Методические рекомендации Российской некоммерческой общественной организации "ассоциация анестезиологов-реаниматологов", Межрегиональной общественной организации "Альянс клинических химиотерапевтов и микробиологов", Межрегиональной ассоциации по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии (МАКМАХ), общественной организации "Российский сепсис Форум" "диагностика и антимикробная терапия инфекций, вызванных полирезистентными микроорганизмами"

Белобородов В.Б.; Гусаров В.Г.; Дехнич А.В.; Замятин М.Н.; Зубарева Н.А.; Зырянов С.К.; Камышова Д.А.; Климко Н.Н.; Козлов Р.С.; Кулабухов В.В.; Полушин Ю.С.; Руднов В.А.; Сидоренко С.В.; Шлык И.В.; Эдельштейн М.В.; Яковлев С.В.

http://doi.org/10.21292/2078-5658-2020-17-1-52-83

Методические рекомендации

Российской некоммерческой общественной организации «Ассоциация анестезиологов-реаниматологов», Межрегиональной общественной организации «Альянс клинических химиотерапевтов и микробиологов», Межрегиональной ассоциации по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии (МАКМАХ), общественной организации «Российский Сепсис Форум»

«Диагностика и антимикробная терапия инфекций, вызванных полирезистентными микроорганизмами»

В. Б. БЕЛОБОРОДОВ (МОСКВА), В. Г ГУСАРОВ (МОСКВА), А. В. ДЕХНИЧ (СМОЛЕНСК), М. Н. ЗАМЯТИН (МОСКВА), Н. А. ЗУБАРЕВА (ПЕРМЬ), С. К. ЗЫРЯНОВ (МОСКВА), Д. А. КАМЫШОВА (МОСКВА), Н. Н. КЛИМКО (САНКТ-ПЕТЕРБУРГ), Р. С. КОЗЛОВ (СМОЛЕНСК), В. В. КУЛАБУХОВ (МОСКВА), Ю. С. ПОЛУШИН (САНКТ-ПЕТЕРБУРГ), В. А. РУДНОВ (ЕКАТЕРИНБУРГ), С. В. СИДОРЕНКО (САНКТ-ПЕТЕРБУРГ), И. В. ШЛЫК (САНКТ-ПЕТЕРБУРГ), М. В. ЭДЕЛЬШТЕЙН (СМОЛЕНСК),

С. В. ЯКОВЛЕВ (МОСКВА)

СВЕДЕНИЯ О СОСТАВЕ РАБОЧЕЙ ГРУППЫ, РАЗРАБАТЫВАВШЕЙ РЕКОМЕНДАЦИИ:

Белобородов Владимир Борисович - д.м.н., вице-президент Межрегиональной общественной организации «Альянс клинических химиотерапевтов и микробиологов», заведующий кафедрой инфекционных болезней ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России, Москва.

Гусаров Виталий Геннадьевич - д.м.н., главный врач стационара, профессор кафедры анестезиологии и реаниматологии института усовершенствования врачей ФГБУ «Национальный медико-хирургический центр им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, Москва. Дехнич Андрей Владимирович - к.м.н., заместитель директора по научной работе Научно-исследовательского института антимикробной химиотерапии ФГБОУ ВО «Смоленский государственный медицинский университет» Минздрава России, Смоленск. Замятин Михаил Николаевич - д.м.н., профессор, заведующий кафедрой анестезиологии и реаниматологии института усовершенствования врачей, главный специалист анестезиолог-реаниматолог ФГБУ «Национальный медико-хирургический центр им. Н.И. Пи-рогова» Минздрава России, Москва.

Зубарева Надежда Анатольевна - д.м.н., профессор кафедры общей хирургии № 1 ФГБОУ ВО «Пермский государственный медицинский университет им. акад. Е.А. Вагнера» Минздрава России, Пермь.

Зырянов Сергей Кенсаринович - д.м.н., профессор, заместитель главного врача по терапии городской клинической больницы № 24, заведующий кафедрой общей и клинической фармакологии Федерального государственного автономного образовательного учреждения высшего образования «Российский университет дружбы народов», Москва.

Камышова Дарья Андреевна - врач - клинический фармаколог ФГБУ «Национальный медико-хирургический центр им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, Москва.

Климко Николай Николаевич - д.м.н., профессор, заведующий кафедрой клинической микологии, аллергологии и иммунологии ФГБОУ ВО «Северо-западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России, Санкт-Петербург. Козлов Роман Сергеевич - член-корреспондент РАН, д.м.н., профессор, главный внештатный специалист по клинической микробиологии и антимикробной резистентности МЗ РФ, президент Межрегиональной ассоциации по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии (МАКМАХ), директор Научно-исследовательского института антимикробной химиотерапии ФГБОУ ВО «Смоленский государственный медицинский университет» Минздрава России, Смоленск.

Кулабухов Владимир Витальевич - к.м.н., президент общественной организации «Российский Сепсис Форум», член координационного совета Ассоциации анестезиологов-реаниматологов, ведущий научный сотрудник Научно-исследовательского института скорой помощи им. Н.В. Склифосовского, Москва.

Полушин Юрий Сергеевич - академик РАН, д.м.н., профессор, президент Ассоциации анестезиологов-реаниматологов, проректор по научной работе, руководитель Научно-клинического центра анестезиологии и реаниматологии ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова» Минздрава России, Санкт-Петербург. Руднов Владимир Александрович-д.м.н., профессор, вице-президент Межрегиональной ассоциации по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии, председатель совета экспертов общественной организации «Российский Сепсис Форум», член координационного совета Ассоциации анестезиологов-реаниматологов, профессор кафедры анестезиологии, реаниматологии и токсикологии ФГБОУ ВО «Уральский государственный медицинский университет Минздрава России», заместитель главного врача по анестезиологии и реанимации Муниципального автономного учреждения здравоохранения «Городская клиническая больница № 40», Екатеринбург. Сидоренко Сергей Владимирович - д.м.н., профессор, вице-президент межрегиональной общественной организации «Альянс клинических химиотерапевтов и микробиологов», заведующий отделом медицинской микробиологии и молекулярной эпидемиологии ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней Федерального медико-биологического агентства», профессор кафедры медицинской микробиологии ФГБОУ ВО «Северо-западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России, Санкт-Петербург.

Шлык Ирина Владимировна - д.м.н., заместитель президента Ассоциации анестезиологов-реаниматологов, профессор кафедры анестезиологии и реаниматологии, заместитель главного врача по анестезиологии и реаниматологии клиники ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова Минздрава России», Санкт-Петербург. Эдельштейн Михаил Владимирович - к.б.н., заведующий лабораторией антибиотикорезистентности Научно-исследовательского института антимикробной химиотерапии ФГБОУ ВО «Смоленский государственный медицинский университет» Минздрава России, Смоленск.

Q

Яковлев Сергей Владимирович - д.м.н., профессор, президент межрегиональной общественной организации «Альянс клинических химиотерапевтов и микробиологов», профессор кафедры госпитальной терапии № 2 лечебного факультета Федерального государственного автономного образовательного учреждения высшего образования «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет), Москва.

Введение. В большинстве регионов мира, в том числе и в России, получают широкое распространение штаммы микроорганизмов, характеризующиеся устойчивостью к большинству используемых в медицинских организациях антимикробных препаратов, что закономерно Щ ведет к снижению эффективности антимикробной терапии при лечении нозокомиальных инфекций. В этой связи своевременное назначение адекватной антибактериальной терапии приобретает очень большое значение.

