CC BY
98innova-journal.ru
МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ КРИТЕРИИ ТРАВМАТИЧЕСКОГО ПОВРЕЖДЕНИЯ СЕДАЛИЩНОГО НЕРВА И ОКРУЖАЮЩИХ ЕГО ТКАНЕЙ В ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ИССЛЕДОВАНИЯХ НА ЛАБОРАТОРНЫХ КРЫСАХ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
MORPHOLOGICAL CRITERIA FOR TRAUMATIC INJURY OF THE SEDIMAL NERVE AND ENVIRONMENTAL ITS TISSUES IN EXPERIMENTAL RESEARCH ON LABORATORY RATS (REVIEW OF LITERATURE)
Виктор Анатольевич Лазаренко 1 - доктор медицинских наук Ирина Леонидовна Привалова 1 - доктор биологических наук Вячеслав Александрович Липатов 1 - доктор медицинских наук Мария Алексеевна Затолокина 1 - доктор медицинских наук Игорь Николаевич Гамазинов1 | Ирина Владимировна Проскурина 1
I Viktor Anatolevich Lazarenko 1 - Doctor of Medical Sciences Irina Leonidovna Privalova 1 - Doctor of Biological Sciences Viacheslav Aleksandrovich Lipatov 1 - Doctor of Medical Sciences Mariia Alekseevna Zatolokina 1 - Doctor of Medical Sciences Igor Nikolaevich Gamazinov 1 Irina Vladimirovna Proskurina 1
Резюме
В статье предлагается обзор литературы по проблеме выявления в экспериментальных исследованиях на лабораторных крысах морфологических критериев травматического повреждения седалищного нерва и окружающих его тканей. Проводится сравнение микроархитектуры седалищного нерва человека и лабораторных крыс. Описываются данные морфологических исследований седалищных нервов крысы в отсутствие повреждений и после моделирования различных видов травмы. Ключевые слова: седалищный нерв, травматическое повреждение, экспериментальное моделирование.
Summary
The article offers a review of the literature on the problem of detecting morphological criteria for traumatic damage of the sciatic nerve and surrounding tissues in experimental studies on laboratory rats. A comparison is made between microarchitecture of the sciatic nerve of man and laboratory rats. Data of morphological studies of rat sciatic nerves are described in the absence of damage and after modeling of various types of trauma.
Key words: Sciatic nerve, traumatic injury, experimental modeling
Травматическое повреждение периферических нервных стволов является одной из серьезных социальных и медицинских проблем, поскольку часто встречается у лиц молодого трудоспособного возраста и может приводить к инвалидизации, существенно снижая качество жизни больных. В ретроспективном анализе 1124 случаев повреждений периферических нервов в 1989 - 2014 гг. [1] средний возраст пациентов составил 34,2 года, большинство из них были мужчинами (76,7%), а наиболее частыми причинами травмы (46,4%) - автомобильные аварии. Аналогичная картина наблюдается во многих странах, в том числе и в Российской Федерации, где травматические повреждения периферических нервов являются причиной инвалидизации свыше 29% больных. Их восстановительное лечение является важной проблемой современной медицины [2, 3]. Сложность восстановления функций конечностей, утраченных вследствие повреждений периферических нервов, связана с повреждением нервных стволов и окружающих мышц, гибелью сенсорных нейронов и неполным восстановлением двигательных единиц [4].
При различных повреждениях периферических нервов нижних конечностей, достаточно высока частота повреждений седалищного нерва.
Несмотря на актуальность данной проблемы, достаточно четкие морфологические критерии функциональных проявлений восстановительных процессов продолжают отсутствовать. Современные тенденции лечения повреждений
периферических нервов [5] ведут к необходимости новых доклинических разработок и формировании на их основе программ клинических испытаний. Для сопоставления экспериментальных и клинических данных необходимы прежде всего анализ и обобщение имеющихся литературных данных, что мы и предприняли в настоящем обзоре.
Седалищный нерв в поперечном сечении имеет наибольший диаметр по сравнению со всеми другими нервами тела человека. Его образуют два поясничных и три крестцовых сегмента спинного мозга. Он состоит из пучка миелиновых нервных волокон, которые окружены вспомогательными оболочками: эндоневрием, периневрием, эпиневрием. Его микроархитектура сходна с другими периферическими нервами: внешний слой эпиневрия окружен жировой и соединительной тканью, а внутренние нервные пучки окружены периневрием [6].
До входа в подколенную ямку видимого разделения седалищного нерва нет, однако он всегда разделен на большеберцовый и малоберцовый компоненты уже в подгрушевидной области. Обе ветви состоят из нервных пучков, окруженных эпиневральной соединительной тканью. Вид седалищного нерва в дистальном направлении меняется от большой и плоской структуры на овальную и меньшую по
УДК:616.833.58-001-092.9
URL: http://innova-journal.ru/issues/2016-4-5/files/08.pdf
DOI: https://doi.org/10.21626/innova/2016.4/08
Для корреспонденции: И.Л. Привалова ir_priv@mail.ru
1 ФГБОУ ВО «Курский государственный медицинский университет» Минздрава РФ
innova-journal.ru
размеру [7]. Это соотносится с числом и размером нервных пучков (нервная ткань) и стромы с соединительной тканью внутри эпиневрия. Седалищный нерв формирует мультифасцикулярный паттерн на всем своем протяжении [6,8].
Морфометрические исследования волокон седалищного нерва у человека выявили незначительные тендерные и возрастные различия их диаметра, окружности и площади поперечного сечения, а также соотношения между количеством миелиновых волокон на разных уровнях седалищного нерва [9].
