CC BY
22
тер. Междунар. науч. конф. / Казанская государственная академия ветеринарной медицины. — Казань, 2000. — 146 с.
3. Веремей Э.И., Олехнович И.В. Этиология отитов у мелких животных. Актуальные проблемы ветеринарной хирургии: матер. Междунар. науч.-практ. конф., посвящ. 70-летию кафедры хирургии. — Воронеж: Истоки, 1999. — С. 54-55.
4. Кашин A.B. Болезни органов чувств у животных и оказание им помощи // Животноводство. — 1994. — № 5. — С. 24-25.
5. Scott D.W., Miller W.H., Griffin C.E. Skin immune system and allergic skin diseases. In: Muller and Kirk's Small Animal Dermatology, 6th edn. Philadelphia, PA: W.B. Saunders, 2001: 574-601.
6. Angus J.C., Lichtensteiger C., Campbell K.L., Schaeffer D.J. Breed variations in his-topathologic features of chronic severe otitis externa in dogs: 80 cases (1995-2001) // J. Am. Vet. Med. Assoc. — 2002. — Vol. 221 (7). — P. 1000-1006.
7. Rosser E.J. Causes of otitis externa // Veterinay Clinics of North America: Small Animal Practice. — 2004. — Vol. 34. — P. 459-468.
References
1. Belov A.D., Danilov E.P., Dupur I.I. Bolezni sobak. — M.: Agropromizdat, 1999. — 368 s.
+
2. Belov M.V., Stekol'nikov A.A. Opera-tivno konservativnyy metod lecheniya otitov u sobak. Nezaraznye bolezni zhivotnykh: Materi-aly Mezhdunarodnoy nauchnoy konferentsii. Ka-zanskaya gosudarstvennaya akademiya veteri-narnoy meditsiny. — Kazan', 2000. — 146 s.
3. Veremey E.I., Olekhnovich I.V. Etiologiya otitov u melkikh zhivotnykh. Aktual'nye prob-lemy veterinarnoy khirurgii: Materialy mezhdunarodnoy nauchno prakticheskoy konferentsii, posvyashchennoy 70-letiyu kafedry khirurgii. — Voronezh: Istoki, 1999. — S. 54-55.
4. Kashin A.B. Bolezni organov chuvstv u zhivotnykh i okazanie im pomoshchi // Zhivotnovodstvo. — 1994. — № 5. — S. 24-25.
5. Scott D.W., Miller W.H., Griffin C.E. Skin immune system and allergic skin diseases. In: Muller and Kirk's Small Animal Dermatology, 6th edn. Philadelphia, PA: W.B. Saunders, 2001: 574-601.
6. Angus J.C., Lichtensteiger C., Campbell K.L., Schaeffer D.J. Breed variations in his-topathologic features of chronic severe otitis externa in dogs: 80 cases (1995-2001) // J. Am. Vet. Med. Assoc. — 2002. — Vol. 221 (7). — P. 1000-1006.
7. Rosser E.J. Causes of otitis externa // Veterinay Clinics of North America: Small Animal Practice. — 2004. — Vol. 34. — P. 459-468.
+
УДК 579.62:576.852.1:631.22
Е.А. Лискова, К.Н. Слинина Ye.A. Liskova, K.N. Slinina
НОВЫЙ ПОДХОД К ВЫДЕЛЕНИЮ МИКОБАКТЕРИЙ, НОКАРДИОФОРМНЫХ АКТИНОМИЦЕТОВ И КОРИНЕБАКТЕРИЙ
A NEW APPROACH TO ISOLATION OF MYCOBACTERIA, NOCARDIA-SHAPED ACTINOMYCETES AND CORYNEBACTERIA
Ключевые слова: микобактерии, нокар-диоформные актиномицеты, коринебактерии, деконтаминация, объекты животноводческих помещений, метод Гона-Левенштейна-Сумиоши, дезинфицирующее средство «Септустин».
