CC BY
77
УДК 616.5-089.843-036.8-089.169.1:611.778
МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ АСПЕКТЫ АДАПТИВНО-ИНТЕГРАТИВНОЙ РЕАКЦИИ КОЖНЫХ ЛОСКУТОВ НА РАННИХ СРОКАХ ПОСЛЕ ИХ ПЕРЕСАДКИ
Ирина Станиславовна МАЛИНОВСКАЯ1, Владимир Федорович БАЙТИНГЕР12, Елена Николаевна БАРАНОВА1, Константин Владимирович СЕЛЯНИНОВ12, Станислав Вячеславович МАЛИНОВСКИЙ1, Сергей Валентинович ЛОГВИНОВ1
1ГОУ ВПО Сибирский государственный медицинский университет Росздрава 634050, г. Томск, Московский тракт, 2
2АНО НИИ микрохирургии ТНЦ СО РАМН 634040, г. Томск, ул. И. Черных, 96
Исследованы сосудистые и тканевые реакции кожных трансплантатов после различных способов пересадки (несвободная транспозиция, несвободная транспозиция с симпатэктомией сосудистой ножки, свободная реплантация). На основании изученных морфофункциональных изменений тканей трансплантатов выделены и систематизированы периоды их адаптивно-интегративной реакции.
Ключевые слова: несвободный кожно-фасциальный паховый лоскут, свободный кожно-фасциальный паховый лоскут, симпатэктомия сосудистой ножки лоскута, адаптация и интеграция кожных трансплантатов.
Одной из распространенных оперативных моделей в пластической хирургии является паховый лоскут для закрытия больших дефектов покровных тканей без эстетического ущерба для донорской зоны. Его применение весьма обширно: повреждения конечностей, реконструкции дефектов ротовой полости и лица, фаллопластика, процессы «префабрикации» лоскутов, экспериментальная микрохирургия, тканевая инженерия для размещения биологического реактора и др. [1—4]. В связи с широким использованием различных методов пересадки комплексов тканей в практике хирургов возник термин «болезнь лоскута», основанный на осложнениях, возникающих в ходе его адаптивно-интегративных реакций. Расстройства гемоциркуляции и денервация лоскута вызывают длительный отек его тканей, поздние сосудистые тромбозы, периферический некроз. По данным разных авторов адаптация и интеграция трансплантата зависят от типа пересадки (свободная, несвободная), толщины лоскута, степени рубцовых изменений тканей воспринимающего ложа, площади соприкосновения лоскута с окружающими тканями и качества сопоставления раневых поверхностей. Адекватная васкуляризация лоскута является основой его успешной приживаемости [1, 2, 5]. Также важное значение
в приживлении трансплантата отводится лимфообращению и иннервации: А.В. Домников обнаружил, что при изменениях микроциркуляции трансплантата резко возрастает объемная плотность лимфатических сосудов и интерстициальных пространств; Г.А. Марсак доказал, что денервация трансплантата замедляет васкуляризацию, эпителизацию и коллагенообразование в нем; J. ВапЬш^, М. Siemionow установили, что выполнение периадвентициальной симпатэктомии сосудистой ножки лоскута ведет к длительной вазодилатации и гиперчувствительности к вазо-дилататорам [2, 6—10].