Цель рекомендаций: представить в обобщенном виде информацию о современных подходах к микробиологической диагностике и оценке ее результатов, а также о принципах рационального использования антимикробных и противогрибковых препаратов, в том числе при инфекциях, вызванных полирезистентными штаммами микроорганизмов.

Материал и методы. В основу положены данные из публикаций, полученные в ходе рандомизированных исследований, а также изложенные в международных клинических рекомендациях в виде положений, имеющих высокую степень доказательности. Рекомендации подготовлены рабочей группой российских экспертов, обладающих большим опытом исследовательской и практической работы в рассматриваемой области. Окончательный вариант рекомендаций был рассмотрен и утвержден 11.10.2019 г. на совместном заседании рабочей группы и представителей общественных организаций - инициаторов разработки Методических рекомендаций (Российская некоммерческая общественная организация «Ассоциация анестезиологов-реаниматологов», Межрегиональная общественная организация «Альянс клинических химиотерапевтов и микробиологов», Межрегиональная ассоциация по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии (МАКМАХ), общественная организация «Российский Сепсис Форум»).

Заключение. Рекомендации отражают междисциплинарное консенсусное мнение о подходах к диагностике и антибактериальной терапии инфекций, вызванных полирезистентными микрорганизмами. Изложенные в них положения целесообразно использовать при определении тактики эмпирической и этиотропной терапии наиболее тяжелых инфекций.

Ключевые слова: инфекция, микробы, детекция микроорганизмов, антибактериальная терапия, антибиотикорезистентность, эмпирическая антибактериальная терапия

Для цитирования: Белобородов В.Б., Гусаров В.Г., Дехнич А.В., Замятин М.Н., Зубарева Н.А., Зырянов С.К., Камышова Д.А., Климко Н.Н., Козлов Р.С., Кулабухов В.В., Полушин Ю.С., Руднов В.А., Сидоренко С.В., Шлык И.В., Эдельштейн М.В., Яковлев С.В. Диагностика и антимикробная терапия инфекций, вызванных полирезистентными микроорганизмами. Методические рекомендации Российской некоммерческой общественной организации «Ассоциация анестезиологов-реаниматологов», Межрегиональной общественной организации «Альянс клинических химиотерапевтов и микробиологов», Межрегиональной ассоциации по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии (МАКМАХ), общественной организации «Российский Сепсис Форум» // Вестник анестезиологии и реаниматологии. -2020. - Т. 17, № 1. - С. 52-83. DOI: 10.21292/2078-5658-2020-17-1-52-83

Guidelines

of the Association of Anesthesiologists-Intensivists, the Interregional Non-Governmental Organization Alliance of Clinical Chemotherapists and Microbiologists, the Interregional Association for Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy (IACMAC), and NGO Russian Sepsis Forum

Diagnostics and antimicrobial therapy of the infections caused by multiresistant

microorganisms

V. B. BELOBORODOV (MOSCOW), V. G. GUSAROV (MOSCOW), A. V. DEKHNICH (SMOLENSK), M. N. ZAMYATIN (MOSCOW), N. A. ZUBAREVA (PERM), S. K. ZYRYANOV (MOSCOW), D. A. KAMYSHOVA (MOSCOW), N. N. KLIMKO (ST.PETERSBURG), R. S. KOZLOV (SMOLENSK), V. V. KULABUKHOV (MOSCOW), YU. S. POLUSHIN (ST.PETERSBURG), V. A.RUDNOV (EKATERINBURG), S. V.SIDORENKO (ST.PETERSBURG), I. V. SHLYK (ST.PETERSBURG), M. V. EDELSHTEIN (SMOLENSK), S. V. YAKOVLEV (MOSCOW)

WORKING PARTY DEVELOPING THE GUIDELINES:

Vladimir B. Beloborodov - Doctor of Medical Sciences, Vice President of the Interregional Non-Governmental Organization Alliance of Clinical Chemotherapists and Microbiologists, Head of Infectious Diseases Department of Russian Medical Academy of On-going Professional Education, Moscow, Russia

Vitaly G. Gusarov - Doctor of Medical Sciences, Head Physician of the In-Patient Unit, Professor of Anesthesiology and Intensive Care Department of Postgraduate Medical Training Institute of National Medical and Surgical Center named after N.I. Pirogov of the Russian Ministry of Health, Moscow, Russia

Andrey V. Dekhnich - Candidate of Medical Sciences, Deputy Director for Research of Antimicrobial Chemotherapy Research Institute of Smolensk State Medical University, Russian Ministry of Health, Smolensk, Russia

Mikhail N. Zamyatin - Doctor of Medical Sciences, Professor, Head of Anesthesiology and Intensive Care Department of Postgraduate Medical Training Institute, Chief Anesthesiologist and Emergency Physician of National Medical and Surgical Center named after N.I. Pirogov of the Russian Ministry of Health, Moscow, Russia

Nadezhda A. Zubareva - Doctor of Medical Sciences, Professor of General Surgery Department no. 1 of E.A. Vagner Perm State Medical University, Russian Ministry of Health, Perm, Russia

Sergey K. Zyryanov - Doctor of Medical Sciences, Professor, Deputy Chief Physician for Therapy of Municipal Clinical Hospital no. 24, Head of General and Clinical Pharmacology Department of Peoples' Friendship University of Russia, Moscow, Russia

Darya A. Kamyshova - Clinical Pharmacologist of National Medical and Surgical Center named after N.I. Pirogov of the Russian Ministry of Health, Moscow, Russia

Nikolay N. Klimko - Doctor of Medical Sciences, Professor, Head of Department for Clinical Mycology, Allergology and Immunology of I.I. Mechnikov North-Western State Medical University, the Russian Ministry of Health, St. Petersburg, Russia

Roman S. Kozlov - Correspondent Member of RAS, Doctor of Medical Sciences, Professor, Chief Expert in Clinical Microbiology and Antimicrobial Resistance of the Russian Ministry of Health, President of the Interregional Association for Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy (IACMAC), Director of Antimicrobial Chemotherapy Research Institute of Smolensk State Medical University, Russian Ministry of Health, Smolensk, Russia.

Vladimir V. Kulabukhov - Candidate of Medical Sciences, President of NGO Russian Sepsis Forum, Member of Coordination Council of Association Anesthesiologists-Intensivists, Leading Researcher of N. V Sklifosovsky Research Institute for Emergency Medicine, Moscow, Russia

Yury S. Polushin - Academician of RAS, Doctor of Medical Sciences, Professor, President of Association of Anesthesiologists-Intensivists, Vice Rector for Research, Head of Research Clinical Center of Anesthesiology and Intensive Care of Pavlov First St.Petersburg State Medical University, Russian Ministry of Health, St. Petersburg, Russia.

Vladimir A. Rudnov - Doctor of Medical Sciences, Professor, Vice President of the Interregional Association for Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy (IACMAC), Chair of Expert Council of NGO Russian Sepsis Forum, Member of Coordination Council of Association of Anesthesiologists-Intensivists, Professor of Anesthesiology, Intensive Care and Toxicology Department of Smolensk State Medical University, Russian Ministry of Health, Deputy Chief Physician for Anesthesiology and Intensive Care of Municipal Clinical Hospital no. 40, Yekaterinburg, Russia.