Для экспериментального моделирования различных повреждений седалищного нерва довольно часто используются лабораторные крысы[10,11,12.], поэтому морфологическим особенностям седалищного нерва крыс посвящен достаточно обширный блок научной литературы [13,14,15,16]. Эпиневрий седалищного нерва крысы состоит из фибробластов, оксифильных коллагеновых и эластических волокон, высокой степени зрелости, белой жировой ткани, образующей дольки и содержащей нервные стволики с мелкими кровеносными сосудами. В толще эпиневрия располагаются поперечные срезы всех трех видов микрососудов (артериол, капилляр и венул). Периневрий -базальная мембрана содержит несколько пластов однослойного эпителия эпендимоглиального типа, которые разделены прослойкой рыхлой волокнистой соединительной ткани. Эндоневрий состоит из рыхлой волокнистой соединительной ткани с мелкими кровеносными сосудами [17].
Морфологические исследования седалищного нерва крыс молодого и зрелого репродуктивного возраста проведены С.П. Селякиным в 1994 г. [18]. Определены диаметр седалищного нерва (1,1 —1,7 мм), площадь его поперечного сечения (1,76±0,24 мм2), толщина эпиневрия (45,0 - 62 мкм). С использованием электронной микроскопии было установлено, что на долю безмиелиновых волокон приходится 69,9%, из них - волокон большого диаметра - 25,3%, среднего - 58,5%, малого - 16,2%. В нейроплазме безмиелиновых волокон сформирована относительно постоянная концентрация органелл: мнкротрубочек, нейрофиламентов, митохондрий и разнообразных везикул.
В этих исследованиях было обнаружено 30,1% миелиновых волокон, в их составе преобладали проводники большого диаметра - 41,4%, волокон среднего калибра было 25,4%, а малого - 32,2%. Большинство из них имело правильную (круглую или овальную) форму и компактный миелин с отчетливым слоистым строением. Осевые цилиндры имели круглую и овальную формы. В аксоплазме представлены микротрубочки, нейрофнламенты, митохондрии, везикулы с плотным н прозрачным центрами. Ядра нейролеммоцитов вытянуты вдоль продольной осп, а на поперечных срезах имели круглую или овальную форму. Органеллы цитоплазмы представлены пластинчатым комплексом Гольджи, элементами зернистой и гладкой эндоплазматической сети, единичными рибосомами, полисомами, митохондриями и разнообразными везикулами. Коэффициент функциональной активности белоксннтезирующей системы таких нейролеммоцитов (Кбс) составил 78,5±6,3 условных единиц.
При исследовании проводникового аппарата седалищного нерва крыс зрелого репродуктивного возраста установлен диаметр его в средней трети бедра 1,2—1,7 мм, площадь поперечного сечения 1,8±0,3 мм2, толщина эпиневрия 48—62
мкм. На поперечных срезах выявлено от 14 до 33 нервных пучков. Полученные данные не отличались от аналогичных показателей проводникового аппарата крыс молодого репродуктивного возраста. По данным электронной микроскопии па долю безмиелиновых волокон приходилось 65,6%., из них - большого диаметра — 29,1%, среднего — 51,1% и малого— 19,8%. В нейроплазме безмиелиновых волокон стабильное количество микротрубочек, нейрофнламентов, разнообразных везнкул п митохондрий. Доля мнелниовых аксонов 34,4%, большинство из них правильной, круглой формы с компактным миелином. По сравнению с нервами крыс молодого репродуктивного возраста существенно значимой разницы не было обнаружено н в спектре мнелнновых волокон: 38,5% из них имели большой диаметр, 26,5% -средний,— 35% - малый, однако на 4,2% больше было число демиелинизированных аксонов. В аксоплазме миелиновых проводников определялись микротрубочкп, нейрофпламенты, митохондрии, везикулы с плотным и прозрачным центрами. Их уровень не отличался от 10-месячных белых крыс. Также практически не отмечалось изменений в показателях толщины миелиновой оболочки, диаметра осевых цилиндров, формы и размеров нейролеммоцптов. Было отмечено незначительное увеличение количества элементов гладкой ЭПС и вакуолей, однако это практически не влияло на Кбс, его значения не отличались от данного показателя белых крыс молодого репродуктивного возраста. Эти исследования позволили сделать вывод о том, что проводниковый аппарат периферических соматических нервов крыс молодого и зрелого репродуктивного возрастов находится в стадии стабилизации.
В современных работах приводится описание морфометрических параметров интактного седалищного нерва крыс восьмимесячного возраста [19]. Численные плотности эндоневральных кровеносных сосудов (NAmv) у интактных крыс составили 83+18 мм2, ядер эндоневральных клеток (NAnuc) -1862+1807 мм2, миелинизированных регенерирующих нервных волокон (NAmf) - 19379+7766 мм2 и миелинизированных дегенерирующих нервных волокон (NAmf-deg) -138+135 мм2.. В выборках из 400 миелинизированных волокон с каждого нерва были измерены диаметры волокон (Dmf), которые составили 2,58+1,29 мкм, их аксонов (Dax) - 3,61+1,54 мкм и толщины миелиновых оболочек (lm) - 1,29+0,64 мкм (указаны средние арифметические значения и стандартные отклонения).
Детально описаны ультраструктурные особенности составных компонентов седалищного нерва крыс разного возраста: 2, 12 и 24 месяца [20,21]. Авторами выявлены гистологические особенности миелиновых нервных волокон 2-месячных крыс, в частности, преобладание волокон малого диаметра (74,2%) и мелкопенистая структура миелина, а также истонченная миелиновая оболочка.