Важной задачей современной пластической и реконструктивной хирургии является разработка новых методов и поиск факторов, обладающих максимальной способностью влиять на процессы адаптации и интеграции трансплантатов. Однако в связи с отсутствием единой концептуальной базы морфофизиологических изменений трансплантата в ходе его приживления эта задача еще не решена и сохраняет свою актуальность. Цель настоящего исследования состояла в выявлении морфологических закономерностей адаптации и интеграции кожных трансплантатов в эксперименте. Исходя из поставленной цели, были сформулированы задачи: разработать модели экспериментальной трансплантации несвободного
Малиновская И.С. — к.м.н., доцент кафедры гистологии, цитологии и эмбриологии, e-mail: is_malinovskaya@mail.ru Байтингер В.Ф. — д.м.н., проф., зав. кафедрой оперативной хирургии и топографической анатомии, директор НИИ микрохирургии, e-mail: baitinger@mail.tomsknet.ru
Баранова Е.Н. — аспирант кафедры гистологии, цитологии и эмбриологии, e-mail: enbaranova@sibmail.com Селянинов К.В. — к.м.н., доцент кафедры оперативной хирургии и топографической анатомии, ученый секретарь НИИ микрохирургии, e-mail: kostya-ivanow@yandex.ru
Малиновский С.В. — к.м.н., доцент кафедры анатомии человека, e-mail: is_malinovskaya@mail.ru Логвинов С.В. — д.м.н., проф., зав. кафедрой гистологии, цитологии и эмбриологии, e-mail: s_logvinov@mail.ru
и свободного аксиальных паховых лоскутов у крыс и изучить клеточно-тканевую реакцию в лоскуте и реципиентном ложе в зависимости от условий его пересадки (свободная, несвободная), а также в сочетании с паравазальной симпатэктомией.
Материал и методы
Эксперименты проведены на половозрелых беспородных белых крысах обоего пола с массой 200—230 г в соответствии с «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных». Оперативные вмешательства и выведение из эксперимента осуществлялись под однократным внутримышечным наркозом раствором «Zoletil-50»® («Virbac», Франция) из расчета
2 и 5 мг/кг соответственно. Животные были распределены на 3 группы: крысам первой группы (n = 48) была проведена операция несвободной трансплантации аксиального пахового лоскута (НАПЛ), второй (n = 48) — операция несвободной трансплантации аксиального пахового лоскута в сочетании с паравазальной симпатэк-томией (НАПЛ СЭ), третьей (n = 55) — операция свободной реплантации аксиального пахового лоскута (САПЛ). «Подъем» лоскута осуществляли по методике F. Finseth на сосудисто-нервном пучке, состоящим из поверхностных надчревных артерии, вены и нерва [11]. Симпатэкто-мию сосудистого пучка (удаление адвентиции поверхностных надчревных сосудов) производили на протяжении 1 см в участке отхождения от бедренных сосудов. Длительность операций 1-й, 2-й групп составляла 45—60 мин [10, 12]. Для реплантации САПЛ использовали метод P.G. van der Sloot [13]. Длительность операции составляла 2 час 45 мин, время пережатия сосудов при выполнении микрососудистых анастомозов —30—45 минут. Летальные исходы у животных отсутствовали. Раневую поверхность промывали раствором «Антисептин», на рану накладывали стерильную повязку (до 4-х сут). Швы снимали на 7-е сут после операции. Через 3, 5, 7, 10, 14, 30 сут после операций животных выводили из эксперимента и забирали материал лоскута для исследования. Контролем служила кожа паховой области интактных животных (n = 12). Подсчет клинических исходов операций осуществляли в абсолютных и относительных величинах.
Среди макроскопических критериев учитывали отечность, капиллярный ответ, состояние краев ран и швов, наличие некроза, степень оволосения. Морфофункциональные изменения сосудов лоскута (характер хода, наличие анастомозов, дилатаций) изучали на макропрепаратах после внутрисосудистого введения синей массы Героты под постоянным давлением в вену
60—70 мм рт. ст. и в артерию 100—110 мм рт. ст. Численную плотность артерий и вен, включая звенья микроциркуляторного русла, подсчитывали по препаратам, полученным от 6 крыс для каждой контрольной точки (в каждом препарате подсчет проводился в 5 полях зрения, после чего производился пересчет количества сосудов на 1 мм2). Для исследования тканевой реакции материал фиксировали в 12% растворе нейтрального формалина и жидкости Карнуа. Гистологические срезы толщиной 7—10 мкм окрашивали гематоксилином и эозином. На гистологических препаратах подсчитывали количество слоев эпителио-цитов и фибробластов в лоскуте, включая зону рубца. В каждом препарате подсчет проводили в 50 полях зрения (* 400), после чего пересчитывали количество структурных элементов на 1 мм2. Гликоген и нейтральные гликопротеиды выявляли с помощью ШИК-реакции по Мак — Манусу, гликозаминогликаны — окраской альциановым синим по Стидмену (рН 1,0; 2,5). Для получения полутонких срезов материал фиксировали в 2,5% глютаральдегиде, забуференном на 0,2 М какодилатном буфере (рН 7,2) с постфиксацией в 1% растворе четырехокиси осмия и заливкой в аралдит. Срезы, полученные на ультратоме LKB-Ш (Швеция), окрашивали толуидиновым синим. Ультраструктурную организацию тканей лоскутов изучали на трансмиссионном электронном микроскопе ^ЕМ-100 СХ11» («JEOL», Япония). Полученные результаты обрабатывали в программе <^а^ка 6.0». Для описания данных использовали медиану (Ме), нижний (LQ) и верхний (UQ) квартили. Для определения достоверности различий количественных признаков применяли критерии Крускала—Уоллиса и Манна—Уитни.
