Научная статья на тему 'О лечении экспериментального афлатоксикоза белых крыс'

О лечении экспериментального афлатоксикоза белых крыс Текст научной статьи по специальности «Ветеринарные науки»

CC BY
173
45
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЙ АФЛАТОКСИКОЗ / ЛЕЧЕНИЕ / ПРОБИОТИЧЕСКАЯ КУЛЬТУРА / БЕЛЫЕ КРЫСЫ / BIFIDUMBACTERIN BIFIDUM-2010 / EXPERIMENTAL AFLATOXICOSIS / TREATMENT / PROBIOTICAL CULTURE / WHIT RATS

Аннотация научной статьи по ветеринарным наукам, автор научной работы — Шамилова Т. А., Матросова Л. Е., Тремасова А. М.

Приведены результаты клинических, гематологических, биохимических, хроматографических исследований печени, а также данных состава кишечной микрофлоры при лечении экспериментального афлатоксикоза белых крыс с помощью культур Bifidumbacterin bifidum-2010.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

ABOUT TRITMENT OF EXPERIMENTAL AFLATOXICOSIS WHIT RATS

Results clinical, hematological, biochemical, hromatographic liver researches, and also data of structure of intestinal microflora are resulted at treatment experimental aflatoxicosis white rats by culture Bifidumbacterin bifidum-2010.

Текст научной работы на тему «О лечении экспериментального афлатоксикоза белых крыс»

сосуды непосредственно влияют на расположение клеток в раневом дефекте.

MORPHOLOGICAL CONTROL OF REPERATION PROCCESSES IN BONE TISSUE

Shakirova F.V., Timofeev S.V.

Summary

The completeness of bone tissue regeneration is connected with blood supply restoration in the forming regenerate. Newly formed vessels directly influence on the cell disposition in the wound .

УДК 619:615.3 + 619:615.9

О ЛЕЧЕНИИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО АФЛАТОКСИКОЗА

БЕЛЫХ КРЫС

Шамилова Т.А., Матросова Л.Е., Тремасова А.М.

ФГУ «Федеральный центр токсикологической и радиационной безопасности животных», г. Казань

Ключевые слова: экспериментальный афлатоксикоз, лечение, пробиотическая культура, Bifidumbacterin bifidum-2010, белые крысы.

Key words: experimental aflatoxicosis, treatment, probiotical culture, Bifidumbacterin bifidum-2010, whit rats.

В Российской Федерации и в целом мире значительная часть производимого зерна загрязнена микотоксинами, которые не только отрицательно влияют на организм животного, существенно снижая продуктивность и качество получаемой продукции, но и представляют серьезную опасность для человека (Л .У. Витлоу, У.М. Хеглер, 2002; В. А. Антипов, 2005; А. Гогин, 2005; И. Рябчик, 2009; С. Гулюшин и др., 2009).

В последние годы в связи с изменениями климата, ухудшением экологической обстановки на территории РТ увеличилась контаминация кормов токсигенными штаммами Aspergillus flavus, продуцирующими афлатоксин. Этим объясняется потенциальная и реальная угроза возникновения афлатоксикоза.

Для лечения и профилактики микотоксикозов в большинстве случаев используют различные сорбенты. В тоже время в литературе имеются сведения об эффективности пробиотических микроорганизмов при некоторых микотоксикозах (А.И. Нигматуллин, 2002; Н.В. Петрова, 2004).

В ФГУ «ФЦТРБ-ВНИВИ» из кишечника телят выделен и идентифицирован изолят Bifidumbacterin bifidum-2010, обладающий антагонистическими свойствами в отношении патогенных микроорганизмов: E. coli, Sal. typhimurium, St. aureus.

Целью наших исследований явилась оценка терапевтического эффекта Bifidumbacterin bifidum-2010 при экспериментальном афлатоксикозе белых крыс.

Материалы и методы исследований. Для определения лечебной эффективности пробиотической культуры Bifidumbacterin bifidum-2010 при экспериментальном афлатоксикозе было сформировано две группы крыс обоего пола, живой массой 180-200 г, по 20 в каждой. В течение 7 суток крысам обеих групп задавали корм искусственно контаминированный афлатоксином В1 в количестве 0,4±0,02 мг/кг. На 8-е сутки всех животных переводили на обычный рацион.

Крысам первой группы вводили внутрижелудочно культуру Bifidumbacterin bifidum-2010 в дозе 1 мл (1 млрд. микр. кл. в 1 мл), вторая группа служила контролем - в аналогичной дозе вводили физраствор.