Sergey V. Sidorenko - Doctor of Medical Sciences, Professor, Vice President of the Interregional Non-Governmental Organization Alliance of Clinical Chemotherapists and Microbiologists, Head of Medical Microbiology and Molecular Epidemiology Department of Pediatric Research and Clinical Center for Infectious Diseases of Federal Medical Biological Agency; Professor of Medical Microbiology Department of I.I. Mechnikov North-Western State Medical University, the Russian Ministry of Health, St. Petersburg, Russia.

Irina V. Shlyk - Doctor of Medical Sciences, Deputy President of Association of Anesthesiologists-Intensivists, Professor of Anesthesiology and Intensive Care Department, Deputy Chief Physician for Anesthesiology and Intensive Care of the Clinic of Pavlov First St.Petersburg State Medical University, Russian Ministry of Health, St. Petersburg, Russia.

Mikhail V. Edelshtein - Candidate of Biological Sciences, Head of Antibiotic Resistance Laboratory of Antimicrobial Chemotherapy Research Institute of Smolensk State Medical University, Russian Ministry of Health, Smolensk, Russia.

Sergey V. Yakovlev - Doctor of Medical Sciences, Professor, President of the Interregional Non-Governmental Organization Alliance of Clinical Chemotherapists and Microbiologists, Head of Hospital Therapy Department no. 2 of General Medicine Faculty of I.M. Sechenov First Moscow State Medical University (Sechenov University), Moscow, Russia.

Introduction. Strains of microorganisms resistant to antimicrobial agents are commonly found in medical units throughout most regions of the world, < including Russia. This leads to lower antimicrobial therapy efficacy when treating nosocomial infections. In this regard, the timely implementation fE of adequate antibiotic therapy is of great importance.

CD The objective of the guidelines: To provide summarized information on contemporary approaches to microbiological diagnostics and the assessment ^ of results, as well as the principles of rational use of antimicrobial and antifungal agents, including treatment of infections caused by multiple drug-resistant strains of microorganisms.

Subjects and methods. These guidelines are based on published data obtained in the course of randomized trials, as well as information presented in the provisions of international guidelines supported by high-level evidence. The guidelines were prepared by a working group of Russian experts with extensive experience in research and practical work in this area. On October 11, 2019, the final version of the guidelines was reviewed and approved at a joint meeting of the working group and representatives of the public organizations which initiated the development of these guidelines (Association of Anesthesiologists-Intensivists, the Interregional Non-Governmental Organization Alliance of Clinical Chemotherapists and Microbiologists, the Interregional Association for Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy (IACMAC), NGO Russian Sepsis Forum).

Conclusion. The guidelines reflect an interdisciplinary consensus of approaches to the diagnostics and antibiotic therapy of infections caused by multiresistant microorganisms. The provisions set forth should be used to decide on the strategy of empirical and etiotropic therapy of the most severe infections.

Key words: infection, microbes, detection of microorganisms, antibiotic therapy, antibiotic resistance, empirical antibiotic therapy For citations: Beloborodov V.B., Gusarov V.G., Dekhnich A.V., Zamyatin M.N., Zubareva N.A., Zyryanov S.K., Kamyshova D.A., Klimko N.N., Kozlov R.S., Kulabukhov VV, Polushin Yu.S., Rudnov V.A., Sidorenko S.V., Shlyk I.V., Edelshtein M.V., Yakovlev S.V. Diagnostics and antimicrobial therapy of the infections caused by multiresistant microorganisms. Guidelines of the Association of Anesthesiologists-Intensivists, the Interregional Non-Governmental Organization Alliance of Clinical Chemotherapists and Microbiologists, the Interregional Association for Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy (IACMAC), and NGO Russian Sepsis Forum. Messenger of Anesthesiology and Resuscitation, 2020, Vol. 17, no. 1, P. 52-83. (In Russ.) DOI: 10.21292/2078-5658-2020-17-1-52-83

Содержание рекомендаций

1. Современные проблемы и распространение антибиотикорезистентности в РФ

В XXI в. проблема антибиотикорезистентности приобрела особую значимость во всем мире. Резистентность к антибиотикам имеет огромное социально-экономическое значение и в развитых странах мира рассматривается как угроза национальной безопасности. Согласно оценкам международных экспертов, антимикробная резистентность является причиной более 700 тыс. смертельных случаев ежегодно (в том числе в Европе - 22 тыс. случаев). Предполагается, что к 2050 г. эта цифра может увеличиться до 10 млн человек.

В России эта проблема также имеет место. По данным Российского многоцентрового эпидемиологического исследования «Марафон», «ЭРГИНИ», оценочная частота нозокомиальных инфекций в России составляет около 2,3 млн случаев в год [16, 19].

Характеристика наиболее проблемных резистентных возбудителей (ПРВ) нозокомиальных инфекций, а также методов идентификации приведена ниже*.

Enterobacterales. По результатам исследования «МАРАФОН» [15], представители порядка Еп1егоЬас1ега1е8 в совокупности являются наиболее частыми возбудителями нозокомиальных инфекций в России на протяжении последних лет.

В 2015-2016 гг. доля изолятов Enterobacterales среди всех бактериальных возбудителей нозокоми-альных инфекций достигла 48,2%. Энтеробактерии характеризуются высоким уровнем устойчивости к антимикробным препаратам. На сегодняшний день наибольшее клиническое значение имеет высокая распространенность резистентности нозокомиаль-ных штаммов энтеробактерий к цефалоспоринам и карбапенемам. Устойчивость к цефалоспоринам среди госпитальных штаммов энтеробактерий в России достигла уровня > 70%, главным образом вследствие распространения р-лактамаз расширенного спектра (ESBL), преимущественно группы CTX-M. В 2015-2016 гг. большинство изолятов являлись резистентными к оксиимино- р-лактамам: цефотаксиму - 78,4%, цефтазидиму - 67,2%, це-фепиму - 68,4% и азтреонаму - 71,5%. Продукция ESBL выявлена у 67,8% изолятов. Отмечается также отчетливая тенденция к повышению уровня резистентности нозокомиальных энтеробактерий к карбапенемам: имипенему (6,9%), меропенему (6,5%) и эртапенему (23,6%), в том числе опосредованной продукцией различных карбапенемаз (14,4%): се-риновых карбапенемаз группы OXA-48 (11,4%), группы KPC (< 0,1%) и металло-^-лактамаз (MBL) группы NDM-1 (2,7%). Klebsiella pneumoniae является наиболее частым продуцентом карбапенемаз, причем большинство карбапенемазопродуцирую-щих изолятов K. pneumoniae относятся к международным клонам «высокого риска»: CG395 (45,6%), CG11 (12,3%), CG147 (10,5%) и CG307 (10,5%). Наиболее высокую активность в отношении нозоко-миальных энтеробактерий демонстрируют в настоящее время цефтазидим/авибактам (< 3,5% резистентных изолятов) и азтреонам/авибактам (МПК50 и МПК90 составили 0,06 и 0,25 мг/л соответственно), а среди не-^-лактамных антибиотиков - колистин (18,6% резистентных изолятов). Тигециклин обладает высокой in vitro активностью в отношении E. coli (3,9% резистентных изолятов).

