CC BY
56
УДК: 616.314.18-002.4:616.15
DOI: 10.20310/1810-0198-2017-22-2-337-347
МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ ЭФФЕКТИВНОСТИ ЛЕЧЕНИЯ ПАЦИЕНТОВ С ХРОНИЧЕСКИМ ГЕНЕРАЛИЗОВАННЫМ ПАРОДОНТИТОМ ЛЕГКОЙ СТЕПЕНИ ТЯЖЕСТИ С ПРИМЕНЕНИЕМ АКТИВИРОВАННОЙ ТРОМБОЦИТАМИ ПЛАЗМЫ КРОВИ ЧЕЛОВЕКА
© С.В. Микляев1'2*, О.М. Леонова2*, А.В. Сущенко1*, О.И. Олейник1*
1) Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко Минздрава России 394036, Российская Федерация, г. Воронеж, ул. Студенческая, 10 2) Тамбовская областная клиническая стоматологическая поликлиника 392002, Российская Федерация, г. Тамбов, ул. 60 лет Октября, 17а E-mail: miklaev@mail.ru
Микрофлора человека - сложная саморегулирующая система, способная восстанавливаться при грамотной коррекции. Исследования последних лет показали, что нарушение нормального микробиоценоза полости рта растет из года в год и у жителей Российской Федерации превышает 90 %, вызывая при этом воспалительные заболев а-ния в тканях пародонта, и, как правило, сопровождается дисбиозом полости рта, выраженность которого соответствует степени поражения пародонта. Одно из ведущих мест в развитии данной патологии занимает резидентная облигатно-анаэробная и микроаэрофильная микрофлора полости рта.
Ключевые слова: хронический генерализованный пародонтит; пародонтопатогенная микрофлора; пародонталь-ный карман; культуральный анализ
ВВЕДЕНИЕ
Достаточно серьезной проблемой современной стоматологии как в нашей стране, так и за рубежом являются заболевания пародонта (Е.Д. Кучумова, 2008; А.И. Грудянов, 2008). Указанная патология снижает принятый ВОЗ критерий качества жизни и приводит к преждевременной потере зубов (А.И. Грудянов, О.А. Фролова, 2008) и представляет серьезную медицинскую, социальную и экономическую проблему (В.С. Иванов, 1998; А.И. Грудянов, 2000; Д.М. Цепов, 2006; Н.В. Булкина, 2008).
Первичным фактором, вызывающим поражение пародонта, являются бактерии зубного налета (А.И. Грудянов, O.A. Фролова, 2005). Этиологическая структура инфекционных процессов в последнее десятилетие значительно изменилась, что связано с постоянной эволюцией микробов и вовлечением в патологический процесс условно-патогенных микробов, которые могут выступать в качестве комменсалов в составе нормальной микрофлоры и проявлять свою патогенность при снижении иммунного статуса организма (И. Ленгелер, 2005; J.L. Ebersole, 2004).
Данные, приведенные Е.В. Боровским и В.К. Леонтьевым, свидетельствуют о том, что воспалительные процессы в полости рта иногда являются эндогенной инфекцией, вызываемой резидентной флорой не только полости рта, но и других экосистем организма. Возникновение аутоинфекции возможно в результате резкого ослабления барьерных функций слизистой оболочки полости рта [1, с. 48-58; 2-3].
По данным F. Legler (1965), постоянное нахождение микроорганизмов в десневых карманах при определенных состояниях организма может вызвать состояние гиперсенсибилизации и изменение его иммунологической реактивности. По мере развития воспалительного заболевания тканей пародонта изменяется состав микрофлоры различных биотопов, входящих в состав полости рта. В начале заболевания наблюдается вытеснение нормальной микрофлоры условно-патогенными бактериями, затем наступает обильное размножение патогенных микробов, в т. ч. вызывающих гнилостные процессы в пародонте [2; 4-5].
Помимо вышесказанного, А.И. Грудянов с соавт. утверждают, что воспалительные заболевания тканей пародонта, как правило, сопровождаются дисбиозом полости рта, выраженность которого соответствует степени поражения пародонта. При этом на фоне выраженного роста патогенных и условно-патогенных микроорганизмов концентрация представителей нормальной микрофлоры уменьшается.
Бактериальный профиль биоценоза полости рта определяется рядом экзогенных и эндогенных факторов. Защитные механизмы организма хозяина в значительной степени влияют на вирулентность условно-патогенных и патогенных микроорганизмов в каждом из биотопов. Не секрет, что нарушение соотношения нормальной и условно-патогенной флоры приводит к развитию дисбактериозов и характеризуется относительным снижением содержания лактобактерий и би-фидобактерий. Одно из проявлений такого дисбаланса представляет широко распространенное заболевание -пародонтит. Известно, что существенная роль в разви-
тии пародонтита принадлежит Porphyromonas gingi-valis, Treponema denticola, Tannerella forsythensis (Bacteroides forsythus), Fusobacterium spp. и ряду других микроорганизмов [6-8].
Таким образом, микрофлора полости рта и взаимодействие факторов местной и общей неспецифической и специфической резистентности являются одними из наиболее информативных показателей состояния тканей пародонта.
Цель микробиологического исследования в группах состояла в выявлении микроорганизмов, которые привели к воспалению пародонта, выявлении их в ПК после лечения и сравнении их с микрофлорой при здоровом пародонте.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Для определения групп обследования был произведен анализ распространенности хронического генерализованного пародонтита легкой степени тяжести (ХГПЛСТ). На стоматологическом приеме после анализа клинических данных и по результатам осмотра было обследовано 200 пациентов, отобрано 102 (51 %) больных, страдающих генерализованным пародонти-том легкой степени тяжести в возрасте от 20 до 60 лет. Из них 50 (49,02 %) мужчин и 52 (50,98 %) женщины, которые страдали данным заболеванием. В свою очередь исследуемая группа пациентов, страдающих ХГП, была поделена на 2 группы:
1 группа - основная, 70 пациентов, из которых 37 (52,85 %) мужчин и 33 (47,15 %) женщины, у которых лечение проходило с применением обогащенной тромбоцитами аутоплазмы;
2 группа - сравнения, 32 пациента, из которых 19 (59,37 %) женщин и 13 (40,63 %) мужчин, в лечении которых отсутствовала данная методика, получали стандартное пародонтологическое лечение.
Также нами была обследована контрольная группа лиц со здоровым пародонтом в количестве 20 человек.
Обследование пациентов проводилось на базе бактериологической лаборатории отделения микробиологических исследований на инфекционную патологию Центра государственного санитарно-эпидемиологического надзора в Воронежской области.
При проведении процедуры взятия исследуемого материала соблюдались следующие правила:
1) запрещалось использовать какие-либо полоскания лекарственными препаратами;
2) непосредственно перед процедурой изъятия исследуемого материала пациенты не производили чистку зубов;
3) забор исследуемого материала проводилось через 2 ч после приема пищи;
4) исследуемый материал доставлялся в бактериологическую лабораторию в течение 30 мин.;
Материал для микробиологического анализа забирался следующим образом:
- слюна, посредством сплевывания, в количестве 1 мл собиралась в стерильные пробирки;
- содержимое зубодесневой борозды собирали с помощью стерильного ватного тампона и опускали его в стерильную пробирку с 1 мл физиологического раствора.
Выделение микроорганизмов осуществлялось с помощью посева полученных материалов на искусственные питательные среды.