Забор крови и анализ кишечной микрофлоры проводили на 7-й , 14-й и 21-й день эксперимента, в те же сроки проводили взвешивание животных.

Количество эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, лейкоцитарную формулу определяли по методике, описанной Кудрявцевым А.А. и соавт., 1974. Фагоцитарную активность нейтрофилов в периферической крови определяли по методике Кост и Стенко (1967).

Остаточное количество афлатоксина в печени определяли методом тонкослойной хроматографии (ТСХ), с подтверждением хроматомассспектрометрией.

Содержание в фекалиях бифидо- и молочнокислых бактерий и их количество определяли методом последовательных разведений в стерильном изотоническом растворе натрия хлорида с последующим посевом каждого разведения на специальные питательные среды согласно методики, описанной Г.И. Гончаровой (1970).

Полученные данные подвергались статистической обработке, с применением критерия достоверности по Стьюденту.

Результаты исследований. По результатам проведенных исследований установлено, что на 5-е сутки введения афлатоксина В1 у 30% животных как контрольной, так и опытной групп отмечалось угнетение, снижение пищевой возбудимости, тусклость и взъерошенность шерстного покрова, нарушение координации движения и функций желудочно-кишечного тракта, снижение массы тела.

В динамике эксперимента у крыс в опытной группе на 5-6 день введения препарата наблюдалось значительное улучшение показателей клинического статуса крыс: восстановилась пищевая возбудимость,

исчезали угнетение и взъерошенность шерстного покрова, нормализовались функции желудочно-кишечного тракта.

Средняя живая масса белых крыс, получавших Bifidumbacterm bifidum-2010 к 7-м суткам опыта была на 4,9% выше по сравнению с контрольной группой, так на 14 сут опыта увеличилась на 12,6%, на 21 сут - на 24,5% (Р<0,01) соответственно.

При определении гематологичеких показателей на фоне применения пробиотической культуры Bifidumbacterin ЫШит-2010 в опытной группе наблюдали увеличение общего количества эритроцитов на 7, 14 и 21-е сутки на 3,2; 9,5 и 15,3% (Р<0,05) при одновременном снижении общего количества лейкоцитов на 6,4; 14,3 и 20,1% (Р<0,01), соответственно. Что свидетельствует об уменьшении воспалительного процесса в организме.

На фоне применения пробиотической культуры Bifidumbacterin ЫШит-2010 у животных опытной группы достоверно увеличилось количество гемоглобина на 8,3; 10,8 и 23,9% (Р<0,01), соответственно.

В лейкограмме прослеживалось уменьшение количества нейтрофилов на 9,5; 15,4 и 23,1%, увеличение до нормы количества эозинофилов, что свидетельствует об уменьшении интоксикации и является благоприятным фактором при наличии воспалительных явлений в организме. Количество лейкоцитов значительно уменьшилось в опытной группе на 31,6; 58,3 и 64,1% (Р<0,001), что характеризует иммуностимулирующее и иммуномодулирующее действие бифидумбактерий.

Менее выраженные изменения произошли в контрольной группе. Число эозинофилов сохранилось на нижней границе нормы, сумма лейкоцитов достоверно выше, чем в опытной группе.

Содержание общего белка в сыворотке крови крыс опытной группы увеличилось на 7, 14 и 21 сутки на 9,1; 14,7 и 25,5% (Р<0,01), соответственно.

Фагоцитарная активность на 7-е сутки достоверной разницы не имела и находилась в пределах 33,1-34,7% (Р<0,01). К 14-м суткам в опытной группе данный показатель изменился с тенденцией к увеличению на 3,6%. При этом, он был достоверно выше, чем в контрольной и составил 42,7% (Р<0,001). Наибольшую фагоцитарную активность имела кровь крыс опытной группы на 21-е сутки и составила 51,8% (Р<0,001), в контрольной группе - 42,5% (Р<0,001).

При хроматографическом исследовании образцов печени подопытных животных установлена тенденция к снижению количества афлатоксина на 7 и 14 сут на 15,2 и 33,4% (Р<0,001), соответственно.

Проведенный анализ состава кишечной микрофлоры свидетельствовал о том, что после применения пробиотической культуры Bifidumbacterin ЫШит-2010 увеличивалось количество основных

представителей нормофлоры кишечника: бифидумбактерий - на 25,7% (Р<0,01), лактобактерий - на 21,3% (Р<0,01). В контрольной группе -количество лакто- и бифидобактерий было достоверно ниже, практически преобладала условно-патогенная микрофлора.