Проблемой является не только антибиотикоре-зистентность нозокомиальных штаммов энтеробак-терий, но и рост устойчивости штаммов, вызывающих внебольничные инфекции. Так, в 2017-2018 гг. 27% изолятов E. coli, выделенных у взрослых пациентов с внебольничными инфекциями, являлись продуцентами ESBL и были устойчивыми к цефало-

споринам 3-4-го поколений. Частота устойчивости к амоксициллину/клавуланату составляла 45,1%, к ципрофлоксацину - 38,9%, к ко-тримоксазолу -38,5%, к эртапенему - 2,9%. Для штаммов E. coli, выделенных при внебольничных интраабдоминаль-ных инфекциях, наблюдалась схожая ситуация.

Pseudomonas aeruginosa - один из наиболее распространенных возбудителей нозокомиальных инфекций. На протяжении ряда лет он остается одним из ведущих патогенов в России: доля изолятов этого микроорганизма среди всех бактериальных возбудителей нозокомиальных инфекций в 2015-2016 гг. составляла 17,4%. Частота устойчивости нозокомиальных штаммов P. aeruginosa к антибиотикам в 2015-2016 гг. составила (в порядке убывания in vitro активности): к колистину - 1,4%, азтрео-наму - 41,5%, цефтазидиму/авибактаму - 41,6%, амикацину - 47,7%, цефепиму - 51,5%, тобрами-цину - 54,2%, меропенему - 55,5%, гентамици-ну - 56,3%, цефтазидиму - 56,8%, пиперацилли-ну/тазобактаму - 62,0%, ципрофлоксацину - 63,3%, пиперациллину - 65,2%, имипенему - 67,5% и ти-карциллину/клавуланату - 97,6%. Более 35% изолятов продуцируют карбапенемазы: MBL групп VIM (30,5%) и IMP (0,3%) и сериновые карбапенемазы группы GES-5 (4,2%). Продуценты MBL проявляют высокую устойчивость ко всем антибиотикам, кроме азтреонама (49%) и полимиксинов (0%); продуценты GES-5 - к большинству препаратов, кроме цефтазидима/авибактама (11,9%) и полимиксинов (0%). Карбапенемазопродуцирующие штаммы P. aeruginosa относятся в основном к международным клонам высокого риска: CC235 (76,3%) и CC654 (21%) [18].

Acinetobacter spp. Доля изолятов Acinetobacter spp. среди всех бактериальных возбудителей нозокомиальных инфекций в 2015-2016 гг. составила 17,4%. Acinetobacter baumannii в настоящее время является одним из наиболее частых возбудителей нозокомиальных инфекций (16,8%). Родственные A. baumannii виды (A. nosocomialis, A. pittii, A. dijkshoorniae и A. seifertii) также обычно выделяются из образцов клинического материала госпитализированных пациентов, тогда как другие виды рода Acinetobacter, включая A. calcoaceticus, A. haemolyticus, A. junii, A. lwoffii, A. ursingii и A. variabilis, чаще выделяются из объ-

* ПРВ - микроорганизмы, проявляющие устойчивость к большинству доступных антимикробных препаратов. Для лечения инфекций, вызванных ПРВ, необходимо применение дорогостоящих схем антимикробной терапии. На текущий момент перечень ПРВ, рассматриваемых в данных методических рекомендациях, включает:

- Enterobacterales, продуцирующие карбапенемазы (CPE);

- Enterobacterales, продуцирующие ß-лактамазы расширенного спектра (ESBL);

- Pseudomonas aeruginosa, устойчивые к карбапенемам (CRPa, включая штаммы, продуцирующие карбапенемазы);

- Acinetobacter baumannii complex, устойчивые к карбапенемам (CRAb, включая штаммы, продуцирующие карбапенемазы);

- Stenotrophomonas maltophilia, устойчивые к триметоприму/сульфаметоксазолу;

- Burkholderia cepacia complex;

- Staphylococcus spp., устойчивые к ß-лактамным антибиотикам, за исключением анти-MRSA цефемов (MRS);

- Enterococcus spp., устойчивые к ванкомицину (VRE).

В дальнейшем перечень ПРВ может быть изменен с учетом актуальных эпидемиологических данных о состоянии антибиотикорезистентности.

ектов окружающей среды и лишь в редких случаях могут колонизировать или вызывать инфекции у госпитализированных пациентов. A. baumannii и родственные виды обладают значительно более низкой природной чувствительностью к большинству ß-лактамных антибиотиков, включая пенициллины и цефалоспорины, что ограничивает выбор препаратов, потенциально применимых для терапии инфекций, вызванных Acinetobacter spp. Устойчивость нозокомиальных изолятов A. baumannii к карбапе-немам (имипенему и меропенему) в 2015-2016 гг. составила 77,4 и 77,1% соответственно. Более 76% изолятов A. baumannii являются продуцентами приобретенных карбапенемаз, относящихся к группам OXA-24/40 (57,5%), OXA-23 (18,4%) и OXA-58 (0,1%). Большинство продуцентов кар-бапенемаз относятся к международным клонам высокого риска: CC92/208OXF (60,3%), CC944OXF (25,4%) и CC109/231OXF (11,6%). Подавляющее большинство изолятов A. baumannii устойчивы к ципрофлоксацину (99,0%), амикацину (89,2%) и гентамицину (77,4%). Частота резистентности к тобрамицину и триметоприму/сульфаметоксазо-лу отмечается реже: 50,6 и 41,2% соответственно. Наиболее высокой активностью in vitro обладает колистин (0,9% резистентных изолятов) [16].

Stenotrophomonas maltophilia и Burkholderia cepacia complex. Данные микроорганизмы в целом являются более редкими возбудителями нозокомиальных инфекций по сравнению с перечисленными выше, но могут вызывать локальные вспышки нозокоми-альных инфекций, преимущественно в отделениях реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ). S. maltophilia и виды B. cepacia complex характеризуются природной устойчивостью к подавляющему большинству антимикробных препаратов. Для лечения инфекций, вызванных S. maltophilia, препаратом выбора является триметоприм-сульфаметок-сазол, однако приобретенная устойчивость к нему также описана у данного возбудителя. В настоящее время отсутствуют международно принятые критерии оценки чувствительности B. cepacia complex к антимикробным препаратам, и рутинное определение чувствительности in vitro не рекомендуется. Для терапии инфекций, вызванных данными микроорганизмами, используются различные комбинации антимикробных препаратов, включая цефтази-дим/авибактам, азтреонам, триметоприм-сульфа-метоксазол, левофлоксацин, меропенем.

Staphylococcus spp. Доля Staphylococcus aureus в структуре бактериальных возбудителей нозокоми-альных инфекций в 2015-2016 гг. составила 8,8%. Таким образом, роль S. aureus в этиологии нозокомиальных инфекций в Российской Федерации постепенно снижается. Однако данный возбудитель встречается существенно чаще при инфекциях кожи и мягких тканей и инфекциях кровотока. Другие виды стафилококков обычно имеют значение при инфекциях, связанных с наличием искусственных материалов и протезов. Основной проблемой ан-

тибиотикорезистентности стафилококков является приобретенная устойчивость к р-лактамным антибиотикам. Так, в проведенных ранее многоцентровых российских исследованиях доля мети-циллинорезистентных штаммов S. aureus (MRSA) варьировала от 24,9 до 66,9%, а в 2015-2016 гг. составила 32,4%. Наибольшей активностью в отношении нозокомиальных штаммов S. aureus обладают глико-пептиды и липопептиды (ванкомицин, телаванцин, далбаванцин, даптомицин) и оксазолидиноны (ли-незолид, тедизолид). Резистентность к данным препаратам не была выявлена в рамках исследования «МАРАФОН». Кроме того, высокую активность демонстрируют тигециклин, триметоприм-суль-фаметоксазол, фузидиевая кислота, рифампицин и цефтаролин (0,6; 1,6; 2,6; 4,1 и 9,4% устойчивых изолятов соответственно). Аминогликозиды, макролиды, линкозамиды и фторхинолоны проявляют умеренную или низкую активность [13].