У 12-месячных крыс диаметр нервных пучков составил в среднем 0,98±0,02 мм, площадь поперечного сечения - 2,5±0,07 мм2. Миелиновые нервные волокна имели округлую или овальную форму, были окружены хорошо выраженной миелиновой оболочкой. Количество миелиновых нервных волокон на 1 мм2 площади поперечного сечения нерва составляло в среднем 8281,5±102,33. Из них - 14,2% составили волокна малого диаметра (менее 4 мкм), 34,5% - волокна среднего диаметра (от 4,1 до 7 мкм) и 51,3%. -волокна большого диаметра (более 7,1 мкм). Такое соотношение волокон наблюдалось в разных участках седалищного нерва на
innova-journal.ru
протяжении всей длины бедра.
У 24-месячных интактных крыс количество миелиновых нервных волокон разного диаметра было приблизительно одинаковым: мелких -36,2%, средних - 33,1% и больших - 30,7%. При этом уплотнённая миелиновая оболочка имела вид черного кольца достаточно большой толщины, тогда как диаметр аксона составлял 25,0% от величины диаметра аксона 12-месячных интактных крыс.
На основании представленных данных можно сделать вывод о том, что структуры седалищного нерва крыс и человека похожи, но не идентичны. Совпадает общая схема строения эндоневрия, периневрия и эпиневрия, а также миелинового волокна, вен и артерий, кровоснабжающих нерв и окружающие ткани. Описанные морфологические параметры могут являться определенными критериями для экспериментального моделирования повреждения
седалищного нерва крыс.
В эксперименте достаточно часто используются физические или механические повреждения периферических нервов, которые, как правило, могут осложняться болевыми синдромами и нарушениями микроциркуляции [22-27].
Гистоморфологические методы использовались в оценке эффективности воздействия переменного магнитного поля и импульсного тока на регенерацию седалищного нерва крыс [28]. Экспериментальным животным под перитонеальным тиопенталовым наркозом обнажали седалищный нерв и производили полную его перерезку на уровне средней трети бедра, после чего осуществляли нейрорафию путём наложения эпипериневральных швов с применением микрохирургической техники. Трофические расстройства тканях травмированной конечности у животных находились в прямой взаимосвязи с чувствительными и двигательными нарушениями и проявлялись очаговым выпадением волос, отеком тканей, поверхностными эрозиями или трофическими язвами на задней поверхности лапки пораженной стороны. Вышеуказанные трофические расстройства у
экспериментальных животных достигали максимума через 7-10 дней после травмы. Количество регенерирующих аксонов (в расчёте на поле зрения микроскопа) в поперечных срезах периферического отрезков седалищного нерва крыс после нейрорафии через 30 суток составило31,6 ± 3,2, через 60 суток оно увеличивалось до 70,6 ± 7,1 (Р < 0,001), а через 90 суток составило 71,2 ± 3,1 [28].
Другие исследователи [29] также производили пересечение седалищного нерва в средней трети, после чего накладывали 5 эпиневральных швов (1-я группа животных) или восстанавливали целостность при помощи
электрохирургического высокочастотного аппарата в режиме сваривания (0.3-0.5 А, 30 В, 440 кГц) (2-я группа животных). По результатам анализа гистологических препаратов импрегнированных азотнокислым серебром в обеих группах животных в сроке 1 неделя после операции в периферическом (дистальном) отрезке травмированного седалищного нерва наблюдалась картина уолле ровской дегенерации.
В этой же схеме эксперимента [30,31] проведен иммуногистохимический анализ периферического отрезка травмированного седалищного нерва крысы. Анализ препаратов, окрашенных гематоксилином и эозином, периферического отрезка травмированного седалищного нерва обеих опытных групп в конце 3-й недели послеоперационного периода показал преобладание
соединительной ткани со значительным количеством клеточных элементов (нейтрофилов, макрофагов, молодых фибробластов, ШК). Лишь незначительное количество тонких нервных волокон и новообразованных капилляров проникало в периферический отрезок поврежденного нерва.
На 12-й неделе, по сравнению с 3-й неделей, в периферические отрезки обеих опытных групп проникало значительное количество новообразованных нервных волокон [30].
По данным иммуногистохимического анализа препаратов периферического отрезка обеих опытных групп нейрофиламенты экспрессировались с различной интенсивностью в зависимости от срока послеоперационного периода в аксоплазме миелиновых и безмиелиновых нервных волокон. В обеих опытных группах в конце 3-й недели наблюдалось снижение уровня нейрофиламентов в области перифериче-ского отрезка: на 53,4% (р<0,05) и на 39,7% (р<0,05) по сравнению с контролем. По сравнению с 3-й неделей уровень экспрессии нейрофиламентов на 12-й неделе повышался на 33,3% (р<0,05) и на 37,1% (р<0,05) [30].
Интересные результаты представлены в работах, где изучены морфологические характеристики окружающих мышц после травматического повреждения периферических нервов [32,33]. Было установлено, что после первого часа при пережатии бедренных и седалищных нервов расслабляется скелетная мускулатура, что увеличивает её диаметр, с увеличением проницаемости сосудов и количества межтканевой жидкости. Артериолы и венулы увеличиваются в диаметре, но диаметр капилляров не изменяется. При перерезке седалищных нервов снижается удельная масса мышечных волокон. Происходит увеличение объема межтканевой жидкости, начинается сдавление мышечных волокон, что приводит к гипотрофичным явлениям. После этого толщина мышечных волокон постепенно увеличивается, а затем снова становится ниже исходных значений. По мнению автора [32] такие изменения отражают последовательные стадии изменения окружающих мышц при любых травмах седалищного нерва. На продольных гистологических срезах выявляются параллельно направленные капилляры и мышечные волокна. Капилляры и посткапиллярные венулы соединяются между собой поперечными анастомозами, превышающими диаметр продольно расположенных, относительно мышечных волокон сосудов. Крупные сосуды располагаются в межпучковых пространствах. В сосудах микроциркулятрорных русел в данной зоне ветвления нервов после нарушения целостности нерва происходит увеличение диаметра артериол в один раз, а венул в два раза, но при этом диаметр капилляров не изменяется.
