Микробиологическое обоснование выбора базисного материала зубочелюстных лечебных аппаратов больным с послеоперационными дефектами верхней челюсти Текст научной статьи по специальности «Фундаментальная медицина»

Виктор Николаевич Царев1, Анатолий Сергеевич Арутюнов2, Айрапет Ншанович Седракян3, Ольга Александровна Орлова4,

Ирина Владимировна Спиранде5

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ ОБОСНОВАНИЕ ВЫБОРА БАЗИСНОГО МАТЕРИАЛА ЗУБОЧЕЛюСТНЫХ ЛЕЧЕБНЫХ АППАРАТОВ БОЛЬНЫМ С ПОСЛЕОПЕРАЦИОННЫМИ ДЕФЕКТАМИ ВЕРХНЕЙ ЧЕЛюСТИ

1 Профессор, д. м. н., заведующий кафедрой микробиологии, вирусологии, иммунологии ГОУ ВПО Московский государственный медико-стоматологический университет. МЗ и СР (127473, РФ, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1)

2 К. м. н., ассистент, кафедры госпитальной ортопедической стоматологии ГОУ ВПО Московский государственный медико-стоматологический университет МЗ и СР (127206, РФ, г. Москва, ул. Вучетича, д. 9)

3 К. м.. н., заведующий стоматологическим, отделением. НИИ клинической онкологии ГУ РОНЦ

им. Н. Н. Блохина РАМН (115478, РФ, г. Москва, Каширское шоссе, д. 24)

4 К. м.. н., ассистент, кафедры стоматологии общей практики и подготовки зубных техников ГОУ ВПО Московский государственный медико-стоматологический университет. МЗ и СР

(127473, РФ, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1)

5 К. м.. н., доцент кафедры микробиологии, вирусологии, иммунологии ГОУ ВПО Московский государственный медико-стоматологический университет МЗ и СР (127473, РФ, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1)

Адрес для переписки: 127206, РФ, г. Москва, ул. Вучетича, д. 9, ГОУ ВПО Московский государственный медико-стоматологический университет МЗ и СР, кафедра госпитальной ортопедической стоматологии, Арутюнов Анатолий Сергеевич; e-mail: [email protected]

В эксперименте in vitro изучали адгезивную способность микроорганизмов Streptococcus sanguis, Streptococcus milleri, Streptococcus mutans, Enterococcus faecalis, Actinomyces naeslundii, Candida albicans, Veillonella parvula, Prevotella intermedia, Porphyromonas gingivalis, Fusobacterium nucleatum, Actinobacillus actinomycetemcomitans к базисным пластмассам стомакрил и фторакс, структурированным двумя способами — горячей полимеризацией и СВЧ-полимеризацией. Пациентам с дефектами челюстей при наличии зубов и дентальных имплантатов в полости рта лечебные аппараты предпочтительнее изготавливать методом СВЧ-полимеризации базисной пластмассы.

Ключевые слова: микроорганизмы, адгезия, конструкционные материалы, зубочелюстные протезы.

Одной из основных составляющих успешного протезирования пациентов с приобретенными дефектами челюстей является выбор базисного конструкционного материала при изготовлении лечебных аппаратов. Из-за предрасположенности тканей протезного ложа больных у этой категории к действию механических и химических раздражителей использование съемных протезов нередко осложняет течение раневого процесса, провоцируя воспаление в ране. Поэтому при выборе базисной пластмассы, на наш взгляд, требуется пристальное внимание [1].

© Царев В. Н., Арутюнов А. С., Седракян А. Н., Орлова О. А., Спиранде И. В., 2009 УДК 616.314-089.28/.29-06:579.8

Общеизвестна ведущая роль некоторых представителей резидентной микрофлоры полости рта в развитии и обострении течения заболеваний пародонта, стоматитов, одонтогенных воспалительных заболеваний челюстнолицевой области [2—4].

Исследования, выполненные в последние годы, свидетельствуют, что в подборе конструкционного материала существенное значение имеют состояние микроэкологии полости рта пациента, состав и количество микрофлоры. Так, по мнению ряда авторов, увеличение адгезии и накопление вирулентных видов пародонтопатоген-ных бактерий способствуют деструкции тканей пародон-та [4; 5].