Enterococcus spp. Доля Enterococcus spp. в структуре бактериальных возбудителей нозокомиаль-ных инфекций в 2015-2016 гг. составила 6,0%; наиболее часто выделяются E. faecalis (63,1%) и E. faecium (34,4%). Для E. faecalis характерна высокая чувствительность к большинству антимикробных препаратов, применяющихся для терапии энте-рококковых инфекций: все штаммы чувствительны к линезолиду, ванкомицину, тигециклину, большинство (97,3%) также чувствительны к ампициллину. E. faecium, в отличие от E. faecalis, характеризуется высокой частотой устойчивости к ампициллину (резистентность 90,9%), а также наличием устойчивых к ванкомицину изолятов (9,1%). При этом все штаммы E. faecium сохраняют чувствительность к линезолиду и подавляющее большинство (99,2%) - к тигециклину. Для всех представителей рода Enterococcus отмечается высокая частота устойчивости к гентамицину и ципрофлоксацину - суммарно 60,5 и 68,2% соответственно.

2. Методы выявления наиболее значимых фенотипов и маркеров антибиотикорезистентности

Данный раздел содержит рекомендации по выявлению наиболее значимых фенотипов и маркеров антибиотикорезистентности в повседневной практике клинических микробиологических лабораторий для определения случая ПРВ, но не содержит детального описания лабораторных процедур, а также методов, используемых в экспертных и научных целях, и процедур выявления бессимптомного носительства полирезистентных микроорганизмов.

Определение чувствительности ко всем антимикробным препаратам, включая потенциально активные против ПРВ, рекомендуется проводить в соответствии с актуальной версией Рекомендаций «Определение чувствительности к антимикробным препаратам» (размещены на интернет-портале главного внештатного специалиста Минздрава России по клинической микробиологии и антимикробной резистентности - http://www.antibiotic. ru/minzdrav/).

В ряде случаев для выявления клинически и эпидемиологически значимых фенотипов и маркеров антибиотикорезистентности требуется использование дополнительных лабораторных методов, которые могут являться обязательными для определения ПРВ, как указано ниже.

2.1. Выявление карбапенемаз у представителей порядка Enterobacterales

Продукция карбапенемаз является основным и наиболее эффективным механизмом резистентности к карбапенемам у энтеробактерий [31, 32, 38, 51, 59, 61]. Тем не менее значения МПК карбапенема-зопродуцирующих штаммов энтеробактерий (CPE) могут быть ниже установленных клинических пограничных значений для резистентных штаммов. В ряде случаев отмечается клиническая неэффективность карбапенемов при терапии инфекций, вызванных CPE, несмотря на сохранение ими in vitro чувствительности при использовании формальных критериев интерпретации результатов определения чувствительности. Поэтому монотерапия карбапе-немами в стандартных режимах дозирования не может считаться адекватной при инфекциях, вызванных CPE, даже в случае наличия формальной чувствительности к карбапенемам. С другой стороны, резистентность низкого уровня к отдельным представителям группы карбапенемов может быть вызвана альтернативными механизмами, которые имеют меньшее клиническое и эпидемиологическое значение. При отсутствии продукции карбапенемаз терапия с использованием in vitro активного карба-пенема является адекватной даже в случае наличия устойчивости к отдельным представителям данной группы антибиотиков.

При наличии результатов определения чувствительности выявление продукции карбапенемаз

должно проводиться для всех изолятов с МПК ме-ропенема > 0,125 мг/л или диаметром зоны подавления роста вокруг диска с меропенемом (10 мкг) < 28 мм. В стационарах с высоким уровнем распространенности СРЕ выявление продукции карбапе-немаз может проводиться для всех изолятов энтеро-бактерий до получения данных о чувствительности к карбапенемам. При наличии у пациента факторов риска инфицирования CPE выявление генов карба-пенемаз может также осуществляться с использованием молекулярно-генетических методов (методов амплификации нуклеиновых кислот - МАНК) в образцах нативного биоматериала или положительных гемокультур до выделения возбудителя в чистой культуре.

Основными типами карбапенемаз у энтеробактерий являются сериновые р-лактамазы групп KPC и OXA-48 и металло-^-лактамазы (MBL) группы NDM. Дифференциация сериновых и ме-талло-карбапенемаз является значимой не только для эпидемиологии, но и для выбора адекватной антибактериальной терапии ввиду различной чувствительности к антибиотикам продуцентов этих ферментов. Поэтому для установления случая инфекции, вызванной СРЕ, необходимо как подтверждение наличия карбапенемаз, так и их дифференциация на сериновые и MBL одним из нижеперечисленных методов.

Сравнительная характеристика методов определения продукции карбапенемаз представлена в табл. 1.

Метод инактивации карбапенемов (Carbapenem Inactivation Method - CIM/eCIM). CIM представляет собой простой, малозатратный и эффективный тест для выявления продукции карбапенемаз у грамотрицательных бактерий [10, 60]. Принцип

Метод Исследуемый материал Преимущества Ограничения

Метод инактивации карбапенемов (CIM- и eCIM-тест) Чистая культура микроорганизма Простота выполнения. Отсутствие необходимости в специальном оборудовании. Низкая стоимость Необходимость выделения чистой культуры микроорганизма. Длительность выполнения (18-24 ч)

Иммунохроматографические тесты Чистая культура микроорганизма Простота выполнения. Отсутствие необходимости в специальном оборудовании. Быстрота выполнения теста. Высокая информативность (определение типа карбапенемаз) Необходимость выделения чистой культуры микроорганизма. Отсутствие возможности выявления редких/новых типов карбапенемаз. Сравнительно высокая стоимость расходных материалов

Молекулярно-генетические методы Нативный клинический материал Чистая культура микроорганизма Быстрое получение результата. Возможность проведения исследования с использованием нативного клинического материала. Высокая информативность (определение типа карбапенемаз) Необходимость наличия специального оборудования и/или квалифицированного персонала. Сравнительно высокая стоимость оборудования и/или расходных материалов. Отсутствие возможности выявления редких/новых типов карбапенемаз и фенотипической экспрессии генов

Таблица 1. Сравнительная характеристика методов определения карбапенемаз

Table 1. Comparative characteristics of carbapenemase testing methods

метода - выявление ферментативного гидролиза при инкубации карбапенема с суспензией исследуемой бактериальной культуры. В качестве источника карбапенема используется диск с меропенемом (10 мкг) для определения чувствительности диско-диффузионным методом. Оценка результатов проводится на основании наличия или отсутствия зоны подавления роста чувствительного контрольного штамма Escherichia coli ATCC 25922 вокруг диска с меропенемом, предварительно инкубированного с исследуемой бактериальной культурой. Общая продолжительность исследования - 8-12 ч.