Результаты и обсуждение
В течение нескольких часов после операции, независимо от способа пересадки, лоскут бледный, повязка умеренно пропитана кровью и серозным отделяемым по ходу раны. При неосложненном течении к 3—4-м сут эти явления исчезали, окраска лоскутов соответствовала окружающим тканям, заживление шло первичным натяжением. На 5-е сут в области краев ран наблюдались единичные участки мелкопластинчатого шелушения. Полное заживление ран происходило к 10—12-м сут (рубец эпителизирован, струп отсутствует), определялись контуры лоскута, образованные формирующейся рубцовой тканью. К 14-м сут на лоскутах наблюдались единичные волоски, а к 30-м сут — обильный волосяной покров. В 1-й и 3-й группах количество исходов с приживлением лоскута сопоставимо и составило
Таблица 1
Клинические исходы пересадок аксиальных паховых кожных лоскутов, %
Исход 1 группа (НАПЛ) 2 группа (НАПЛ СЭ) 3 группа (САПЛ)
Приживление 92 76,1 92,7
Отторжение 7,2 23,8 7,3
Осложнения 26,2 28,6 29,1
Длительный отек (более 14 сут) 26,2 23,8 7,3
Недостаточность венозного оттока - 9,5 7,3
Венозный тромбоз - 23,8 7,3
Краевой некроз 7,2 - 21,8
Тотальный некроз 7,2 23,8 7,3
92 и 92,7% соответственно (табл. 1). Причиной отторжения лоскутов был их тотальный некроз, который у животных 1-й группы развился из краевого (7,2%), 2-й группы—в результате тромбоза осевой вены (23,8%), 3-й группы—по причине развития периферического некроза и тромбоза бедренной вены (7,3%). Некроз возникал в период со 2-х по 5-е сут. По данным литературы, частота такого осложнения от 7,9 до 26,6% для периферических некрозов и от 5,3 до 6,3% — для тотальных некрозов [1—3, 14]. В ходе проведенного эксперимента установлено, что внедрение в целостность паравазальных структур провоцирует развитие венозного тромбоза, заканчивающегося гибелью всего пересаженного тканевого комплекса, что подтверждается данными других исследователей [2, 10].
А.Е. Белоусов [2] в ходе адаптации и интеграции трансплантатов выделяет 3 основные стадии, базирующиеся преимущественно на сосудистых реакциях. Поскольку мы не нашли в литературе стадийного описания морфологических и уль-траструктурных изменений тканей трансплантатов после их пересадки, нами была предпринята попытка систематизировать имеющиеся сведения и полученные данные собственных исследований. Так, в процессе адаптивно-интегративной реакции кожного трансплантата можно выделить
3 основных периода: 1 — период острых сосудистых нарушений и травматического воспаления (1—7 сут), 2 — период образования сосудистых связей и пролиферации (5—14 сут), 3 — период окончательной перестройки сосудистого русла и реорганизации трансплантата (с 14-х сут).
