CC BY
81
личинками, полученными из подошвы ноги сухопутных моллюсков, в дозе 100-150 экземпляров на голову. Одновременно зараженным животным подкожно инъецировали суспензию гидрокортизона в вышеотмеченной дозе и помещали в виварий. На пятый день хомячкам вновь инъецировали подкожно в той же дозе суспензию гидрокортизона.
В результате исследования на 18-20-й день с момента заражения в легких инвазированных животных были отмечены макроскопически патологические изменения воспалительного характера. При микроскопическом исследовании пораженных участков легкого были обнаружены личинки Muellerius capillaris. Через 40-42 дня нематоды достигли половой зрелости и начали с фекалиями выделять личинок.
Результаты исследований и анализ литературы позволяют заключить, что использование данной лабораторной модели в области познания протостронгилид может послужить более углубленному изучению жизненного цикла, патогенеза, эпизоотического процесса заболевания, а также поиска новых и усовершенствованию уже существующих лечебных препаратов.
Литература: 1. Гамалея Н. Ф., Мечников И. И., Тимирязев К. А. Пастер // Брошюра - М.: - Изд. АН СССР, 1946. 2. Кротенков В.П. Автореф. дисс... докт.биол. наук., 2006.- М.
Method of investigation of Protostrongylidae in sheep, goats at laboratory model. Belugina T.A. Smolensk Regional Veterinary Laboratory.
Summary. The application of the created laboratory model can serve for fundamental investigation of life cycle, pathogenesis, epizootic process as well as for searching of novel and improvement of the existing antiparasitic drugs.
НОВЫЕ АСПЕКТЫ КОРРЕКЦИИ ДЕРМАНИССИОЗА КУР В УСЛОВИЯХ ПРОМЫШЛЕННОГО ПТИЦЕВОДСТВА
Березовский А.В*, Нагорная Л.В. **
*Научно-производственная фирма «Бровафарма»
**Сумской национальный аграрный университет
Введение. Анализ литературных источников и собственные наблюдения свидетельствуют, что в условиях промышленного птицеводства, распространены эктопаразитозы птиц. Среди возбудителей этих болезней, часто лидирует клещ Dermanyssus gallinae. Дерманиссиоз приводит к внушительному экономическому урону хозяйствам отрасли, который образуется за счет снижения яйценоскости, потери массы птицы, перерасхода
51
кормов, отставанию в росте и развитии молодняка, а не редко - является фактором его гибели [1-3].
Материалы и методы. По данной проблеме доклинические опыты проведены в 2006-2008 гг. на кафедре ветсанэкспертизы, зоогигиены и безопасности продуктов животноводства Сумского НАУ, производственные испытания - в ряде птицефабрик центральных областей Украины.
Результаты. В процессе изучения эпизоотической ситуации раскрыто, что описанные ранее характерные места основного заселения клещей данного вида: птичьи гнезда, трещины и щели стен, пола, подстилка, корки сухого помета, не являются типичными для большинства современных спецхозов. Определено, что колонии паразитов образуют свои многообразно форматные конгломераты (поселения) на поверхностях оборудования, особенно в местах изгибов конструктивных элементов, наличии стыкующих муфт, хомутов, болтов и др.
Г олодные имаго очень подвижны. Они слабо различимы
невооруженным глазом, так как их продолговато-овальное тело серо-желтого цвета, не всегда превышает один миллиметр по длине. Лучше они видимы после акта сосания крови, когда размеры клещей превышают 2 мм, а цвет тела становится - сначала красным, а по мере переваривания крови - коричневометаллическим.
В своей жизни клещ D. gallinae проходит полный цикл развития, состоящий из фаз: яйцо, личинка, протонимфа, дейтонимфа, имаго. При оптимальных условиях (температура - 20-30°C и влажность в параметрах 70100%), этот процесс длится 6-8 суток. При колебаниях температуры до 10°C от оптимальных границ, продолжительность цикла развития возрастает в 2-5 раз.
Самка, напившись крови после совокупления, прячется в затемненные места, где на вторые сутки откладывает до 20 яиц. Из технологических параметров, срок использования яйценосных кур, от посадки молодки до браковки всего поголовья стада - в среднем составляет 12 мес. В это время в птичнике температура и влажность - в основном оптимальные для клещей. Исходя из этого, теоретически допустимо, что одна самка клеща способна стать источником репродукции до 50 поколений (тысячи единиц) себе подобных.