Исследования объектов внешней среды на наличие в них микобактерий, нокардиоформных актиномицетов и коринебактерий важны для выяснения источника сенсибилизации сельскохозяйственных животных, обуславливающей положительные аллергические реакции на ППД-туберкулин. Большое значение имеет контроль над циркуляцией возбудителя туберкулёза во внешней среде, который необходим в животноводческих хозяйствах как при диагностических ис-
следованиях на туберкулёз, так и при оценке результатов дезинфекции на дворах, фермах и комплексах, неблагополучных по туберкулёзу. Предложен новый метод выделения микобактерий, нокардиоформных актиномицетов и коринебакте-рий из объектов животноводческих помещений, основанный на предпосевной обработке смывов с поверхностей помещений дезинфицирующим средством «Септустин» в оптимальной концентрации: предпосевная обработка проб смывов водным раствором септустина 1%-ной концентрации обеспечивает выделение культур микобактерий, а предпосевная обработка проб смывов водным раствором септустина 0,1%-ной концентрации — выделение нокардиоформных актиномицетов и коринебактерий.
Keywords: mycobacteria, nocardia-shaped acti-nomycetes, corynebacteria, decontamination, livestock facility objects, Lowenstein-Sumiyoshi method, Septustin disinfectant.
The studies of environmental objects for the presence of mycobacteria, nocardia-shaped actino-mycetes and corynebacteria are important to identify the source of sensitization of farm animals causing positive allergic reactions to PPD-tuberculin for mammals. The control over the circulation of tuberculosis pathogen is important both for diagnostic studies on tuberculosis and evaluation of disinfection
results in animal husbandry facilities with unfavorable tuberculosis background. We proposed a new method for isolation of mycobacteria, nocardia-shaped actinomycetes and corynebacteria from livestock facility objects based on pre-sowing treatment of samples from surfaces of buildings using Septustin disinfectant in optimum concentrations. Pre-treatment of the samples with an aqueous solution of Septustin in 1% concentration provides the isolation of cultures of mycobacteria, and pre-treatment of the samples with an aqueous solution of Septustin in concentration of 0.1% — the isolation of nocardia-shaped actinomycetes and corynebacteria.
Лискова Елена Афанасьевна, к.в.н, вед. н.с., Научно-исследовательский ветеринарный институт Нечернозёмной зоны Российской Федерации (ФГБНУ НИВИ НЗ России), г. Нижний Новгород. Тел.: (831) 434-56-36. E-mail: tuber50@mail.ru. Слинина Клавдия Николаевна, д.в.н., гл. н.с., Научно-исследовательский ветеринарный институт Нечернозёмной зоны Российской Федерации (ФГБНУ НИВИ НЗ России), г. Нижний Новгород. Тел.: (831) 434-56-36. E-mail: tuber50@mail.ru.
Liskova Yelena Afanasyevna, Cand. Vet. Sci., Leading Staff Scientist, Research Veterinary Institute of Non-Chernozem Zone of the Russian Federation, Nizhniy Novgorod. Ph.: (831) 434-56-36. E-mail: tu-ber50@mail.ru.
Slinina Klavdiya Nikolayevna, Dr. Vet. Sci., Chief Staff Scientist, Research Veterinary Institute of Non-Chernozem Zone of the Russian Federation, Nizhniy Novgorod. Ph.: (831) 434-56-36. E-mail: tu-ber50@mail.ru.
Ввиду несовершенства бактериологических методов исследования выделение микобакте-рий, нокардиоформных актиномицетов и ко-ринебактерий из объектов внешней среды сопряжено со значительными методическими трудностями. Пробы с объектов животноводческих помещений имеют высокую степень общей загрязненности механическими примесями и банальной микрофлорой, рост которой на богатых питательных средах затрудняет выделение данных микроорганизмов. Для подавления сопутствующей микрофлоры осуществляется предпосевная обработка биоматериала, основанная на устойчивости микобактерий к растворам кислот и щелочей [1, 2].