1. Ранние сосудисто-тканевые реакции в пересаженных лоскутах всех экспериментальных групп имели качественно идентичную картину, отличаясь степенью их выраженности и длительностью. Адаптация трансплантированного комплекса тканей начинается в интраоперационном периоде и в лоскутах 1-й и 2-й групп проявляется сначала спазмом сосудов, а затем их рас-
ширением. После реперфузии тканей свободного лоскута (3-я группа) прослеживается кратковременная вазодилатация, которая через несколько секунд сменяется распространенным спазмом, продолжающимся в течение 2—3-х сут. Далее вследствие ишемии и развивающегося метаболического ацидоза сосуды лоскута вновь расширяются. При этом в лоскутах всех групп отмечается блокада сосудов микроциркуляторного русла, особенно выраженная на периферии. Гистологическое исследование тканей лоскутов данного периода выявили расширенные сосуды с явлениями полнокровия, стаза, агрегации форменных элементов и отека стенки (рис. 1). Удельная площадь открытых сосудов уменьшена по срав-
Рис.1.А. Тромбоз и отек стенки вены НАПЛ, 3-е сутки после операции, х 1900.
Рис.1.Б. Тромбоз вены НАПЛ, 5-е сутки после операции, х 2900.
нению с таковой с явлениями полнокровия, стаза, сладжа и тромбоза. Кровеносных капилляров мало как в периферической, так и в центральной части лоскута. Просветы ряда сосудов перекрыты выбухающими гипертрофированными эндотелиоцитами с крупными гиперхром-ными ядрами, в цитоплазме которых много везикул и расширенных цистерн ретикулума. Около сосудов наблюдаются скопления ориентированных в продольном и поперечном направлениях коллагеновых фибрилл, формирующих вокруг них капсулоподобные образования. Между элементами межклеточного вещества в непосредственной близости от сосудистой стенки располагаются многочисленные макрофаги и тучные клетки. Тканевая реакция лоскутов всех групп имеет типичную картину травматического воспаления [15]. Расположение клеток эпидермиса на границе между лоскутом и реципиентным ложем хаотичное, слои не выражены, эпителиальный пласт истончен. В участках операционной раны базальная мембрана прерывистая с очагами деструкции, кератиноциты разобщены, в их цитоплазме много свободных рибосом и полисом, между клетками отсутствуют контакты. Среди эпителиальных клеток встречаются лейкоциты. Начиная с 5—7-х сут, эпителиоциты приобретают характерные черты, базальная мембрана в очагах повреждения восстановлена, хорошо просматриваются десмосомы и полудесмосомы. Среднее количество слоев эпидермиса лоскутов всех групп достоверно снижено по сравнению с контролем. В дерме с 3-х по 5-е сут сосочковый слой на границе с реципиентным ложем не выражен, коллагеновые волокна дезориентированы, различной толщины, с плохо определяемой фибриллярно-стью, эластических волокон мало, в основном веществе преобладают несульфатированные гли-козаминогликаны. В центральной зоне лоскутов архитектоника дермы обычного строения.
Численная плотность фибробластов в лоскутах всех групп статистически значимо снижена до 7-х сут по сравнению с контролем. При этом отмечается нарастание синтетической активности клеток, которая проявляется в накоплении ШИК-позитивных гликопротеидов в межклеточном веществе. До 5-х сут в зоне входа сосудистой ножки определяются многочисленные юные формы фибробластов овальной или вытянутой формой, с небольшим количеством отростков и крупным светлым ядром, содержащим 1—2 ядрышка. В их цитоплазме много свободных рибосом и полисом, узкие цистерны эндоплазма-тической сети ориентированы вдоль оси клетки, комплекс Гольджи—в виде плоских и вытяну-
тых цистерн по периферии, митохондрии вариабельных форм и размеров. Зрелые фибробласты, численность которых нарастает к 10-м сут, отличаются крупными размерами, отросчатой полигональной формой, их ядра имеют характерную прикраевую конденсацию хроматина и крупные ядрышки. Среди зрелых форм выделяются 2 типа: клетки 1-го типа немногочисленны, содержат узкие, умеренно расширенные цистерны ретикулума и выраженный пластинчатый комплекс с крупными пузырьками, клетки 2-го типа составляют большинство, в их цитоплазме хорошо выражена гранулярная эндоплазмати-ческая сеть с признаками гиперплазии [16, 17]. Местами расширенные отечные канальца ретику-лума образуют сферические вакуоли, на которых четко визуализируются рибосомы и полисомы. В некоторых участках цистерны ретикулума контактируют и сливаются с мембраной, при этом отмечены явления экзоцитоза и секреции молекул коллагена. Пластинчатый комплекс выражен неодинаково во всех фибробластах: либо в виде тонких гладких трубочек и пузырьков, либо с признаками гиперплазии или не определяется. Обращают на себя внимание крупные, чаще округлой формы, митохондрии, часть из которых имеет четкую характерную конфигурацию крист с электронным содержимым средней плотности, а часть—с признаками отечности и плохо определяемым рельефом внутренней мембраны.
