с приманками в 1%-ной концентрации. Отравленные приманки раскладывают 3-5 дней подряд. Гибель крыс наступает через 5—8 дней. Жидкие приманки готовят путем опыливания воды из расчета 3 г на 100 кв см поверхности. При опылении нор расход яда — 3—5 г на нору. Широко применяется масляный 1%-ный раствор дифенацина.

Для приготовленыя приманок используют сухое зерно. К 1 кг зерна добавляют 20 г масляного раствора препарата.

Противоядием при отравлении дифенацином, является витамин К (викасол). Большое количество витамина К содержат листья люцерны и гниющая рыбная мука, что необходимо учитывать при подборе приманки и проведении обработки [Вашков и др. 1974; Гигиенические нормативы содержания пестицидов... 2010; Государственный каталог пестицидов и агрохи-микатов... 2013; Шутова 1990].

Образец № 3

Средство родентицидное № 3 представляет собой готовую к применению гранулированную приманку синего цвета. В состав средства в качестве действующего вещества входит антикоагулянт второго поколения флокумафен — 0,005%, пищевая основа в виде зерна, сахар — 4,0%, краситель бриллиантовый синий — 0,095%, битрекс — 0,005%, лимонная кислота — 0,5%, ортофенилфенол — 0,05%, диоксид кремния — 0,0507%, хлорид натрия — 0,368%, пропиленгликоль — 2,0%, пшеничная мука — 28,0%.

Флокумафен — антикоагулянтный родентицид второго поколения непрямого действия, применяется для борьбы с вредными грызунами, невосприимчивыми к обычным антикоагулянтам. При попадании в организм флокумафен подавляет регенерацию витамина К1, в результате чего нарушается нормальный процесс образования факторов свертывания крови. Замедленное развитие симптомов отравления не вызывает боязни приманки у грызунов. Гибель от обширного (внутреннего и внешнего) кровотечения наступает в течение 3—10 дней. Действие достигается как в результате первого поедания флокумафена, так и в результате накопления в организме [Вашков и др. 1974].

Образец № 4

Средство родентицидное № 4 представляет собой готовую отравленную приманку в виде парафиновых брикетов. Действующим веществом средства является бродифакум — 0,005%.

Бродифакум — родентицид, относящийся к антикоагулянтам 2 поколения и являющийся производным 4-гидроксикумаринов. По внешнему виду бродифакум представляет собой белый порошок без запаха, плохо растворимый в воде, эфире, гексане, но растворимый в ацетоне, этаноле, метаноле и диметилсульфоксиде. Вещество малолетучее, устойчивое при хранении в обычных условиях. Бродифакум оказывает как одноразовое, так и кумулятивное воздействие на грызунов. Показана его высокая эффективность по отношению к синантропным грызунам (домовые мыши и серые крысы).

Основным органом-мишенью для бродифакума является печень. По механизму действия бродифакум относят к антикоагулянтам непрямого действия, которые опосредованно влияют на витамин К зависимые факторы свертываемости

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

крови, путем конкурентного ингибирования ферментных систем, ответственных за их карбоксилирование [Гигиенические нормативы содержания пестицидов... 2010; Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов... 2013; Яковлев, Бабич 2011].

Образец № 5

Средство родентицидное №5 — концентрат в виде жидкости красного цвета, действующее вещество (ДВ) бромадиолон 3-[3-[4-(4-бромфенил)фенил]-3-гидрокси-1-фенилпропил]-2-гидроксихромен-4-он (С30Н23ВЮ4) — 0,25% (образец № 1). Средство предназначено для приготовления отравленных приманок с целью борьбы с серыми и черными крысами, мышами, полевками, другими грызунами профессиональным контингентом в практике медицинской дератизации.

Для получения приманки с содержанием 0,005% ДВ 18 г средства тщательно перемешивается до полного распределения с 900 г овсяной крупы [Вашков и др. 1974; Яковлев, Бабич 2011].

Образец № 6

Средство родентицидное № 6 представляет собой порошкообразный концентрат синего цвета, предназначенный для приготовления и применения отравленных приманок для уничтожения крыс и мышей. Отравленную приманку для борьбы с грызунами (крысы, мыши) готовят путем смешивания родентицидного средства с доброкачественными пищевыми продуктами (очищенное зерно, крупа, гранулированный комбикорм и др.). Содержит в качестве действующего вещества (ДВ) зо-окумарин (варфарин) в количестве 3%, а также антиоксидант, краситель, масло растительное, аттрактант, битрекс (горький компонент), предохраняющий приманки от поедания домашними животными, и наполнитель до 100%. Зоокумарин — это смесь яда (Ci9Hi6O4) с наполнителем (крахмалом или талькомагнезитом), представляющая собой белый порошок, без запаха, в воде не растворяющийся. Готовый препарат выпускается в виде 1%-ной смеси (соотношение яда к наполнителю 1:99). Действующим началом зоокумарина является яд (3-альфа-фенил-бета-ацетил-этил-4-оксикумарин) принадлежащий к группе антикоагулянтов и обладающий кумулятивными свойствами. Зоокумарин — медленно действующий яд и при однократном введении в организм сравнительно малотоксичен. Летальная однократная доза для крыс 12—16 мг, при многократном же введении суммарная летальная доза в 30-50 раз меньшая, чем однократная летальная доза. Для серой крысы доза 0,25 мг не смертельна, после 3-5 кратного поедания зоокумарина в такой дозе крысы погибаю в течение 3—15 сут.

Сельскохозяйственные животные и птицы проявляют различную чувствительность к зоокумарину. Наиболее устойчивы к этому яду куры, овцы и крупный рогатый скот. Для кур многократные дозы чистого яда 200—300 мг или однократная 1—2 г — несмертельны. Для телят многократная доза 60—100 мг также не смертельна.

Свиньи более чувствительны к зоокумарину, чем другие домашние животные. Смертельная доза для свиней — 1—2 мг зоокумарина на 1 кг массы тела (как и для крыс). Поэтому при проведении дератизации этим ядом в свинарниках необходимо соблюдать строгие меры предосторожности, чтобы не допустить поедания свиньями зоокумариновых приманок.

Зоокумарин применяют в пищевых и водных приманках, а также путем опыливания.

Приманки готовят из доброкачественных пищевых продуктов, хлебных крошек, различных каш, муки, комбикормов, мясного и рыбного фарша и т.д. и применяют влажными или сухими. К приманочному продукту добавляют 2% зоокумарина и все тщательно перемешивают. Для лучшей поедаемости грызунами отравленных приманок к ним рекомендуется добавлять для запаха растительное масло, молоко или свежий обрат.

Влажные приманки раскладывают в течение 4—5 дней подряд порциями по 100—500 г в места, недоступные для животных, под пол, за лари, в кормовые проходы

Сухие приманки (мука, комбикорм) можно раскладывать всего 2 раза с интервалом в 5 дней.

Для приготовления водных приманок зоокумарин распыляют из марлевого мешочка на поверхность воды, молока или обрата, налитых в посуду с низкими бортиками (противень), их расчета 3 г зоокумарина на 100 кв см поверхности. Водные приманки применяют в течение 4-5 суток подряд.

Для опыления нор используют зоокумарин, содержащий 1% яда.

За сутки до опыления все норы присыпают землей или замазывают глиной для установления наличия грызунов. Вскрытые грызунами норы опыливают 1 раз в сутки 4—7 дней подряд. На каждую нору расходуют 5—7 г препарата. Норы опыливают при помощи распылителя или резиновой груши, или непосредственно из марлевого мешочка.

Зоокумарин можно применять путем комбинирования различных. методов (пищевых, водных приманок и опыливания), используя дератизационную кормушку-ящик НТ. У боковых стенок или по углам ящика укрепляют две поилки для водной приманки, поперек дна прикрепляют корытце, в которое закладывают пищевую приманку, и дно кормушки опыливают зоокумарином [Геворкян 2014.в; Гигиенические нормативы содержания пестицидов... 2010; Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов... 2013; Яковлев, Бабич 2011].

Образец № 7

Средство репеллентное образец №7 представляет собой целлюлозные шарики желтого цвета с углублением в центре, пропитанные лавандиновым маслом (2%). Средство предназначено для отпугивания грызунов в помещениях, населенных пунктах и природных стациях [Бочаров, Крючков 1990; Вашков и др.1974; Геворкян 2014.в; Яковлев, Бабич 2011].

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

Образец № 8

Родентицидное средство образец № 8 — гель темно-синего цвета. Альфа-нафтилтиомочевина — крысид (C10H7:NHCSNH2) нерастворимый в воде порошок сероватого цвета. Применяется для истребления крыс и домашних мышей в пищевых и жидких приманках, а также методом опыливания. К пищевым приманкам добавляют 1% крысида. Приманки раскладывают завернутыми в бумажные кулечки в норы грызунов и в другие места, недоступные для животных и птиц. Для большей эффективности дератизации крысид целесообразно применять после прикорма грызунов. Гибель их происходит в течение 12—72 часов после поедания приманок в результате отека легких и трахеи: а-нафтилтиокарбамид вызывает поражение легочных капилляров, прекращение дыхания с последующей остановкой сердечной деятельности. Вещество обладает выраженным избирательным действием в отношении грызунов.