В настоящее время для предпосевной обработки проб с объектов внешней среды в практике микробиологических лабораторий используют метод Гона-Левенштейна-Сумиоши (растворы серной кислоты) или комплексный метод обработки серной кислотой и едким натром. Существующие методы крайне жёстки, при этом уничтожаются слабокислотоустойчивые микобактерии, нокар-диоформные актиномицеты и коринебакте-рии, а также частично снижается жизнеспособность патогенных микобактерий, что в конечном итоге снижает качество и эффективность бактериологической диагностики [3-6]. Это обуславливает необходимость разработки методов выделения микобакте-рий, нокардиоформных актиномицетов и ко-ринебактерий из объектов животноводческих помещений.
Цель исследований — разработать метод выделения микобактерий, нокардиоформных
актиномицетов и коринебактерий из объектов животноводческих помещений.
Материалы и методы
Разработка метода выделения микобактерий, нокардиоформных актиномицетов и ко-ринебактерий из объектов животноводческих помещений проведена в лаборатории инфекционных и инвазионных болезней сельскохозяйственных животных ФГБНУ «НИВИ НЗ России».
В работе использовали дезинфицирующее средство «Септустин» (изготовитель ООО «Уралстинол Био», Россия), обладающее широким спектром действия в отношении возбудителей инфекционных болезней бактериальной (включая туберкулёз), вирусной и грибковой этиологии [7].
Выделение микобактерий, нокардиоформ-ных актиномицетов и коринебактерий из объектов животноводческих помещений осуществлялось на основе предпосевной обработки септустином смывов с поверхностей объектов животноводческих помещений из хозяйств Нижегородской области.
Объектами исследования являлись поверхности стен, труб, поилок, кормушек, пола, навозных проходов. С поверхностей (1 м2) исследуемых объектов стерильным ватно-марлевым тампоном, увлажненным физиологическим раствором, отбирали по 5 проб-смывов, которые объединяли в одну пробу. Объединенная проба делилась на 3 части (образцов) по 5 мл суспензии. Первый образец подвергался деконтаминации традиционным методом Гона-Левенштейна-Сумиоши, второй — 0,1%-ным раствором септустина, третий — 1%-ным раствором септустина.
После обработки проводили посевы на среды Левенштейна-Йенсена и Финн-2 по 10 пробирок для каждой концентрации. Посевы инкубировали в термостате при 370С и просматривали в течение 90 дней на наличие роста колоний микобактерий.
На протяжении всего периода исследования по мере появления колоний готовили мазки с последующей окраской по Грамму и Цилю-Нильсену. Идентификацию выделенных культур проводили методом газожидкостной хроматографии (ГЖХ) на приборе Хромос ГХ 1000 [8].
В ходе исследования учитывали сроки появления роста, количество выделенных культур микобактерий, нокардиоформных акти-номицетов и коринебактерий.
Результаты и их обсуждение
Результаты исследований смывов с поверхностей объектов животноводческого помещения (стен, труб, кормушек, поилок, пола, навозных проходов) при разных методах предпосевной обработки представлены в таблице.
Данные таблицы свидетельствуют о наличии роста белых колоний без поверхностного мицелия на вторые сутки в посевах из проб смывов со стен и труб при деконтаминации материала 0,1%-ным раствором септустина. В мазках, окрашенных по Цилю-Нильсену, выявлялись некислотоустойчивые палочки, овальные с тёмно-вишнёвыми или тёмно-синими многочисленными гранулами (зёрнами волютина) внутри клетки. При окраске по Романовскому-Гимза вокруг клеток обнаруживалась розовая капсула. По отсутствию кислотоустойчивости и морфологическим признакам клетки культура отнесена к роду Сorynebacterium, что подтвердилось исследованием жирнокислотного спектра клеток методом газожидкостной хроматографии
(отсутствие эфиров жирных кислот туберку-лостеариновой кислоты, высших жирных кислот с числом атомов больше 20, значительное содержание олеиновой кислоты (С18:1), составляющая приблизительно 47-60% от массы кислот).