Нами был применен метод культурального анализа. Мы брали 0,1 мл слюны, 0,1 мл из пробирки с физиологическим раствором, а также содержимое зубодесне-вой борозды, все это помещали на питательные среды. Посев материала производили на агаре в чашках Петри. Мы набирали исследуемый материал в пипетку и наносили ее на всю поверхность агара.
Для выявления всей микрофлоры полости рта посев производили на кровяной агар. Для получения кровяного агара мы придерживались следующей технологии: мы разогревали и охлаждали до 50 °С питательный агар ph 7,5, затем прибавляли цельную кровь животного. Кровяной агар тщательно перемешивали, не допуская образования пены, и разливали по чашкам Петри по 3-4 мм. Созревание производилось в термостате при температуре 37 °С в течение 20 ч.
Для выявления кишечной инфекции использовали среду Эндо. На водяной бане расплавляли 100 мл агара ph 7,4 и охлаждали до 70 °C. Затем добавляют 1 г растворенной в дистиллированной воде чистой лактозы. В различных пробирках готовили: 2-3 мл спиртового насыщенного раствора основного фуксина, 10 мл 10 %-ного водного раствора сульфита натрия (Na2SO3). В стерильную пробирку наливали 1 мл раствора фуксина и добавляли раствор сульфита натрия, после чего происходило обесцвечивание фуксина в бледно-розовый цвет. Полученную смесь переливали в растопленный агар, тщательно перемешивали, не допуская образования пены, и разливали по чашкам слоем 3-4 мм. Горячий агар бледно-розового цвета, после того как он остынет, становится бесцветным. Созревание производилось в термостате при температуре 37 °С в течение 20 ч.
Для обнаружения грибов рода Candida производили посев на среду Сабуро, основой для которой является дрожжевая вода. На 1 л воды использовали 80 г прессованных пекарских дрожжей, после чего кипятили в течение 15 мин., фильтровали и разливали по флаконам. Затем стерилизовали при 1 атм в течение 20 мин. Использовали 100 мл стерильной, дрожжевой воды, к которой добавляли: 1 % пептона, 2 % агара. Растворяли агар посредством нагревания, добавляли 4 % глюкозы, фильтровали, разливали в пробирки (рН 5,8). Затем стерилизовали при 0,5 атм в течение 20 мин. После проведения стерилизации среду в пробирках скашивали. Выращивание проводилось в термостате при температуре 37 °С в течение 5 суток.
Исследуемый материал забирали до и после осуществления лечения. Была изучена распространенность микроорганизмов и количество KOE/мл в обследуемых группах. В одном ПК KOE микроорганизмов рассчитывали как среднее арифметическое от общего числа микробов в группе и сравнивали с экологическим показателем обсемененности очага, встречающемся в литературе (А.В. Еременко, 2007; В.Н. Царев, 2009).
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Исходя из этого, была изучена микрофлора ПК 20 человек с интактным парадонтом (третья группа), у которых выделялись 11 видов бактерий, аэробов 5 видов: Str. sanguis, Str. Salivarius, Staphylococcus epidermidis, Corynebacterium xerosis, Neisseria sp. и анаэробов 6 видов: Leptotrichia buccalis, Bifidobacterium longum, Lactobacillus salivarius, Peptostreptococcus anaerobius, Veilonella parvula, Bacteroides gingivalis. От общего количества выделенных культур группы с ин-
тактным пародонтом аэробы (в группу входят также факультативные анаэробы) составляли 45,45 %, анаэробы - 54,55 %. У пациентов первой (70 человек) и второй (32 человек) исследуемых групп до лечения был изучен микробный пейзаж ПК, в котором выявилось 30 видов микроорганизмов, из них 15 аэробов с факультативными анаэробами и 15 анаэробов. Видовой состав микрофлоры полости рта при ХГПЛСТ приведен в табл. 1.
Разнообразие выделенной микрофлоры ПК пациентов с ХГПЛСТ значительно превышает в группе у пациентов с интактным пародонтом. Превалирует по распространенности и количеству колоний пародонтопатоген -Грамм + Peptostreptococcus anaerobius 13,85 % в 1 группе и 13,79 % во 2 группе. Часто встречаются аэробные. Факультативно-анаэробные Грамм + споронеобразую-щие палочки - Corynebacterium xerosis и Corynebacteriumpseudodiphtericum [9-12].
Таблица 1
Виды микроорганизмов, выделенных из пародонтальных карманов исследуемых групп
№ п/п Вид микроорганизма 3 группа (здоровый пародонт), 20 человек 1 (основная), 70 человек 2 (контрольная), 32 человека
Кол-во Частота, Кол-во Частота, Кол-во Частота,
колоний % колоний % колоний %
Аэробы и факультативные анаэробы
1 Micrococcus sp. (Гр+кокк) 0 0,00 0 0,00 0 0,00
2 Str. sanguis (Гр+кокк) 4 6,45 14 3,00 1 0,49
3 Str. mitis (Гр+кокк) 0 0,00 9 1,94 4 1,97
4 Str. mutans (Гр+кокк) 0 0,00 16 3,46 8 3,94
5 Str. sp (Гр+кокк) 0 0,00 9 1,94 4 1,97
6 Str. pyogenes (Гр+кокк) 0 0,00 9 1,94 4 1,97
7 Str. Salivarius (Гр+кокк) 13 20,96 36 7,79 10 4,92
8 Staphylococcus epidermidis (Гр+кокк) 6 9,67 11 2,38 9 4,43
9 Staphylococcus aureus (Гр+кокк) 0 0,00 9 1,94 4 1,97
10 Staphylococcus haemolyticus 0 0,00 0 0,00 0 0,00
11 Co^eba^ei'mm xerosis (Гр+пал, б/с) 5 8,06 28 6,00 14 6,89
12 Co^eba^ei'mm pseudodiphthericum (Гр+пал, б/с) 0 0,00 15 3,24 5 2,46
13 Neisseria sp. (Гр-кокк) 4 6,45 9 1,94 4 1,97
14 Neisseria subflava (Гр-кокк) 0 0,00 17 3,67 7 3,44
15 N. Flavescens (Гр-кокк) 0 0,00 4 0,86 4 1,97
16 Neisseria sicca (ГР-кокк) 0 0,00 36 7,79 15 7,38
17 Candida albicans (дрож. гр) 0 0,00 4 0,86 4 1,97
Облигатные анаэробы
1 Fusobacterium sp. (rp-nan) 0 0,00 9 1,94 4 1,97
2 Fusobacterium nucleatum (rp-nan) 0 0,00 29 6,27 12 5,91
3 Porphyromonas gingivalis (rp-nan) 0 0,00 0 0,00 0 0,00
4 Leptotrichia buccalis (rp-nan) 4 6,45 20 4,33 9 4,43
5 Bifidobacterium longum (rp+nan) 4 6,45 0 0,00 0 0,00
6 Bifidobacterium Dentium (rp+nan) 0 0,00 26 5,62 11 5,41
7 Lactobacillus sp. 0 0,00 4 0,86 9 4,43
8 Lactobacillus casei (rp+nan) 0 0,00 0 0,00 0 0,00
9 Lactobacillus salivarius (rp+nan) 6 9,67 9 1,94 4 1,97
10 Peptostreptococcus anaerobius (rp+KOKK) 6 9,67 64 13,85 28 13,79