Данные литературы о выборе базисной пластмассы при протезировании у пациентов с дефектами челюстей

касаются только случаев полного отсутствия зубов и не учитывают степень микробной обсемененности протеза и адгезию к базисным пластмассам пародонтопатогенных бактерий, что отмечается при наличии зубов и имплантатов в полости рта [1; 3]. Кроме того, ранее практически не учитывалась зависимость обсемененности протезов микроорганизмами полости рта в данной группе пациентов от метода полимеризации базисной пластмассы.

В связи с этим представляются перспективными изучение и разработка методов подбора базисного материала для съемного лечебного аппарата у пациентов с дефектами челюстей с учетом состава резидентной аэробной и анаэробной микрофлоры полости рта и степени микробной обсемененности протезов [6; 7].

Целью настоящего исследования явилось повышение эффективности ортопедического лечения больных с послеоперационными дефектами челюстей на основании экспериментально-микробиологической оценки адгезивной способности микроорганизмов к базисным конструкционным материалам. В частности, планировалось сопоставление данных о первичной адгезии к традиционным материалам — фтораксу, стомакрилу и принципиально новому материалу для базисов протезов на основе полиуретана (денталур, Россия).

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

В эксперименте in vitro изучали адгезивную способность микроорганизмов к двум наиболее часто применяемым базисным пластмассам стомакрил и фторакс, поли-меризованным двумя способами — СВЧ- и горячей полимеризацией.

Для изучения адгезии бактерий к различным видам материалов, используемым для изготовления протезов, применяли модификацию методики В. Н. Царева, позволяющей соотносить количество бактерий тест-штамма, нанесенных на образец материала, и число прилипших бактерий из расчета на 1 см2 [6].

В данной работе использованы две группы тест-штаммов микробов: первая группа — грамположитель-ные и вторая группа — грамотрицательные, которые принципиально различаются по строению клеточной стенки и степени вирулентности.

В качестве представителей микроорганизмов с грамположительным типом строения клеточной стенки использовали клинические изоляты следующих видов факультативно-анаэробных микроорганизмов (3 штамма): Streptococcus sanguis, Enterococcus faecalis, Actinomyces naeslundii, а также грибы Candida albicans (2 штамма: один — референтный NCCT 686, второй — клинический изолят).

Микроаэрофильные стрептококки полости рта — S. sanguis, особенно S. milleri, E. faecalis, являются возбудителями гнойно-воспалительных процессов в зубочелюстно-лицевом аппарате. Кроме того, S. sanguis относится к наиболее активным представителям кислотопродуцирующих бактерий и наряду с видом S. mutans, входит в группу кариесогенных по номенклатуре ВОЗ [3].

Штамм стрептококка S. sanguis был взят в качестве представителя так называемой стабилизирующей флоры в составе микробиоценоза рта, так как от присутствия этих микробов зависят стабильность и соотношение дру-

гих компонентов микрофлоры слизистой оболочки, десневой борозды и зубного налета. Напротив, актиномице-ты A. naeslundii являются представителем пародонтопа-тогенной группы бактерий.

Штаммы грибов C. albicans взяты для проведения исследований, так как грибы являются важнейшим фактором развития стоматитов и дисбиоза полости рта при снижении неспецифической резистентности макроорганизма [2; З],

Все штаммы представляли собой клинические изо-ляты, выделенные со слизистой оболочки полости рта здоровых людей (стрептококки и коринобактерии) или больного стоматитом (грибы рода Candida),

В качестве представителей грамотрицательной флоры использовали штаммы облигатно-анаэробных бактерий (всего 4 штамма): Veillonella parvula, Prevotella intermedia, Porphyromonas gingivalis, Fusobacterium nucleatum,

В качестве представителя стабилизирующей флоры из грамотрицательной группы использовали штамм V. parvula [8]. Штаммы грамотрицательных анаэробных палочек Actinobacillus actinomycetemcomitans, P. intermedia, F. nucleatum взяты для эксперимента в качестве наиболее агрессивных представителей анаэробной микрофлоры, имеющих гистолитические ферменты и эндотоксины [2; 4]. Все перечисленные виды относятся к па-родонтопатогенной группе, так как количество их резко увеличивается при обострениях хронического генерализованного пародонтита. В норме и в период ремиссии пародонтита представители этих видов не выделяются или выделяются в незначительном количестве — 102—104 колониеобразующих единиц в 1 мл (КОЕ/мл), или 2,0— 4,0 КОЕ/мл в логарифмическом выражении,