Характерным отличием пережатия седалищного нерва от перерезки является скорость происходящих изменений: большая плавность и равномерность при пережатии, чем при перерезке. Также снижение удельной массы мышечного волокна, с увеличением толщины до 15,6 и изменение диаметра микрососудов в 1,1 раз. Также при пережатии седалищного нерва изменяется диаметр всех микроциркуляторных элементов с преобладанием гипотрофических изменений в мышечном волокне, происходят изменения в артериолах и венулах гемомикроциркуляторного русла. Эти изменения заключаются в увеличении их диаметра и повышении проницаемости сосудистой стенки в области травматического поражения и прилегающих участков. Полученную картину можно считать
innova-journal.ru
проявлением защитного компенсаторного механизма сосудов гемомикроциркуляторного русла 32. Результатом перерезки седалищных нервов является резко прогрессирующее нарушение трофики, гемомикроциркуляциии и прогнозирование снижения пролиферативной активности клеток в состоянии репаративного процесса, а также снижение макрофагальной активности, и как следствие, усугубление дегенеративных процессов на уровне нервного ствола 32.
В экспериментах на лабораторных крысах 34. были изучены ультраструктурные морфологические изменения седалищного нерва, иннервируемой им икроножной мышцы крыс через 14 суток после экспериментального аксонотмезиса. Компрессионно-ишемическая невропатия создавалась путем нанесения на открытый седалищный нерв сильного кратковременного (30 с) компрессионного воздействия на уровне средней трети бедра браншами сосудистого зажима, после чего рана ушивалась, и животное помещалось в клетку.
Через 2 недели на элекроннограммах икроножной мышцы крыс отмечалось выраженное изменение структуры ядер миоцитов (их конфигурации, состояния хроматина), а также встречалась локализация ядер внутри мышцы, что позволяет предположить наличие признаков апоптоза. Во многих участках мышцы нарушалась поперечная исчерченность. Возможно, вследствие частичного исчезновения миофибрилл, в ряде участков мышцы наблюдались просветления вблизи Z-дисков. В некоторых участках, совершенно не имеющих исчерченности, встречались огромные вакуоли, ко-торые могли представлять собой сильно измененные митохондрии и канальцы саркоплазматической сети 34.
В эти же сроки на элекронограммах седалищного нерва крыс ниже участка сдавления в ядрах отдельных шванновских клеток наблюдался кариорексис. В их цитоплазме встречались необычно крупные скопле-ния глиофибрилл, которые позволяют предполагать наличие склероза самой
шванновской клетки. В таких шванновских клетках отмечалась повышенная ва-куолизация цитоплазмы. В близлежащих миелиновых волокнах оболочки были умеренно вакуолизированы, а осевые цилиндры имели плотный вид. В целом в цитоплазме большинства шванновских клеток наблюдался достаточный набор органелл. Некоторые шванновские клетки, находящиеся в тесном контакте со слабоизмененным участком оболочки нерва, имели нетипичный рисунок хроматина в кариоплазме, а структура оболочки миелиновых волокон в них, как и структура осевого цилиндра, была почти не изменена. В отдельных участках нерва наблюдались волокна с сохранным, но удлиненным и открытым перехватом Ранвье. Осевые цилиндры миелиновых волокон при этом в одной части были нетипично уплотнены, а ниже перехвата Ранвье, напротив, просветлены. Такое строение перехвата Ранвье позволяет объяснить снижение скорости проведения по нервному волокну, определяющееся при электронейромиографическом исследовании. Можно отметить также неполное восстановление эндоневрия, проявляющееся его вакуолизацией. Часть шванновских клеток имели ядра с почти типичной структурой хроматина и цитоплазму с незначительным количеством измене-ний в органеллах. В близлежащих миелиновых волок-нах наблюдалась умеренная очаговая миелинопатия и слабо выраженная аксонопатия 34.
Таким образом, в современной литературе имеются достаточно детальные исследования седалищного нерва крысы при экспериментальном моделировании его травматических повреждений. Полученные данные гистологических, иммунохимических и морфометрических исследований позволяют разработать морфологические критерии травматического повреждения седалищного нерва и окружающих его тканей для планирования экспериментальных и, возможно, клинических исследований.
Список литературы
1. Kouyoumdjian J.A. Peripheral nerve injuries: A retrospective survey of 1124 cases/ J.A.Kouyoumdjian, C.R.Graga, V.F.M. Ferreira// Neurol.India. 2017. May-Jun; 65(3):551-555. doi: 10.4103/neuroindia.NI_987_16.
2. Берснев В.П. Практическое руководство по хирургии нервов / В.П. Берснев, Г.С. Кокин, Т.О. Извекова. - СПб: ФГУ «РНХИ им. проф. А.Л. Поленова Росмедтехнологий». 2009. Т.1. 296 с.