11 Peptococcus niger (rp+KOKK) 0 0,00 9 1,95 4 1,97
12 P. micros (rp+KOKK) 0 0,00 0 0,00 0 0,00
13 Actinomyces sp. (rp+nan) 0 0,00 4 0,86 1 0,49
14 Actinomyces israelii (rp+nan) 0 0,00 0 0,00 0 0,00
15 Prevotella melaninogenica (rp-nan) 0 0,00 3 0,64 1 0,49
16 Prevotella oralis (rp-nan) 0 0,00 0 0,00 0 0,00
17 Prevotella buccalis (rp-nan) 0 0,00 4 0,86 1 0,49
18 Veilonella parvula (rp-KOKK) 4 6,45 30 6,50 12 5,91
19 Bacteroides melaninogenicus 0 0,00 4 0,86 1 0,49
20 Bacteroides gingivalis (rp-nan) 6 9,67 19 4,11 8 3,94
21 Bacteroides oralis (rp-nan) 0 0,00 2 0,43 1 0,49
22 Eubacterium nucleatum 0 0,00 0 0,00 0 0,00
23 Propionibacterium avidum (rp+nan) 0 0,00 0 0,00 0 0,00
24 Propionibacterium acnes 0 0,00 0 0,00 0 0,00
10% 6% 10% 10% 1 7% Streptococcus sanguis 21% Streptococcus salivarius Staphylococcus
10% 6% 6% epidermidis Corynebacterium 10% xerosis Neisseria sp 8% 6% Leptotrichia buccalis
4,33% _0,86%
1,94%
0,86%
1,94%
1,94% 2,38%
1,94% u Streptococcus sanguis Streptococcus mutans *J Streptococcus pyogenes " Staphylococcus epidermidis ■-1 Corinebacterium xerosi
Neisseria sp. ■"i Neisseria Flavescen -1 Fusobacterium sp. J Leptotrichia buccalis J Lactobacillus sp Peptostreptococcus anaerobius Actinomyces sp -J Prevotella buccalis ■ Bacteroides melaninogenicus Bacteroides oralis
1,95% 0,86%
0,64% 0,86%
y
__W 0,86%
■ ^
4,11%
3,46% 1,94% L0,86%
Streptococcus mitis Streptococcus sp. u Streptococcus salivarius " Staphylococcus aureus w Corinebacterium pseudodiphthericum Neisseria subflava Neisseria sicca J Fusobacterium nucleatum
- Bifidobacterium dentium u L actobacillus salivarius
Peptococcus niger Prevotella melaninogenica
- Veilonella parvula
- Bacteroides gingivalis Candida albicans
Рис. 1. Микробный состав здорового пародонтального кармана
Рис. 2. Микробный состав ПК первой группы до лечения
При ХГПЛСТ также выявлялась резидентная обли-гатная анаэробная флора десневой борозды Veilonella parvula, Lactobacillus salivarius, Bifidobacterium dentium, Peptococcus niger, Bacteroides gingivalis. Данная микрофлора находится у большинства людей и составляет
нормофлору полости рта (А.В. Кудрявцева, 2004; В.Н. Царев, 2009). Но при неблагоприятных факторах они могут проявлять свои патогенные свойства, увеличивая свою численность в очаге воспаления (Х.Г. Сте-фен, Б.Б. Кетлин, 2009) (рис. 1-3; табл. 1).
1,97% ^0,49% _0,49%
1,97%
13,79%
0,49% 0,49% 3,94%
0,49% 0,49% 1,97%
1,97% 1,97%
1,97%
Streptococcus sanguis Streptococcus mutans I Streptococcus pyogenes Staphylococcus epidermidis Candida albicans
Corinebacterium pseudodiphthericum Neisseria subflava Neisseria sicca Fusobacterium nucleatum Bifidobacterium dentium L actobacillus salivarius Peptococcus niger Prevotella melaninogenica Veilonella parvula Bacteroides gingivalis
1,97% 1,97%
Streptococcus mitis Streptococcus sp. Streptococcus salivarius Staphylococcus aureus Corinebacterium xerosi Neisseria sp. Neisseria Flavescen Fusobacterium sp. Leptotrichia buccalis Lactobacillus sp Peptostreptococcus anaerobius Actinomyces sp Prevotella buccalis Bacteroides melaninogenicus Bacteroides oralis
Рис. 3. Микробный состав ПК второй группы до лечения
Из пародонтопатогенных микроорганизмов выявлялись в количестве 8,21 % в 1 группе и 7,88 % во 2 группе фузобактерии Fusobacterium nucleatum и Fusobacterium sp., Патогенные аэробы Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis составили 4,32 % в 1 группе и 6,4 % во 2 группе от общего числа микроорганизмов [6; 10-11; 13-16]. Следовательно, можно предположить, что в развитии заболевания важную роль играл Peptostreptococcus anaerobius, в меньшей части - фузобактерии и бактероиды [11; 13-14].
После проведенного лечения произошло снижение общего количественного состава колоний микрофлоры в 1 группе с 462 до 64 (снижение на 86,14 %), во 2 группе - с 203 до 73 (снижение на 64,04 %). В связи с этим процентные показатели претерпели изменения, т. к. за 100 % взято общее количественное число колоний в первой группе 64, тогда как во второй - 73 (рис. 4, табл. 2).
1 группа 2 группа
ч до лечения И после лечения Рис. 4. Количественный состав микрофлоры
Таблица 2
Виды микроорганизмов, выделенных из пародонтальных карманов после проведенного лечения
№ Вид микроорганизма 1 1 (основная), 70 человек | 1 2 (контрольная), 32 человека
п/п 1 Кол-во колоний Частота, % | 1 Кол-во колоний Частота, %
Аэробы и факультативные анаэробы
1 Micrococcus sp. (Гр+кокк) 0 0,00 0 0,00
2 Str. sanguis (Гр+кокк) 1 1,56 1 1,36
3 Str. mitis (Гр+кокк) 0 0,00 1 1,36
4 Str. mutans (Гр+кокк) 0 0,00 0 0,00
5 Str. sp (Гр+кокк) 0 0,00 2 2,74
6 Str. pyogenes (Гр+кокк) 0 0,00 1 1,36
7 Strept. Salivarius (Гр+кокк) 9 14,06 10 13,69
8 Staphylococcus epidermidis (Гр+кокк) 4 6,25 5 6,84
9 Staphylococcus aureus (Гр+кокк) 0 0,00 2 2,73
10 Staphylococcus haemolyticus 0 0,00 0 0,00
11 CorYnebacterium xerosis (Гр+пал, б/с) 7 10,93 7 9,59
12 CorYnebacterium pseudodiphthericum (Гр+пал, б/с) 0 0,00 1 1,36
13 Neisseria sp. (Гр-кокк) 1 1,56 2 2,74
14 Neisseria subflava (Гр-кокк) 0 0,00 0 0,00
15 N. Flavescens (Гр-кокк) 0 0,00 0 0,00
16 Neisseria sicca (ГР-кокк) 0 0,00 0 0,00
17 Candida albicans (дрож. гр) 0 0,00 0 0,00
Облигатные анаэробы
1 Fusobacterium sp. (Гр-пал) 0 0,00 1 1,36
2 Fusobacterium nucleatum (Гр-пал) 0 0,00 3 4,1
3 Porphyromonas gingivalis (Гр-пал) 0 0,00 0 0,00
4 Leptotrichia buccalis (Гр-пал) 8 12,5 3 4,1
5 Bifidobacterium longum (Гр+пал) 0 0,00 0 0,00
6 Bifidobacterium Dentium (Гр+пал) 0 0,00 4 5,45
7 Lactobacillus sp. 0 0,00 4 5,45
8 Lactobacillus casei (Гр+пал) 0 0,00 0 0,00
9 Lactobacillus salivarius (Гр+пал) 2 3,12 1 1,36
10 Peptostreptococcus anaerobius (Гр+кокк) 12 18,75 13 17,8
11 Peptococcus niger (Гр+кокк) 1 1,56 1 1,36
12 P. micros (Гр+кокк) 0 0,00 0 0,00
13 Actinomyces sp. (Гр+пал) 0 0,00 0 0,00
14 Actinomyces israelii (Гр+пал) 0 0,00 0 0,00
15 Prevotella melaninogenica (Гр-пал) 0 0,00 0 0,00