Все фазы клеща в состоянии голодать до шести месяцев. Они скоро погибают только при температуре свыше 45°C. Относительно выдерживания этим видом клеща минусовых показателей, разные авторы дают абсолютно противоположную трактовку: одни - при температуре 5°C клещи быстро гибнуть [4]; иные полагают, что замороженные клещи могут оставаться жизнеспособными после оттаивания [5].
Для подтверждения выдерживания D. gallinae минусовой температуры, из колонии паразитов мы отобрали 200 особей (по 50 экземпляров яиц, личинок, нимф и имаго), каких разрозненно (в чашках Петри) на 5 суток поместили в холодильную камеру (при -10°C). После оттаивания определили,
52
что погибли только те особи, которые несли знаки недавнего питания кровью, а 63,5% паразитов оставались жизненно способными.
Распространение инвазии обычно происходит при контакте здоровой и инвазированной птицы, вследствие занесения возбудителя обслуживающим персоналом, грызунами, синантропными птицами, а в особенности - при несвоевременном обеззараживании возвратной тары для транспортировки птицы и неполноценной дезакаризации помещений во время санитарных разрывов.
Диагноз на дерманиссиоз устанавливают в процессе осмотра клеток и иных элементов оборудования птичника, а так же взятия соскреб и микроскопии полученных образцов при увеличении х60.
Общепризнано, что в основу борьбы с возбудителями эктопаразитозов положено рациональное использование инсектоакарицидов. В то же время мониторинг отечественного рынка ветеринарных препаратов свидетельствует, что только 16 наименований его рекомендуются для птиц. Однако из их числа 8, имеют одну и ту же действующую основу - дельтаметрин (который присутствует на рынке свыше 20-ти лет). Еще 5 препаратов - существуют на основе ивермектина. Они достаточно эффективны, но их нельзя использовать для товарных стад, так как наши данные свидетельствуют о том, что ивермектин выделяется с яйцом в промежутке между 13 и 25 сутками после его применения [6].
Исходя из актуальности вопроса, нами создан, испытан in vitro и в широких производственных экспериментах новый препарат с торговым названием «ЕКТОСАНтм» который запатентован у двух лекарственных формах:
- Ектосан™: ТУ У 24.4-14332579-046:2008. Жидкость на основе комбинации альфаметрина и пиперонл-бутоксида. Ектосантм умерено токсичный препарат (LD50 для белых крыс при введении в желудок > 1800);
- Ектосан-пудра™ инсекто-репелентная: ТУ У 24.4-14332579-
048:2008. Порошок содержит комбинацию из альфаметрина, серы очищеной и композиции натуральных эфирных масел. Ектосан-пудра™ не токсический препарат (LD50 для белых мышей при введении в желудок > 15000 мг/кг).
Обработку птичников им в присутствии птицы проводят с помощью дустораспылителей. Наш опыт показывает, что из небольшого числа наличия их, наиболее подходящим есть генератор холодного тумана германского концерна «IGEBA» - модель «PORT-423-Р».
На основании новых препаратов нами предложена система оздоровления птицехозяйств, состоящая из ряда взаимно связанных процессов.
В условиях промышленной технологии, уничтожение клеща проводят поэтапно: сначала в секциях с родительским стадом, потом - с товарным. В борьбе с куриным клещом предельная результативность достигается в помещениях свободных от птиц. Во время санитарного разрыва после дезинфекции птичника, на второй день обязательна его дезакаризация. Её
53
проводят водным раствором Ектосана™ (1:500) с расчета 200 мл/м2. Затем в помещении обеспечивается поддержание температуры на уровне 20-25°C и влажности свыше 70%. В это время ликвидируют все возможные источники передачи инвазии (изоляция от синантропных птиц, дератизация, внедрение системы дезакаризации возвратной тары и др.). Спустя 7-10 суток, процедуру дезакаризации обязательно повторяют.
В хозяйствах неблагонадежных по эктопаразитозам, перед перемещением молодки в цех производства яйца, проводят ее групповую профилактическую обработку лечебно-кормовою смесью (ЛКС). Её изготавливают из препарата Бровермектин-гранулят™ (1 г / 10 голов) и пяти суточной нормы комбикорма наличного возрастного рецепта. Их поэтапно смешивают и только эту ЛКС скармливают соответственно рациону.