3. Rajaram A.,. Strategic Design and Recent Fabrication Techniques for Bioengineered Tissue Scaffolds to Improve Peripheral Nerve Regeneration / A Rajaram, X.B.Chen, D.J. Schreyer // J. Trauma Acute Care Surg., 2012, Vol. 72, no. 1, pp. 199-205.
4. Gordon T., The basis for diminished functional recovery after delayed peripheral nerve repair // T.Gordon, N.Tyreman, M.A. Raji //J. Neurosci. 2011; 31: 5325-34.
5. Масгутов Р.Ф. Современные тенденции лечения повреждений периферических нервов/ Р.Ф. Масгутов, А.А. Ризванов, А.А. Богов (мл.), А.Р. Галлямов, А.П. Киясов, А.А. Богов// Практическая медицина. 2013. № 2(69). С.99-103.
6. Sunderland S. Peripheral nerve trunks. In:Nerves and Nerve Injuries. Second ed. Edinburgh:Churchill Livingstone; 1978: 31-60.
7. Graif M, Sciatic nerve: sonographic evaluationand anatomic-pathologic considerations/ M. Graif, A Seton, J Nerubai, H. Horoszowski, Y. Itzchak. Radiology 1991. Т.181. С.405-408.
8. Moayeri N, Differences in quantitative architecture of sciatic nerve may explaindifferences in potential vulnerability to nerveinjury, onset time, and minimum effectiveanesthetic volume /N Moayeri, G.J. Groen//Anesthesiology. 2009. Т.111. С.1128-1134.
9. Баландина И.А. Морфометрические характеристики миелиновых волокон седалищного нерва / И.А. Баландина, Т.Н. Желтикова, И.Г. Желтиков, В.И Алиев//Фундаментальные исследования. 2013. №5. С. 28-32.
10. Мустафин А.Г. Антероградный транспорт белков аксонами мотонейронов спинного мозга крыс, аптированных и не адаптированных к воздействию физической нагрузки//Журнал научных статей Здоровье и образование в XXI веке. 2014. Т. 16. № 4. С. 49-51.
11. Масгутов Р.Ф. Стимуляция посттравматической регенерации седалищного нерва крысы при ксенотрансплантации мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток жировой ткани/ Р.Ф. Масгутов, Г.А. Масгутова , И.И. Салафутдинов, А.А. Шульман, М.Н. Журавлева, А.Р Галлямов, А.А. Богов, А.А. Ризванов //Гены и клетки. 2015. Т. 10. № 1. С. 98-102.
12. Angelica-Almeida М. Angiomorphological comparison of the sciatic nerve of the rat and the human median nerve: implications in experimental procedures/ M. Angelica-Almeida, D. Casal, M. Mafra, L. Mascarenhas-Lemos, J. Martins-Ferreira, M. Ferraz-Oliveira, D. Pais, J. Amarante, J. Goyri-O'neill // Official Journal of the Portuguese Anatomical Society.2014. P. 31-51.
13. Artifon EL, Aerobic training previous to nerve compression: morphometry analysis of muscle in rats/E.L Artifon, L.I. Silva, L.F.Ribeiro , R.M.Brancalhao, G.R. Bertolini //Rev. Bras Med Esporte. 2013;19(1):66-9.
14. Beyreuther B, Antinociceptive efficacy of lacosamide in the monosodium iodoacetate rat model for osteoarthritis pain /B. Beyreuther, N.Callizot, T.Stohr // Arthritis Res. Ther. 2007;9(1):R14.
15. Дронов С.Н. Ультраструктура седалищного нерва крыс с моделированной стрептозотоцин-индуцированной невропатией в условиях применения препаратов а-липоевой кислоты//Морфология. 2014. Т. 8. № 3. С. 17-22.
16. Страфун С.С. Ультраструктурная оценка восстановления травмированного седалищного нерва при аутопластике его больших дефектов у крыс в эксперименте/ С.С. Страфун, В.В. Гайович, С.И. Савосько//Украинский нейрохирургический журнал. 2014. № 4. С. 50-54.
17. Гулиева Н. Т. Морфофункциональные особенности структурных изменений эпиневральных микрососудов седалищных нервов белой крысы при экспериментальной эндотоксемии/ Н. Т. Гулиева// Украинский журнал клинической лабораторной медицины. 2013. Том 8. № 4. С. 93-98.
18. Селякин С.П. Посттравматическая регенерация седалищного нерва в условиях дефицита симпатической иннервации. Автореф. дис.... канд. мед. наук: (14.00.02; 14.00.23) / С.П.Селякин; Мордовокий государственный университет имени Н. П. Огарева. - Саранск 1994. - 31с.
19. Щудло Н.А. Экспериментальное исследование влияния витаминов В9 и Е на посттравматическую регенерацию нерва/ Н.А. Щудло, М.М. Щудло//Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2016. № 6-3. С. 496-500.
20. Попель С. Л., Структурный и морфометрический анализ нервных волокон седалищного нерва крыс разного возраста в норме и при гипокинезии /С.Л.Попель, Б. М. Мыцкан // Журнал Гродненского медицинского университета. 2016. №1. С.60-66.
21. Попель С.Л. Нейроно-глиальные взаимодействия в передних рогах спинного мозга при долговременной гипокинезии//Вестник проблем биологии и медицины. 2015. Т. 1. № 2. С. 256-260.
22. Research article Nociceptive neurons and evaluation of the sciatic nerve of Wistar rats subjected to compression-trauma and treatment with resistive exercise/article Resec// pain Research and management. 2015. ID 6487160. P. 1-7.
