CC BY
163
Морфологические и биохимические показатели крови коров после отёла под влиянием иммуностимулятора
А.В. Воробьев, к.в.н., Самарская НИВС
Одной из ведущих отраслей животноводства является молочное скотоводство. Практика ведения молочного скотоводства показала, что во многих хозяйствах различных регионов России отмечается широкое распространение мастита в лактацию и сухостойный период [1, 2].
Проблема широкого распространения послеродовых заболеваний у коров с каждым годом становится все актуальнее. Большое экономическое и санитарно-эпидемиологическое значение данных заболеваний ставит мастит и другие послеродовые заболевания в число наиболее значимых, так как суммарные потери эквивалентны стоимости 10—15% произведённой продукции [3]. Всё это требует разработки средств и методов для повышения биологического статуса животных. Применение иммунотропных препаратов в послеродовый период существенно снижает число, длительность и тяжесть проявления патологий за счёт стимулирующего влияния на неспецифические факторы естественной резистентности [4, 5, 6, 7].
Кровь — стационарная физико-химическая система, чутко реагирующая на сдвиги в гомеостазе, представляет надёжный индикатор текущего состояния организма. Изменения, происходящие в крови, находятся в прямой зависимости от функционального, возрастного, иммунного статуса животного и антигенной нагрузки [8, 9].
Изучению возрастной и физиологической изменчивости гематологических показателей крупного рогатого скота уделяется много внимания, но полученные выводы имеют противоречивый характер. В ряде опытов установлена связь между морфологическими и биохимическими характеристиками крови и скоростью роста животных, величиной удоя, возникновением послеродовых заболеваний [10, 11, 1].
Эритроциты выполняют важную функцию — снабжение тканей организма кислородом, поэтому любое нарушение эритропоэза ведёт к тяжёлым последствиям во всем организме. Лейкоциты занимают одно из важных мест в оценке физиологического состояния организма животных, его резистентности и иммунобиологической реактивности. Клетки белой крови выполняют транспортную, антитоксическую функции, а также участвуют в защитных реакциях организма, тем самым помогая ему противостоять
неблагоприятным факторам внешней и внутренней среды. Они способны синтезировать гамма-глобулины, специфические иммуноглобулины и антитела, поглощать и уничтожать микробные клетки, транспортировать к клеткам тканей питательные вещества, инактивировать токсины и пр. Биохимические изменения в сыворотке крови отражают состояние гомеостаза и чутко реагируют на все изменения. Наиболее показательными являются изменения количества белка и продуктов его обмена, а также показатели ферментов, участвующих в аминокислотном обмене [9, 10].
Эксперимент проводили на молочнотоварной ферме в ЗАО «Агрофирма им. Ленина» Ставропольского района и ООО «Победа» Волжского района Самарской области. Объектом исследований служили коровы чёрно-пёстрой породы 2—5 лактации. Коровам в количестве 15 голов (опытная группа) через 24—72 часа после отёла внутрибрюшинно (в дозе 5 мл) вводили препарат, состоящий из полного бактериального инактивированного антигенного комплекса непатогенных бактерий рода Bacillus, обладающий иммуностимулирующим действием, изготовленный в научно-производственной лаборатории Самарской НИВС. Контрольная группа в количестве 15 голов подобрана по принципу аналогов. В ходе опыта изучали морфологический состав крови коров. Кровь для исследований отбирали до обработки, через 24 часа, 20 и 30 дней, затем ежемесячно в течение пяти месяцев. Морфологический состав крови исследовали при помощи автоматического геманализатора «Абакус». Определение СОЭ — по методу Панченкова. Для подсчёта лейкоформулы использовали компьютерную программу Видеотест 5.
Сыворотку крови исследовали по десяти биохимическим показателям (кальций, холестерин, фосфор, альбумины, общий белок, креатинин, АЛТ, АСТ, общий билирубин, мочевина) фото-колориметрическим методом на фотометре КФК-3-01.
В ходе исследований получены следующие результаты. После применения экспериментального препарата у животных не отмечалось негативных реакций на его введение. Характер основных физиологических показателей (Т, П, Д) и поведенческих реакций не изменялся.