В посевах из смывов с кормушек при предпосевной обработке материала растворами септустина 0,1%-ной концентрации отмечен рост на 2-е сут. беловато-жёлтых колоний в виде крупных слизистых без поверхностного мицелия. В мазках при окраске по Цилю-Нильсену обнаруживались некислотоустойчивые микроорганизмы, полиморфные клетки — палочки и кокки, которые по результатам идентификации отнесены к роду Rhodococcus, что в последующем подтверждено хроматографическими исследованиями. На хроматограммах отмечены наличие туберкулостеариновой кислоты, выраженный пик пальмитолеиновой кислоты С16:1, низкомолекулярные эфиры жирных кислот с числом углеродных атомов от 12 до 20 и отсутствие высокомолекулярных миколовых кислот, характерных для микобактерий.
При деконтаминации смывов с труб 1%-ным раствором септустина на 8-е сут. выросли слизистые блестящие колонии жёлтого цвета. По результатам окраски по Цилю-Нильсену и по морфологическим признакам их идентифицировали как микобакте-рии, что подтверждено исследованием жирно-кислотного спектра клеток методом газожидкостной хроматографии. По хемотак-сономическим характеристикам (четко выражены пики кислот c 17 и 19 атомами углерода и ненасыщенных жирных кислот с числом атомов углерода больше 20, преобладала бегеновая кислота С22:0, пик С26:0 отсутствовал), микобактерии идентифицировали как M.vaccae.
Таблица
Видовой состав и скорость роста микроорганизмов в посевах из смывов с объектов животноводческих помещений в зависимости от метода предпосевной обработки материала
Объекты животноводческих помещений Метод обработки
метод Гона-Левенштейна-Сумиоши р-р септустина
0,1% 1%
скорость роста, дн. культура скорость роста, дн. культура скорость роста, дн. культура
Стена 12 M. gordonae 2 Corynebacterium 10 M. gordonae
Труба 12 M. gordonae 2 Corynebacterum 8 12 M. vaccae M. gordonae
Пол - - 10 M. scrofu-laceum
Навозный проход - - 10 M. scrofu-laceum
Кормушка 13 M. gordonae 2 Rhodococcus 10 M. gordonae
Поилки 14 M. avium 10 M. avium 12 M. avium
При предпосевной обработке 1 %-ным раствором септустина из смывов со стен и кормушек на 10-е сут., а по методу Гона-Левенштейна-Сумиоши в посевах из смывов со стен на 12-й день и с кормушек на
13-е сут. появились колонии жёлтого цвета. При окраске мазков по Цилю-Нильсену обнаружились тонкие палочки бледно-розового цвета, которые идентифицировали как М.gordonae. На хроматограммах отмечено отсутствие туберкулостеариновой кислоты (С19 разв.), пик С,4 и С,4 разв. — двойной, полностью не разветвлённый.
Культуру М-gordonae выделили также в посевах из смывов с труб на 12-й день при деконтаминации материала традиционным методом и 1%-ным раствором септустина.
В посевах из смывов с поилок на 10-е сут. при предпосевной обработке образцов 0,1%-ным раствором септустина, на 12-е сут. при деконтаминации материала 1%-ным растворами септустина и на
14-е сут. традиционным методом появились колонии с бледно-жёлтым пигментом. В мазках при окраске по Цилю-Нильсену были обнаружены мелкие тонкие кислотоустойчивые палочки и кокки. На хроматограммах пики С26:0 отсутствуют, высота пика С24:0 значительно выше С22:0, пик С19:0 в значительном количестве, микобактерию идентифицировали как M. avium.