Аналогичным способом обрабатывают родительское стадо (1 г/10 кг массы тела). При этом в первый и пятый день скармливания ЛКС, проводят дезакаризацию помещения препаратом Ектосан-пудратм инсекто-
репелентная. Для обработки помещения этим средством в присутствии птицы, общую дозу его определяют с расчета 10 г/м2 (при одноярусном
л
размещении клеток) и дополнительно по 1 г/м - на каждый последующий ярус (при многоярусном оборудовании). Спустя 7-10 суток, дезакаризацию повторяют.
Заключение. D. gallinae в условиях промышленного птицеводства находит оптимальные условия для интенсивного размножения и высокой все сезонной активности. Результативный контроль возбудителя дерманиссиоза способны обеспечить только комплексные меры борьбы на основании современных инсектоакарицидов и учета особенностей биологии развития каждой из его фаз.
Литератур:. 1. Богач М.В., Березовський А.В., Тараненко 1.Л. //Кшв: Ветшформ, 2007. - С. 160-175. 2. Панас А.В. // Матер. докл. научн. конф «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» - М., 2005. -Вып.6. - С. 271-272. 3. Ятусевич А.И. и др. Паразитарные болезни птиц. -Минск: Полибиг, 2001. - 86с. 4. Шустрова М.В. и др. Паразитология и инвазионные болезни животных: учебник. - М.: Академия, 2006. - С. 243251. 5. Chirico J., Tauson R. // Vet. Parasitol. - 2002. - N110. - P. 109-116. 6. Березовський А.В. и др. // Ш^вництво / Мiжвiд. темат. наук. зб. - Харюв, 2006. - №58. - С. 509-513.
New aspects of correction of Dermanyssus gallinae infection in the hens in conditions of industrial poultry husbandry. Berezovsky A.V., Nogornaya L.V. “Brovafarma”, Sumsk National Agrarian Universtity, Ukraine.
Summary. D. gallinae have the optimum conditions for intensive reproduction and high all seasonal activity in the industrial poultry husbandry. Only complex control measures can provide the elimination of D. gallinae based on
54
the modem insecticide-acaricide agents and accounting of the peculiarities of biology of development of each parasite phase.
К ВОПРОСУ ИММУНОДИАГНОСТИКИ ДИРОФИЛЯРИОЗА
У ЛЮДЕЙ И ЖИВОТНЫХ
Бескровная Ю.Г., Нагорный С.А., Васерин Ю.И.,
Ярошенко Н.В., Манько Д.В.
ФГУН РостовНИИМП Роспотребнадзора
Введение. Дирофиляриоз может быть отнесен к числу «новых» трансмиссивных паразитарных болезней животных и человека. Одним из главных факторов распространения данной инвазии является миграция больных собак, в крови которых присутствуют микрофилярии. Повсеместное распространение переносчиков (кровососущих комаров) делают передачу данной инвазии возможной везде, где присутствует резервуар болезни и благоприятные климатические условия, необходимые для поддержания жизнеспособности комаров, а также позволяющие личинкам в организме переносчика перейти в инвазионную стадию (Simon F. et al. 2001).
Учитывая, стертые клинические признаки и хроническое течение болезни установление диагноза этого заболевания встречает определенные трудности. Именно поэтому для его постановки приходится прибегать к использованию различных методов лабораторного обследования животных и человека с установлением показателей чувствительности, специфичности. В связи с чем, cерологические методы исследования могут иметь важное значение при диагностике дирофиляриоза у животных и людей.
Цель настоящего исследования состоит в использовании иммунологического метода для изучения распространения дирофиляриоза на юге России среди животных и людей.
Материалы и методы. В работе использовали специфический антиген полученный из неполовозрелой самки D. repens, удаленной хирургическим путем. Проводили последовательно механическую и ультразвуковую гомогенизацию гельминта из замороженного состояния с экстракцией белков в 0,25 М водном растворе сахарозы. Супернатант растворяли в охлажденном ацетоне, центрифугировали и удаляли надосадочную жидкость. Осадок высушивали под вакуумом, растворяли в калий-фосфатном буфере рН 6,4 и центрифугировали. Надосадочную жидкость использовали в ИФА для выявления антител к Dirofilaria repens у людей, инвазированных данным паразитом. На способ приготовления данного антигена получено положительное решение на патент РФ от 25.11.2008 г.
Полученный антиген использовали в концентрации 40 мкг/мл в объеме 100 мкл на лунку. Разведение сывороток 1:200. В ИФА использованы
55