Среднее количество эритроцитов через сутки повысилось с 5,41-10 Т/л до 6,32 Т/л (на 16,8%). Через 20 дней количество превышало исходный
показатель на 8,1%. Через 2, 3, 5 месяцев число эритроцитов оставалось в верхних пределах физиологической нормы (6,68; 6,70; 6,40 соответственно), но превышало исходные показатели. В контроле количество эритроцитов находилось на нижних пределах нормы. Среднее количество гемоглобина и объём эритроцитов у животных опытной группы находились в пределах нормы. Гематокритный показатель у опытных животных через сутки после применения препарата повысился с 26,47 л/л до 29,81, через 20 дней он составил 39,4 л/л, затем в течение трёх месяцев произошла его нормализация. В контроле данный показатель не изменялся.
Среднее содержание гемоглобина в эритроцитах через сутки повысилось с 14,6 до 16,72 пг. Через 20 дней оно достигло 22,6 пг. В последующие три месяца этот показатель снизился до фонового. Средняя концентрация корпускулярного гемоглобина через сутки повысилась от 359,61 до 378,36 г/л. В последующем этот показатель постепенно снизился до нормы. Скорость оседания эритроцитов через 24 часа после введения препарата увеличилась с 1,61 до 4,5 мм/ч , но через 20 дней и в последующем — увеличилась до исходного уровня.
Количество тромбоцитов после введения препарата несколько снизилось — от 287,03 до 275 тыс./мкл на второй день, через 20 дней составило 240, затем постепенно нарастало. В то же время объём тромбоцитов через 24 часа после введения иммуностимулятора повысился с 5,83 до 6,02 фл., после чего постепенно достиг первоначального уровня. Тромбокритный показатель в контроле и опыте не имел значимых различий.
Средняя величина лейкоцитов у животных опытной группы через сутки после применения препарата сократилась от 6,21 до 5,34 тыс./мкл. Через 20 дней их число выросло до 6,56, к моменту завершения опыта их количество приблизилось к норме — 5,73. В контроле количество лейко-
цитов не изменилось и находилось в пределах физиологической нормы.
Лейкоцитарная формула коров до введения иммуностимулятора характеризовалась эозино-филией (8,0). Через сутки после применения препарата количество эозинофилов снизилось до 6,92. Через 20 дней их число составило 5,1. Доля палочкоядерных нейтрофилов за период наблюдения повышалась от 5,2 в начале опыта до 6,0 через сутки, через 20 составляла 5,62, через два месяца — 6,0. Количество сегментоядерных нейтрофилов за период наблюдений не претерпевало существенных изменений.
Количество лимфоцитов через сутки после введения препарата возросло от 63,97 до 65,08. Затем продолжало повышаться до 66,3 (20 дней) и 67,0 (2 месяца), в дальнейшем снизилось до фоновых показателей. Количество моноцитов через сутки после начала опыта повысилось от 1,66 до 1,86, затем они проявили тенденцию к понижению до начальных показателей.
Картина крови коров послеродового периода трансформировалась под влиянием испытуемого препарата. Изменения эритроцитарного профиля проявлялись в некотором увеличении количества эритроцитов, гематокрита, среднего содержания гемоглобина в эритроцитах. Лейкоцитарное звено крови опытных коров также подверглось изменениям, которые выражались первоначальным снижением общего количества лейкоцитов с последующим повышением. Изменения в лейкоформуле характеризовались увеличением количества палочкоядерных лейкоцитов, лимфоцитов и моноцитов.
Основные результаты изменения биохимических показателей сыворотки крови представлены в таблице 1.
Анализ таблицы позволяет делать следующие выводы. Количество общего белка и других показателей в сыворотке крови находилось в пределах физиологической нормы на протяжении опыта.