Смертность крыс с прикормом при первичной обработке достигает 86%.

Смертельная доза препарата для взрослой серой крысы 4—6 мг, для домовой мыши — 0,5—0,7 мг. Для домашних животных токсичен при потреблении больших доз. Смертельная доза крысида для поросят 130—150 мг на 1 кг веса. Смерть наступает от отека легких.

Для опыливания поверхности жидкости (воды, молока, бульона) расходуют 0,3—0,5 г крысида на 100 кв см. Хорошие результаты жидкие приманки дают в летнее жаркое время в местах, где отсутствует вода. При опыливании на каждую нору расходуют 2 г крысида. Крысы быстро распознают яд по вкусу, поэтому повторно его следует применять через 2 недели [Вашков и др. 1974; Геворкян 2014.6, в; Яковлев, Бабич 2011].

Образец № 9

Средство родентицидное образец № 10 представляет собой мягкий брикет на основе бродифакума (0,005%) в индивидуальной бумажной упаковке. В состав брикета входят мука пшеницы, растительное масло и животный жир. Эффективен против всех видов крыс и мышей, гибель которых наступает через 6-8 дней после однократного поедания.

Применяют для уничтожения крыс и мышей в животноводческих и жилых помещениях, складах, а также во всех местах распространения грызунов [Яковлев, Бабич 2011].

3.5. Механические средства борьбы с мышевидными грызунами,

использованные в исследованиях

Исследования проводились по методикам, изложенным в руководстве Р 4.2.2643-10 «Методы лабораторных исследований и испытаний дезинфекционных средств для оценки их эффективности и безопасности» (2011). Результаты оценивали в соответствии с критериями, изложенными в сборнике «Нормативные показатели безопасности и эффективности дезинфекционных средств, подлежащие контролю при проведении обязательной сертификации» № 01-12/75-97. Схема организации экспериментальных исследований по оценке эффективности механических средств борьбы с мышевидными грызунами, представлена в табл. 4.

Таблица 4

Схема организации эксперимента по оценке эффективности механических средств

борьбы с мышевидными грызунами

Назначение группы Количество животных в группе Родентицидное средство

Опытная группа 10 Образец №10 — клеевая ловушка

Опытная группа 10 Образец №11 — ультразвуковой отпугиватель

Опытная группа 10 Образец №12 — пружинный капкан

Опытная группа 10 Образец №13 — живоловка

Опытная группа 10 Образец №14 — верша

Образец № 11

Ультразвуковой отпугиватель крыс и мышей — прибор для бытового использования с широким диапазоном действия

[Амендола и др. 2007] (рис. 11А).

Образец № 12

Пружинные дуговые капканы [Вашков и др. 1974. 256 с.; Шутова 1999] (рис. 11Б).

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах Образец № 13

Живоловки [Вашков и др. 1974; Громов, Кузьмин 2005; Шутова 1999] промышленного производства, предназначенные для отлова грызунов живьем (рис. 11В).

А

• • •

•..

V '-www

> ....

\ v.V*

Рис. 11. Механические средства борьбы с мышевидными грызунами: А — современные бытовые ультразвуковые отпугиватели; Б — дуговой капкан, В — образцы живоловок промышленного производства

Образец № 14

Верша. Ловушка представляет собой каркасную конструкцию (существуют образцы различного устройства и различной ёмкости), со входным устройством, сходящимся на конус, чтобы зверёк, войдя в неё, не мог выбраться назад [Вашков и др. 1974; Широбокова, Громов 1975; Шутова 1999] (рис. 12)

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

3.6. Результаты собственных исследований химических средств борьбы с мышевидными грызунами

Действие отравленной приманки на грызунов мы определяли по упомянутым выше трём основным параметрам: по-едаемости приманки, количеству погибших особей и времени их гибели.

Образец № 1

Испытанное родентицидное средство оказалось эффективно как для домовых мышей, так и для серых крыс. Поедае-мость приманки для домовых мышей в среднем составила 13,06 ± 2,47%, для серых крыс — 22,57 ± 0,36%. Гибель мышей наступала на 4—8 сутки (в среднем 7,3 суток) и составила 100%. Гибель крыс наступала на 4—10 сутки (в среднем 7,6 суток) и составила также 100%. Гибель сопровождалась клиникой, характерной для отравления антикоагулянтами: потерей веса и геморрагией (кровоизлиянием) как внутренней, так и внешней (носовая и анальная) [Геворкян 2014.6, в].

Образец № 2

Отравленная приманка приготовлена из предварительно смоченной растительным маслом овсяной крупы (1,5% масла к массе крупы), смешанной со средством в соотношении 49:1 до достижения равномерной голубой окраски. Содержание ДВ в приманке 0,01%.

Дустовое покрытие 0,5 м нанесено на пол коридора по всей ширине, слоем 2—3 мм. Прогон каждого зверька осуществлялся в течение 5 дней дважды в сутки с интервалом в 5 часов. Последующие наблюдения проведены в течение 10 суток.

Средство оказалось эффективным как для домовых мышей, так и для серых крыс.

В первые дни опыта данную приманку мыши потребляли немного лучше, чем в конце. Гибель мышей наступила на 4—10-й день, и составила 80,0%. У крыс, наоборот, в первые дни приманка потреблялась чуть хуже, чем в последующие. Гибель крыс наступила на 5—11 день, и составила 100%. Доля отравленной приманки в суточном рационе мышей в среднем составила — 49,8 ± 0,20%, крыс- 27,5% ± 0,19.

Применение средства в качестве родентицидного покрытия показало 100%-ную эффективность для обоих видов в течение 4—8 суток для мышей и 5—11 суток для крыс [Геворкян 2014.в].

образец № 3

Результаты испытаний показали, что данное родентицидное средство эффективно как для домовых мышей, так и для серых крыс. Поедаемость приманки для домовых мышей в среднем составила 31,47 ± 3,75%, для серых крыс — 57,88 ± 4,17%. Это свидетельствует о высокой привлекательности средства для грызунов обоих видов. Следует отметить поедание средства животными на протяжении всего времени эксперимента до последнего дня гибели подопытных экземпляров, что говорит об отсутствии боязни приманки. Гибель мышей наступала на 3—8 сутки (в среднем 4,8 суток) и составила 100%, гибель крыс наступала на 3—8 сутки (в среднем 5,5 суток) и составила также 100%. Клиническая картина отравления подопытных грызунов проявлялась обильными кровотечениями из носовых отверстий, резко выраженной геморрагией десен, кровотечениями из анального отверстия; у мышей отмечалось также кровотечение из ушей. У крыс за 1—2 дня до гибели регистрировались сильная диарея и нарушения поведения — животные переставали реагировать на внешние раздражители и почти не двигались. У всех участвовавших в опыте животных фиксировалась потеря веса [Геворкян 2014.6].

Образец № 4

Данное родентицидное средство оказалось эффективно как для домовых мышей, так и для серых крыс. Поедаемость приманки для домовых мышей в среднем составила 22,63 ± 1,47%, для серых крыс — 26,88 ± 0,98%. Это свидетельствует о высокой привлекательности средства для грызунов обоих видов. Следует отметить поедание средства животными на протяжении всего времени эксперимента до последнего дня гибели подопытных экземпляров, что говорит об отсутствии боязни приманки. Гибель мышей наступала на 6—14 сутки (в среднем 9,5 суток) и составила 100%, гибель крыс наступала на 5—11 сутки (в среднем 7,2 суток) и составила также 100%. Клиническая картина отравления подопытных грызунов проявлялась обильными кровотечениями из носовых отверстий, резко выраженной геморрагией десен, кровотечениями из анального отверстия; у мышей отмечалось также кровотечение из ушей. У крыс за 1—2 дня до гибели регистрировались сильная диарея и нарушения поведения — животные переставали реагировать на внешние раздражители и почти не двигались. У всех участвовавших в опыте животных фиксировалась потеря веса [Геворкян 2014.в].

Образец № 5

Приманка на основе средства оказалось эффективной как для домовых мышей, так и для серых крыс.

Поедаемость приманки для домовых мышей в среднем составила 25,3 ± 0,10%, для серых крыс — 47,6 ± 0,24%. Гибель у мышей наступила на 4—10-е сутки (в среднем 7,6 суток) и составила 100%, а у крыс гибель наступила на 4— 14-е сутки (в среднем, 8,1 суток) и составила также 100%. Гибель сопровождалась клиникой, характерной для отравления антикоагулянтами [Геворкян 2014.6].

Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time vol. 12, issue 2 Man and Living Environment

Elektronische wissenschaftliche Auflage Almanach 'Raum und Zeit' Bd. 12., Ausgb. 2. Mensch und Lebensraum

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

Образец № 6

Приманка на основе средства оказалось эффективной как для домовых мышей, так и для серых крыс. Поедаемость приманки для домовых мышей в среднем составила 38%, для серых крыс — 27,3%. Гибель у мышей наступила на 4—10-е сутки (в среднем 7,5 суток) и составила 100%, а у крыс гибель наступила на 4—14-е сутки (в среднем, 8 суток) и составила также 100%. Гибель сопровождалась клиникой, характерной для отравления антикоагулянтами [Геворкян 2014.в].

Образец № 7

Оценку эффективности мы проводили с помощью КП (коэффициента повреждения). Среднее значение КП для крыс равно 1,43, среднее значение КП для мышей — 1,35. По результатам экспериментов видно, что средство не эффективно, так как КП больше единицы [Геворкян 2014.6].

Рис. 13. Опыты с образцом № 7. Фото автора. Подопытные крысы усердно поедают репеллентные шарики из целлюлозы, содержащие лавандиновое масло.

Образец № 8

Приманка на основе средства оказалось эффективной как для домовых мышей, так и для серых крыс.

Поедаемость приманки для домовых мышей в среднем составила 43,7%, для серых крыс — 25,9%. Гибель у мышей наступила на 4—10-е сутки (в среднем 6,1 суток) и составила 100%, а у крыс гибель наступила на 4—10-е сутки (в среднем, 6,5 суток) и составила также 100%. Гибель сопровождалась клиникой, характерной для отравления антикоагулянтами [Геворкян 2014.в].

Образец № 9

Приманка на основе средства оказалась эффективной как для домовых мышей, так и для серых крыс.

Поедаемость приманки для домовых мышей в среднем составила 44,8%, для серых крыс — 38%. Гибель у мышей наступила на 4—11-е сутки (в среднем 8,5 суток) и составила 100%, а у крыс гибель наступила на 4-е—10-е сутки (в среднем, 6,8 суток) и составила также 100%. Гибель сопровождалась клиникой, характерной для отравления антикоагулянтами [Геворкян 2014.6].

3.7. Результаты собственных исследований механических средств борьбы с мышевидными грызунами

Экспериментальные исследования эффективности использования механических средств борьбы с мышевидными грызунами позволили получить следующие данные.

Образец № 10

Поскольку клеевые ловушки приемлемы для отлова животных массой не более 100 г., исследования выполнялись на домовых мышах и крысах, масса тела которых не превышала это значение. Вылов грызунов фиксировали через 1—2 суток после начала опыта.

Исследования эффективности средства в отношении мышей позволили получить следующие данные. Испытания показали высокую эффективность средства. Мыши при попадании на обработанную поверхность прочно фиксировались и не могли освободиться до самой гибели. В опыте, где было 5 подложек на 10 особей, в ловушку попало 8 зверьков — по 2 особи на три подложки и еще по 1 особи на оставшиеся две, таким образом вылов грызунов (домовая мышь) составил 80%.

Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time vol. 12, issue 2 Man and Living Environment

Elektronische wissenschaftliche Auflage Almanach 'Raum und Zeit' Bd. 12., Ausgb. 2. Mensch und Lebensraum

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

В отношении крыс испытания показали низкую эффективность средства. Зверьки при попадании на обработанную поверхность фиксировались непрочно и могли освободиться. В опыте, где было 5 подложек на 10 особей, в ловушку попало 6 крыс — по 1 особи на четыре подложки и еще по 2 особи на последнюю, т.е. вылов грызунов (серая крыса) составил 60%.

<

Рис. 14. Мышь, попавшая в клеевую ловушку. Фото автора.

Образец № 11

Ультразвуковой отпугиватель.

Результаты испытаний показали полную неэффективность ультразвукового отпугивателя как в отношении крыс, так и в отношении мышей (табл. 11).

Таблица 11

Результаты исследования эффективности ультразвукового отпугивателя

Определяемые показатели Результаты исследований Норма [Методы лабораторных исследований и испытаний дезинфекционных средств... 2011; Нормативные показатели безопасности и эффективности... 1998]

Эффективность отпугивания грызунов,% 13,5% Не менее 60%

Радиус действия, м 0,9 Не менее 1 м

Образец № 12

Оценка эффективности пружинного дугового капкана проводилась в вольерах на группах крыс и мышей по 10 особей в каждой группе. В начале эксперимента незаряженные устройства помещались в вольеры для привыкания грызунов к ним. Затем устройства приводились в рабочее состояние и оценивались их эффективность по количеству срабатываний запорного или убивающего механизма при контакте с ним грызуна и количество грызунов, попавших в устройство.

р t ' 11k 1,1 iflloiiuV

v i'iii Mi

кем

Рис. 15. Мышь, попавшая в капкан. Фото автора.

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

В качестве приманки в капкан помещался кусочек черного хлеба, смоченный в нерафинированном подсолнечном масле. Результаты, представленные в табл. 12, показывают высокую эффективность работы данного механического устройства.

Таблица 12

Результаты исследования эффективности пружинного дугового капкана

Объект Количество попавших в капкан животных,%

Мыши 100%

Крысы 90%

Образец № 13

Оценка эффективности живоловки проводилась в вольерах на группах крыс и мышей по 10 особей в каждой группе. В качестве приманки в живоловку помещался кусочек черного хлеба, смоченный в нерафинированном подсолнечном масле. Далее устройство приводили в готовность и оценивали эффективность живоловки по количеству попавшихся в нее животных. Результаты, представленные в табл. 13, показывают высокую эффективность работы этого механического устройства.

Рис. 16. Мышь, попавшая в живоловку. Фото автора.

Таблица 13

Результаты исследования эффективности живоловки

Объект Количество попавших в живоловку животных,%

Мыши 100%

Крысы 100%

Образец № 14

Оценка эффективности ловушки типа «Верша» проводилась в вольерах на группах крыс и мышей по 10 особей в каждой группе. В качестве приманки в вершу помещался кусочек черного хлеба, смоченный в нерафинированном подсолнечном масле. Далее устройство ставили в вольер с грызунами и оценивали эффективность живоловки по количеству попавшихся в нее животных. Результаты, представленные в табл. 14, показывают высокую эффективность работы механического устройства.

Таблица 14

Результаты исследования эффективности ловушки типа «Верша»

Объект Количество попавших в вершу животных,%

Мыши 100%

Крысы 100%

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

Заключение

Результаты выполненных исследований позволяют сделать следующее заключение.

Наиболее эффективными средствами для борьбы с мышевидными грызунами являются средства на основе антикоагулянтов и механические ловушки.

Клеевые ловушки лучше всего использовать для вылова мышей. Крысам, как более сильным животным, удаётся оторваться (отклеиться) от ловушки.

Наихудшие результаты показали химический (на основе лавандинового масла) и ультразвуковой репелленты (отпу-гиватели). Химический репеллент на основе лавандинового масла в том виде, в котором был предоставлен для исследования, вместо отпугивания привлекал к себе животных. Вместо того, чтобы убежать, крысы, наоборот, активно грызли образец, так как он был изготовлен из целлюлозы. Бытовой ультразвуковой репеллент (отпугиватель) плох тем, что имеет очень широкий диапазон излучения. Крысы убегают только в том случае, если прибор настроен на частоту 22 кГц. Мыши же вообще не реагируют на действие этого прибора.

Для мышей и крыс наиболее привлекательными препаративными формами являются зерно, гранулы и мягкие брикеты. Большое количество флокумафена, поглощённого подопытными мышами и крысами, свидетельствует об особой привлекательности для грызунов используемой приманки, в качестве которой использовались зерновые гранулы (см. табл. 15).

Таблица 15

Средняя суточная доза яда, принятого на единицу массы животного

за время эксперимента; мг/кг-сут

Вид яда; Мыши Крысы

мг/кг-сут. Самки Самцы Самки Самцы

Бромадиолон 1 1,228 1,430 0,376 0,325

Дифенацин 5,308 5,400 0,325 0,142

Флокумафен 2,133 2,052 0,581 0,838

Бромадиолон 2 1,430 1,565 0,086 0,090

Примечание: Бромадиолон 1 — пищевая приманка на основе зерна; бромадиолон 2 — концентрат в виде жидкости.

Из-за более быстрого обмена веществ (и связанного с этим быстрого вывода из организма токсинов) мыши более устойчивы к антикоагулянтам, чем крысы. В среднем гибель мышей от антикоагулянтов наступала в течение 5—7 суток, а крыс — в течение 3—5 суток.

Эксперименты показали, что при прочих равных условиях самки крыс оказались более устойчивы к антикоагулянтам, чем самцы. Для гибели самок требуется больше яда, чем для самцов. В то же время, в отличие от крыс, у мышей самки оказались менее устойчивы к антикоагулянтам, чем мыши-самцы. Причина этого явления требует отдельного исследования.

Вместе с тем, самцы как крыс, так и мышей погибают раньше самок. Объясняется это тем, что самцы лучше поедают все предложенные им приманки, вследствие чего средняя суточная доза принятого яда у них оказывается больше, поэтому и смерть у самцов наступает раньше, чем у самок.