16 Prevotella oralis (Гр-пал) 0 0,00 0 0,00
17 Prevotella buccalis (Гр-пал) 0 0,00 0 0,00
18 Veilonella parvula (Гр-кокк) 17 26,56 7 9,58
19 Bacteroides melaninogenicus 0 0,00 1 1,36
20 Bacteroides gingivalis (Гр-пал) 2 3,12 3 4,1
21 Bacteroides oralis (Гр-пал) 0 0,00 0 0,00
22 Eubacterium nucleatum 0 0,00 0 0,00
23 Propionibacterium avidum (Гр+пал) 0 0,00 0 0,00
24 Propionibacterium acnes 0 0,00 0 0,00
При применении обогащенной аутоплазмы в первой группе в ПК получен выраженный бактерицидный эффект. Произошло уменьшение видового разнообразия микрофлоры с 30 до 11 видов. Исчезли фузобактерии Fusobacterium sp. (Гр-), Fusobacterium nucleatum (Гр-), бактероиды Bacteroides gingivalis (Гр-), снизились Bacteroides melaninogenicus, Bacteroides oralis (Гр-), превотеллы Prevotella melaninogenica (Гр-), Prevotella oralis (Гр-), Prevotella buccalis (Гр-) [9-11; 17-22]. Уменьшилось количество «зеленящих» стрептококков и коринебактерий. Значительно уменьшились количество и распространенность основного пародонтопатогена
Peptostreptococcus. Anaerobius с 64 колоний до 12, что составило 81,25 % [23-28]. Также отмечается положительная динамика и по другим пародонтопатогенам [2937]. Анаэробные грамотрицательные микроорганизмы полностью исчезли.
Также удалось сохранить достаточное количество нормофлоры по сравнению со второй исследуемой групп-пой Veilonella parvula 26,56 %, Peptococcus niger 1,5 %, Peptostreptococcus anaerobius 18,75 %, L actobacillus salivarius 3,12 %, Leptotrichia buccalis 12,5 %, Corinebacterium xerosi 10,93 %, Streptococcus salivarius 14,06 % (рис. 5).
После лечения пациентов с ХГПЛСТ 2 группы обнаружены изменения видового и количественного состава микроорганизмов, в т. ч. и условно-патогенной. Произошло уменьшение видового разнообразия микрофло-
ры с 30 до 21 вида. Снизилось количество Peptostreptococcus. Anaerobius с 28 колоний до 13, что составило 43,47 % [38-42].
Bacteroides gingivalis Bacteroides melaninogenicus Veilonella parvula Peptococcus niger Peptostreptococcus anaerobius L actobacillus salivarius Lactobacillus sp Bifidobacterium dentium Leptotrichia buccalis Fusobacterium nucleatum Fusobacterium sp. Neisseria sp.
Corinebacterium pseudodiphthericum Corinebacterium xerosi Staphylococcus aureus Staphylococcus epidermidis Streptococcus salivarius Streptococcus pyogenes Streptococcus sp. Streptococcus mitis Streptococcus sanguis
Рис. 5. Первая и вторая группы после лечения
После анализа полученных данных наибольший антибактериальный эффект был достигнут в первой группе, лечение которой происходило с применением активированной тромбоцитами аутоплазмы, по сравнению со стандартными методами консервативного лечения ХГПЛСТ.
ВЫВОДЫ
Исходя из данных наших исследований отмечаем важность и обоснованность проведения противовоспалительной терапии сразу после комплекса профилактических мероприятий при ХГПЛСТ. Клинические и микробиологические данные свидетельствуют о необходимости через 6 месяцев повторного курса лечения [43-51].
При применении активированной тромбоцитами аутоплазмы для лечения ХГПЛСТ происходит декон-таминация пародонтальных карманов, которая проявляется в уменьшении общего микробного числа в па-родонтальных карманах, снижении грамотрицательной микрофлоры, изменении ее видового состава в сторону нормофлоры на фоне улучшения гигиены полости рта и снижения степени выраженности воспалительных явлений в структуре пародонта [52-56].
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Грудянов А.И., Дмитриева Л.А., Фоменко Е.В. Применение про-биотиков в комплексном лечении воспалительных заболеваний пародонта. М.: Медицинское информационное агентство, 2006. 112 с.
2. Grudianov A.I., Ovchinnikova V.V. Frequency of révélation of différent représentatives of parodontopathogenic microflora in cases of parodontitis of different severity // Стоматология. 2009. № 3. С. 3437.
3. Takamatsu N., Yano K., He T., Umeda M., Ishikawa I. // J. Periodontol. 1999. V. 70. № 6. P. 574-580.
4. Григорьян А.С. Основные направления развития фундаментальных исследований в стоматологии // Стоматология сегодня и завтра: материалы Всерос. науч.-практ. конф. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005. С. 82-89.
5. Грудянов А.И. Заболевания пародонта. М.: Медицинское информационное агентство, 2009. 331 с.
6. Кречина Е.К. Нарушения микроциркуляции в тканях пародонта при его заболеваниях и клинико-функциональное обоснование методов их коррекции: автореф. дис. ... д-ра мед. наук. М., 1997.
7. Соколова И.И., Скидан К.В., Воропаева Л.В., Томилина Т.В. и др. Микрофлора полости рта, дисбактериоз и пути его коррекции пробиотиками // Експериментальна I кшшчна медицина. 2010. № 2. С. 64-69.
8. Murray P.R., Baron E.J., Jorgensen J.N., Pfaller M.A. Manual of Clinical Microbiology. Washington: ASM Press, 2003. P. 263-441.
9. Ведешина Э.Г. и др. Заборник пробы содержимого зубодесневого кармана и/или зубодесневой борозды для микробиологического исследования. Патент № 85332 РФ от 10.08.2009 г. // Изобретения, полезные модели. Роспатент. М., 2009. Бюл. № 22.
10. Воронина А.И. Оптимизация консервативного лечения хронического генерализованного пародонтита легкой и средней степени тяжести с использованием различных антибактериальных средств: автореф. дис. ... канд. мед. наук. Н. Новгород, 2011.
11. Гончарова Е.И. Препараты лекарственных растений в стоматологической практике: учеб. пособие. М.: Институт повышения квалификации Федерального медико-биологического агентства, 2008. 45 с.
12. Гостищев В.К. Энзимотерапия неспецифической хирургической инфекции: автореф. дис. ... д-ра мед. наук. М., 1972.
13. Гажва С.И., Воронина А.И. Сравнительная оценка эффективности лечения хронического генерализованного пародонтита легкой и средней степеней тяжести с использованием антибактериальных средств «Асепта» // Пародонтология. 2009. № 2. С. 19-24.