В периферической части лоскута, включая область формирующегося рубца и входа сосудистой ножки, клетки лейкоцитарно-макрофагального ряда образуют скопления. Среди макрофагов встречаются 2 субпопуляции — с преимущественно фагоцитарной функцией и соответствующей ультраструктурой, а также с преобладающей секреторной функцией и характерной организацией [16, 17]. Те и другие имеют полигональную форму с «изъеденными» краями, эксцентрично расположенные ядра с электронно-плотной структурой. В количественном соотношении преобладают макрофаги 1-го типа, которые имеют хорошо выраженный пластинчатый комплекс, гранулярный ретикулум в виде коротких узких цистерн, множество митохондрий различных размеров и большое количество лизосом, фагосом, содержащих фагоцитированный материал, остаточных телец, а также многочисленных везикул и мультивезикулярных телец, расположенных по периферии. В макрофагах 2-го типа (секреторных) аппарат синтеза и секреции преобладает над лизосомально-фагоцитарным. Хорошо развитый гранулярный ретикулум по объему и выраженности сопоставим с таковым
в зрелых фибробластах. Характерной ультрами-кроскопической картиной является тесное расположение фибробластов и макрофагов на периферии лоскута, вплоть до формирования простых, щелевидных и плотных межклеточных контактов (рис. 2 А). В глубоких слоях дермы и вокруг сосудов раневой зоны многочисленны тканевые базо-филы, преимущественно 2-го типа, с овальными крупными ядрами и большим количеством крупных электронно-плотных гранул (рис. 2 Б) [16, 17]. Дегрануляция клеток наблюдается на 5—7-е сут. Численность производных кожи (потовых и сальных желез, волосяных фолликулов), начиная с 3-х сут, достоверно снижена во всех группах. Данная морфофункциональная картина тканей лоскута является сутью его адаптационной реакции к изменившимся условиям существования.
2. Параллельно с усиливающейся адаптацией трансплантат начинает интегрировать в реципиентное ложе. Этот процесс инициируется формированием новых сосудистых связей между лоскутом и окружающими тканями, а также нарастающей синтетической активностью всех клеточных элементов его тканей. Прорастание единичных сосудов через формирующийся рубец в 1-й группе наблюдается на 5-е сут, а во 2-й и 3-й группах—на 7-е сут. Скорость и интенсивность прорастания неодинакова: в 1-й и в 3-й группах они преобладают по сравнению со 2-й группой. К 10-м сут численная плотность артерий в лоскутах всех групп достоверно увеличивается и превышает значения контроля, к 14-м сут в лоскутах 1-й
Таблица 2
Численная плотность сосудов (на 1 мм2) кожных аксиальных паховых лоскутов после их пересадки различными способами, Ме (LQ—UQ)
Срок наблюдения Сосуды 1-я группа (НАПЛ) 2-я группа (НАПЛ СЭ) 3-я группа (САПЛ)
3 сут артерии 4,5 (4,03-5,04) 1,1 (1,02-1,1) * ЛФ 4,36 (4,34-4,73)
вены 14,0 (11,50-14,03) * 9,02 (7,04-10,02) *ЛФ 23,53 (22,96-26,63) *