Борьба с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах должна вестись не время от времени, а регулярно и методично. Для успешной борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих предприятиях следует использовать комплекс родентицидных средств на основе антикоагулянтов совместно с механическими ловушками. В это связи, на основании выполненных исследований, рекомендуется использовать следующие сочетания: для домовой мыши — все средства на основе антикоагулянтов, клеевые ловушки и капканы; для крыс — все средства на основе антикоагулянтов, а из механических средств лучше использовать капканы и живоловки.

Для повышения эффективности борьбы с мышевидными грызунами внутри помещений в местах, недоступных для сельскохозяйственных животных, следует использовать такие препаративные формы, как парафиновые брикеты и мягкие брикеты. Протравленное зерно можно ставить только там, где сельскохозяйственные животные его заведомо не найдут — это чуланы, кладовки, складские помещения.

В непосредственной близости от сельскохозяйственных животных безопаснее размещать механические ловушки: клеевые липучки, капканы, живоловки и приманочные домики. Содержимое приманочного домика может быть разнообразным: пасты и гели, нанесенные на стенки; приманки различных препаративных форм и действующих веществ.

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

Выполненные исследования показали:

1. наиболее эффективными средствами для борьбы с мышевидными грызунами являются средства на основе антикоагулянтов (образцы №№ 1—6, 8, 9) и механические ловушки (образцы №№ 10, 12—14).

2. клеевые ловушки непригодны для отлова крыс в связи с относительно большой массой тела и могут использоваться только для отлова мышей.

3. как средства для дератизации наихудшие результаты, оцениваемые по поедаемости корма, выявлены для химического (на основе лавандинового масла) и ультразвукового репеллентов (отпугивателей) (образцы №№ 7, 11).

4. бытовой ультразвуковой репеллент совершенно не влияет на поведение мышей; индуцирует отпугивающий эффект у крыс только при частоте 22 кгц.

5. химический репеллент на основе лавандинового масла вместо отпугивания привлекал животных.

6. наиболее эффективными препаративными формами подачи химических дератизаторов для мышей и крыс оказались зерно, гранулы и мягкие брикеты.

7. мыши оказались более устойчивыми к антикоагулянтам, чем крысы. В среднем гибель мышей от антикоагулянтов наступала в течение 5—7 суток, а крыс — в течение 3—5 суток.

8. самцы крыс менее устойчивы к токсическому действию, в частности, флокумафена по сравнению с самками, судя по более их ранней смертности. Однако такие отличия могут быть обусловлены тем, что самцы лучше поедают все предложенные им приманки, вследствие чего средняя суточная доза принятого яда у них оказывается больше.

Данные результаты позволяют нам сформулировать следующие рекомендации производству:

1. Борьба с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах должна вестись не время от времени, а регулярно и методично.

2. Для успешной борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих предприятиях следует использовать комплекс родентицидных средств на основе антикоагулянтов совместно с механическими ловушками. В это связи, на основании выполненных исследований, рекомендуется использовать следующие сочетания.

а. Для борьбы с домовой мышью подходят все средства на основе антикоагулянтов, клеевые ловушки и капканы.

б. Для борьбы с крысами подходят также все средства на основе антикоагулянтов, в то время как из механических средств лучше использовать капканы и живоловки.

3. Для повышения эффективности борьбы с мышевидными грызунами внутри помещений в местах, недоступных для сельскохозяйственных животных, следует использовать такие препаративные формы, как парафиновые брикеты и мягкие брикеты. Протравленное зерно можно ставить только там, где сельскохозяйственные животные его заведомо не найдут — это чуланы, кладовки, складские помещения.

4. В непосредственной близости от сельскохозяйственных животных безопаснее размещать механические ловушки: клеевые липучки, капканы, живоловки и приманочные домики. Содержимое приманочного домика может быть разнообразным: пасты и гели нанесенные на стенки, приманки различных препаративных форм и действующих веществ.

ЛИТЕРАТУРА

1. Гигиенические нормативы содержания пестицидов в объектах окружающей среды (перечень). Гигиениче-

ские нормативы ГН 1.2.2701-10. М.: Госсанэпиднадзор, 2010 [Электронный ресурс] / / Электронная база нормативов Normacs.Ru. Режим доступа: http://www.normacs.ru/Doclist/ doc/VV4A.html.

2. Нормативные показатели безопасности и эффективности дезинфекционных средств, подлежащих кон-

тролю при проведении обязательной сертификации № 01-12/75-97. М.: Роспотребнадзор, 1998. 110 c.

3. Санитарно-эпидемиологические требования к проведению дератизации. СП 3.5.3. 1129-02 МЗ России. М.:

Минздрав России, 2002. 11 c.

4. Приложение 20.1 к Разделу 20 Главы II Единых санитарно-эпидемиологических и гигиенических требова-

ний к товарам, подлежащим санитарно-эпидемиологическому надзору (контролю). Нормативные показатели безопасности и эффективности дезинфекционных средств. 2013. 110 с. [Электронный ресурс] // Евразийская экономическая комиссия. Режим доступа: http://www.tsouz.ru/db/ techregulation / Documents / ПрилРазд20^£

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

5. Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Рос-

сийской Федерации. М.: Минсельхоз России, 2013 [Электронный ресурс] / / Электронная база Кон-сультантПлюс. Режим доступа: http://base.consultant.ru/cons/cgi/online.cgi?req=doc;base=EXP;n=556038.

6. Правила по охране труда работников дезинфекционного дела и по содержанию дезинфекционных стан-

ций, дезинфекционных отделов, отделов профилактической дезинфекции санитарно-эпидемиологических станций, отдельных дезинфекционных установок. Утв. Приказом МЗ СССР № 196379 от 9.02.1979 г. М.: Минздрав СССР, 1979. 16 с.

7. Методические рекомендации по оценке эффективности, токсичности и опасности родентицидов № 01-

19/127-17. М.: Госсанэпиднадзор, 1995. 96 с.

8. Методические рекомендации по полевой дератизации и дезинсекции в очагах чумы сусликового типа

Российской Федерации. Утв. зам. Пред. Госсанэпиднадзора РФ Г.Г. Онищенко 24 декабря 1995 г. Саратов: Госсанэпиднадзор, 1995. 92 с.

9. Методические указания по измерению концентраций бромадиолона в воздухе рабочей зоны и атмо-

сферном воздухе населенных мест методом высокоэффективной жидкостной хроматографии МУК 4.1.2074-06. М.: Роспотребнадзор, 2006. 13 с.

10. Методы лабораторных исследований и испытаний дезинфекционных средств для оценки их эффектив-

ности и безопасности. Р 4.2.2643-10. М.: Роспотребнадзор, 2011. 617 с.

11. Федеральный закон [проект] «О требованиях к безопасности дезинфекционных средств, процессов их

производства, испытания, хранения, перевозки, реализации, применения и утилизации» [Электронный ресурс] // Стерисепт. Режим доступа: http://sterisept.ru/artides/documents/40-federalnyjj-zakon-o-trebovaniyakh-k-bezopasnosti-dezinfekcionnykh-sredstv.pdf.

12. Амендола К., Дзакко Д., Кокоцца Д. Способ и устройство для дератизации при помощи ультразвукового

излучения. Патент на изобретение RUS 2440729 19.06.2007. М.: 2007.

13. Башенина Н.В. Руководство по содержанию и разведению в лабораторной практике мелких видов гры-

зунов. М., Изд. МГУ, 1975. 161 с.

14. Белиловский В.А., Бурда М.К., Гамалея Н.Ф. Чума в Одессе: санитарное, клиническое и эпидемиологиче-

ское исследование. Т. 2. Одесса: Тип. Акц. Южно-Рус. О-ва Печат. Дела, 1904. 264 с.

15. Белиловский В.А., Гамалея Н.Ф. Чума в Одессе: историческое и эпидемиологическое исследование. Т. 1.

Одесса: Тип. Акц. Юж.-Рус. О-ва Печат. дела, 1903. 173 с.

16. Белиловский В.А., Гамалея Н.Ф. Эпидемиология Одесской чумы 1902 г. // Чума в Одессе: Историческое

и эпидемиологическое исследование. Т. 1. Одесса: Тип. Акц. Южно-Рус. О-ва Печат. Дела, 1903. С. 131-172.

17. Бочаров Е.В., Крючков Т.П. Репеллентные методы защиты материалов от крыс / / Серая крыса. Сб. науч-

ных статей. М.: Наука, 1990. С. 390-395.

18. Васильев К.Г., Сегал Л.Е. История эпидемий в России (материалы и очерки). М.: Государственное изда-

тельство медицинской литературы, 1960, С. 214 — 344.

19. Вашков В.И., Вишняков С.В., Полежаев В.Г., Тощигин Ю.В., Туров И.С. Борьба с грызунами в городах и

населенных пунктах сельской местности. М.: Медицина, 1974. 256 с.

