CC BY
64
УДК 617.741.4-084
Ю.В. БАНЦЫКиНА1, и.В. малОВ13, Е.Б. ЕРОШЕВСКАя12, В.м. МАлОВ12
1Самарский государственный медицинский университет, 443099, г. Самара, ул. Чапаевская, д. 89 2Самарская областная клиническая офтальмологическая больница им. Т.И. Ерошевского, 443068, г. Самара, ул. Ново-Садовая, д. 158
3Самарская областная клиническая больница им. В.Д. Середавина, 443095, г. Самара, ул. Ташкентская, д. 159
Методы профилактики развития послеоперационного помутнения задней капсулы хрусталика. Обзор литературы
Контактная информация:
Банцыкина Юлия Владимировна — аспирант кафедры глазных болезней, тел. +7-927-784-37-70, e-mail: junessa91@mail.ru Малов игорь Владимирович — доктор медицинских наук, заведующий кафедрой глазных болезней, тел. (846) 956-52-44, e-mail: ivmsamara@gmail.com
Ерошевская Елена Брониславовна — доктор медицинских наук, профессор кафедры офтальмологии, тел. (846) 323-00-37, e-mail: s_maluhina@mail.ru
Малов Владимир Михайлович — доктор медицинских наук, профессор кафедры офтальмологии, тел. (846) 323-00-37, e-mail: s_maluhina@mail.ru
В статье представлены современные данные литературы о различных видах профилактики развития послеоперационного осложнения факоэмульсификации катаракты — помутнения задней капсулы хрусталика (ПЗК, вторичной катаракты). Методы профилактики можно разделить на хирургические — во время ключевых этапов операции по удалению хрусталика, на фармакологические и фотодинамические — различными препаратами во время и после операции. При непосредственном выполнении хирургического удаления катаракты возможно предупредить или снизить развитие послеоперационных ПЗК хрусталика за счет торможения адгезии и миграции эпителия хрусталика. Однако невозможно оказать влияния на пролиферацию хрусталиковых клеток, что оставляет актуальными поиск новых методов профилактики ПЗК.
Ключевые слова: помутнение задней капсулы хрусталика, вторичная катаракта, профилактика помутнений задней капсулы хрусталика.
Yu.V. BANTSYKINA1, I.V. MALOV13, E.B. EROSHEVSKAYA12, V.M. MALOV12
1Samara State Medical University, 89 Chapaevskaya Str., Samara, Russian Federation, 443099 2Samara Regional Ophthalmology Clinical Hospital named after T.I. Eroshevsky, 158 Novo-Sadovaya Str., Samara, Russian Federation, 443068
3Samara Regional Clinical Hospital named after V.D. Seredavin, 159 Tashkentskaya Str., Samara, Russian Federation, 443095
Prevention techniques for development of the post-surgery posterior capsule opacity. Literature review
Contact information:
Bantsykina Yu.V. — Postgraduate student of the Eye Diseases Department, tel. +7-927-784-37-70, e-mail: junessa91@mail.ru malov I.V. — D. Med. Sc., Head of the Eye Diseases Department, tel. (846) 956-52-44, e-mail: ivmsamara@gmail.com Eroshevskaya E.B. — D. Med. Sc., Professor of the Ophthalmology Department, tel. (846) 323-00-37, e-mail: s_maluhina@mail.ru malov V.M. — D. Med. Sc., Professor of the Ophthalmology Department, tel. (846) 323-00-37, e-mail: s_maluhina@mail.ru
| ОФТАЛЬМОЛОГИЯ
The article presents modern literature data on various types of prophylaxis of postoperative complication of phacoemulsification of cataract — opacification of posterior capsule opacity (PCO, secondary cataract). Methods of prevention can be divided into surgical — during the key stages of the operation of phacoemulsification of cataract, and pharmacological and photody-namic — by various drugs during and after surgery. During the surgical removal of cataract, it is possible to prevent or reduce the development of postoperative PCO by reducing the adhesion and migration of the lens epithelium. However, it is impossible to influence the proliferation of lens cells. It means that the search for new methods of preventing PCO remains relevant.
Key words: posterior capsule opacity, secondary cataract, prevention of posterior capsule opacity (PCO).