5 сут артерии 3,25 (2,91-4,03) ◊ 3,50 (2,17-6,34) ◊ 6,51 (5,49-7,04) л
вены 15,10 (14,12-17,21) ◊ 12,03 (9,80-14,11) *◊ 26,12 (24,63-26,79) *
7 сут артерии 4,36 (3,38-6,71) 4,64 (3,01-6,91) 5,67 (5,33-5,85)
вены 6,38 (3,51-7,45) *#◊ 16,06 (13,95-16,98) ЛФ 34,18 (32,58-34,36) *
10 сут артерии 9,14 (8,67-10,72) *◊ 7,21 (6,98-7,71) *◊ 15,88 (14,80-16,20) *
вены 7,52 (7,01-7,89) * #◊ 15,45 (14,98-16,05) ЛФ 24,86 (23,85-25,93) *
14 сут артерии 6,45 (5,98-7,23) ◊ 3,03 (2,91-6,95) ЛФ 20,69 (19,75-21,00) *
вены 8,07 (8,03-11,02) *# ◊ 15,12 (13,98-15,79) *л 19,94 (18,44-20,03)
30 сут артерии 6,12 (5,98-6,87) 5,03 (4,98-6,23) 7,52 (7,52-8,04) *
вены 8,23 (6,14-9,34) *# 12,35 (10,11-14,52) *л 13,65 (12,82-14,89) *л
Примечание: показатели в зоне «подъема» лоскута контрольной группы: численная плотность артерий — 4,48 (4,48-5,19) на 1 мм2, вен — 18,06 (16,56-20,53) на 1 мм2; * — р < 0,05 при сравнении с контролем;
А — р < 0,05 при сравнении с 1-й группой; # — р < 0,05 при сравнении со 2-й группой; ◊ — р < 0,05 при сравнении с 3-й группой.
Рис.2.А. Контакт макрофага 1-го типа (Мф) со зрелым фибробластом (Фб) НАПЛ, 7-е сутки после операции, х 7200.
Рис.2.Б. Капилляр, тканевый базофил (ТК) САПЛ,
отек и набухание эндотелиоцита (стрелка), 5-е сутки после операции, х 4800.
и 3-й групп этот показатель остается достоверно выше, чем в контроле (табл. 2). Численность вен достигает максимальных значений к 7-м сут и достоверно превосходит контроль в лоскутах 3-й группы, в то время как в лоскутах 1-й и 2-й групп этот показатель значимо ниже контрольных величин и показателей 3-й группы.
В сосудистом русле лоскутов 2-й группы остаются выраженные явления полнокровия и дила-тации. Множественные сосудистые анастомозы в самом лоскуте и на границе с окружающими тканями появляются к 14-м сут. Эпителизация раны и восстановление архитектоники тканей лоскута наблюдаются к 10-м сут. В дерме возрастает численная плотность и активность зрелых фибробластов. В основном веществе соединительной ткани между сульфатирован-ными и несульфатированными гликозамино-гликанами наблюдается равновесие. Коллагеновые волокна одинаковой толщины, с хорошо выраженной фибриллярностью, расположены рыхло. К 14-м сут производные кожи восстановлены, обычного строения, однако их численность снижена по сравнению с контролем.
3. К 30-м сут сосудистая архитектоника восстановлена в лоскутах всех групп. При этом в сосудах 2-й группы сохраняется вазодилата-ция осевых сосудов и отходящих от них крупных ветвей. Молодая соединительная ткань рубца преобразуется в зрелую, среди фибро-бластных клеток много фиброцитов и фибро-кластов (рис. 3). Численность фибробластов
Рис.3.А. Фибробласты в сетчатои слое дермы САПЛ: расширенные цистерны ЭПС, многочисленные лизосомы (Л), фагосомы (Фс), 30-е сутки после операции, х 5800.
Рис.3.Б. Фиброкласт (Фкл) и фиброцит (Фц)
в сетчатом слое дермы НАПЛ, 30-е сутки после операции, х 5800.