20. Геворкян И.С. Зоогигиена лабораторных животных / / Современные проблемы гуманитарных и есте-

ственных наук. Материалы XX Международной научно-практической конференции 2-3 октября 2014 г. М.: Спецкнига, 2014.а. С. 29 — 32.

21. Геворкян И.С. Исследование эффективности химических и механических средств борьбы с мышевидны-

ми грызунами / / Современные концепции научных исследований. IV Международная научно-практическая конференция. Москва, 25 июля 2014. Сборник научных работ. Ч. 3: Биологические науки. Ветеринарные науки. М.: Спецкнига, 2014.б. С. 54 — 56.

22. Геворкян И.С. Результаты исследования эффективности химических и механических средств борьбы с

мышевидными грызунами / / Современные проблемы гуманитарных и естественных наук. Материалы XVIII Международной научно-практической конференции 26 — 27 марта 2014 г. М.: Спецкнига, 2014.в. С. 53 — 57.

23. Громов Г.М., Кузьмин B.A. Ловушка для крыс / / Ветеринарная практика. 2005. № 2. С. 57 — 58.

24. Денисенко В.И. Биологические, гигиенические и методические аспекты профилактики и борьбы с гры-

зунами отряда мышиных / / Здоровье населения и среда обитания. 2008. № 2. С. 40—42.

25. Дератизация в населенных пунктах и на транспорте. Руководство. М.: НЧНОУ Институт пест-менедж-

мента, 2012. 154 с.

Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time vol. 12, issue 2 Elektronische wissenschaftliche Auflage Almanach 'Raum und Zeit' Bd. 12., Ausgb. 2.

Man and Living Environment Mensch und Lebensraum

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

26. Заева Г.Н., Мальцева М.М., Березовский О.И., Шутова М.И., Рысина Т.З., Родионова Р.П. Риск вторичных

отравлений нецелевых видов при использовании дератизационных средств / / Дезинфекционное дело. 2004. № 3. С. 58-64.

27. Западнюк И.П., Западнюк В.И., Захария Е.А. Лабораторные животные. Разведение, содержание, исполь-

зование в эксперименте. Киев: Вища школа, 1974. 304 с.

28. Инструкция по борьбе с мышевидными грызунами. Саратов: Минздрав СССР, 1973. 32 с.

29. Кадиров А.Ф., Клементьева С.А., Зацепин В.Г. Дератизация — один из способов профилактики и ликви-

дации африканской чумы свиней / / Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. 2011. № 1. С. 124 — 138.

30. Калинин А.А., Шутова М.И. Разработка оптимальных концентраций ратицидов и пищевой приманки

для борьбы с черными крысами // Основные направления дезинфекционного дела. Сб. научных статей. М.: Наука, 1987. С. 99 — 102.

31. Камуз Ю.П. Пособие по охране труда и технике безопасности при проведении дезинфекционных меро-

приятий. М.: Изд-во «Росагросервис», 1993. 128 с.

32. Каршин С.П., Бинатова В.В., Веревкина М.Н. Эпизоотология лептоспироза в Ставропольском крае / / Ве-

теринария. 2010. № 7. С. 31—33.

33. Марченко А.Н., Шабалина Е.В. О проведении сплошной дератизации в Тюменской области / / Дезин-

фекционное дело. 2008. № 3. С. 73 — 74.

34. Матросов А.Н., Тарасов М.А., Кузнецов А.А., Шилов М.М., Яковлев С.А., Толоконникова С.И., Попов Н.В.,

Кутырев В.В. Защитная дератизация окрестностей населённых пунктов в природных очагах зооно-зов на территории России / / Дезинфекционное дело. 2005. № 3. С. 48 — 50.

35. Мешкова Н.Н., Котенкова Е.В., Лялюхина С.И. Поведение домовой (Mus musculus) и курганчиковой (Mus

bortulanus) мышей при освоении нового пространства / / Зоологический журнал. 1986. Т. 65. № 1. С. 123 — 133.

36. Мешкова Н.Н., Шутова М.И. Особенности психической деятельности серой крысы // Новые материалы

по биологии серой крысы. Сб. научных статей. М.: Изд-во АН СССР, 1990. С. 11 —87.

37. Петрухин И.В., Петрухин Н.И. Кормление домашних и декоративных животных. М.: Нива России,

1992. 336 с.

38. Покровский А.В., Большаков В.Н. Экспериментальная экология полевок М.: Наука, 1979. 148 с.

39. Полежаев В.Г. Фосфид цинка как препарат, отпугивающий грызунов // Тр. Центрального научно-

исследовательского дезинфекционного ин-та. 1961. Вып. 14. С. 275 — 278.

40. Попков А.Ф., Немченко Л.С., Окунев Л.П., Чипанин Е.В., Борисов С.А., Марамович А.С., Гусев А.П. К ре-

зультатам контроля численности синантропных грызунов в населённых пунктах Восточной Сибири // Бюллетень Восточно-Сибирского научного центра СО РАМН. 2007. № 3 (55). С. 147 — 150.

41. Ракитин И.А., Мельцер А.В., Башкетова Н.С. Опыт проведения в Санкт-Петербурге сплошной внеплано-

вой дератизации // Дезинфекционное дело. 2007. № 3. С. 44—45.

42. Рокицкий П.Ф. Основы вариационной статистики для биологов. Минск: Изд-во Белорусского государ-

ственного университета, 1961. 224 с.

43. Рыльников В.А. Борьба с серыми крысами в агроценозах Южной зоны России / / Дезинфекционное дело.

2006.а. № 4. С. 41—45.

44. Рыльников В.А. Контейнер для раскладки отравленных приманок против грызунов. Патент на изобрете-

ние RUS 2104641. М., 1998.

45. Рыльников В.А. Методы и средства при проведении истребительных мероприятий против серых крыс / /

Дезинфекционное дело. 2006.б. № 3. С. 53 — 63.

46. Санитарно-эпидемиологическая деятельность в период Гражданской войны 1917-1922 годов [Электрон-

ный ресурс] / / Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека. Режим доступа: http://rospotrebnadzor.ru/region/history/gragdanskaya.php.

47. Семёнов А.Ю., Рудь Н.А. Эпизоотологический мониторинг лептоспироза человека и животных в Крас-

нодарском крае / / Ветеринария Кубани. 2010. № 5. С. 4 — 6.

48. Симецкий М.А., Траханов Д.Ф., Чупахин В.И., Кадиров А.Ф., Кузнецова Н.П. Средство для борьбы с мы-

шевидными грызунами «Пеноцин». Патент на изобретение RUS 2005376. М., 1994.

49. Супотницкий М.В., Супотницкая Н.С. Очерки истории чумы: В 2 т. М.: Вузовская книга, 2006. 1164 с.

50. Тимошков В.В., Маненкова Г.М., Родина Л.В., Румянцева Л.Н. О блохах серой крысы в Москве / / Дезин-

фекционное дело. 2004. № 3. С. 54 — 57.

Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time vol. 12, issue 2 Man and Living Environment

Elektronische wissenschaftliche Auflage Almanach 'Raum und Zeit' Bd. 12., Ausgb. 2. Mensch und Lebensraum

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

51. Тощигин Ю.В. История дератизации: человек против крысы [Электронный ресурс] / / Мир животных.

Режим доступа: http://www.zooeco.com/krim-vse-inf-18-1.html.

52. Тощигин Ю.В. История развития контроля численности крыс / / Новые материалы по биологии серой

крысы / Под ред. акад. В.Е. Соколова и д.б.н. Е.В. Карасевой. М.: Наука, 1990. С. 145 — 153.

53. Тощигин Ю.В. К вопросу о статусе дезинфекционного дела / / РЭТ инфо. 2005.-№ 1(53). С. 40—44.

54. Траханов Д.Ф. Борьба с грызунами на животноводческих фермах. М.: Колос, 1967. 56 с.

55. Траханов Д.Ф. Дератизация в объектах животноводства СССР. Автореф. дисс.... д. ветеринар. н. М: ВНИИ

ветеринарной санитарии. 1973. 34 с.

56. Урбах В.Ю. Биометрические методы. М.: Наука, 1964. 415 с.

57. Хляп Л.А., Маликова А.Ш. Оценка численности и распределения домовой мыши в помещениях методом

следовых площадок / / Синантропия грызунов и ограничение их численности. Сб. научных статей. М.: РАН, 1992. С. 256 — 264.

58. Цыганова С.В. Дезинфекция, дезинсекция, дератизация на птицефабриках промышленного типа. М.:

Аквариум-Принт, 2012. 273 с.

59. Широбокова М.М., Громов Г.М. Применение верши-крысоловки для отлова крыс / / Сборник трудов Ле-

нинградского государственного ветеринарного института. 1975. Вып. 40. С. 171 — 174.

60. Шутова М.И. О мышах и крысах. М.: Эребус, 1999. 176 с.

61. Шутова М.И. Питание / / Серая крыса. Систематика, экология, регуляция численности. Сб. научных ста-

тей. М.: Наука: 1990. С. 144 — 161.