23. Иванов. А. Н. Аутотрансплантация полнослойного кожного лоскута как способ биостимуляции микроциркуляции в условиях нормальной и нарушенной иннервации/ А.Н. Иванов, И.Е. Шутров, И.А. Норкин //Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2015. Т. 14. № 3 (55). С. 59-65.
24. Иванов А.Н. Изменения микроциркуляции при комбинированной стимуляции в условиях нарушенной иннервации/ А.Н. Иванов, И.Е. Шутров, В.Г. Нинель, Г.А. Коршунова, Д.М. Пучиньян, И.А. Норкин//Современные проблемы науки и образования. 2016. № 3. С. 100.
25. Иванов А.Н. Особенности изменений микроциркуляции при отсроченной нейрорафии седалищного нерва в условиях эксперимента/А.Н. Иванов, И.Е. Шутров В.Г., Нинель, Г.А. Коршунова, Д.М. Пучиньян, И.А. Норкин//Фундаментальные исследования. 2015. № 1-5. С. 958-961.
26. Иванов А.Н. Особенности изменений микроциркуляции при регенерации седалищного нерва в условиях эксперимента/А.Н. Иванов, И.А. Норкин, В.Г. Нинель, И.Н. Щаницын, И.Е. Шутров, Д.М. Пучиньян//Фундаментальные исследования. 2014. № 4-2. С. 281 -285.
27. Шутров И.Е. Денервационная гиперчувствительность сосудов микроциркуляторного русла при повреждении седалищного нерва у белых крыс и способы ее коррекции/ И.Е. Шутров, А.Н. Иванов, И.А. Норкин //Успехи современной науки и образования. 2016. Т. 8. № 12. С. 86-90.
28. Нинель В.Г. Гистоморфологическая оценка эффективности воздействия переменного магнитного поля и импульсного тока на регенерацию седалищного нерва крыс в эксперименте/ В.Г. Нинель, И.А. Норкин, Д.М. Пучиньян, Н.В. Богомолова, Г.А. Коршунова,
0.В. Матвеева, Ш.М. Айтемиров // Фундаментальные исследования. 2012. № 12. С. 336-340.
29. Лиходиевский В.В. Восстановление седалищного нерва крысы после травмы и лечения с использованием электрохирургического инструмента в режиме сваривания/ В.В. Лиходиевский, А.В. Корсак, Ю.Б. Чайковский, О.И. Кривошеева, Е.Г. Лопаткина, В.А. Чернец//Украинский научно-медицинский молодежный журнал. 2015. № 38(89). С. 30-35
30. Корсак А.В. Иммуногистохимическая характеристика периферического отрезка травмированного седалищного нерва крысы после оперативного лечения с использованием высокочастотной электросварочной технологии/А.В. Корсак, Ю.Б. Чайковский, В.В. Лиходиевский, О.И. Кривошеева, А.В.Чернец//Наука и Мир. 2015. Т. 1. № 9 (25). С. 105-108.
31. Корсак А.В. Нейроглиальные взаимоотношения афферентного сегментарного центра травмированного седалищного нерва крысы в условиях применения высокочастотной электросварочной технологии и препарата траумель С/ А.В. Корсак, В.В. Лиходиевский, Л.М. Сокуренко//Символ науки. 2015. № 8. С. 260-264.
32. Царев А.А. Изменения ГМЦ русла мышц задних конечностей крыс при повреждении бедренного и седалищного нервов//Вестник проблем биологии медицины. 2013. Вып. № 1. том № 2(99). С. 246-250.
33. Гайович В.В. Влияние обогащенной тромбоцитами плазмы на восстановление нерва и мышцы после их травматического повреждения //Украинский нейрохирургический журнал . 2014. № 3. С. 79-83.
34. Живолупов С.А. Особенности реактивных нейропластических изменений при экспериментальной травматической невропатии седалищного нерва /С.А. Живолупов, Л.С. Онищенко, Е.Н. Гневышев, Н.А. Рашидов, И.Н. Самарцев, Е.В. Яковлев , В.Д. Пронин, А.А. Юрин//Вестник Российской военно-медицинской академии. 2015. № 2 (50). С. 163-169.
35. Живолупов С.А. Ретроградные изменения в спинном мозге крыс после острой компрессионно-ишемической невропатии седалищного нерва /С.А. Живолупов, Н.А. Рашидов, Л.С. Онищенко, Е.В. Яковлев// Вестник Российской военно-медицинской академии. 2012.№ 4(40). С. 156-162.
References
1. Kouyoumdjian J.A. Peripheral nerve injuries: A retrospective survey of 1124 cases/ J.A.Kouyoumdjian, C.R.Graga, V.F.M. Ferreira// Neurol.India. 2017. May-Jun; 65(3):551-555. doi: 10.4103/neuroindia.NI_987_16.
2. Bersnev V.P. Prakticheskoe rukovodstvo po hirurgii nervov / V.P. Bersnev, G.S. Kokin, T.O. Izvekova. - SPb: FGU «RNHI im. prof. A.L. Polenova Rosmedtehnologij». 2009. T.1. 296 s.
3. Rajaram A.,. Strategic Design and Recent Fabrication Techniques for Bioengineered Tissue Scaffolds to Improve Peripheral Nerve Regeneration / A Rajaram, X.B.Chen, D.J. Schreyer // J. Trauma Acute Care Surg., 2012, Vol. 72, no. 1, pp. 199-205.
4. Gordon T., The basis for diminished functional recovery after delayed peripheral nerve repair // T.Gordon, N.Tyreman, M.A. Raji //J. Neurosci. 2011; 31: 5325-34.