и макрофагов снижена относительно показателей контроля. Тканевые базофилы встречаются преимущественно в глубоких слоях дермы паравазально без признаков дегрануляции. Под волосяным покровом отмечается отсутствие видимой границы между лоскутом и окружающей тканью.
Таким образом, наибольшее количество постоперационных осложнений в кожных трансплантатах связано с нарушениями кровообращения в них, которые усугубляются денервацией осевых сосудов, что вызывает качественные и временные отклонения в процессах их адаптации и интеграции. При этом максимальное количество осложнений приходится на временной отрезок с 3-х по 7-е сутки, который является оптимальным периодом воздействия на трансплантат с целью коррекции его приживления.
Список литературы
1. Абалмасов К.Г., Чичкин В.Г., Гарелик Е.И. Первичная пластика обширных дефектов конечностей васкуляризированными лоскутами // Анналы хирургии. 2004. (6). 47—52.
Abalmasov K.G., Chichkin V.G., Garelik T.I. The Primary plastic arts of limbs extensive defects by vascular flaps // Annaly khirurgii. 2004. (6). 47—52.
2. Белоусов А.Е. Пластическая реконструктивная и эстетическая хирургия. СПб.: Гиппократ, 1998. 743 с.
Belousov A.Ye. Plastic reconstruction and aesthetic surgery. SPb.: Gippokrat, 1998. 743 p.
3. Bilkay U., Tiftikcioglu Y.O., Temiz G. et al. Free-tissue transfers for reconstruction of oromandibular area in children // Microsurg. 2008. 28. (2). 91—98.
4. Кичемасов С.Х., Скворцов Ю.Р. Несвободная пластика паховым лоскутом — операция выбора при раневых дефектах кисти // Анналы пластической, реконструктивной и эстетической хирургии. 2006. (4). 86.
Kichemasov S.H., Skvortsov U.R. Not free plastic by groin flap — an operation of the choice at hands wound defects // Annaly plasticheskoi, reconstruktivnoi i esteticheskoi khirurgii. 2006. (4). 86.
5. Ranne J., Lahteenmaki P., Vaalasti A. et al. Adequate blood flow is essential for reinnervation in neurovascular skin flaps // Scand. J. Plast. Reconstr. Hand. Surg. 1999. 33. (7). 7-12.
6. Banburg J., Siemionow M., Porvasnik S. et al. Muscle flaps’ triphasic microcirculatory response to sympathectomy and denervation // Plast. Reconstr. Surg. 1999. 104. 730-737.
7. Домников А.В. Микролимфогемоциркуляция васкуляризированных комплексов тканей в разные сроки после их трансплантации. Дис. ... докт. мед. наук. Новосибирск, 2000. - 192 с.
Domnikov A.V.Microlimphohaemocirculation of vascular tissue complexes at different periods after their transplantation. Dis. ... dokt. med. of the sciences. Novosibirsk, 2000. 192 p.
8. Майбородин И.В., Домников А.В., Любарский М.С. Микрогемоциркуляция и лимфоотток в трансплантированных сложных комплексах тканей // Вопросы реконструктивной и пластической хирургии. 2000. (1). 27.
Mayborodin I.V., Domnikov A.V., Luybarski M.S. Microcirculation and lymphocirculation in tissue transplantation complexes // Voprosy reconstruktivnoi i plasticheskoi khirurgii. 2000. (1). 27.
9. Марсак Г.А. Микроморфология приживления свободного полнослойного аутотрансплантата кожи на контрольном и денервированном ложе: автореф. дис. ... канд. мед. наук. Горький, 1971.
Marsak G.A. Micromorphology of free skins autotransplantation survival on the control and denervation bed. Autoref. of dis. ... kand. med. of the sciences. Gorkiy, 1971.
10. Селянинов КВ., Малиновская И.С., Семичев Е.В. и др. Влияние паравазальной симпатэктомии на состояние несвободного пахового лоскута // Вопросы реконструктивной и пластической хирургии. 2007. 1. (20). 38-40.
Selyaninov K.V., Malinovskaya I.S., Semichev E.V. et al. The influence of paravessels sympathectomy on condition of the free groin flap // Voprosy reconstruktivnoi i plasticheskoi khirurgii. 2007. 1. (20). 38-40.