62. Шутова М.И., Калинин А.А., Жабина Е.В. Влияние концентрации дифенацина на поедаемость пищевой

приманки крысами // Вопросы дезинфекции и стерилизации. Сб. научных статей. М.: Наука, 1986. С. 157—161.

63. Яковлев А.А., Бабич Н.В. Родентициды. Классификация, происхождение, особенности применения. СПб:

ВНИИ защиты растений, 2011. 63 с.

64. Catanach I.J. "The 'Globalization' of Disease? India and the Plague." Journal of World History 12.1 (2001): 131 — 154.

65. Collares-Pereira M., Korver H., Terpstra W.J., Santos-Reis M., Ramalhinho M.G., Mathias M.L., Oom M.M., Fons

R., Libois R., Petrucci- Fonseca F. "First Epidemiological Data on Pathogenic Leptospires Isolated on the Azorean Islands." European Journal of Epidemiology 13.4 (1997): 435—441.

66. Collares-Pereira M., Mathias M.L., Santos-Reis M., Ramalhinho M.G., Duarte-Rodrigues P. "Rodents and Leptospi-

ra Transmission Risk in Terceira Island (Azores)." European Journal of Epidemiology 16.12 (2000): 1151 — 1157.

67. Glass G.E., Johnson J.S., Hodenbach G.A., Disalvo C.L., Peters C.J., Childs J.E., Mills J.N. "Experimental Evalua-

tion of Rodent Exclusion Methods to Reduce Hantavirus Transmission to Humans in Rural Housing." The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene 56.4 (1997): 359 — 364.

68. Heiberg A.-C. "Anticoagulant Resistance: A Relevant Issue in Sewer Rat (Rattus norvegicus) Control?." Pest

Management Science 65.4 (2009): 444—449.

69. Marriott E. "Return of the Black Death." Geographical Magazine 74.9 2002: 42 — 45.

70. Meerburg B.G., Singleton G.R., Kijlstra A. "Rodent-Borne Diseases and Their Risks for Public Health." Critical Re-

views in Microbiology 35.3 (2009): 221 — 70.

71. "Mouse Stirs Up Breast Cancer Fears." Nature 12 July 2004. Web. <http://www.nature.com/news/2004/040712

/ full/ news040712-2.html>.

72. Panagiotakopulu E. "Pharaonic Egypt and the Origins of Plague." Journal of Biogeography 31.2 (2004): 269 — 275.

73. Parshad V.R. "Rodent Control in India." Integrated Pest Management Reviews 4.2 (1999): 97—126.

74. Tollenaere C., Duplantier J.-M., Brouat C., Rahalison L., Ranjalahy M. "AFLP Genome Scan in the Black Rat (Rat-

tus rattus) from Madagascar: Detecting Genetic Markers Undergoing Plague-Mediated Selection." Molecular Ecology 20.5 (2011): 1026 — 1038.

75. Van Dyck S. "Ratbags of the Rafters." Nature Australia 25.6 (1996): 22 — 23.

Цитирование по ГОСТ Р 7.0.11—2011:

Геворкян, И. С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих фермах [Электронный ресурс] / И.С. Геворкян // Электронное научное издание Альманах Пространство и Время. — 2016. — Т. 12. — Вып. 2. — Стационарный сетевой адрес: 2227-9490e-aprovr_e-ast12-2.2016.72.

Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time vol. 12, issue 2 Elektronische wissenschaftliche Auflage Almanach 'Raum und Zeit' Bd. 12., Ausgb. 2.

Man and Living Environment Mensch und Lebensraum

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

ON EFFECTIVENESS OF MOUSE-LIKE RODENT CONTROL METHODS IN LIVESTOCK BREEDING COMPLEXES

Irina S. Gevorkyan, M.Sc. (Biology), zooengineer, Junior Scientific Researcher at Scientific Research Institute for Disinfec-tology of Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Welfare, Moscow

ORCID ID https://orcid.org/0000-0001-9350-9372

E-mail: [email protected]; [email protected]

Mouse-like rodents cause huge damage to farming industry, increasing the risks of mechanical damage, epidemics and epizootics. In livestock breeding complexes, chemical deratting events are particularly difficult, since it is necessary to take into account the susceptibility of farm animals to poisons used in rodent control.

The subject matter of my study is effectiveness of modern chemical and mechanical methods of mouse-like rodent control. Aimed to selecting effective combinations of chemical and mechanical methods of disinfestation for use in the practice of struggle against rodents in livestock farms, I outlined history and practice of pest control, primarily in Russia, and carried out series of experiments on 230 rats Rattus norvegicus Berk. and 240 house mice Mus musculus L. followed by comparative analysis of the effectiveness of chemical and mechanical means of combating rodent control.

In my experiments, I used finished forms of rodenticides in the form of grain bait, granule, soft and paraffin pellets, capsules, wafers, tablets, pastes with active substances with a certain concentration. During the experiment, I performed a comparative analysis of poison bait palatability and feed alternative, defined death time for rodents and number of dead animals as a percentage of the total rodents numbers in the experiment.

The criteria for evaluating the effectiveness of finished forms were the following indicators:

(i) for acute-effect rodenticides: (a) death of mice and rats in the presence of an alternative feed — at least 80%; death time (24-hour period) — no more than 3%; (b) mice and rats' palatability of ready form of rodenticides or prepared standard poisoned bait in the presence of alternative food — not less than 10% of the daily ration;

(ii) for anticoagulants of 1st generation: (a) death of mice and rats in the presence of an alternative feed — 80%; time of death (24-hour period) — not more than 14%; (b) mice and rats' palatability of the ready form of rodenticides or prepared standard poisoned bait in the presence of alternative food (except bait for mice based on ethilphenacyn, zookumarin (d,l-3 alfa-acetonylbenzyl-4-oxycumarine), coumatetralyl) — not less than 15% of the daily ration; (c) mice's palatability of the ready forms of rodenticides or prepared standard poisoned bait on the basis on ethilphenacyn, zookumarin, coumatetralyl in the presence of alternative food — not less than 20% of the daily ration;

(iii) for anticoagulants of 2nd generation: (a) death of mice and rats in the presence of an alternative feed — not less than 90%; time of death (24-hour period) — not more than 10%; (b) mice and rats' palatability of the ready form of rodenticides or prepared standard poisoned bait in the presence of alternative food — not less than 15% of the daily ration.

For evaluating effectiveness of repellents I carried out followings. Experiment was performed in a cage divided into two halves by a partition with two openings. Rodent of the nest part of the cage strives through this or that hole to get into half, where food and water are. In the experiment, one of the holes was closed with filter paper screen treated by repellent solution, while the other hole was blinded by untreated screen. I assessed repellent efficacy by 'damage factor' that was determined by ratio of number of damage done by rodent in repellent-treated screen to the number of those in untreated one.

The criterion for evaluating the mechanical device (traps, live-traps) was an efficient operation it is not less than 80% of cases, for adhesive mass it was possibility to hold at least 80% of animals weighing no more than 100 g.

I have shown that

(i) the most effective for rodents control are means based on anticoagulants (such as bromadiolone, diphenacyne, phloucumaphen, brodifacoum, a-naphthylthiourea), and the mechanical traps (adhesive, spring traps, live-traps, creellike traps);

(ii) adhesive traps are unfit for rat control due to relatively large rat body mass;

(iii) household ultrasonic insect repellent does not affect the behavior of mice; it induces deterrent effect in the rat only at a frequency of 22 kHz;

(iv) chemical repellant based lavandin oil attracted animals instead of driving them;

(v) grains, pellets and soft briquettes were most effective ready forms for chemical both mice and rats control;

(vi) mice were more resistant to anticoagulants than rats. The average mortality in mice by advancing anticoagulants was 5—7 days, while for rats it was 3—5 days;

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

(vii) male rats are less resistant to the toxic effects, particularly phloukumaphen, compared with females ones, according to their more early mortality. However, these differences may be due to the fact that male rats are better to eat all the bait offered to them, resulting in an average daily dose of poison is greater.

I conclude, to successfully rodent control in livestock enterprises it is better to use complex tools (anticoagulants-based ro-denticide in conjunction with the mechanical traps). To improve rodents control efficiency indoors in places inaccessible to farm animals, it is advisable to use such formulations as paraffin pellets and briquettes soft. Etched grain can be placed only where farm animal does not find it invariably, i.e. in storage rooms, pantries, warehouses. In the vicinity of farm animals, it is safer to place mechanical traps: adhesive stickum, traps, live-traps and 'bait houses'. Contents of 'bait houses' may be varied: pastes and gels deposited on the wall, the bait finished forms of different active ingredients.

Keywords: mouse-like rodents; gray rats; black rats; house mice; infectious diseases; rodent control; rodenticides; repellents; mechanic traps.

References:

1. Amendola K., Jacco D., Cocozza D. Method and Device for Rodent Control by the Means of Ultrasonic Radiation. Pa-

tent RUS 2440729, 19 June 2007. Moscow, 2007. (In Russian).