5. Masgutov R.F. Sovremennye tendencii lechenija povrezhdenij perifericheskih nervov/ R.F. Masgutov, A.A. Rizvanov, A.A. Bogov (ml.), A.R. Galljamov, A.P. Kijasov, A.A. Bogov// Prakticheskaja medicina. 2013. № 2(69). S.99-103.
6. Sunderland S. Peripheral nerve trunks. In:Nerves and Nerve Injuries. Second ed. Edinburgh:Churchill Livingstone; 1978: 31-60.
7. Graif M, Sciatic nerve: sonographic evaluationand anatomic-pathologic considerations/ M. Graif, A Seton, J Nerubai, H. Horoszowski, Y. Itzchak. Radiology 1991. T.181. S.405-408.
8. Moayeri N, Differences in quantitative architecture of sciatic nerve may explaindifferences in potential vulnerability to nerveinjury, onset time, and minimum effectiveanesthetic volume /N Moayeri, G.J. Groen//Anesthesiology. 2009. T.111. S.1128-1134.
9. Balandina I.A. Morfometricheskie harakteristiki mielinovyh volokon sedalishhnogo nerva / I.A. Balandina, T.N. Zheltikova, I.G. Zheltikov, V.I Aliev//Fundamental'nye issledovanija. 2013. №5. S. 28-32.
innova-iournal.ru
10. Mustafin A.G. Anterogradnyj transport belkov aksonami motonejronov spinnogo mozga krys, aptirovannyh i ne adaptirovannyh k vozdejstviju fizicheskoj nagruzki//Zhurnal nauchnyh statej Zdorov'e i obrazovanie v XXI veke. 2014. T. 16. № 4. S. 49-51.
11. Masgutov R.F. Stimuljacija posttravmaticheskoj regeneracii sedalishhnogo nerva krysy pri ksenotransplantacii mul'tipotentnyh mezenhimal'nyh stromal'nyh kletok zhirovoj tkani/ R.F. Masgutov, G.A. Masgutova , I.I. Salafutdinov, A.A. Shul'man, M.N. Zhuravleva, A.R. Galljamov, A.A. Bogov, A.A. Rizvanov //Geny i kletki. 2015. T. 10. № 1. S. 98-102.
12. Angelica-Almeida M. Angiomorphological comparison of the sciatic nerve of the rat and the human median nerve: implications in experimental procedures/ M. Angelica-Almeida, D. Casal, M. Mafra, L. Mascarenhas-Lemos, J. Martins-Ferreira, M. Ferraz-Oliveira, D. Pais, J. Amarante, J. Goyri-O'neill // Official Journal of the Portuguese Anatomical Society.2014. P. 31-51.
13. Artifon EL, Aerobic training previous to nerve compression: morphometry analysis of muscle in rats/E.L Artifon, L.I. Silva, L.F.Ribeiro , R.M.Brancalhäo, G.R. Bertolini //Rev. Bras Med Esporte. 2013;19(1):66-9.
14. Beyreuther B, Antinociceptive efficacy of lacosamide in the monosodium iodoacetate rat model for osteoarthritis pain /B. Beyreuther, N.Callizot, T.Stöhr // Arthritis Res. Ther. 2007;9(1):R14.
15. Dronov S.N. Ul'trastruktura sedalishhnogo nerva krys s modelirovannoj streptozotocin-inducirovannoj nevropatiej v uslovijah primenenija preparatov a-lipoevoj kisloty//Morfologija. 2014. T. 8. № 3. S. 17-22.
16. Strafun S.S. Ul'trastrukturnaja ocenka vosstanovlenija travmirovannogo sedalishhnogo nerva pri autoplastike ego bol'shih defektov u krys v jeksperimente/ S.S. Strafun, V.V. Gajovich, S.I. Savos'ko//Ukrainskij nejrohirurgicheskij zhurnal. 2014. № 4. S. 50-54.
17. Gulieva N. T. Morfofunkcional'nye osobennosti strukturnyh izmenenij jepinevral'nyh mikrososudov sedalishhnyh nervov beloj krysy pri jeksperimental'noj jendotoksemii/ N. T. Gulieva// Ukrainskij zhurnal klinicheskoj laboratornoj mediciny. 2013. Tom 8. № 4. S. 93-98.
18. Seljakin S.P. Posttravmaticheskaja regeneracija sedalishhnogo nerva v uslovijah deficita simpaticheskoj innervacii. Avtoref. dis.... kand. med. nauk: (14.00.02; 14.00.23) / S.P.Seljakin; Mordovokij gosudarstvennyj universitet imeni N. P. Ogareva. - Saransk 1994. - 31s.
19. Shhudlo N.A. Jeksperimental'noe issledovanie vlijanija vitaminov V9 i E na posttravmaticheskuju regeneraciju nerva/ N.A. Shhudlo, M.M. Shhudlo//Mezhdunarodnyj zhurnal prikladnyh i fundamental'nyh issledovanij. 2016. № 6-3. S. 496-500.
20. Popel' S. L., Strukturnyj i morfometricheskij analiz nervnyh volokon sedalishhnogo nerva krys raznogo vozrasta v norme i pri gipokinezii /S.L.Popel', B. M. Myckan // Zhurnal Grodnenskogo medicinskogo universiteta. 2016. №1. S.60-66.
21. Popel' S.L. Nejrono-glial'nye vzaimodejstvija v perednih rogah spinnogo mozga pri dolgovremennoj gipokinezii//Vestnik problem biologii i mediciny. 2015. T. 1. № 2. S. 256-260.