Помутнение задней капсулы (ПЗК) хрусталика после операции по удалению катаракты — это специфическое послеоперационное осложнение, возникающее вследствие пролиферации, миграции и метаплазии остаточных эпителиальных клеток удаленного хрусталика, так как их пролифератив-ная активность сохраняется в течение всей жизни. Даже при тщательной аспирации хрусталиковых масс остатки эпителиальных клеток и кортикальных волокон практически всегда присутствуют в экваториальной зоне капсульной сумки хрусталика.
ПЗК хрусталика в отдаленные сроки после операции остается наиболее распространенной причиной снижения остроты зрения. Так, по мнению разных авторов, частота ПЗК после ФЭК у взрослых варьирует в 10-50%, у детей, по разным данным, отмечается в 55,4-100% случаев [1].
Хирургические методы
Многочисленные публикации, посвященные современной ФЭК, свидетельствуют о том, что профилактика образования послеоперационных ПЗК хрусталика включает широкий комплекс мероприятий. Среди них немаловажное значение имеет тщательность выполнения узловых этапов операции, например, выполнение непрерывного циркулярного капсулорексиса [2]. Было обнаружено, что в афа-кичных глазах создание непрерывного циркулярного капсулорексиса задерживает развитие помутнения задней капсулы хрусталика в ее оптической части. В таких глазах слияние края непрерывного циркулярного капсулорексиса с задней капсулой образует кольцо Зоммеринга. Это кольцо обеспечивает замкнутую полость, которая ограничивает миграцию эпителиальных клеток хрусталика (ЭКХ) к центральной части задней капсулы. Кольцо содержит остаточные ЭКХ, остаточные корковые волокна и дифференцированные ЭКХ. Сообщалось о чрезмерном распространении остаточных ЭКХ или миграции ЭКХ через это кольцо при более длительных наблюдениях. Поскольку остаточные ЭКХ являются основными виновниками, их тщательное удаление может отдалить время развития центрального помутнения задней капсулы (ПЗК) [3].
Также важным этапом операции ФЭК является — гидродиссекция кортикальных слоев хрусталика. Кортикальная гидродиссекция приводит к разделению капсульного мешка от корковых слоев хрусталика. В исследовании, проведенном на кадаверных глазах, Peng и соавторы сообщили, что гидравлическая сила, оказываемая при гидродиссекции кортикальных слоев, может помочь удалить эКх. В исследовании Shetal M. Raj, Abhay R. Vasavada и соавторов также было высказано предположение о том, что если гидродиссекция выполняется в нескольких квадрантах, то время, необходимое для аспирации эпинуклеуса и корковых слоев, будет короче, а удаление будет более полным [3]. Вы-
сококачественные цифровые изображения с ретро-подсветкой задней капсулы этих глаз, полученные через 4 года после операции, не выявили различий в частоте возникновения ПЗК, но процентная площадь распространения помутнения на центральную часть задней капсулы, была значительно ниже в глазах, в которых была проведена кортикальная гидродиссекция в нескольких квадрантах [4].
Существует также метод гидродиссекция в сочетании с вращением хрусталика. В экспериментальном лабораторном исследовании свежего человеческого кадаверного глаза гидродиссекция кортикальных слоев в сочетании с вращением хрусталика удаляла значительные количества ЭКХ и остаточных корковых волокон с помощью трения [5]. Тот факт, что свободные ЭКХ были обнаружены в жидкости, собранной из капсулярного мешка, подтверждает, что эти две процедуры эффективно собирают ЭКХ, которые в другом случае остаются прикрепленными к капсуле [3].
Следующий важный этап — ирригация и аспирация. Бимануальная ирригация и аспирация при кортикальной очистке облегчают доступ к глубоким зонам капсулярного мешка, особенно в зоне операционного доступа [4, 5]. Тщательное удаление остаточных корковых волокон снижает количество митотически активных клеток, которые могут размножаться и мигрировать в зону центральной зрительной оси [3].
После удаления мутного хрусталика, в капсуль-ный мешок вводят искусственный хрусталик — интраокулярную линзу (ИОЛ) и располагают ее в капсульном мешке. От места фиксации линзы, по данным ряда авторов, зависит частота ПЗК. Например, Tan и соавторы заметили увеличение числа случаев фиброзного ПЗК в случаях фиксации ИОЛ в цилиарной борозде. Фиксация в капсульном мешке облегчается путем создания непрерывного циркулярного капсулорексиса. Он функционирует, прежде всего, для усиления барьерного эффекта ИОЛ [3]. Фиксация в капсульном мешке наряду с другими мерами, связанными с хирургическими методами и выбором ИОЛ, уменьшила частоту послеоперационной капсулотомии лазером Nd: YAG до 0,9% с помощью Alcon AcrySof IOL [6].