Кроме того, в посевах из образцов с пола и труб при обработке 1 %-ным раствором септустина на 10-й день появились жёлтые блестящие колонии. В мазках, окрашенных по Цилю-Нильсену, обнаруживались тонкие палочки бледно-розового цвета. Культура идентифицирована методом газожидкостной хроматографии как М.scrofulacium (наличие высших миколовых кислот с числом углеродных атомов больше 20, пик С24:0 больше С22:0, пик С26:0 отсутствует).
Заключение
Разработан метод выделения микобактерий, нокардиоформных актиномицетов и ко-ринебактерий из объектов животноводческих помещений, основанный на предпосевной обработке смывов с поверхностей объектов дезинфицирующим средством «Септустин» в оптимальной концентрации и соответствующей экспозиции: предпосевная обработка смывов водным раствором септустина 1%-ной концентрации обеспечивает выделение микобактерий, а предпосевная обработка смывов водным раствором септустина 0,1%-ной концентрации — выделение нокардиоформных актиномицетов и коринебактерий.
Разработанный метод легко воспроизводим, позволяет в 2 раза повысить выделение микобактерий и ускорить их рост на
14,3-23%, обеспечивает 100%-ный рост но-кардиоформных актиномицетов и коринебак-терий по сравнению с традиционным методом Гона-Левенштейна-Сумиоши.
Библиографический список
1. Прокопьева Н.И. Сезонность проявления аллергических реакций на туберкулин // Ветеринария сельскохозяйственных животных.
— 2007. — № 1. — С. 36-47.
2. Толстенко Н.Г. Патогенные свойства некоторых видов микобактерий, выделенных от животных и объектов внешней среды: авто-реф. дис. ... канд. вет. наук: 16.00.03. — М.,
2006. — 27 с.
3. Методическое наставление по проведению исследований при микобактериозах животных. — 2012. — 85 с.
4. Наставление по диагностике туберкулёза животных. — 2002. — 63 с.
5. Нестеренко О.А., Квасников Е.И., Ногина Т.М. Нокардиоподобные и коринепо-добные бактерии. — Киев, 1985. — 334 с.
6. Оттен Т.Ф., Васильев А.В. Микобакте-риоз: монография. — СПб., 2005. — 224 с.
7. Наставление по применению препарата «Септустин» для дезинфекции объектов ветнадзора. Уралстинол // БИО. — 2002.
8. Газохроматографический метод идентификации микроорганизмов возбудителей болезней животных: метод. рекомендации. — Н. Новгород, 1993. — 40 с.
References
1. Prokop'eva N.I. Sezonnost' proyavleniya allergicheskikh reaktsiy na tuberkulin // Veteri-nariya sel'skokhozyaystvennykh zhivotnykh. —
2007. — № 1. — S. 36-47.
2. Tolstenko N.G. Patogennye svoystva nekotorykh vidov mikobakteriy, vydelennykh ot zhivotnykh i ob"ektov vneshney sredy: avtoref. dis. ... kand. vet. nauk: 16.00.03 / Tolstenko Nina Gavrilovna. — M., 2006. — 27 s.
3. Metodicheskoe nastavlenie po provedeni-yu issledovaniy pri mikobakteriozakh zhivotnykh.
— M., 2012. — 85 s.
4. Nastavlenie po diagnostike tuberkuleza zhivotnykh. — M., 2002. — 63 s.
5. Nesterenko O.A., Kvasnikov E.I., Nogina T.M. Nokardiopodobnye i korinepodobnye bak-terii. — Kiev, 1985. — 334 s.
6. Otten T.F., Vasil'ev A.V. Mikobakterioz: monografiya. — SPb., 2005. — 224 s.
7. Nastavlenie po primeneniyu preparata «Septustin» dlya dezinfektsii ob"ektov vetnad-zora. OOO «Uralstinol-BIO». — 2002.
8. Gazokhromatograficheskiy metod iden-tifikatsii mikroorganizmov vozbuditeley bolezney zhivotnykh: metodicheskie rekomendatsii. — N. Novgorod, 1993. — 40 s.
+ + +