Результаты проведенных нами клинических, гематологических, биохимических, хроматографических исследований печени, а также данных состава кишечной микрофлоры, свидетельствуют о положительных тенденциях состояния организма после применения в качестве лечебного средства при афлатоксикозе культуры В1йёитЬас1епп Ыйёит-2010.

ЛИТЕРАТУРА: 1. Антипов, В.А. Микотоксикозы животных и птиц на Кубани / В. А. Антипов, В.Ф. Васильев, Т.Г. Кутищева // Материалы Международного симпозиума. - Часть I. - Казань. - 2005. - С. 42-47. 2.Витлоу, Л.У. Микотоксины в кормах / Л.У. Витлоу, У.М. Хеглер Мл.// Перепечатка из журнала ЕееёБШГГБ (Корма) от 10 июля 2002г. 3. Гулюшин, С. Микотоксикозы в современном птицеводстве / С. Гулюшин, Н. Садовникова, И.Рябчик // Комбикорма - № 5 - 2009. - С. 72-73. 4.Гогин, А. Микотоксины: эффективный контроль эффективное производство / А. Гогин // Комбикорма - № 2 - 2005 - С. 68. 5.Кудрявцев, А.А. Клиническая гематология животных / А.А Кудрявцев, Л. А. Кудрявцева // М.: Колос, 1974. - 399 с. б.Нигматуллин, А.И. Фармако-токсикологическое обоснование использования пробиотика «Энтероспорина» при микотоксической диарее телят / А.И. Нигматуллин // Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук. - Казань, 2002. - 119 с. 7.Петрова, Н.В. Фармако-токсикологическое и биологическое обоснование применения пробиотика энтероспорин при микотоксической диарее поросят: Автореф. Дисс. канд. биол. наук / Н.В. Петрова. - Казань, 2004. - 23с. 8.Рябчик, И. Профилактика хронических микотоксикозов / И. Рябчик // Птицеводство. - №4. - 2009. - С.45.

О ЛЕЧЕНИИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО АФЛАТОКСИКОЗА БЕЛЫХ КРЫС

Шамилова Т. А., Матросова Л.Е., Тремасова А.М.

Резюме

Приведены результаты клинических, гематологических, биохимических, хроматографических исследований печени, а также данных состава кишечной микрофлоры при лечении экспериментального афлатоксикоза белых крыс с помощью культур В1йёитЬас1егт Ыйёит-2010.

ABOUT TRITMENT OF EXPERIMENTAL AFLATOXICOSIS WHIT RATS

Shamilova T.A., Matrosova L.Ye.,Tremasova A.M.

Summary

Results clinical, hematological, biochemical, hromatographic liver researches, and also data of structure of intestinal microflora are resulted at treatment experimental aflatoxicosis white rats by culture Bifidumbacterin bifidum-2010.

УДК 619:615+617.7:636.32/.38

ЭФФЕКТИВНОСТЬ ЛЕЧЕНИЯ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО КОНЪЮНКТИВО-КЕРАТИТА ОВЕЦ ПРЕПАРАТОМ «АСТРА-16»

Шамилов Н.М., Шакуров М.Ш., Галимзянов И.Г.

Казанская государственная академия ветеринарной медицины

Ключевые слова: конъюнктиво-кератиты, Астра-16, овца.

Key words: conjunctivitis-keratitis, Astra-16, sheep.

Среди заболеваний глаз у животных наиболее часто встречаются конъюнктивиты, кератиты, конъюнктиво-кератиты, в большинстве случаев осложняемые помутнениями роговицы. В период болезни у коров снижается молочная продуктивность до 50%. Привесы молодняка снижаются на 30-40%, откорм его во время и после болезни становится нерентабельным.

Основными причинами возникновения и распространения глазных болезней являются факторы ослабляющие устойчивость организма; это тяжелые зимовки, неполноценное кормление, недостаток витаминов и микроэлементов, плохой уход и содержание животных, некоторые инфекционные и инвазионные болезни.

Несмотря на большое количество предложенных на сегодняшний день средств и методов лечения, они не полностью разрешают эту проблему. Поэтому изыскание новых препаратов, доступных для широкого применения, является крайне необходимым.

Материалы и методы исследований. Учитывая это обстоятельство, мы задались целью определить возможность использования препарата «Астра-16», синтезированного на кафедре высокомолекулярных и элементоорганических соединений Казанского государственного университета.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.