Перекрытие оптической части ИОЛ передней капсулой, осуществляется за счет правильного диаметра капсулорексиса, обычно около 5 мм. Когда размер переднего капсулорексиса больше, чем размер ИОЛ, наблюдается увеличение числа волокнистых ЭКХ, поскольку передний эпителий остается прикрепленным к задней капсуле. Считается, что в случае, если капсулорексис будет меньше, чем оптическая часть ИОЛ, адгезия между передней капсулой и оптической частью линзы не дает соприкасаться эпителию передней капсулы с задней капсулой. Это снижает частоту миграции передних ЭКХ за саму ИОЛ. С другой стороны, также было
ОФТАЛЬМОЛОГИЯ I
высказано предположение, что капсулорексис больший, чем оптическая часть ИОЛ, приводит к адгезии передней и задней капсул, образуя кольцо Зоммеринга (Soemmering), что может сдержать клетки и митотически активные кортикальные волокна, предотвращая миграцию ЭКХ в зону оптической оси [3]. Таким образом, размер непрерывного циркулярного капсулорексиса не показал никакой корреляции со степенью развития ПЗК [7].
Существует несколько возможных механизмов перекрытия оптической части ИОЛ передней капсулой, которые помогают замедлить развитие центрального ПЗК, включая эффект «shrink wrap» («термоусадочной пленки») [3], концепцию барьерного эффекта оптического края ИОЛ [6], создание прерывистого капсулорексиса и использование ИОЛ с острым оптическим краем, а также теорией сандвича на основе биоактивности [3].
Различные материалы ИОЛ показывают разные скорости образования ПЗК из-за вариативности в перекрывании передней капсулой оптической части иОл [7]. Общее покрытие передней капсулой оптики ИОЛ остается важным фактором, особенно в глазах с имплантированной ИОЛ из полиметил-метакрилата (ПММА), а также с силиконовыми ИОЛ [3]. Однако, при имплантации AcrySof IOL, размер рексиса не является решающим фактором в развитии центрального ПЗК [7]. Показано, что специальные внутрикапсулярные кольца, используемые для капсульного натяжения, уменьшают образование непрозрачности капсулы [3].
Потенциал проведения первичного заднего непрерывного циркулярного капсулорексиса для профилактики ПЗК через 2 года после операции показал обнадеживающие результаты [8]. Кроме того, отверстие в задней капсуле, произведенное методом заднего капсулорексиса, препятствует доступу ЭКХ в центральное пространство за ИОЛ. Образование так называемого «сендвича», то есть плотного контакта, задней капсулы и ИОЛ, предотвращает фиброз передней капсулы [9]. Этот метод зависит от навыков хирурга и может быть потенциально востребован в глазах с повышенным риском развития помутнений задней капсулы.
Имплантация иОл в капсульный мешок методом «Bag-in-the-lens». Исследование культур кадавер-
Рисунок 1.
ИОЛ, используемая при имплантации методом «Bag-ш-the-lens» [10]
ных капсульных мешков и in vivo на животных с использованием метода имплантации ИОЛ, чтобы купсульный мешок оказался между гаптическими частями линзы, что ограничит пролиферацию ЭКХ. В этом методе передние и задние листки капсулы аналогичных размеров вставляются в пространство между передними и задними гаптическими элементами ИОЛ, расположенными перпендикулярно друг другу [10].
Распространение ЭКХ ограничено в пространстве оставшейся части капсульного мешка и не приближается к зрительной оси. Тем не менее, следует отметить, что данный метод предотвращает ПЗК только в том случае, если передняя и задняя капсулы правильно закреплены в периферическом пазу ИОЛ [11].
Несколько авторов провели оценку роли полировки (очистки) передней капсулы для предотвращения развития ПЗК в сочетании с использованием силиконовых ИОЛ. Полировка передней капсулы эффективна для уменьшения фиброзного помутнения, но не снижает частоту развития помутнения в виде шаров Адамюка — Эльшнига [12]. В глазах с силиконовой ИОЛ с острым краем полировка передней капсулы не привела к существенному эффекту для предотвращения последующего ПЗК, фиброзного типа [13].