еЯМ представляет собой модификацию классического CIM-теста и используется для дифференциации сериновых карбапенемаз и MBL [54]. При выполнении eCIM-теста в дополнение к инкубации исследуемой культуры с диском с меропене-мом проводится параллельная инкубация с диском с меропенемом и ингибитором MBL - этиленди-аминтетраацетатом натрия (ЭДТА). Индикация гидролиза меропенема и подавления активности фермента (в случае MBL) осуществляется на основании сравнения зон подаления роста контрольного штамма Escherichia coli ATCC 25922 вокруг дисков с меропенемом и меропенемом + ЭДТА.

Иммунохроматографические тесты. Иммуно-хроматографические тесты отличаются высокой чувствительностью, скоростью получения результата (около 15 мин) и возможностью определения типа фермента [42]. Данные тесты по своей специфичности практически не уступают молекуляр-но-генетическим методам, при этом они не требуют аппаратного обеспечения и выигрывают по времени получения результата у CIM-метода. Материалом для исследования является суспензия исследуемой бактериальной культуры. В настоящее время существуют комбинированные тесты для одновременной детекции карбапенемаз, относящихся к группам KPC, OXA-48, VIM, IMP и NDM.

Молекулярно-генетические методы выявления генов карбапенемаз. Молекулярно-генетические методы, включая наиболее часто используемый -ПЦР в режиме реального времени (ПЦР-РВ), применяются для выявления и идентификации генов наиболее распространенных карбапенемаз как непосредственно в образцах биоматериала, так и у выделенных в чистой культуре микробных изоля-тов. Основными преимуществами МАНК являются высокая скорость анализа (от 1 до 3 ч), чувствительность, специфичность и возможность дифференциальной детекции карбапенемаз различных типов. Доступные в РФ в настоящее время тесты на основе ПЦР в режиме реального времени позволяют надежно выявлять у энтеробактерий гены кар-бапенемаз, относящихся к группам KPC, OXA-48, VIM, IMP и NDM. Ограничением этих методов, однако, является невозможность обнаружения редких типов карбапенемаз, не входящих в используемую тест-систему, а также невозможность оценки фено-типической экспрессии выявляемых генов. Поэтому

использование молекулярно-генетических методов не заменяет фенотипические методы определения чувствительности.

2.2. Выявление устойчивости к карбапенемам у Pseudomonas aeruginosa

Фенотипическое определение чувствительности. Определение чувствительности P. aeruginosa к кар-бапенемам и другим антимикробным препаратам, включая препараты, потенциально активные против устойчивых к карбапенемам штаммов, фено-типическими методами рекомендуется проводить в соответствии с актуальной версией Рекомендаций «Определение чувствительности к антимикробным препаратам» (http://www.antibiotic.ru/minzdrav/). Рекомендуется определять чувствительность P. aeruginosa к следующим препаратам группы кар-бапенемов: меропенему (обязательно), имипенему (обязательно), дорипенему (опционально; активность дорипенема может быть косвенно оценена на основании результатов определения чувствительности к меропенему). Случаи формирования резистентности P. aeruginosa к одному из карбапенемов (имипенему или меропенему) при сохранении чувствительности ко второму препарату не являются редкими.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Выявление продукции карбапенемаз у P. aeruginosa. Продукция карбапенемаз приводит к формированию перекрестной устойчивости ко всем карбапе-немам у P. aeruginosa и часто сочетается с наличием других механизмов резистентности к антибиотикам разных групп. Однако резистентность ко всем кар-бапенемам может также являться следствием сочетания различных механизмов (изменения проницаемости и эффлюкса). Наиболее распространенным типом карбапенемаз у P. aeruginosa в РФ являются MBL группы VIM. Реже встречаются сериновые карбапенемазы группы GES (GES-5-подобные ферменты) и MBL группы IMP. Как и в случае энтеробактерий, выявление и дифференциация MBL и се-риновых карбапенемаз у P. aeruginosa имеет важное эпидемиологическое и клиническое значение, в том числе для выбора эффективной терапии. Для выявления карбапенемаз могут быть использованы описанные выше для Enterobacterales фенотипические методы (CIM и eCIM) и молекулярно-генетические методы (ПЦР-РВ). Тестирование может проводиться после выявления устойчивости к карбапенемам выделенных в чистой культуре изолятов или до получения результатов определения чувствительности к антибиотикам (при наличии локальных эпидемиологических данных о высокой частоте встречаемости карбапенемаз). Молекулярно-гене-тические методы могут дополнительно использоваться для быстрой детекции генов карбапенемаз в клиническом материале до выделения возбудителя в чистой культуре.

2.3. Выявление устойчивости к карбапенемам у Acinetobacter spp.

Фенотипическое определение чувствительности Acinetobacter spp. Определение чувствительности

Acinetobacter spp. к карбапенемам и другим антимикробным препаратам, включая препараты, потенциально активные против устойчивых к карбапенемам штаммов, фенотипическими методами рекомендуется проводить в соответствии с актуальной версией Клинических рекомендаций «Определение чувствительности к антимикробным препаратам» (http://www.antibiotic.ru/minzdrav/).

Карбапенемы, к которым следует определять чувствительность Acinetobacter spp.: меропенем (обязательно) и имипенем (обязательно).

Выявление продукции карбапенемаз у Acinetobacter spp. В РФ продукция приобретенных кар-бапенемаз является основным механизмом резистентности Acinetobacter spp. к карбапенемам. Наиболее распространенными типами карбапенемаз являются ферменты группы OXA-24/40 и OXA-23, реже встречаются карбапенемазы группы OXA-58, продукция MBL групп VIM, IMP и NDM отмечается крайне редко. Доступные в настоящее время фенотипические методы, включая CIM, обладают относительно низкой эффективностью выявления карбапенемаз у Acinetobacter spp. и поэтому не могут быть рекомендованы для рутинного использования. Выявление генов карбапенемаз у Acinetobacter spp. с помощью молекулярно-генетических методов имеет в основном эпидемиологическое значение, за исключением случаев их использования для быстрой детекции с целью принятия решения о необходимости использования альтернативных антибактериальных препаратов или комбинированных схем терапии, потенциально активных в отношении кар-бапенеморезистентных штаммов.

2.4. Выявление ß-лактамаз расширенного спектра (ESBL) у энтеробактерий

ß-Лактамазы расширенного спектра (ESBL) -ферменты, гидролизующие пенициллины и це-фалоспорины, в том числе цефалоспорины III и IV поколений, а также монобактамы (азтреонам), но не гидролизующие цефамицины и карбапенемы. Большинство ESBL относятся к классу А серино-вых ß-лактамаз и подавляются «классическими» ингибиторами (клавулановой кислотой, сульбак-тамом, тазобактамом), а также авибактамом [26].

Наиболее частыми продуцентами ESBL являются Escherichia coli и Klebsiella pneumoniae, однако продукция ESBL встречается и у всех других клинически значимых видов энтеробактерий. Распространенность ESBL-продуцирующих изолятов зависит от ряда факторов, таких как биологический вид, географическое расположение, тип стационара/отделения, группа пациентов и тип инфекции, в результате чего в разных исследованиях были зарегистрированы достаточно широкие вариации [33].