14. Гажва С.И. Хирургические методы лечения заболеваний паро-донта. Н. Новгород, 2003. 105 с.
15. Зеленова Е.Г., Заславская М.И., Салина Е.В. и др. Микрофлора полости рта: норма и патология. Н. Новгород, 2004. 158 с.
16. Maiden M.F., Cohee P., Tanner A.C. // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2003. V. 53. P. 2111-2112.
17. Zyrianova N.V., Grigor'ian A.S., Grudianov A.I., Frolova O.A., Shil'nikova I.I., Kobozev M.l. Species composition of anaerobic microflora in parodontal pocket depending upon disease stage // Стоматология. 2009. № 4. С. 43-47.
18. Барер Г.М. Терапевтическая стоматология. Ч. 2. Болезни пародонта. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. 224 с.
19. Бондаренко В.М., Шапошникова Л.И. Клинический эффект жидких симбиотических биокомплексов, содержащих физиологически активные клетки бифидобактерий и лактобацилл. М., 2007. 95 с.
20. Ведешина Э.Г. и др. Способ лечения пародонтита. Патент на изобретение № 2400243. Зарегистрировано в Гос. реестре изобретений РФ 27.09.2010 г. // Изобретения, полезные модели. Роспатент. М., 2010. Бюл. № 27.
21. Воробьев А.А., Лыкова Е.А. Бактерии нормальной микрофлоры: биологические свойства и защитные функции // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1999. № 6. С. 102105.
22. Григорьян А.С., Рахметова С.Ю., Зырянова Н.В. Микроорганизмы в заболеваниях пародонта: экология, патогенез, диагностика. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. 56 с.
23. Redinova T.L., Ivanova L.A., Martiusheva O.V., Cherednikova L.A., Cherednikova A.B. Microbiological and clinical characteristics of oral cavity disbiotic status // Стоматология. 2009. № 6. С. 12-18.
24. Коротяев А.И., Бабичев С.А. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология. СПб.: Специальная литература, 1998. 592 с.
25. Козырева Т.Ф., Запорожская-Абрамова Е.С. Оценка условно-патогенной флоры зубного налета и ротовой жидкости у детей с хроническим генерализованным гингивитом на фоне дисбактерио-за // Стоматология для всех. 2010. № 1. С. 49-51.
26. Микробиология и иммунология для стоматологов: пер. с англ. / под ред. Р.Дж. Ламонта, М.С. Лантц, Р.А. Берне, Д.Дж. Лебланка; пер. с англ. под ред. В.К. Леонтьева. М.: Практическая медицина, 2010. 504 с.
27. Кучумова Е.Д., Леонтьев А.А., Калинина О.В., Орехова Л.Ю., Улитовский С.Б. Применение новых противовоспалительных средств в комплексе лечебно-профилактических мероприятий при заболеваниях пародонта // Пародонтология. 2008. № 1. С. 83-86.
28. Прохончуков А.А., Жижина Н.А., Григорьянц Л.А. и др. Лечение заболеваний пародонта и слизистой оболочки полости рта с применением лазерного и магнито-лазерного излучений // Пародонто-логия. 2008. № 4 (49). С. 36-42.
29. Рабинович И.М., Рабинович О.Ф., Банченко Г.В. и др. Микробиологическая характеристика полости рта в норме и при дисбакте-риозе. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2003. 16 с.
30. Терапевтическая стоматология: национальное руководство / под ред. Л.А. Дмитриевой, Ю.М. Максимовского. М. : ГЭОТАР-Медиа, 2009. 912 с.
31. Усатова Г.Н. Адгезия и колонизация микроорганизмами полости рта: автореф. дис. ... канд. мед. наук. Ростов н/Д, 1989.
32. Царев В.Н., Ушаков Р.В., Давыдов М.М. Лекции по клинической микробиологии для студентов стоматологических факультетов. Иркутск: ИГМУ; КЦ Журналист, 1996. 84 с.
33. Царев В.Н., Николаева Е.Н., Носик А.С. Современные методы микробиологической диагностики заболеваний тканей пародонта. Медицинский алфавит // Стоматология. 2005. № 2. С. 26-29.
34. Царев В.Н., Николаева Е.Н. Технологии генодиагностики в отечественной стоматологии // Стоматология. 2007. № 5. С. 82-87.
35. Царев В.Н. Экспериментальное обоснование применения биополимерных пленок, содержащих препараты иммуномодулирующе-го и антибактериального действия, для лечения заболеваний паро-донта // Пародонтология. 2010. № 1 (54). С. 57-60.
36. Шендеров Б.А. Нормальная микрофлора человека и некоторые вопросы микроэкологической технологии // Антибиотики и медицинская биотехнология. М., 1987. № 3. С. 164-170.
37. Holt S.C., Eberson J.L. Porphyromonas gingivalis, Treponema denticola and Tannerella forsythia:the «red complex», a prototype polybacterial pathogenic consortium in periodontitis // Periodontology 2000. 2005. V. 38. P. 72-122.
38. Rudney J.D., Chen R., Sedgewick G.J. Actinobacillus actinomycetem comitans, Porphyromonas gingivalis and Tannerella forsythensisare components of a polymicrobial intracellular flora within human buccal cells // J. Dent. Res. 2005. V. 84. № 1. P. 59-63.
39. Wolf H.F., Edith M., Reteitschak K.H. Пародонтология: пер. с нем. / под ред. проф. Г.М. Барера. М.: МЕДпресс-информ, 2008. С. 37-52.
40. Maiorana C., Salina S., Santoro F. Treatment of Periimplantitis with Diode Laser: A Clinical Report // Oral Laser Applications. 2002. V. 2. P. 121-127.
41. Marques M.M., Pereira A.N., Fujihara N.A. Effect of low-power laser irradiation on protein synthesis and ultrastructure of human gingival fi-broblasts // Lasers Surg. Med. 2004. V. 34. P. 260-265.
42. Moritz A., Goharkhay K., Wernisch J., Sperr W. Treatment of periodontal pockets with a diode laser // Lasers Surg. Med. 1998. V. 22. P. 302-311.
43. Paster B.J., Boches S.K., Galvin J.L., Ericson R.E., Lau C.N., Levanos V.A., Sahasrabudhe A., Dewhirst F.E. // J. Bacteriol. 2001. V. 183. P. 3770-3783.
44. Kumar P.S., Griffen A.L., Moeschberger M.L., Leys E.J. // J. Clin. Microbiol. 2005. V. 43. № 8. P. 3944-3955.
45. Haffajee A.D., Socransky S.S. // Periodontal. 2000. V. 5. P. 78-111.
46. Behl Y., Siqueira M., Ortiz J., Li J., Desta T., Faibish D., Graves D. T. // J. Immunol. 2008. V. 181. № 12. P. 8711-8718.
47. Boutaga K., Winkelhoff A.J., Vandenbroucke-Grauls I.C., Savelkoul P. // J. Clin. Microbiol. 2003. V. 41. № 11. P. 4950-4954.
48. AtiehM.A. // J. Periodontal. 2008. V. 79. № 9. P. 1620-1629.
49. Jerv0e-Storm P.M., AlAhdab H., Koltzscher M., Fimmers R., Jepsen S. // Clin. Oral Investig. 2010. V. 14. № 5. P. 533-541.