Дизайн ИОЛ. Конструкция ИОЛ, размер и край оптики, а также ее материал являются важными факторами в замедлении развития ПЗК. Оптика с двояковыпуклой конструкцией замедляет капсу-лярное помутнение при значительной адгезии оптической части линзы к задней капсуле. Диаметр оптической зоны ИОЛ равный 6 мм, по некоторым данным, дает меньшее ПЗК, чем у ИОЛ с диаметром 5,5 мм [3].
Nishi и соавторы предположили, что ИОЛ с острым оптическим краем создает острый изгиб в задней капсуле, что в значительной степени способствует замедлению развития центральной ПЗК. Резкий изгиб капсулы представляет собой физическое препятствие, которое может тормозить движение клеток [14]. ИОЛ с закругленным краем вызывает капсульный изгиб, не столь резкий, как у прямоугольной оптики. Основываясь на математической модели, было предсказано, что ИОЛ с прямоугольными оптическими профилями оказывают более высокое давление на заднюю капсулу, чем ИОЛ с округлыми оптическими профилями. Более высокое давление может стать физическим барьером для предотвращения миграции ЭКХ на заднюю капсулу [3].
В дополнение к оптическому краю было отмечено, что угол гаптики также уменьшает частоту ПЗК за счет индуцирования градиента давления на заднюю капсулу [3].
Материал ИОЛ. Экспериментально показано, что, если в дополнение к острому прямоугольному краю оптической части ИОЛ, линза сделана из адгезивного материала, то это способствует адгезии капсулы. Эксперименты in vitro показали, что прерывистый капсулорексис с зазубренным краем не может достоверно являться причиной помутнения задней капсулы, в случае использования ИОЛ с квадратным краем [3]. Sacu и соавт. [15] исследовали глаза методом ОКТ (оптической когерентной томографии) и выявили, что адгезия капсулы и ИОЛ совершается на 10-й день, если ИОЛ сделана из цельного акрила, на 13-й день — из трехкомпонентного acrysof, на 15-й день — из трехкомпонентного силикона.
Химические агенты
Согласно литературным данным, эффективность различных фармакологических групп препаратов (цитостатиков, ферментов, ингибиторов факторов роста, моноклональных антител, противовоспалительных средств и др.) в профилактике ПЗК хрусталика оценивалась по степени их воздействия на жизнеспособность и пролиферативную активность эпителиальных клеток удаленного хрусталика, а также по воздействию на окружающие ткани глаза. Было предложено несколько фармакологических препаратов для профилактики пЗк, большинство из них были протестированы in vitro.
Противовоспалительные и иммуномодулирую-щие препараты снижают воспалительную реакцию и секрецию цитокинов, что впоследствии приводит к снижению пролиферации ЭКХ. Этими препаратами являются индометацин, диклофенак натрия и циклоспорин А [3]. Однако пока не доказано, что местные инстилляции диклофенака в раннем послеоперационном периоде влияют на образование ПЗК [16].
Антипролиферативные агенты уменьшают скорость распространения ЭКХ и предотвращают вовлечение ЭКХ в процесс, который приводит к развитию ПЗК. Различные антипролиферативные агенты, тестируемые in vitro, представляют собой 5-фторурацил, митомицин C, дуаномицин, антагонист FGF-рецептора-! SU5402 [3], октреотид [17], колхицины и доксорубицин [3]. Пролонгированное высвобождение митомицина С, суспендированного в гиалуронате натрия, показало, что у кроликов снижается степень ПЗК [3]. Ингибитор проте-осом также приводит к уменьшению пролиферации ЭКХ в состоянии in vitro [18]. Показано, что применение электрических полей уменьшает проникновение клеток в S-фазу из Gl-фазы, уменьшая Gl-специфический клеточный цикл белка cyclin E и увеличивая комплексный ингибитор cyclin-Cdk p27kip1 [3].
Анти-адгезивные вещества и соединения, препятствующие миграции, не позволяют прикрепляться ЭКХ к задней капсуле и тем самым предотвращают их миграцию эКх по задней капсуле. Были протестированы различные антимиграционные и анти-адгезионные вещества: иломастат (ингибитор матриксной металлопротеиназы), нафтил-мочевина сурамин [19], сальмозин (дезинтегрин) [3], мибефрадил (ингибитор Са-канала) [20], пептид RGD, ЭДТА [3] и покрытие поверхности акриловой ИОЛ полимером MPC (Methacryloyloxyethyl phosphorylcholine polymer) [21]. Они уменьшают распространение ЭКХ путем снижения производства простагландина E2 эпителиальными клетками хрусталика (ЭКХ).