Перечисленные штаммы представляли собой клинические изоляты, выделенные из пародонтальных карманов больных хроническим генерализованным пародонтитом тяжелой степени в стадии обострения,

Выбор штаммов был не случайным. Он определялся современными представлениями о биологической роли отдельных видов в составе микробиоценоза полости рта, а также их медицинским значением с точки зрения возможного участия в развитии патологии челюстнолицевой области и осложнений воспалительного характера при протезировании [2; 4; 5],

Постановку эксперимента осуществляли следующим образом: бактериальную взвесь тест-культуры наносили на исследуемый специально изготовленный стандартный образец базисной пластмассы в виде диска размером 1 см2, инкубировали, обрабатывали ультразвуком для смывания не прилипших бактерий и высеивали с образца на плотную питательную среду для оценки количества бактерий, оставшихся не его поверхности. Для статистической обработки результатов эксперимент с каждым штаммом повторяли З раза.

Концентрация бактерий в 1 мл взвеси составляла

1 млн микробных клеток в 1 мл изотонического раствора натрия хлорида (108 КОЕ). Для грибов — содержание в 1 мл взвеси было 106 КОЕ — 100 тыс. дрожжевых клеток в 1 мл.

Облигатно-анаэробные бактерии инкубировали в холодильнике в течение 10 мин при температуре 4 °C в целях создания наиболее благоприятных условий для со-

хранения их жизнеспособности. Инкубацию остальных образцов осуществляли при комнатной температуре в течение 10 мин.

Отличие использованной методики от ранее опубликованных [1] заключалось в модификации завершающего этапа эксперимента in vitro. Образцы промывали в 100 мл стерильного изотонического раствора натрия хлорида для удаления не прилипших клеток, а окончательное снятие прилипших бактерий осуществляли при помощи ультразвука в течение 5 мин (частота 68 кГц) в аппарате «Ultrasonic» («Геософт», Россия).

После промывания образцов материала делали количественные секторальные высевы 40 мкл смыва на поверхность плотной питательной среды (в отличие от «отпечатков», которые использовали в ранее выполненных работах) [1].

Дальнейшее культивирование анаэробных бактерий осуществляли на плотной питательной среде — 5% кровяном гемин-агаре (для бактериальных тест-культур), в анаэростате, заполненном газовой смесью, состоящей из 10% водорода, 80% азота и 10% углекислого газа, при температуре 37 °С в течение 24—48 ч. Культуры дрожжеподобных грибов C. albicans выращивали в аэробных условиях на среде Сабуро при комнатной температуре в течение 2 сут.

По окончании времени культивирования, указанного выше, проводили подсчет количества изолированных колоний, выросших из бактерий, которые прилипли к образцу материала, с помощью бинокулярной лупы МЛ-2Б (Россия). Полученный результат выражали через десятичный логарифм (lg) числа КОЕ в 1 мл смыва. Рассчитывали индекс адгезии (ИА) для каждой из исследуемых тест-культур как частное от деления полученной величины на десятичный логарифм концентрации бактерий (или грибов) в исходной взвеси, нанесенной на образец исследуемого материала. В норме содержание этих бактерий в материале, выраженное через десятичный логарифм степени обсемененности, находится в пределах 105—106 КОЕ/мл (5—6 lg КОЕ/мл). Вместе с тем увеличение количества бактерий перечисленных видов в пределах 107—109 КОЕ/мл (7—9 lg КОЕ/мл) наблюдается при различных воспалительных процессах слизистой оболочки полости рта и тканей пародонта [2; 4].

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

Известно, что характер адгезии микробов к базисным пластмассам определяет особенности дальнейшей микробной колонизации протезов и повышает вероятность развития воспалительного процесса слизистой оболочки рта и тканей пародонта [6]. Поэтому можно предположить, что у онкологических пациентов при неправильном выборе базисного материала возможны существенные осложнения в послеоперационном периоде на этапе окончательного протезирования с использованием зубочелюстных протезов с обтуратором. В связи с этим подбор базисного материала, максимально снижающего возможность колонизации лечебного аппарата и прилегающих тканей вирулентной микробной флорой, представляется крайне актуальным.