50. Naka S., Yamana A., Nakano K., Okawa R., Fujita K., Kojima A., Nemoto H., Nomura R., MatsumotoM., Ooshima T. // BMcOral Health. 2009. V. 9. P. 24.
51. Braga R.R., Carvalho M.A., Bruña-romero O., Teixeira R.E., Costa J.E., Mendes E.N., Farias L.M., Magalhaes P.P. // Anaerobe. 2010. V. 16. № 3. P. 234-239.
52. Elamin A., Albandar J.M., Poulsen K., Ali R.W., Bakken V. // J. Periodontal Res. 2011. V. 46. № 3. P. 285-291. DOI: 10.1111/j.1600-0765.2010.01337.x.
53. Rakic M., Zelic K., Pavlica D., Hadzimihajlovic M., Milasin J., Mili-cic B., Nikolic N., Stamatovic N., Matic S., Aleksic Z., Jankovic S. // Vojnosanit. Pregl. 2010. V. 67. № 11. Р. 898-902.
54. Hyvärinen K., Laitinen S., Paju S., Hakala A., Suominentaipale L., SkurnikM., Könönen E., Pussinen P.J. // Innate Immun. 2009. V. 15. № 4. P. 195-204.
55. Zorina O.A., Tumbinskaya L.V., Rebrikov D.V. // Dentistry for All. 2011. № 1. Р. 46-48.
56. Vandesompele J., De Preter K., Pattyn F., Poppe B., van Roy N., De Paepe A., Speleman F. // Genome Biol. 2002. V. 3. № 7. Research0034.
Поступила в редакцию 25 января 2017 г.
Микляев Станислав Валерьевич, Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко, г. Воронеж, Российская Федерация, аспирант, кафедра госпитальной стоматологии; Тамбовская областная клиническая стоматологическая поликлиника, г. Тамбов, Российская Федерация, врач стоматолог-терапевт, e-mail: mikla-ev@mail.ru
Леонова Ольга Михайловна, Тамбовская областная клиническая стоматологическая поликлиника, г. Тамбов, Российская Федерация, главный врач, e-mail: miklaev@mail.ru
Сущенко Андрей Валерьевич, Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко, г. Воронеж, Российская Федерация, доктор медицинских наук, профессор, зав. кафедрой госпитальной стоматологии, e-mail: miklaev@mail.ru
Олейник Ольга Игоревна, Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко, г. Воронеж, Российская Федерация, доктор медицинских наук, доцент кафедры госпитальной стоматологии, e-mail: miklaev@mail.ru
UDC 616.314.18-002.4:616.15
DOI: 10.20310/1810-0198-2017-22-2-337-347
MICROBIOLOGICAL ANALYSIS OF PATIENTS' TREATMENT EFFICIENCY WITH CHRONIC GENERALIZED PERIODONTITIS OF EASY SEVERITY WITH THE APPLICATION OF ACTIVATED BY BLOOD DISKS HUMAN'S BLOOD
© S.V. Miklyaev12), O.M. Leonova2), A.V. Sushchenko1), O.I. Oleynik1)
1)1 Voronezh State Medical University named after N.N. Burdenko of Ministry of Health of Russia 10 Studencheskaya St., Voronezh, Russian Federation, 394036
2) Tambov Regional Clinical Dental Care 17a 60 Let Oktyabrya St., Tambov, Russian Federation, 392002 E-mail: miklaev@mail.ru
Microflora of a human is a complex self-regulating system, which is able to revive at competent correction. The late researches have shown that the violations of normal microbiocenosis of mouth cavity is increasing among the population of Russian Federation. It exceeds 90 % inducing inflammatory state in paradontium tissues and as a rule is accompanied by dysbiosis of buccal cavity. Its intensity is in degree of damage of paradontium. One of the leading places in the development of this pathology takes resident obligatory-anaerobic and microaerophilic microflora of mouth cavity.
Key words: chronic generalized paradontium; paradontiumpathogenic microflora; periodontal pocket; culture-based analysis
REFERENCES
1. Grudyanov A.I., Dmitrieva L.A., Fomenko E.V. Primenenie probiotikov v kompleksnom lechenii vospalitel'nykh zabolevaniy parodonta [Probiotics use in complex treatment of inflammatory paradontium disease]. Moscow, Medical Information Agency, 2006, 112 p. (In Russian).
2. Grudianov A.I., Ovchinnikova V.V. Frequency of revelation of different representatives of parodontopathogenic microflora in cases of parodontitis of different severity. Stomatologiya - Dentistry, 2009, № 3, pp. 34-37.
3. Takamatsu N., Yano K., He T., Umeda M., Ishikawa I. J. Periodontal., 1999, vol. 70, no. 6, pp. 574-580.
4. Grigoryan A.S. Osnovnye napravleniya razvitiya fundamental'nykh issledovaniy v stomatologii [The basic directions of fundamental researches development in stomatology]. Materialy Vserossiyskoy nauchno-prakticheskoy konferentsii «Stomatologiya segodnya i zavtra» [Materials of All-Russian Scientific-Practical Conference "Stomatology Today and Tomorrow"]. Moscow, GEOTAR-Media Publ., 2005, pp. 82-89. (In Russian).
5. Grudyanov A.I. Zabolevaniya parodonta [Paradontium Disease]. Moscow, Medical Information Agency Publ., 2009, 331 p. (In Russian).
6. Krechina E.K. Narusheniya mikrotsirkulyatsii v tkanyakh parodonta pri ego zabolevaniyakh i kliniko-funktsional'noe obosnovanie metodov ikh korrektsii. Avtoref. diss. ... dokt. med. nauk [Abnormalities of Microcirculation in Tissues of Periodontis at its Disease and Clinical-Functional Foundation of Methods of Correction. Dr. med. sci. diss. abstr.]. Moscow, 1997. (In Russian).
7. Sokolova I.I., Skidan K.V., Voropaeva L.V., Tomilina T.V. et al. Mikroflora polosti rta, disbakterioz i puti ego korrektsii probiotikami [Microflora of buccal cavity, disbacteriosis and the ways of its correction by probiotics]. Eksperymental'na I klinichna medycyna - Experimental and Clinical Medicine, 2010, no. 2, pp. 64-69. (In Russian).
8. Murray P.R., Baron E.J., Jorgensen J.N., Pfaller M.A. Manual of Clinical Microbiology. Washington, ASM Press, 2003, pp. 263-441.
9. Vedeshina E.G. et al. Zabornik proby soderzhimogo zubodesnevogo karmana i/ili zubodesnevoy borozdy dlya mikrobiologicheskogo issledovaniya [Intake of the contents test of dentogingival pocket and/or gingival sulcus for microbiological research]. Patent no. 85332 (RF). Izobreteniya. Poleznye modeli [Inventions. Useful Models], 2009. (In Russian).
10. Voronina A.I. Optimizatsiya konservativnogo lecheniya khronicheskogo generalizovannogo parodontita legkoy i sredney stepeni tyazhesti s ispol'zovaniem razlichnykh antibakterial'nykh sredstv. Avtoref. diss. ... kand. med. nauk [Optimization of Conservative Treatment of Chronic Generalized Periodontitis of Easy and Middle Severity with the Use of Different Antibacterial Agents. Cand. med. sci. diss. abstr.]. Nizhny Novgorod, 2011. (In Russian).