1. Биохимические показатели крови коров
Показатель До введения препарата (п-30) После введения препарата (п-15) Контроль (п-15)
средн. тах тіп средн. тах тіп средн. тах тіп
Общий белок г/л 83,95+0,3 110,7 70,1 83,16+0,3 95 69,3 73,26+0,5 80,9 66,9
Альбумины г/л (%) 43,6±0,3 55,3 35,1 44,8+0,4 52,2 33,4 47,7+0,1 48 46
(51,93) (53,87) (65,11)
Глобулины г/л (%) 40,35 50,05 49,93 38,36 45,05 51,81 25,56 40,67 31,24
(48,07) (46,13) (34,89)
Креатинин мкМ/л 113,2+1,2 160 75,2 116,1+0,7 163 64,8 106,6+0,5 112 100,2
АЛТ мкк/л 0,055+0,9 0,14 0,02 0,06+0,6 0,12 0,02 0,16+0,7 0,14 0,11
АСТ мкк/л 0,13+0,6 0,21 0,1 0,04+0,9 0,14 0,01 0,04+0,4 0,05 0,01
Мочевина мкмоль/л 5,45+0,8 7,2 4,3 5,54+0,5 6,7 4,4 6,62+0,3 6,7 6,1
Билирубин мкМ/л 13,1+1,5 53,8 4,1 6,3+1,1 11,2 1,4 6,9+0,6 7,7 5,9
Холестерин ммоль/л 2,5+0,4 4 2 3,31+0,4 3,9 2,1 4,5+0,3 5,1 3,7
Фосфор мМ/л 2,3+0,6 7,4 0,6 1,7+0,3 2,8 1 1,6+0,5 1,8 1,3
Кальций мМ/л 1,8+0,6 2,3 1,3 2,2+0,3 2,5 1,9 2,2+0,3 2,9 1,8
Количество глобулинов у животных опытной группы в сравнении с фоновыми показателями сократилось на 4,93%, в то же время в контроле данный показатель уменьшился на 36,65%. Альбуминовая фракция у опытных и контрольных животных изменялась незначительно. Креати-нин у опытных животных повысился на 2,56%, тогда как в контроле его число уменьшилось на 5,83%. Активность аспартатаминотрансферазы в опыте и контроле существенно не отличалась. Изменения аланинаминотрансферазы в опыте характеризовались повышением на 9,09%, у контрольных животных данный показатель повысился в 2,9 раза. Количество мочевины у опытных животных возросло на 1,65%, у контрольных — на 21,47%. Билирубин у обеих групп животных снизился, в опыте — на 51,9%, в контроле — на 47,3%. Содержание холестерина у контрольных и опытных животных увеличилось на 80 и 32,4% соответственно.
По данным биохимических исследований крови коров опытной группы можно сделать вывод о том, что применение бактериологического иммуностимулятора, изготовленного в НПЛ Самарской НИВС, ведёт к нормализации биохимических процессов в организме животных.
Литература
1. Нежданов А.Г., Шахов А.Г. Послеродовые гнойно-воспа-лительные заболевания матки у коров // Ветеринарный консультант. 2005. № 22. С. 11-13.
2. Порфирьев И.А. Диспансеризация коров для создания здорового высокопродуктивного стада // Ветеринария. 2008. № 10. С. 46-49.
3. Париков В.А., Мисайлов В.Д., Нежданов А.Г. Состояние и перспективы научных исследований по борьбе с маститом у коров//Матер. Межд.научно-практ.конф.,посвящ. 35-ле-тию организации ВНИВИПФиТ. Воронеж, 2005. С. 65-67.
4. Агольцов В.А. Применение анатоксинов из грибов при маститах // Ветеринарный врач. 2004. № 2(18). С. 41—43.
5. Иванов Е.Н., Тремасов М.Я. Гематологические показатели крови и факторы неспецифической резистентности организма овец при воздействии микотоксинов и профилакти-чеком применении препарата на основе Bacillus subtilis // Ветеринарный врач. 2009. № 1. С. 8—11.
6. Чохатариди Л.Г., Каргинов Т.В., Чохатариди Г.Н. Влияние бактериальных препаратов на иммунологические показатели крови коров // Ветеринарный врач. 2009. № 4. С. 63—66.
7. Sladek Z., Rysanek D., Faldina M. Activation of phagocytes during initiation and resolution of mammary gland injury induces by lipopolysacharide in heifers.// Veter. Res., 2002. Vol. 33, № 2. P. 191-204.
8. Бажибина Е.Б, Коробов A.B., Середа С-.В., Сапрыкин В.П. Методологические основы клинико-морфологических показателей крови домашних животных. М.: Аквариум, 2004. 128 с.
9. Громыко Е.В. Оценка состояния организма коров методами биохимии // Экологический вестник Северного Кавказа. 2005. № 2. С. 80-94.
10. Багманов М.А., Мухаметгалиев P.M. Некоторые морфологические, биохимические и иммунологические показатели крови коров до и после родов // Мат. науч.-произв. конф. по актуальным проблемам ветеринарии и зоотехнии. 4.2. Казань, 2001. С. 11-12.
11. Бикташев Р.У., Мухутдинов Д.М. Биохимический статус высокопродуктивных коров при скармливании жировых добавок в период раздоя // Ветеринарный врач. 2009. № 1. С. 31-33.