Оценка результатов адгезии данных микробов в эксперименте in vitro по описанной выше методике позволя-

ла нам сделать предварительные выводы с точки зрения вероятной дестабилизации микробиоценоза полости рта (дисбиоз, дисбактериоз) больных с дефектами челюстей, возможности развития обострения пародонтита или повышения риска развития стоматита в зависимости от выраженности адгезии.

В табл. 1 и 2 представлены результаты исследования адгезии тест-штаммов рассмотренных групп к традиционно используемым конструкционным материалам (сто-макрил, фторакс) с учетом типа полимеризации (СВЧ-или горячая полимеризация). Результаты выражены в виде ИА.

Задача микробиологических исследований формулировалась следующим образом: определить, как адгезия и колонизация микробами рта зависят от типа полимеризации пластмасс (горячая, холодная, СВЧ) и вида базисного материала, используемого для протезирования у онкологических пациентов.

Учитывая существенную разницу в свойствах грам-положительных и грамотрицательных представителей микробной флоры, мы проанализировали полученные результаты для этих двух групп микробов раздельно.

Для оценки первичной адгезии грамположитель-ных бактерий и грибов рода Candida использовали тест-штаммы S. sanguis, E. faecalis, A. naeslundii и C. albicans (см. табл. 1).

Из представителей грамположительных микроорганизмов наиболее высокие ИА (от 0,76 до 0,94 в зависимости от используемого вида образцов и характера полимеризации адгезии) отмечали у S. sanguis. Более высокую адгезию стрептококков данного штамма наблюдали к образцам, изготовленным из фторакса с применением горячей полимеризации. ИА составил 0,94 ± 0,01 по сравнению с контролем — образцами из стомакри-ла (0,76 ± 0,02; р < 0,05). Исследуемые образцы из полиуретана не отличались от стомакрила, но по сравнению с фтораксом давали более низкие уровни адгезии стрептококка (0,75 ± 0,02 при применении горячей полимериза-циии и 0,79 ± 0,02 — при холодной; р < 0,05).

Ввиду того что S. sanguis обладают высокой способностью прилипать к эмали зубов и доминируют в зубной бляшке, повышенная адгезия к базису протеза и дальнейшая колонизация этим микробом могут провоцировать кариозные процессы в зубах пациента, а также увеличивают риск развития стоматитов. В этом плане полиуретан представляется более безопасным и перспективным материалом по сравнению с фтораксом.

Менее выраженная первичная адгезия ко всем видам базисных материалов была зафиксирована у другого вида стрептококков полости рта — E. faecalis, что является положительным моментом, так как уменьшает риск развития стоматитов и гнойно-воспалительных процессов при пользовании протезом. ИА составили от 0,42 до 0,68. При этом, как и для предыдущего тест-штамма, отмечена тенденция к более выраженной адгезии стрептококков к образцам из фторакса (0,68 ± 0,02) по сравнению с образцами из стомакрила (0,57 ± 0,02; р < 0,05). Исследуемые образцы из полиуретана давали существенно более низкий ИА при применении горячей полимеризации (0,42 ± 0,02; р < 0,05), в то время как при применении холодной полимеризации ИА достоверно

Таблица 1

Сравнительные показатели первичной адгезии грамположительной микробной флоры полости рта к базисным ортопедическим материалам’

Микрофлора Материал, вид полимеризации

стомакрил, горячая (контроль) фторакс, горячая полиуретан, горячая полиуретан, холодная

S. sanguis 0,76 ± 0,02 0,94 ± 0,0б 0,75 ± 0,02 0,79 ± 0,02

E. faecalis 0,57 ± 0,02 0,68 ± 0,02б 0,42 ± 0,02б 0,49 ± 0,03

A. naeslundii 0,67 ± 0,06 0,64 ± 0,08 0,78 ± 0,06 0,81 ± 0,07б

C. albicans 0,66 ± 0,03 0,60 ± 0,04 0,59 ± 0,02б 0,50 ± 0,04б

а Данные представлены в виде ИА.

б Различия по сравнению с контролем достоверны (р < 0,05).

не отличался от такового в контроле со стомакрилом, но был достоверно ниже показателей первичной адгезии к образцам из фторакса.