Вариации в уровне экспрессии и свойствах различных ESBL (эффективности гидролиза разных оксиимино^-лактамов: цефотаксима, цефтазидима, цефепима и азтреонама), а также наличие дополнительных механизмов резистентности (других ß-лак-тамаз, нарушения проницаемости) обусловливают

существенные различия в уровнях устойчивости ESBL-продуцирующих изолятов, а также являются причиной недостаточной воспроизводимости и точности определения чувствительности к оксиими-но-^-лактамам при проведении in vitro тестирования продуцентов ESBL с помощью любых стандартных (ручных и автоматизированных) методов [39, 64]. Значения МПК ESBL-продуцентов могут быть ниже установленных клинических пограничных значений для резистентных штаммов. Тем не менее в ряде случаев отмечается клиническая неэффективность цефалоспоринов и азтреонама при терапии инфекций, вызванных формально «чувствительными» продуцентами ESBL. Поэтому монотерапия этими препаратами в стандартных режимах дозирования не может считаться адекватной при обнаружении продукции ESBL. С другой стороны, резистентность к цефалоспоринам III поколения и азтреонаму может быть вызвана альтернативными механизмами, например продукцией цефалоспориназ класса С (AmpC). При этом большинство продуцентов AmpC сохраняют чувствительность к цефепиму.

Учитывая высокую частоту встречаемости ESBL у возбудителей нозокомиальных инфекций (> 70%) и растущую распространенность ферментов этой группы среди возбудителей внебольничных инфекций (> 15-25%) в РФ, определение продукции ESBL рекомендуется проводить одновременно с определением чувствительности к антибиотикам.

Сравнительная характеристика методов определения ESBL у энтеробактерий представлена в табл. 2.

Метод «двойных дисков». Метод «двойных дисков» представляет собой вариант классического дискодиффузионного метода определения чувствительности, который позволяет обнаружить продукцию ESBL по наличию расширенной зоны подавления роста между дисками с оксиимино-^-лактамами (цефтазидимом, цефотаксимомом, цефепимомом, азтреонамомом), и диском, содержащим клавула-новую кислоту (в виде стандартной комбинации с амоксициллином). Наибольшую чувствительность и специфичность детекции ESBL у различных видов энтеробактерий обеспечивает использование дисков с цефепимом (в том числе у видов с природной продукцией AmpC) и азтреонамом (в том числе у изолятов, одновременно продуцирующих MBL). Данный метод является наиболее универсальным и может быть использован для обнаружения ESBL у всех видов Enterobacterales, однако визуальная оценка синергизма по расширению зоны подавления роста между дисками является относительно субъективной и требует наличия опыта при учете результатов.

Метод «комбинированных дисков». Метод «комбинированных дисков» представляет собой вариант классического дискодиффузионного метода определения чувствительности, в котором используются диски, содержащие комбинации оксиимино-цефа-лоспоринов с одним из классических ингибиторов

Таблица 2. Сравнительная характеристика методов определения ESBL

Table 2. Comparative characteristics of ESBL testing methods

Метод Исследуемый материал Преимущества Ограничения

Метод «двойных дисков» Чистая культура микроорганизма Отсутствие необходимости в специальном оборудовании. Низкая стоимость Субъективная оценка результата

Метод «комбинированных дисков» Чистая культура микроорганизма Отсутствие необходимости в специальном оборудовании. Низкая стоимость. Простота выполнения и учета результатов Ограничения возможности детекции ESBL у отдельных видов Enterobacterales. Возможность получения ложноотрицательных результатов у изолятов, копродуцирующих другие цефалоспорин-гидролизующие ферменты, и у изолятов с экстремально высоким уровнем устойчивости к цефалоспоринам

Методы определения МПК оксиимино-цефалоспоринов и их комбинаций с ингибиторами БЭБЬ Чистая культура микроорганизма Отсутствие необходимости в специальном оборудовании. Низкая стоимость. Простота выполнения и учета результатов. Тесты на наличие ESBL интегрированы в стандартные панели определения чувствительности для автоматизированных систем Ограничения возможности детекции ESBL у отдельных видов Enterobacterales. Возможность получения ложноотрицательных результатов у изолятов, копродуцирующих другие цефалоспорин-гидролизующие ферменты, и у изолятов с экстремально высоким и низким уровнем устойчивости к цефалоспоринам

Молекулярно-генетические методы Нативный клинический материал или культура микроорганизма Быстрое получение результата. Возможность проведения исследования с использованием нативного клинического материала Необходимость наличия специального оборудования и/или квалифицированного персонала. Сравнительно высокая стоимость оборудования и/или расходных материалов. Ограниченный спектр детектируемых типов ESBL (только CTX-M)

(цефотаксим/клавулановая кислота, цефтази-дим/клавулановая кислота или цефподоксим/суль-бактам). Результат теста учитывается на основании сравнения зон задержки роста вокруг дисков с ингибиторозащищенными цефалоспоринами и зон задержки роста вокруг дисков с соответствующими незащищенными цефалоспоринами. Различие в зонах подавления роста на > 5 мм свидетельствует о наличии ESBL. Данный тест является наиболее простым в исполнении, однако позволяет выявлять продукцию ESBL на основании вышеуказанного критерия только у отдельных видов энтеробакте-рий: E. coli, K.pneumoniae, P. mirabilis, и является недостаточно эффективным для других видов, а также для штаммов, копродуцирующих другие ферменты, гидролизующие цефалоспорины.

Ручные и автоматизированные методы определения МПК оксиимино-цефалоспоринов и их комбинаций с клавулановой кислотой. При определении МПК любым доступным в микробиологической лаборатории методом (градиентной диффузии, с помощью автоматизированных систем и ручных панелей) определение продукции ESBL проводится на основании сравнения МПК оксиимино-цефалоспо-ринов и их комбинаций с клавулановой кислотой. Снижение МПК хотя бы одного из цефалоспоринов в присутствии ингибитора в 8 раз и более (на 3 по-

следовательных двукратных разведения) свидетельствует о наличии ESBL. Тесты на наличие ESBL интегрированы в стандартные панели для определения чувствительности Enterobacterales большинства производителей автоматизированных систем и, таким образом, позволяют проводить обнаружение данного механизма резистентности одновременно с оценкой чувствительности к антибиотикам. Определение ESBL с помощью автоматизированных систем, ручных панелей МПК и градиентных полосок (E-test, MICE, MTS) обычно является эффективным для таких видов, как E. coli, K. pneumoniae, P. mirabilis, но может быть недостаточно чувствительным для видов с природной продукцией AmpC (Enterobacter cloacae, Citrobacter freundii, Klebsiella aerogenes, Serratia spp, Morganella morganii). Затруднения также может вызывать выявление ESBL у штаммов любых видов с экстремально высоким и низким уровнем устойчивости к цефалоспоринам, а также у изолятов, копродуцирующих другие це-фалоспорин-гидролизующие ферменты (особенно при использовании автоматизированных систем и панелей с ограниченным числом тестируемых разведений антибиотиков). При выявлении сниженной чувствительности к оксиимино-цефалоспоринам (МПК >1 мг/л) сомнительные результаты выявления ESBL рекомендуется проверять с помощью

дополнительных фенотипических тестов (например, методом «двойных дисков»).