2. Bashenina N.V. A Guide to Keeping and Breeding in Laboratory Practice Small Rodent Species. Moscow: Moscow State

University Publisher, 1975. 161 p. (In Russian).

3. Belilovsky V.A., Burda M.K., Gamaleya N.F. Plague in Odessa: Sanitary, Clinical and Epidemiological Research.

Odessa, 1904, volume 2. 264 p. (In Russian).

4. Belilovsky V.A., Gamaleya N.F. "Epidemiology of Odessa Plague 1902." Plague in Odessa: Historical and Epidemio-

logical Research. Odessa, 1903, volume 1, pp. 131 — 172. (In Russian).

5. Belilovsky V.A., Gamaleya N.F. Plague in Odessa: Historical and Epidemiological Research. Odessa, 1903, volume 1,

1903. 173 p. (In Russian).

6. Bocharov E.V., Kryuchkov T.P. "Repellent Methods to Protect Materials from Rats." Grey Rat. Moscow: Nauka

Publisher, 1990, pp. 390 — 395. (In Russian).

7. Catanach I.J. "The 'Globalization' of Disease? India and the Plague." Journal of World History 12.1 (2001): 131 — 154.

8. Collares-Pereira M., Korver H., Terpstra W.J., Santos-Reis M., Ramalhinho M.G., Mathias M.L., Oom M.M., Fons

R., Libois R., Petrucci- Fonseca F. "First Epidemiological Data on Pathogenic Leptospires Isolated on the Azorean Islands." European Journal of Epidemiology 13.4 (1997): 435—441.

9. Collares-Pereira M., Mathias M.L., Santos-Reis M., Ramalhinho M.G., Duarte-Rodrigues P. "Rodents and Leptospira

Transmission Risk in Terceira Island (Azores)." European Journal of Epidemiology 16.12 (2000): 1151 — 1157.

10. Denisenko V. I. "Biological, Hygienic and Methodological Aspects of Mouse Squad Rodents Prevention and Con-

trol." Public Health and Environment 2 (2008): 40—42. (In Russian).

11. "Draft Federal Law 'On Requirements for Safety of Disinfectants, Processes of Their Production, Testing, Stor-

age, Transportation, Sale, Usage and Disposal'." Sterisept. Sterisept Co., n.d. Web. <http://sterisept.ru/ articles / documents / 40-federalnyjj-zakon-o-trebovaniyakh-k-bezopasnosti-dezinfekcionnykh-sredstv.pdf>. (In Russian).

12. Eurasian Economic Commission. "Appendix 20.1 for Section 20 of Chapter II of the Unified Sanitary-Eidemiological

and Hygienic Requirements for Goods Subjected to Sanitary-Epidemiological Supervision (Control). Standard Indicators for Safety and Effectiveness of Disinfectants." Archive of Official Website of Eurasian Economic Commission. Eurasian Economic Commission, 2013. Web. <http://www.tsouz.ru/db/techregulation / Documents /%D0%9F%D1 %80%D0%B8%D0%BB%D0%A0%D0%B0%D0%B7%D0%B420.pdf>. (In Russian).

13. Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Welfare. "Sanitary Activities in the Pe-

riod of Civil War of 1917—1922." Official Website of the Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Welfare. The Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Welfare, n.d. Web. <http://rospotrebnadzor.ru/region/history/gragdanskaya.php>. (In Russian)

14. Gevorkyan I.S. "Research Results in Effectiveness of Chemical and Mechanical Means of Rodent Control." Mod-

ern Problems of Humanitarian and Natural Sciences. Proceedings of the 18th International Scientific and Practical Conference, March 26-27, 2014. Moscow: Spetskniga Publisher, 2014, pp. 53 — 57. (In Russian).

15. Gevorkyan I.S. "Study of Effectiveness of Chemical and Mechanical Means for Rodents Control." Modern Concept of

Scientific Research. Proceedings of 4th International Scientific and Practical Conference. Moscow, July 25, 2014. Part 3: Biological Sciences. Veterinary Science. Moscow: Spetskniga Publisher, 2014, pp. 54—56. (In Russian).

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

16. Gevorkyan I.S. "Zoohygiene of Laboratory Animals". Modern Problems of Humanitarian and Natural Sciences. Pro-

ceedings of 20th International Scientific and Practical Conference, October 2 — 3, 2014. Moscow: Spetskniga Publisher, 2014, pp. 29 — 32. (In Russian).

17. Glass G.E., Johnson J.S., Hodenbach G.A., Disalvo C.L., Peters C.J., Childs J.E., Mills J.N. "Experimental Evalua-

tion of Rodent Exclusion Methods to Reduce Hantavirus Transmission to Humans in Rural Housing." The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene 56.4 (1997): 359 — 364.

18. Gromov G.M., Kuzmin B.A. "Trap for Rats." Veterinary Practice 2 (2005): 57—58. (In Russian).

19. Heiberg A.-C. "Anticoagulant Resistance: A Relevant Issue in Sewer Rat (Rattus norvegicus) Control?." Pest

Management Science 65.4 (2009): 444—449.

20. Institute for Pest Management. Guide in Rodent Control in Human Settlements and Transport. Moscow: Institute for

Pest Management Publisher, 2012, 154 p. (In Russian).

21. Kadirov A.F., Klementieva S.A., Zatsepin V.G. "Deratization: One of the Ways of Prevention and Eradication of Af-

rican Swine Fever." Problems of Veterinary Sanitation, Hygiene and Ecology 1 (2011): 124 — 138. (In Russian).

22. Kalinin A.A., Shutova M.I. "Development of Raticides and Food Baits Optimal Concentrations for Black Rat Con-

trol." Main Directions of Disinfection Practive. Moscow: Nauka Publisher, 1987, pp. 99 — 102. (In Russian).

23. Kamuz Yu.P. Manual on Occupational Health and Safety when Carrying Out Disinfection Measures. Moscow:

Rosagroservis Publisher, 1993. 128 p. (In Russian).

24. Karshin S.P., Binatova V.V., Verevkina M.N. "Epizootiology of Leptospirosis in the Stavropol Region." Veterinary

Medicine 7 (2010): 31 — 33. (In Russian).

25. Khlyap L.A., Malikova A.Sh. "Estimation of House Mouse Population and Distribution ndoors by Trace Sites Meth-

od." Rodents Synanthropy and Control. Moscow: Russian Academy of Sciences Publisher, 1992, pp. 256—264. (In Russian).

26. Marchenko A.N., Shabalina E.V. "On Complete Deratization in the Tyumen Region." Disinfection Practice 3

(2008): 73 — 74. (In Russian).

27. Marriott E. "Return of the Black Death." Geographical Magazine 74.9 2002: 42 — 45.

28. Matrosov A.N., Tarasov M.A., Kuznetsov A.A., Shilov M.M., Yakovlev S.A., Tolokonnikova S.I., Popov N.V.,

Kutyrev V.V. "Protective Deratization of Human Settlements Surroundings in Natural Foci of Zoonotic Diseases on the Territory of Russia". Disinfection Practice 3 (2005): 48 — 50. (In Russian).

29. Meerburg B.G., Singleton G.R., Kijlstra A. "Rodent-Borne Diseases and Their Risks for Public Health." Critical Re-

views in Microbiology 35.3 (2009): 221 — 270.

30. Meshkova N.N., Kotenkova E.V., Lyalyukhina S.I. "Behavior of House (Mus musculus) and Mound-Building (Mus

bortulanus) Mice during New Space Development." Zoological Journal 65.1 (1986): 123 — 133. (In Russian).

31. Meshkova N.N., Shutova M.I. "Features of Mental Activity of Grey Rat". New Materials on Biology of Grey Rat.

Moscow: USSR Academy of Sciences Publisher, 1990, pp. 11—87. (In Russian).

32. Ministry of Health of Russia. SP 3.5.3. 1129-02: Sanitary and Epidemiological Requirements for Deratization. Moscow:

Ministry of Health of Russia Publisher, 2002. 11 p. (In Russian).

33. Ministry of Health of the USSR. Manual on Rodents Control. Saratov: USSR Ministry of Health Publisher, 1973. 32 p.

(In Russian).

34. Ministry of Health of the USSR. Occupational Safety Rules for Employees in Disinfection Works and for Maintenance of

Disinfection Stations, Disinfection Departments, Preventive Disinfection Divisions of Sanitary and Epidemiological Stations, and Special Disinfection Units. Moscow: USSR Ministry of Health Publisher, 1979. 16 p. (In Russian).

35. "Mouse Stirs Up Breast Cancer Fears." Nature 12 July 2004. Web. <http://www.nature.com/news/2004/040712

/full/news040712-2.html>.

36. Panagiotakopulu E. "Pharaonic Egypt and the Origins of Plague." Journal of Biogeography 31.2 (2004): 269 — 275.

37. Parshad V.R. "Rodent Control in India." Integrated Pest Management Reviews 4.2 (1999): 97—126.

38. Petrukhin I.V., Petrukhin N.I. Pets and Fancy Animals Nutrition. Moscow: Niva Rossii Publisher, 1992. 336 p. (In

Russian).