Более выраженная первичная адгезия выявлена к исследуемым материалам у актиномицетов A. naeslundii, которые также могут вызывать кариес зубов и гнойновоспалительные процессы мягких тканей. Наименьший ИА (0,64—0,78) отмечен у всех образцов (стомакрил, фто-ракс, полиуретан), полученных методом горячей полимеризации. У полиуретана, полученного методом холодной полимеризации, ИА актиномицетов был достоверно выше (0,81 ± 0,07; р < 0,05).

Высокие индексы первичной адгезии к образцам из стомакрила выявлены у дрожжеподобных грибов C. albicans (0,66 ± 0,03). Тенденция к снижению ИА грибов отмечена нами у образцов из фторакса, но достоверное снижение по сравнению и со стомакрилом, и с фторак-сом наблюдалось у образцов из полиуретана, полученных горячей и холодной полимеризацией, — 0,59 ± 0,02 и 0,50 ± 0,04 соответственно. Достоверной разницы в зависимости от вида полимеризации образцов не выявлено.

Полученные данные демонстрируют, что первичная адгезия микроорганизмов некоторых видов грамполо-

жительной группы (S. sanguis, E. faecalis, A. naeslundii, C. albicans) к образцам различных базисных материалов существенно различается, в том числе при разных способах полимеризации. Возможно, что повышенная фиксация перечисленных микробов на лечебных аппаратах из указанных ортопедических пластмасс может привести к развитию дисбиоза и стоматита, снизить адаптацию к протезу (при условии дальнейшей прогрессирующей колонизации конструкции и слизистой оболочки данными видами). У исследуемых нами образцов из полиуретана обнаружен минимальный уровень первичной адгезии, и в рассматриваемом аспекте они являются весьма перспективными для использования в качестве базиса съемных протезов при ортопедическом лечении стоматологических пациентов.

Результаты исследования прилипания микроорганизмов грамотрицательной группы к стомакрилу и фторак-су с учетом вида полимеризации представлены в табл. 2.

Согласно представленным результатам, адгезия микробов данной группы к изучаемым ортопедическим пластмассам была существенно более низкой, чем у стрептококков, энтерококков, актиномицетов и дрожжеподобных грибов рода Candida. В некоторых случа-

Таблица 2

Результаты определения адгезии грамотрицательных анаэробных бактерий полости рта к базисным ортопедическим материалам1

Микрофлора Материал, вид полимеризации

стомакрил, горячая (контроль) фторакс, горячая полиуретан, горячая полиуретан, холодная

A. actinomicetemcomitans 0,33 ± 0,02 0,35 ± 0,04 0 0

P. intermedia 0,60 ± 0,03 0,50 ± 0,03 0,56 ± 0,02 0,71 ± 0,02б

F. nucleatum 0,68 ± 0,03 0,86 ± 0,03б 0,58 ± 0,02б 0,70 ± 0,02

а Данные представлены в виде ИА.

б Различия по сравнению с контролем достоверны (р < 0,05).

ях мы практически не выявили адгезии грамотрица-тельных анаэробных бактерий к образцам материалов. В частности, это касается пародонтопатогенного вида A. actinomicetemсоmitans, тест-штамм которого практически не прилипал к образцам из полиуретана, изготовленным методом как горячей, так и холодной полимеризации. Адгезия A. actinomicetemсоmitans к стомакри-лу и фтораксу была довольно низкой — ИА составлял 0,33 ± 0,02 и 0,35 ± 0,04 соответственно.

Принципиально иная картина отмечена при изучении прилипания пародонтопатогенных видов бактерий из группы пигментообразующих бактероидов. Так, у P. intermedia ИА к образцам из стомакрила был несколько выше (0,60 ± 0,03), чем к образцам из фторакса (0,50 ± 0,03), однако разница была недостоверна, как и различия с образцами из полиуретана, полученными методом горячей полимеризации. Только у образцов из полиуретана, полученных методом холодной полимеризации, ИА оказался достоверно выше, чем у других материалов.

Противоположная тенденция выявлена нами в отношении адгезии вирулентного анаэробного вида F. nuclea-tum. ИА клеток тест-штамма данного вида к стомакрилу составил 0,68 ± 0,03, что было достоверно ниже, чем у образцов из фторакса (0,86 ± 0,03), но выше, чем у образцов из полиуретана, полученных методом горячей полимеризации (0,58 ± 0,02; р < 0,05). Адгезия к образцам из полиуретана, полученным методом холодной полимеризации, практически не отличалась от таковой к образцам из сто-макрила. Достоверной разницы при сравнении не выявлено.