Препараты, вызывающие гибель клетки. Анти-трансдифференцирующий агент миноксидил (ингибитор лизилгидроксилазы) и инкапсулированный в липосому TAH могут ингибировать метаплазию и пролиферацию ЭКХ [3]. В экспериментальных исследованиях был опробован индуцированный апоптоз остаточных ЭКХ. В исследуемые группы препаратов входили бактериохлорин A [22], моно-клональные антитела, активирующее лиганды, рицин A и рицин A, конъюгированный с антителом против ЭКх, а также 1% раствор лидокаина без консервантов [1, 3, 23]. Индоцианиновый зеленый и трипановый синий, показали способность вызывать гибель ЭКХ из-за их фотосенсибилизации, этот эффект является дозоависимым [25, 26].
Препараты могут быть доставлены в капсульный мешок путем нанесения их на ИОЛ, внесения в раствор для ирригации или гидродиссекции, большинство из этих методов все еще находятся в экспериментальной фазе.
Покрытие ИОЛ. Доставка препарата посредством нанесения на ИОЛ может обеспечить более контролируемую доставку нужной концентрации препарата, которая будет эффективно снижать потенциал пролиферирующих клеток. ИОЛ из ПММК, покрытые гепарином, по некоторым данным, снижает воспалительную реакцию и частоту развития ПЗК [27]. Также показано, что Тапсигаргин (Tapsigargin) (ингибитор Са-АТФазы на основе эндоплазматиче-ского ретикулума), нанесенный на ИОЛ, снижает риск развитя ПЗК. ИОЛ, обработанная индомета-цином, также снижает митотическую активность клеток. Behar-Cohen сообщил о влиянии комплекса FGF-сапорин в сочетании с гепарином у кроликов [3]. Доказано, что гидрофобная мягкая акриловая иОл, покрытая полимером MPC, подавляет адгезию и пролиферацию ЭКХ [21].
Использование фотодинамической терапии в профилактике помутнений задней капсулы хрусталика. В современной литературе имеются сообщения, касающиеся изучения антипролиферативного эффекта водных растворов некоторых фотосенсибилизаторов на клеточные культуры хрусталика in vitro и на глазах экспериментальных животных. Обработка активным кислородом или облучение аргоновым лазером поверхности акриловых ИОЛ была эффективна для предотвращения вторичного ПЗК у 8-недельных кроликов-альбиносов [28]. Фотодинамическая терапия с бактериохлорином A вызвала гибель ЭКХ и значительно уменьшила образование кольца Зоммеринга [29]. Однако роговицы животных, обработанные этими препаратами, отекали, становились непрозрачными и теряли свой внутренний эндотелий [22].
Добавление препарата в ирригационную жидкость. Низкомолекулярный гепарин, добавленный к ирригационной жидкости во время хирургии катаракты, привел к уменьшению количества фибрина и пигмента на ИОЛ [30].
Эксперименты in vitro показали, что гидродис-секция с 1% лидокаином без консерванта может помочь уменьшить количество живых ЭКХ на передней капсуле, путем ослабления десмосомной адгезии между клетками посредством разрушения клеточных связей или прямого токсического эффекта [23].
Несмотря на проведенные исследования in vitro и in vivo, эти препараты еще не применяются в клинической практике. Так как у них существуют риски создания неправильной концентрации препарата во время его доставки или диффузии этих веществ за пределы капсульного мешка, что может отрицательно повлиять на ткани глаза и окружающие ткани. Самым восприимчивым к этим эффектам является внутренний слой — эндотелий роговицы [22]. Другие осложнения, наблюдаемые у кроликов, — некроз сетчатки и реакция передней камеры. Поэтому важна целенаправленная доставка этих препаратов внутрь капсульного мешка. Разрабатываются устройства, которые позволят селективно воздействовать определенными препаратами на остаточные ЭКХ без вреда для других тканей глаза [30].