22. Research article Nociceptive neurons and evaluation of the sciatic nerve of Wistar rats subjected to compression-trauma and treatment with resistive exercise/article Resec// pain Research and management. 2015. ID 6487160. P. 1-7.
23. Ivanov. A. N. Autotransplantacija polnoslojnogo kozhnogo loskuta kak sposob biostimuljacii mikrocirkuljacii v uslovijah normal'noj i narushennoj innervacii/ A.N. Ivanov, I.E. Shutrov, I.A. Norkin //Regionarnoe krovoobrashhenie i mikrocirkuljacija. 2015. T. 14. № 3 (55). S. 5965.
24. Ivanov A.N. Izmenenija mikrocirkuljacii pri kombinirovannoj stimuljacii v uslovijah narushennoj innervacii/ A.N. Ivanov, I.E. Shutrov, V.G. Ninel', G.A. Korshunova, D.M. Puchin'jan, I.A. Norkin//Sovremennye problemy nauki i obrazovanija. 2016. № 3. S. 100.
25. Ivanov A.N. Osobennosti izmenenij mikrocirkuljacii pri otsrochennoj nejrorafii sedalishhnogo nerva v uslovijah jeksperimenta/A.N. Ivanov, I.E. Shutrov V.G., Ninel', G.A. Korshunova, D.M. Puchin'jan, I.A. Norkin//Fundamental'nye issledovanija. 2015. № 1-5. S. 958-961.
26. Ivanov A.N. Osobennosti izmenenij mikrocirkuljacii pri regeneracii sedalishhnogo nerva v uslovijah jeksperimenta/A.N. Ivanov, I.A. Norkin, V.G. Ninel', I.N. Shhanicyn, I.E. Shutrov, D.M. Puchin'jan//Fundamental'nye issledovanija. 2014. № 4-2. S. 281-285.
27. Shutrov I.E. Denervacionnaja giperchuvstvitel'nost' sosudov mikrocirkuljatornogo rusla pri povrezhdenii sedalishhnogo nerva u belyh krys i sposoby ee korrekcii/ I.E. Shutrov, A.N. Ivanov, I.A. Norkin //Uspehi sovremennoj nauki i obrazovanija. 2016. T. 8. № 12. S. 86-90.
28. Ninel' V.G. Gistomorfologicheskaja ocenka jeffektivnosti vozdejstvija peremennogo magnitnogo polja i impul'snogo toka na regeneraciju sedalishhnogo nerva krys v jeksperimente/ V.G. Ninel', I.A. Norkin, D.M. Puchin'jan, N.V. Bogomolova, G.A. Korshunova, O.V. Matveeva, Sh.M. Ajtemirov // Fundamental'nye issledovanija. 2012. № 12. S. 336-340.
29. Lihodievskij V.V. Vosstanovlenie sedalishhnogo nerva krysy posle travmy i lechenija s ispol'zovaniem jelektrohirurgicheskogo instrumenta v rezhime svarivanija/ V.V. Lihodievskij, A.V. Korsak, Ju.B. Chajkovskij, O.I. Krivosheeva, E.G. Lopatkina, V.A. Chernec//Ukrainskij nauchno-medicinskij molodezhnyj zhurnal. 2015. № 38(89). S. 30-35
30. Korsak A.V. Immunogistohimicheskaja harakteristika perifericheskogo otrezka travmirovannogo sedalishhnogo nerva krysy posle operativnogo lechenija s ispol'zovaniem vysokochastotnoj jelektrosvarochnoj tehnologii/A.V. Korsak, Ju.B. Chajkovskij, V.V. Lihodievskij, O.I. Krivosheeva, A.V.Chernec//Nauka i Mir. 2015. T. 1. № 9 (25). S. 105-108.
31. Korsak A.V. Nejroglial'nye vzaimootnoshenija afferentnogo segmentarnogo centra travmirovannogo sedalishhnogo nerva krysy v uslovijah primenenija vysokochastotnoj jelektrosvarochnoj tehnologii i preparata traumel' S/ A.V. Korsak, V.V. Lihodievskij, L.M. Sokurenko//Simvol nauki. 2015. № 8. S. 260-264.
32. Carev A.A. Izmenenija GMC rusla myshc zadnih konechnostej krys pri povrezhdenii bedrennogo i sedalishhnogo nervov//Vestnik problem biologii mediciny. 2013. Vyp. № 1. tom № 2(99). S. 246-250.
33. Gajovich V.V. Vlijanie obogashhennoj trombocitami plazmy na vosstanovlenie nerva i myshcy posle ih travmaticheskogo povrezhdenija //Ukrainskij nejrohirurgicheskij zhurnal . 2014. № 3. S. 79-83.
34. Zhivolupov S.A. Osobennosti reaktivnyh nejroplasticheskih izmenenij pri jeksperimental'noj travmaticheskoj nevropatii sedalishhnogo nerva /S.A. Zhivolupov, L.S. Onishhenko, E.N. Gnevyshev, N.A. Rashidov, I.N. Samarcev, E.V. Jakovlev , V.D. Pronin, A.A. Jurin//Vestnik Rossijskoj voenno-medicinskoj akademii. 2015. № 2 (50). S. 163-169.
35. zhivolupov S.A. Retrogradnye izmenenija v spinnom mozge krys posle ostroj kompressionno-ishemicheskoj nevropatii sedalishhnogo nerva /S.A. Zhivolupov, N.A. Rashidov, L.S. Onishhenko, E.V. Jakovlev// Vestnik Rossijskoj voenno-medicinskoj akademii. 2012.№ 4(40). S. 156-162.
J 39
innova-iournal.ru