В целом необходимо отметить, что прилипание основных пародонтопатогенных видов — A. actinomicetem-comitans, P. intermedia и F. nucleatum к изучаемым ортопедическим материалам на основе полиуретана существенно ниже, чем у традиционно используемых материалов стомакрила и фторакса для горячей полимеризации. Образцы из полиуретана, изготовленные методом холодной полимеризации, характеризовались более высоким ИА, однако в ряде случаев и у этих образцов отмечены более высокие параметры микробной адгезии, чем у традиционных конструкционных материалов стомакрил и фторакс.

Полученные нами данные могут иметь принципиальное значение при установке лечебных аппаратов из полиуретана, так как их более низкая колонизация вирулентными видами может рассматриваться как надежное средство профилактики обострений хронического генерализованного пародонтита [4], протезных стоматитов [3] или других гнойно-воспалительных процессов анаэробной или грибковой природы [2].

Таким образом, адгезия представителей микробной флоры полости рта к образцам базисных материалов на основе полиуретана зависит как от видовой принадлежности микроорганизма, так и от вида полимеризации: прилипание микроорганизмов грамотрицательной группы к исследуемым материалам в целом меньше, чем грамположительных микробов, причем наименьшая адгезия наблюдается к образцам из полиуретана, полученным методом горячей полимеризации.

Для некоторых представителей резидентной стабилизирующей микрофлоры грамположительной группы

(S. sanguis, A. naeslundii) характерна наиболее высокая адгезия in vitro к образцам, изготовленным с применением горячей полимеризации, однако у образцов из полиуретана адгезия меньше выражена, чем у сравниваемых образцов из конструкционных материалов стомакрила и фторакса.

У представителей грамотрицательной анаэробной па-родонтопатогенной микрофлоры (A. actinomicetemcomi-tans, P. intermedia и F. nucleatum) in vitro отмечается довольно низкая способность адгезии к образцам, изготовленным из полиуретана с применением горячей полимеризации.

В связи с изложенными данными полиуретан, особенно полученный при применении методики горячей полимеризации, может быть рекомендован в качестве конструкционного материала для изготовления челюстно-лицевых протезов для пациентов из групп риска развития хронического генерализованного пародонтита, рецидивирующего афтозного стоматита, дисбактериоза и кандидоза, иммунодефицитных состояний.

заключение

Анализ результатов исследования позволил установить, что адгезия представителей микробной флоры полости рта к образцам базисных пластмасс определяется видовой принадлежностью микроорганизма, конструкционным материалом и видом полимеризации. Способность адгезии грамотрицательных микроорганизмов к исследуемым пластмассам в целом меньше, чем грамположительной микрофлоры. Для некоторых представителей резидентной стабилизирующей микрофлоры (S. sanguis, Veillonella) характерна более высокая адгезия in vitro к образцам, изготовленным с применением СВЧ-полимеризации. Напротив, отмечено снижение прилипания грибов (C. albicans) к базисной пластмассе стомакрил при полимеризации методом СВЧ.

Вместе с тем при изучении формирования микробных биопленок в полости рта ряд исследователей доказали ведущую роль ассоциации микроаэрофильных стрептококков полости рта и Veillonella spp. [5; 7; 8].

Поэтому у пациентов с приобретенным дефектом челюсти для предотвращения стоматита и дисбактериоза полости рта предпочтительнее использовать базисный материал стомакрил, структурированный методом СВЧ-полимеризации.

Пациентам с дефектами челюстей при наличии зубов и дентальных имплантатов в полости рта лечебные аппараты предпочтительнее изготавливать методом СВЧ-полимеризации базисной пластмассы, так как для представителей пародонтопатогенной микрофлоры (P. intermedia, A. actinomycetemcomitans) характерна более высокая адгезия in vitro к образцам базисных конструкционных материалов, структурированных с применением горячей полимеризации.

ЛИТЕРАТУРА

1. Микробиологическое обоснование выбора базисной пластмассы съемных зубных протезов / Арутюнов С. Д., Ибрагимов Т. И., Царев В. Н., Лебеденко И. Ю., Савкина Н. И., Трефилов А. Г., Арутюнов Д. С., Климашин Ю. И. // Стоматология. — 2002. — Т. 81, № 3. — С. 4—8.