11. Goncharova E.I. Preparaty lekarstvennykh rasteniy v stomatologicheskoy praktike [Specimen of Medicinal Herbs in Stomatology Practice]. Moscow, Institute of Further Training of Federal Medical-Biological Agency, 2008, 45 p. (In Russian).
12. Gostishchev V.K. Enzimoterapiya nespetsificheskoy khirurgicheskoy infektsii. Avtoref. diss. ... dokt. med. nauk [Enzymotherapy of Nonspecific Surgical Infection. Dr. med. sci. diss. abstr.]. Moscow, 1972. (In Russian).
13. Gazhva S.I., Voronina A.I. Sravnitel'naya otsenka effektivnosti lecheniya khronicheskogo generalizovannogo parodontita legkoy i sredney stepeney tyazhesti s ispol'zovaniem antibakterial'nykh sredstv «Asepta» [Comparative estimation of treatment efficiency of chronic generalized periodontitis of easy and middle severity with the use of antibacterial agents "Asepta"]. Parodontologiya - Perio-dontology, 2009, no. 2, pp. 19-24. (In Russian).
14. Gazhva S.I. Khirurgicheskie metody lecheniyazabolevaniyparodonta [Surgical Methods of Periodontitis Treatment]. Nizhny Novgorod, 2003, 105 p. (In Russian).
15. Zelenova E.G., Zaslavskaya M.I., Salina E.V. et al. Mikroflora polosti rta: norma i patologiya [Microflora of Buccal Cavity: Norm and Pathology]. Nizhny Novgorod, 2004, 158 p. (In Russian).
16. Maiden M.F., Cohee P., Tanner A.C. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2003, vol. 53, pp. 2111-2112.
17. Zyrianova N.V., Grigorian A.S., Grudianov A.I., Frolova O.A., Shilnikova I.I., Kobozev M.I. Species composition of anaerobic microflora in parodontal pocket depending upon disease stage. Stomatologiya - Dentistry, 2009, no. 4, pp. 43-47.
18. Barer G.M. Terapevticheskaya stomatologiya. Ch. 2. Bolezniparodonta [Operative Dentistry. Part 2. Paradontium Diseases]. Moscow, GEOTAR-Media Publ., 2008, 224 p. (In Russian).
19. Bondarenko V.M., Shaposhnikova L.I. Klinicheskiy effekt zhidkikh simbioticheskikh biokompleksov, soderzhashchikh fiziologicheski aktivnye kletki bifidobakteriy i laktobatsill [Clinical Effect of Hot Synthetic Biocomplex, Containing Physiologically Active Cells of Bifidobacterium and Lactobacillus]. Moscow, 2007, 95 p. (In Russian).
20. Vedeshina E.G. et al. Sposob lecheniya parodontita [Treatment Modality of Periodontitis]. Patent no. 2400243 RF. Izobreteniya. Poleznye modeli [Inventions. Useful Models], 2010. (In Russian).
21. Vorobev A.A., Lykova E.A. Bakterii normal'noy mikroflory: biologicheskie svoystva i zashchitnye funktsii [Bacteria of Normal Microflora: Biological Qualities and Protections Functions]. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii - Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunology, 1999, no. 6, pp. 102-105. (In Russian).
22. Grigoryan A.S., Rakhmetova S.Yu., Zyryanova N.V. Mikroorganizmy v zabolevaniyakh parodonta: ekologiya, patogenez, diagnostika [Microorganism in Periodontitis Diseases: Ecology, Pathogenesis, Diagnostics]. Moscow, GEOTAR-Media Publ., 2007, 56 p. (In Russian).
23. Redinova T.L., Ivanova L.A., Martiusheva O.V., Cherednikova L.A., Cherednikova A.B. Microbiological and clinical characteristics of oral cavity disbiotic status. Stomatologiya - Dentistry, 2009, no. 6, pp. 12-18.
24. Korotyaev A.I., Babichev S.A. Meditsinskaya mikrobiologiya, immunologiya i virusologiya [Medical Microbiology, Immunology and Virology]. St. Petersburg, Spetsialnaya literature Publ., 1998, 592 p. (In Russian).
25. Kosyreva T.F., Zaporozhskaya-Abramova E.S. Otsenka uslovno-patogennoy flory zubnogo naleta i rotovoy zhidkosti u detey s khronicheskim generalizovannym gingivitom na fone disbakterioza [Estimation of potentially pathogenic flora of bacterial plaque and oscular fluid at children with chronic generalized gingivitis in the background of disbacteriosis]. Stomatologiya dlya vsekh - International Dental Review, 2010, no. 1, pp. 49-51. (In Russian).
26. Mikrobiologiya i immunologiya dlya stomatologov [Microbiology and Immunology for Dentists]. R.Dzh. Lamont, M.S. Lantts, R.A. Berne, D.Dzh. Leblank (eds.). Moscow, Prakticheskaya meditsina Publ., 2010, 504 p. (In Russian).
27. Kuchumova E.D., Leontev A.A., Kalinina O.V., Orekhova L.Yu., Ulitovskiy S.B. Primenenie novykh protivovospalitel'nykh sredstv v komplekse lechebno-profilakticheskikh meropriyatiy pri zabolevaniyakh parodonta [Application of new anti-inflammatory means in a complex of treatment and prophylactic actions at periodontal diseases]. Parodontologiya - Periodontology, 2008, no. 1, pp. 83-86. (In Russian).
28. Prokhonchukov A.A., Zhizhina N.A., Grigoryants L.A., Stebelkova M.L., Rassadin A.M., Alyabev Yu.S., Badalyan V.A., Bogatov V.V., Vakhtin V.I., Korzh G.M., Vinogradov A.B., Vatlin A.G. Lechenie zabolevaniy parodonta i slizistoy obolochki polosti rta s primeneniem lazernogo i magnito-lazernogo izlucheniy [Treatment of periodontal diseases and oral mucous with application of laser and magnet-laser radiations]. Parodontologiya - Periodontology, 2008, no. 4 (49), pp. 36-42. (In Russian).
29. Rabinovich I.M., Rabinovich O.F., Banchenko G.V. et al. Mikrobiologicheskaya kharakteristikapolosti rta v norme i pri disbakterioze [Microbiological Characteristics of Buccal Cavity in Norm at Disbacteriosis]. Moscow, GEOTAR-Media Publ., 2003, 16 p. (In Russian).
30. Terapevticheskaya stomatologiya: natsional'noe rukovodstvo [Operative Dentistry: National Guide]. L.A. Dmitrieva, Yu.M. Maksimovskiy (eds.). Moscow, GEOTAR-Media Publ., 2009, 912 p. (In Russian).
31. Usatova G.N. Adgeziya i kolonizatsiya mikroorganizmami polosti rta. Avtoref. diss. ... kand. med. nauk [Adhesion and Colonization by Microorganisms of Buccal Cavity. Cand. med. sci. diss. abstr.]. Rostov-on-Don, 1989. (In Russian).
32. Tsarev V.N., Ushakov R.V., Davydov M.M. Lektsii po klinicheskoy mikrobiologii dlya studentov stomatologicheskikh fakul'tetov [Lectures in Clinical Microbiology for Students of Dentistry Faculties]. Irkutsk, IGMU; KTs Zhurnalist, 1996, 84 p. (In Russian).
33. Tsarev V.N., Nikolaeva E.N., Nosik A.S. Sovremennye metody mikrobiologicheskoy diagnostiki zabolevaniy tkaney parodonta. Meditsinskiy alfavit [Modern methods of microbiological diagnostics of periodontitis tissue disease. Medical alphabet]. Stomatologiya -Dentistry, 2005, no. 2, pp. 26-29. (In Russian).