Таким образом, уже при непосредственном выполнении вышеприведенных ключевых этапов хи-
рургического удаления катаракты возможно примерить методы способные в значительной степени предупредить или снизить развитие послеоперационных ПЗК хрусталика за счет торможения адгезии и миграции эпителия хрусталика, сохранившегося после операции, по задней капсуле. Тем не менее, используемые хирургические методы, не оказывая непосредственного влияния на пролиферацию хру-сталиковых клеток, не позволяют в полной мере исключить развитие ПЗК, что оставляет актуальными, социально значимыми исследования по поиску новых методов профилактики ПЗК и требует проведения дальнейших экспериментальных и клинических исследований.
ЛИТЕРАТУРА
1. Белый Ю.А., Терещенко А.В., Федотова М.В. Профилактика помутнений задней капсулы хрусталика после хирургии катаракты: обзор // Рефракционная хирургия и офтальмология. — 2009. — №3. — С. 4.
2. Касимова Д.П. Разработка методов хирургической профилактики помутнения задней капсулы хрусталика: автореф. дис. ... канд. мед. наук. — М., 2001. — С. 10.
3. Shetal M. Raj, Abhay R. Vasavada, S.R. Kaid Johar, Vaishali A. Vasavada, and Viraj A. Vasavada Post-Operative Capsular Opacification: A Review // Int. J. Biomed Sci. — 2007 Dec. — 3 (4). — P. 237-250. PMCID: PMC3614664 [PubMed]
4. Vasavada A.R., Dholakia S.A., Raj S.M., Singh R. Effect of cortical cleaving hydrodissection on posterior capsule opacification in age-related nuclear cataract // J. Cataract Refract. Surg. — 2006 Jul. — 32 (7). — P. 1196. [PubMed]
5. Vasavada A.R., Raj S.M., Johar K., Nanavaty M.A. Effect of hy-drodis-section alone and hydrodissection combined with rotation on lens epithelial cells: surgical approach for the prevention of posterior capsule opacification // J. Cataract Refract. Surg. — 2006 Jan. — 32 (1). — 145. [PubMed]
6. Schmidbauer J.M., Vargas L.G., Apple D.J., Escobar-Gomez M., et al. Valuation of neodymium: yttrium-aluminum-garnet capsuloto-mies in eyes implanted with AcrySof intraocular lenses // Ophthalmology. — 2002 Aug. — 109 (8). — P. 1421. [PubMed]
7. Vasavada A.R., Raj S.M. Anterior capsule relationship of the Acrysof Intraocular Lens optic and posterior capsule opacification. A prospective randomized clinical trial // Ophthalmology. — 2004. — 111. — P. 886. [PubMed]
8. Georgopoulos M., Menapace R., Findl O., Petternel V., et al. After-cataract in adults with primary posterior capsulorhexis: comparison of hydrogel and silicone intraocular lenses with round edges after 2 years // J. Cataract. Refract. Surg. — 2003 May. — 29 (5). — P. 955. [PubMed]
9. Menapace R. Routine posterior optic buttonholing for eradication of posterior capsule opacification in adults: report of 500 consecutive cases // J. Cataract Refract Surg. — 2006 Jun. — 32 (6). — P. 929. [PubMed]
10. Marie-José Tassignon Bag-in-the-Lens Cataract Surgery. American academy of ophthalmology. — 2015 JUL. — 29. URL:https:// www.aao.org/clinical-video/bag-in-lens-cataract-surgery (дата обращения: 09.02.2018)
11. De Groot V., Tassignon M.J., Vrensen G.F. Effect of bag-in-the-lens implantation on posterior capsule opacification in human donor eyes and rabbit eyes // J. Cataract Refract Surg. — 2005 Feb. — 31 (2). — P. 398. [PubMed]
12. Menapace R., Wirtitsch M., Findl O., Buehl W., et al. Effect of anterior capsule polishing on posterior capsule opacification and neodymium: YAG capsulotomy rates: three-year randomized trial // J. Cataract Refract. Surg. — 2005.