2. Внутрибольничные инфекции в хирургической стоматологии / Агапов В. С., Тарасенко С. В., Трухина Г. М., Лакшин А. М. — М.: Медицина, 2002. — 255 с.

3. Гожая Л. Д. Заболевания слизистой оболочки полости рта, обусловленные материалами зубных протезов: Дис... д-ра мед. наук. — М., 2001. — 240 с.

4. Мюллер Х. П. Пародонтология (пер. с нем.). — Львов: Гал-Дент, 2004. — 256 с.

5. Foster J. S., Kolenbrander P. E. Development of a multispecies oral bacterial community in a saliva-conditioned flow cell // Appl. Environ. Microbiol. — 2004. — Vol. 70, N 7. — P. 4340—4348.

6. Кучерова М. А., Трефилов А. Г. Индекс адгезии микроорганизмов к полимерным базисным материалам как индикатор оценки

антимикробных средств // Стоматолог. — 2008. — № 5. — С. 38—44.

7. Egland P. G., Palmer R. J., Kolenbrander P. E. Interspecies communication in Streptococccus-Veillonella biofilms: signaling in flow conditions requires juxtaposition // Proc. Nat. Acad. Sci. — 2004. — Vol. 101. — P. 16 916—16 922.

8. Перспективы создания эубиотических препаратов на основе вейллонелл и стрептококков для повышения колонизационной резистентности тканей при комплексном лечении пародонтита / Царев В. Н., Воложин А. И., Абрамова И. В., Ипполитов Е. В., Горбачёва Е. А. // Стоматолог. — 2008. — № 2. — С. 38—44.

Поступила 14.10.2008

Victor Nikolayevich Tsarev1, Anatoly Sergeyevich Arutyunov2,

Airapet Nshanovich Sedrakyan3, Olga Alexandrovna Orlova4,

Irina Vladimirovna Spirande5

MICROBIOLOGICAL RATIONALE FOR CHOICE OF BASIC MATERIALS FOR DENTOMAXILLAR THERAPEUTIC APPARATUS IN PATIENTS WITH POSTOPERATIVE MAXILLARY DEFECTS

1 MD, PhD, DSc, Professor, Head, Chair of Microbiology, Virology, Immunology, Moscow State Medical Dentistry University HSDM (20/1, Delegatskaya ul., Moscow, 127473, Russian Federation)

2 MD, PhD, Assistant, Chair of Hospital Orthopedic Dentistry, Moscow State Medical Dentistry University

HSDM (9, Vucheticha ul., Moscow, 127206, Russian Federation)

3 MD, PhD, Head, Dentistry Department, Clinical Oncology Research Institute, N. N. Blokhin RCRC RAMS

(24, Kashirskoye sh., Moscow, 115478, Russian Federation)

4 MD, PhD, Assistant, Chair of General Practice Dentistry and Dental Technician Training, Moscow State

Medical Dentistry University HSDM (20/1, Delegatskaya ul., Moscow, 127473, Russian Federation)

5 MD, PhD, Associate Professor, Chair of Microbiology, Virology, Immunology, Moscow State Medical Dentistry University HSDM (20/1, Delegatskaya ul., Moscow, 127473, Russian Federation)

Address for correspondence: Arutyunov Anatoly Sergeyevich, Chair of Hospital Orthopedic Dentistry, Moscow State Medical Dentistry University HSDM, 9, Vucheticha ul., Moscow, 127206, Russian Federation;

e-mail: [email protected]

We studied in vitro adhesive capacity of Streptococcus sanguis, Streptococcus milleri, Streptococcus mutans, Enterococcus faecalis, Actinomyces naeslundii, Candida albicans, Veillonella parvula, Prevotella intermedia, Porphyromonas gingivalis, Fusobacterium nucleatum, Actinobacillus actinomycetemcomitans with base plastics stomacril and phtorax after hot polymerization and microwave polymerization. Microwave polymerization of base plastics should be preferred to manufacture therapeutic apparatus in patients with jaw defects having preserved teeth and dental implants.

Key words: microorganisms, construction materials, dentomaxillary prosthesis,

б3