34. Tsarev V.N., Nikolaeva E.N. Tekhnologii genodiagnostiki v otechestvennoy stomatologii [Genodiagnostic technologies in domestic stomatology]. Stomatologiya - Dentistry, 2007, no. 5, pp. 82-87. (In Russian).
35. Tsarev V.N. Eksperimental'noe obosnovanie primeneniya biopolimernykh plenok, soderzhashchikh preparaty immunomodu-liruyushchego i antibakterial'nogo deystviya, dlya lecheniya zabolevaniy parodonta [Experimental substantiation of application of the biopolymeric films containing drugs with immunomodulatory and antibacterial action for periodontal diseases treatment]. Parodontologiya-Periodontology, 2010, no. 1 (54), pp. 57-60. (In Russian).
36. Shenderov B.A. Normal'naya mikroflora cheloveka i nekotorye voprosy mikroekologicheskoy tekhnologii [Normal microflora of a human and some questions of microecological technology]. Antibiotiki i meditsinskaya biotekhnologiya - Antibiotics and Medical Biotechnology, 1987, no. 3, pp. 164-170. (In Russian).
37. Holt S.C., Eberson J.L. Porphyromonas gingivalis, Treponema denticola and Tannerella forsythia:the «red complex», a prototype polybacterial pathogenic consortium in periodontitis. Periodontology 2000, 2005, vol. 38, pp. 72-122.
38. Rudney J.D., Chen R., Sedgewick G.J. Actinobacillus actinomycetem comitans, Porphyromonas gingivalis and Tannerella forsythensisare components of a polymicrobial intracellular flora within human buccal cells. J. Dent. Res., 2005, vol. 84, no. 1, pp. 59-63.
39. Wolf H.F., Edith M., Reteitschak K.H. Parodontologiya [Periodontics]. Moscow, MEDpress-inform Publ., 2008, pp. 37-52. (In Russian).
40. Maiorana C., Salina S., Santoro F. Treatment of Periimplantitis with Diode Laser: A Clinical Report. Oral Laser Applications, 2002, vol. 2, pp. 121-127.
41. Marques M.M., Pereira A.N., Fujihara N.A. Effect of low-power laser irradiation on protein synthesis and ultrastructure of human gingival fibroblasts. Lasers Surg. Med., 2004, vol. 34, pp. 260-265.
42. Moritz A., Goharkhay K., Wernisch J., Sperr W. Treatment of periodontal pockets with a diode laser. Lasers Surg. Med., 1998, vol. 22, pp. 302-311.
43. Paster B.J., Boches S.K., Galvin J.L., Ericson R.E., Lau C.N., Levanos V.A., Sahasrabudhe A., Dewhirst F.E. J. Bacteriol., 2001, vol. 183, pp. 3770-3783.
44. Kumar P.S., Griffen A.L., Moeschberger M.L., Leys E.J. J. Clin. Microbiol., 2005, vol. 43, no. 8, pp. 3944-3955.
45. Haffajee A.D., Socransky S.S. Periodontal., 2000, vol. 5, pp. 78-111.
46. Behl Y., Siqueira M., Ortiz J., Li J., Desta T., Faibish D., Graves D.T. J. Immunol., 2008, vol. 181, no. 12, pp. 8711-8718.
47. Boutaga K., Winkelhoff A.J., Vandenbroucke-Grauls I.C., Savelkoul P. J. Clin. Microbiol., 2003, vol. 41, no. 11, pp. 4950-4954.
48. Atieh M.A. J. Periodontal., 2008, vol. 79, no. 9, pp. 1620-1629.
49. Jerv0e-Storm P.M., AlAhdab H., Koltzscher M., Fimmers R., Jepsen S. Clin. OralInvestig., 2010, vol. 14, no. 5, pp. 533-541.
50. Naka S., Yamana A., Nakano K., Okawa R., Fujita K., Kojima A., Nemoto H., Nomura R., Matsumoto M., Ooshima T. BMcOral Health, 2009, vol. 9, p. 24.
51. Braga R.R., Carvalho M.A., Bruña-romero O., Teixeira R.E., Costa J.E., Mendes E.N., Farias L.M., Magalhâes P.P. Anaerobe, 2010, vol. 16, no. 3, pp. 234-239.
52. Elamin A., Albandar J.M., Poulsen K., Ali R.W., Bakken V. J. Periodontal Res., 2011, vol. 46, no. 3, pp. 285-291. DOI: 10.1111/j.1600-0765.2010.01337.x.
53. Rakic M., Zelic K., Pavlica D., Hadzimihajlovic M., Milasin J., Milicic B., Nikolic N., Stamatovic N., Matic S., Aleksic Z., Jankovic S. Vojnosanit. Pregl., 2010, vol. 67, no. 11, pp. 898-902.
54. Hyvârinen K., Laitinen S., Paju S., Hakala A., Suominentaipale L., Skurnik M., Kônônen E., Pussinen P.J. Innate Immun., 2009, vol. 15, no. 4, pp. 195-204.
55. Zorina O.A., Tumbinskaya L.V., Rebrikov D.V. Dentistry for All, 2011, no. 1, pp. 46-48.
56. Vandesompele J., De Preter K., Pattyn F., Poppe B., van Roy N., De Paepe A., Speleman F. Genome Biol., 2002, vol. 3, no. 7, Re-search0034.
Received 25 January 2017
Miklyaev Stanislav Valerevich, Voronezh State Medical University named after N.N. Burdenko, Voronezh, Russian Federation, Post-graduate Student, Hospital Stomatology Department; Tambov Regional Clinical Dental Care, Tambov, Russian Federation, Dentist-Therapist, e-mail: miklaev@mail.ru
Leonova Olga Mikhaylovna, Tambov Regional Clinical Dental Care, Tambov, Russian Federation, Main Doctor, e-mail: miklaev@mail.ru
Sushchenko Andrey Valerevich, Voronezh State Medical University named after N.N. Burdenko, Voronezh, Russian Federation, Doctor of Medicine, Professor, Head of Hospital Stomatology Department, e-mail: miklaev@mail.ru
Oleynik Olga Igorevna, Voronezh State Medical University named after N.N. Burdenko, Voronezh, Russian Federation, Doctor of Medicine, Associate Professor of Hospital Stomatology Department, e-mail: miklaev@mail.ru
Информация для цитирования:
Микляев С.В., Леонова О.М., Сущенко А.В., Олейник О.И. Ценоморфы флоры Тамбовской области и фитоиндикация биотопов // Вестник Тамбовского университета. Серия Естественные и технические науки. Тамбов, 2017. Т. 22. Вып. 2. С. 337-347. DOI: 10.20310/1810-0198-2017-22-2-337-347
Miklyaev S.V., Leonova O.M., Sushchenko A.V., Oleynik O.I. Tsenomorfy flory Tambovskoy oblasti i fitoindikatsiya biotopov [Microbiological analysis of patients' treatment efficiency with chronic generalized periodontitis of easy severity with the application of activated by blood disks human's blood]. Vestnik Tambovskogo universiteta. Seriya Estestvennye i tekhnicheskie nauki — Tambov University Reports. Series: Natural and Technical Sciences, 2017, vol. 22, no. 2, pp. 337-347. DOI: 10.20310/1810-0198-2017-22-2-337-347 (In Russian).