11. Finseth F., Cutting C. An experimental neurovascular island skin flap for the study of the delay phenomenon // Plast Reconstr Surg. 1978 Mar. 61. (3). 412-20.
12. Синичев Д.Н., Байтингер В.Ф., Малиновская И.С., Селянинов К.В. Проблемы экспериментального моделирования трансплантации свободных
кожно-фасциальных комплексов тканей // Мат. научно-практич. конф. профессорско-преподавательского состава Томского военно-медицинского института. Томск, 2007. 152-154.
Sinichev D.N., Baytinger V.F., Malinovskaya I.S., Selyaninov K.V. The Problems of experimental modeling transplantation of the free skin-fascial tissues complexes // Proceedings scientifically-practical conference of professorial-teaching staff of the Tomsk Military Medical Institute. Tomsk, 2007. 152-154.
13. Van der Sloot P.G., Seikaly H., Harris J.R. Effects of a noncompressive hematoma on free flap viability // J. Otolaryngol. 2002. 31. (3). 144-146.
14. Pan C.H., Chuang S.S., Yang J.Y. Thirty-eight free fasciocutaneous flap transfers in acute burned-hand injuries // Burns. 2007. 33. (2). 230-235.
15. Vidinsky B., Gal P., Toporcer T. et al. Histological study of the first seven days of skin wound healing in rats // Acta Vet. Brno. 2006. 75. 197-202.
16. Серов В.В., Шехтер А.Б. Соединительная ткань (функциональная морфология и общая патология). М.: Медицина, 1981. 312 с.
Serov V.V., Shekhter A.B. The connective tissue (the functional morphology and the general pathology). M.: Medicine, 1981. 312 с.
17. Серов В.В., Пауков В.С. Воспаление. Руководство для врачей. М.: Медицина, 1995. 640 с.
Serov V.V., Paukov V.S. The inflammation. Handbook for physicians. M.: Medicine, 1995. 640 p.
MORPHO-FUNCTIONAL ASPECTS OF ADAPTATION AND INTEGRATION OF THE GROIN SKIN FLAPS AT EARLY STAGES AFTER THEIR TRANSPLANTATIONS
Irina Stanislavovna MALINOVSKAYA1, Vladimir Fyodorovich BAITINGER12, Elena Nikolaevna BARANOVA1, Konstantin Vladimirovich SELYANINOV12, Stanislav Vyacheslavovich MALINOVSKI1, Sergei Valentinovich LOGVINOV1
Siberian State Medical University of Roszdrav
2, Moskovskii tract, Tomsk, 634050
2Institute of Microsurgery SB RAMS 96, I. Chernykh str., Tomsk, 634040
The vascular and tissue reactions of groin skin flaps after different methods of transplantation (non-free transposition, non free transposition with sympathectomy of axial vessels, free replantation) were investigated. Periods of adaptive-integrative reactions have been chosen and systematized on the grounds of studied morpho-functional changes of the flaps tissues.
Key words: not free groin skin-fascia flap, free groin skin-fascia flap, sympathectomy of the vascular pedicle flap, adaptation and integration of skin transplants.
Malinovskaya I.S. — candidate of medical sciences, assistant professor of the chair for histology, cytology and embryology, e-mail: is_malinovskaya@mail.ru
Baitinger V.F. — doctor of medical sciences, professor, head of the chair for operative surgery and topographical anatomy, director of SRI of microsurgery, e-mail: baitinger@mail.tomsknet.ru
Baranova E.N. — graduate student of the chair for histology, cytology and embryology, e-mail: enbaranova@sibmail.com Selyaninov K.V. — candidate of medical sciences, assistant professor of the chair for operative surgery and topographical anatomy, scientific secretary e-mail: kostya-ivanow@yandex.ru
Malinovski S.V. — candidate of medical sciences, assistant professor of the chair for human anatomy Logvinov S.V. — doctor of medical sciences, professor, head of the chair for histology, cytology and embryology, e-mail: s_logvinov@mail.ru