13. Sacu S., Menapace R., Wirtitsch M., Buehl W., et al. Effect of anterior capsule polishing on fibrotic capsule opacification: three-
year results // J. Cataract Refract Surg. — 2004. — 30. — P. 2322. [PubMed]
14. Prosdocimo G., Tassinari G., Sala M., Di Biase A., et al. Posterior capsule opacification after phacoemulsification: silicone CeeOn Edge versus acrylate AcrySof intraocular lens // J. Cataract Refract Surg. — 2003 Aug. — 29 (8). — P. 1551. [PubMed]
15. Sacu S., Findl O., Linnola R.J. Optical coherence tomography assessment of capsule closure after cataract surgery // J. Cataract Refract. Surg. — 2005. — 31. — P. 330. [PubMed]
16. Zaczek A., Laurell C.G., Zetterstrom C. Posterior capsule opacification after phacoemulsification in patients with postoperative steroidal and nonsteroidal treatment // J. Cataract Refract. Surg. —
2004. — 30. — P. 316. [PubMed]
17. Lois N., Taylor J., McKinnon A.D., Smith G.C., et al. Effect of TGF-beta2 and anti-TGF-beta2 antibody in a new in vivo rodent model of posterior capsule opacification // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. —
2005. — 46. — P. 4260. [PubMed]
18. Awasthi N., Wagner B.J. Suppression of human lens epithelial cell proliferation by proteasome inhibition, a potential defense against posterior capsular opacification // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. —
2006. — 47. — P. 4482. [PubMed]
19. Rieck P.W., Kriegsch J., Jaeckel C., Hartmann C. Effect of suramin on proliferation and migration of lens epithelial cells in vitro // Ophthalmologe. — 2004. — 101. — P. 73. [PubMed]
20. Nebe B., Kunz F., Peters A., Rychly J., et al. Induction of apop-tosis by the calcium antagonist mibefradil correlates with depolarization of the membrane potential and decreased integrin expression in human lens epithelial cells // Graefes. Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. — 2004. — 242. — P. 597. [PubMed]
21. Okajima Y., Saika S., Sawa M. Effect of surface coating an acrylic intraocular lens with poly (2-methacryloyloxyethyl phosphoryl-choline) polymer on lens epithelial cell line behavior // J. Cataract Refract. Surg. — 2006 Apr. — 32 (4). — P. 666. [PubMed]
22. Van Tenten Y., Schuitmaker H.J., De Groot V., Willekens B., et al. A preliminary study on the prevention of posterior capsule opacification by photodynamic therapy with bacteriochlorin A in rabbits // Ophthalmic Res. — 2002. — 34. — P. 113. [PubMed]
23. Vargas L.G., Escobar-Gomez M., Apple D.J., Hoddinott D.S., et al. Pharmacologic prevention of posterior capsule opacification: in vitro effects of preservative-free lidocaine 1% on lens epithelial cells // J. Cataract Refract. Surg. — 2003 Aug. — 29 (8). — P. 1585. [PubMed]
24. Malecaze F., Decha A., Serre B., Penary M., et al. Prevention of posterior capsule opacification by the induction of therapeutic apopto-sis of residual lens cells // Gene Ther. — 2006. — 13. — P. 440. [Pub-Med]
25. Melendez R.F., Kumar N., Maswadi S.M., Zaslow K., et al. Photodynamic actions of indocyanine green and trypan blue on human lens epithelial cells in vitro // Am. J. Ophthalmol. — 2005 Jul. — 140 (1). — P. 132. [PubMed]
26. Nanavaty M.A., Johar K., Sivasankaran M.A., Vasavada A.R., et al. Effect of trypan blue staining on the density and viability of lens epithelial cells in white cataract // J. Cataract Refract. Surg. — 2006. — 32. — P. 1483. [PubMed]
27. Koraszewska-Matuszewska B., Samochowiec-Donocik E., Piec-zara E., Filipek E. Heparin-surface-modified PMMA intraocular lenses in children in early and late follow-up // Klin. Oczna. — 2003. — 105. — P. 273.[PubMed]
28. Matsushima H., Iwamoto H., Mukai K., Obara Y. Active oxygen processing for acrylic intraocular lenses to prevent posterior capsule opacification // J. Cataract Refract Surg. — 2006 Jun. — 32 (6). — P. 1035. [PubMed]
29. Koh H.J., Kang S.J., Lim S.J., Chu Y.K., et al. The effect of photodynamic therapy with rose bengal on posterior capsule opacifi-cation in rabbit eyes // Ophthalmic Res. — 2002 May-Jun. — 34 (3). — P. 107. [PubMed]
30. Maloof A., Neilson G., Milverton E.J., Pandey S.K. Selective and specific targeting of lens epithelial cells during cataract surgery using sealed-capsule irrigation // J. Cataract. Refract. Surg. — 2003 Aug. — 29 (8). — P. 1566. [PubMed]