39. Pokrovsky A.V., Bolshakov V.N. Experimental Ecology of Voles. Moscow: Nauka Publisher, 1979, 148 p. (In Russian).

40. Polezhaev V.G. "Zinc Phosphide as a Rodent Repellent Substance." Transactions of Central Scientific and Research

Institute for Disinfection 14 (1961): 275 — 278. (In Russian).

41. Popkov A.F., Nemchenko L.S., Okunev L.P., Chipanin E.V., Borisov S.A., Maramovich A.S., Gusev A.P. "To-

wards Results of Monitoring Population of Synanthropic Rodents in Settlements of Eastern Siberia." Bulletin of East Siberian Scientific Center of the Siberian Branch of Russian Academy of Medical Sciences 3 (2007): 147—150. (In Russian).

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

42. Rakitin I.A., Meltser A.V., Bashketova N.S. "Experience of Complete Unscheduled Deratization in St. Peters-

burg." Disinfection Practice 3 (2007): 44—45. (In Russian).

43. Rokitsky P.F. Fundamentals of Variational Statistics for Biologists. Minsk: Belarusian State University Publisher,

1961. 224 p. (In Russian).

44. Rylnikov V.A. "Gray Rat Control in Agroecosystems of Southern Russia." Disinfection Practice 4 (2006): 41—45.

(In Russian).

45. Rylnikov V.A. "Methods and Tools Used for Grey Rat Direct Control." Disinfection Practice 3 (2006): 53 — 63. (In

Russian).

46. Rylnikov V.A. The Container to Lay Poisoned Baits Against Rodent. Patent RUS 2104641. Moscow, 1998. (In Russian).

47. Semenov A.Yu., Rud N.A. "Epizootological Monitoring of Leptospirosis in Human and Animal in the Krasnodar

Region." Veterinary Medicine in Kuban 5 (2010): 4 — 6. (In Russian).

48. Shirobokova M.M., Gromov G.M. "Using Creel-like Traps for Trapping Rats." Transactions of Leningrad State Vet-

erinary Institute 40 (1975): 171 — 174. (In Russian).

49. Shutova M.I. "Nutrition." Gray Rat. Systematics, Ecology, Control. Moscow: Nauka Publisher, 1990, pp. 144 — 161.

(In Russian).

50. Shutova M.I. About Mice and Rats. Moscow: Erebus Publisher, 1999. 176 p. (In Russian).

51. Shutova M.I., Kalinin A.A., Zhabina E.V. "Diphenacin Concentration Impact on Food Bait Palatability by Rats."

Problem of Disinfection and Sterilization. Moscow: Nauka Publisher, 1986, pp. 157 — 161. (In Russian).

52. Simetsky M.A., Trakhanov D.F., Chupakhin V.I., Kadirov A.F., Kuznetsova N.P. Penotsin: Substance for Rodent Control. Patent RUS 2005376. Moscow, 1994. (In Russian).

Sanitary & Epidemiological Surveillance Agency. 01-12/75-97 Safety and Efficacy Standard Indicators of Disinfectants Subjected to Control during the Mandatory Certification. Moscow: Rospotrebnadzor Publisher, 1998. 110 p. (In Russian).

Sanitary & Epidemiological Surveillance Agency. 01-19/127-17: Guidelines for Assessing efficacy, Toxicity and

Hazard of Rodenticides. Moscow: Gossanepidnadzor Publisher, 1995. 96 p. (In Russian). Sanitary & Epidemiological Surveillance Agency. Guidelines for Field Deratization and Disinsection in Gophers

Type Plague Foci in Russian Federation. Saratov: Gossanepidnadzor Publisher, 1995. 92 p. (In Russian). Sanitary & Epidemiological Surveillance Agency. "Hygienic Standards GN 1.2.2701-10: List of Hygienic Standards of Pesticides in Environment. Moscow: Gossanepidnadzor Publisher, 2010." Normative Database Nor-macs.ru. Nanosoft LLC, n.d. Web. <http://www.normacs.ru/Doclist/doc/VV4A.html>. (In Russian). Sanitary & Epidemiological Surveillance Agency. MUK 4.1.2074-06: Guidance for Measurement of Bromadio-lone Concentration in Working-Area Air and Atmospheric Air of Populated Areas Using High-Performance Liquid Chromatography. Moscow: Gossanepidnadzor Publisher, 2006. 13 p. (In Russian).

58. State Sanitary & Epidemiological Surveillance Agency. R 4.2.2643-10: Methods of Laboratory Research and Testing of Disinfectants for Assessing Their Efficacy and Safety. Moscow: Rospotrebnadzor Publisher, 2011. 617 p. (In Russian).

59. Supotnitsky M.V., Supotnitskaya N.S. Essays on the History of Plague. Moscow: Vuzovskaya kniga Publisher, 2006, volumes 1, 2. 1164 p. (In Russian).

60. "The State Catalogue of Pesticides and Agrochemicals Permitted for Use on the Territory of the Russian Federation. Moscow: Russian Ministry of Agriculture, 2013." Electronic Database ConsultantPlus. N.p., n.d. Web. <http://base.consultant.ru/cons/cgi/online.cgi?req=doc;base=EXP;n=556038>. (In Russian).

61. Timoshkov V.V., Manenkova G.M., Rodina L.V., Rumyantseva L.N. "On the Fleas in Gray Rat in Moscow." Disinfection Practice 3 (2004): 54 — 57. (In Russian).

62. Tollenaere C., Duplantier J.-M., Brouat C., Rahalison L., Ranjalahy M. "AFLP Genome Scan in the Black Rat (Rattus rattus) from Madagascar: Detecting Genetic Markers Undergoing Plague-Mediated Selection." Molecular Ecology 20.5 (2011): 1026 — 1038.

63. Toschigin Yu.V. "History of the Rats Numbers Control." New Materials on the Biology of the Gray Rat. Eds. V.E. Sokolov and E.V. Karaseva. Moscow: Nauka Publisher, 1990, pp. 145 — 153. (In Russian).

64. Toschigin Yu.V. "On the Matter of Status of Disinfection Practice." RAT info 1 2005: 40—44. (In Russian).

65. Toshchigin Yu.V. "History of the deratization: man against rats". Web. 4 September 2015 <http:// www.zooeco.com /krim-vse-inf-18-1.html>. (In Russian).

66. Trakhanov D.F. Deratization in Livestock Facilities in the USSR. Synopsis of Doctoral diss. Moscow, 1973. 34 p. (In Russian).

67. Trakhanov D.F. Rodent Control on Livestock Farms. Moscow: Kolos Publisher, 1967. 56 p. (In Russian).

53. State

54. State

55. State

56. State

57. State

Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time vol. 12, issue 2 Man and Living Environment

Elektronische wissenschaftliche Auflage Almanach 'Raum und Zeit' Bd. 12., Ausgb. 2. Mensch und Lebensraum

Геворкян И.С. Об эффективности методов борьбы с мышевидными грызунами на животноводческих комплексах

68. Tsyganova S.V. Disinfection, Disinsectization, Deratization in Industrial Type Poultry Farms. Moscow: Akvarium-

Print Publisher, 2012. 273 p. (In Russian).

69. Urbakh V.Yu. Biometric Methods. Moscow: Nauka Publisher, 1964. 415 p. (In Russian).

70. Van Dyck S. "Ratbags of the Rafters." Nature Australia 25.6 (1996): 22 — 23.

71. Vashkov V.I., Vishnyakov S.V., Polezhaev V.G., Toshchigin Yu.V., Turov I.S. Rodent Control in Cities and Towns in

Rural Areas. Moscow: Meditsina Publisher, 1974. 256 p. (In Russian).

72. Vasiliev K.G., Segal L.E. The History of Epidemics in Russia (Materials and Essays). Moscow: State Publishing House

of Medical Literature Publisher, 1960, pp. 214 — 344. (In Russian).

73. Yakovlev A.A., Babich N.V. Rodenticides. Classification, Origin, Application Features. St. Petersburg: Institute of Plant

Protection Publisher, 2011. 63 p. (In Russian).

74. Zaeva G.N., Maltseva M.M., Berezovsky O.I., Shutova M.I., Rysina T.Z., Rodionova R.P. "Risk of Secondary Poi-

soning with Non-Target Species when Using Deratization Means." Disinfection Practice 3 (2004): 58 — 64. (In Russian).

75. Zapadnyuk I.P., Zapadnyuk V.I., Zakhariya E.A. Laboratory Animals. Breeding, Keeping, Using in Experiment. Kiev:

Vishcha shkola Publisher, 1974. 304 p. (In Russian).

Cite MLA 7:

Gevorkyan, I. S. "On Effectiveness of Mouse-Like Rodent Control Methods in Livestock Breeding Complexes." Electronic Scientific Edition Almanac Space and Time 12.2 (2016). Web. <2227-9490e-aprovr_e-astl2-2.2016.72>. (In Russian).