Молекулярно-генетические методы выявления ESBL. ESBL представляют собой генетически разнообразную группу ферментов, которая объединяет множество генетических типов (семейств). Наиболее распространенными в настоящее время являются ферменты CTX-M-группы (> 90% всех ESBL). Реже встречаются ESBL SHV-типа, которые представляют собой мутантные производные SHV пенициллиназ. ESBL TEM-типа - производные TEM пенициллиназ - встречаются в РФ крайне редко, несмотря на широкое распространение пенициллин-гидролизу-ющих ферментов этой группы. В настоящее время доступные в РФ для диагностического использования молекулярно-генетические тест-системы позволяют выявлять только гены наиболее распространенных ESBL (группы CTX-M-1-, CTX-M-2- и CTX-M-9-родственных ферментов), но не позволяют дифференцировать мутантные варианты SHV и TEM с расширенным спектром активности. Поэтому использование молекулярно-генетических методов не заменяет фенотипическое тестирование для обнаружения ESBL. Тем не менее методы амплификации нуклеиновых кислот, включая ПЦР-РВ, могут применяться для быстрой детекции генов CTX-M в-лактамаз, например, в образцах нативного биоматериала и положительных гемокультурах.

2.5. Выявление метициллинорезистентных Staphylococcus aureus (MRSA)

Метициллинорезистентные Staphylococcus aureus (MRSA) - изоляты S. aureus, имеющие дополнительный пенициллин-связывающий белок (PBP2a или недавно открытый альтернативным PBP2, кодируемый геном mecC), к которым в-лак-тамы (за исключением цефтаролина) имеют низкую степень сродства.

Для выявления резистентности к метицилли-ну/оксациллину могут использоваться как фено-типические - определение МПК, дискодиффу-зионный метод или латексная агглютинация для выявления белка PBP2a, так и генотипические методы исследования (ПЦР).

Выявление метициллинорезистентно -сти методом определения МПК или диско-диффузионным методом. Препаратом выбора для определения чувствительности к в-лактамам (кроме цефтаролина) дискодиффузи-онным методом служит цефокситин ввиду того, что он является наиболее чувствительным и специфичным маркером mecA/mecC-опосредованной резистентности. Для подтверждения наличия генов mecA или mecC, особенно в случае сомнительных результатов фенотипических тестов, рекомендуется проводить молекулярно-генетическое исследование с целью выявления генов mecA или mecC.

Дискодиффузионный метод. Если диаметр зоны подавления роста вокруг диска с цефокситином (30 мкг в диске) < 22 мм, изолят оценивается как метициллинорезистентный.

Метод микроразведений в бульоне (ISO 20776-1). Если МПК цефокситина > 4 мг/л, изолят оценивается как метициллинорезистентный.

Выявление метициллинорезистентности моле-кулярно-генетическими методами. Для выявления гена mecA могут использоваться как коммерческие наборы реагентов и оборудование, так и тесты, разработанные в лаборатории. Вместе с тем следует помнить, что ген mecC в настоящее время может не обнаруживаться коммерчески доступными молеку-лярно-генетическими методами.

Важной характеристикой молекулярно-генети-ческих методов детекции метициллинорезистент-ности является существенное ускорение получения результата за счет возможности выполнения исследования непосредственно клинического материала.

2.6. Выявление устойчивости Enterococcus spp. к ванкомицину

Энтерококки считаются устойчивыми к ванкомицину (VRE) при МПК ванкомицина > 4 мг/л. Применение гликопептидов (ванкомицина, тела-ванцина, даптомицина) при инфекциях, вызванных такими штаммами, малоэффективно.

Фенотипические методы выявления устойчивости Enterococcus spp. к гликопептидам (ванкомицину). Определение чувствительности энтерококков к гликопептидам фенотипическими методами (дискодифузионный метод, метод микроразведения в бульоне, метод разведения в агаре, метод е-те-стов) рекомендуется проводить в соответствии с актуальной версией Клинических рекомендаций «Определение чувствительности к антимикробным препаратам» (размещены на интернет-портале главного внештатного специалиста Минздрава России по клинической микробиологии и антимикробной резистентности; текущая версия - http://www. antibiotic.ru/minzdrav/files/docs/clrec-dsma2018. pdf). В качестве индикаторного значения используется чувствительность к ванкомицину.

Молекулярно-генетические методы выявления устойчивости к гликопептидам (ванкомицину). Определение генов устойчивости к ванкомицину vanA и vanB с помощью ПЦР может выполняться с использованием коммерческих тест-систем и тест-систем собственной разработки [36].

3. Принципы рационального использования антимикробных препаратов (АМП)

Главные принципы рациональной антимикробной терапии (АМТ) были сформулированы еще в период поиска и внедрения в клинику первых антибиотиков в середине прошлого века и с той поры не только не потеряли свою актуальность, но и приобрели новое значение, став в эпоху роста резистентности патогенов основой для разработки международных, государственных и локальных организационных, финансовых, методических, фармацевтических, медицинских, образовательных и гуманитарных программ, направленных на борьбу с распространением полирезистентных возбудителей инфекций [5, 7, 9, 63]. Этих прин-

ципов (их обычно называют принципами А. Флеминга) три:

Р выбор антибиотика в соответствии с чувствительностью к нему возбудителя заболевания;

Р разовая и суточная дозы антибиотика, путь введения должны обеспечивать лечебную концентрацию в очаге воспаления;

Р антибиотик должен назначаться в такой дозе и вводиться таким путем, чтобы исключить или максимально ограничить его повреждающее действие [6].

Реализация этих принципов является единственным действенным механизмом ограничения использования АМП, поскольку обеспечивает основу для исключения неэффективного, бесполезного, а нередко и опасного назначения антибиотиков. В клинической практике выполнить эти условия в полной мере сложно. В момент назначения АМП врач обычно не знает возбудителя и его свойства, во время проведения терапии у него нет возможности контролировать концентрацию АМП в очаге, а развитие побочных эффектов тоже носит вероятностный характер. Но это не означает, что использование АМП не должно соответствовать этим постулатам, просто эти требования предполагают выполнение ряда правил, которые обязательно должен соблюдать врач, когда проводит антимикробную терапию [1, 6, 11].

3.1. Констатация развития инфекции

Антибактериальная терапия не должна проводиться без клинико-лабораторных признаков бактериальной инфекции (1А) [53].

Это правило является ключевым. Наличие дренажей, центрального венозного катетера, эндотра-хеальной трубки, трахеостомической канюли, мочевого катетера, цистостомы, гастростомы, электродов ЭКС, а также случаи выделения патогенных или условно патогенных микроорганизмов из вышеуказанных инвазивных устройств без признаков инфекционного процесса не являются показанием для проведения АМТ.

Появление у пациента клинических, лабораторных и/или инструментальных признаков инфекции тоже не всегда должно становиться достаточным основанием для назначения АМП, потому что любой из этих симптомов не является патогномо-ничным для бактериальной инфекции. АМП не предназначены для устранения этих симптомов, действие антибиотиков должно быть максимально избирательным и направленным преимущественно на подавление жизнедеятельности возбудителей инфекционных заболеваний. Поэтому перед тем как назначить АМП, врач должен оценить вероятность инфекционной этиологии симптомов, объединить их в синдром, установить диагноз инфекции и зафиксировать его в медицинской карте пациента.

3.2. Идентификация возбудителя инфекции с определением его чувствительности к АМП

В соответствии с этим правилом до первого введения АМП следует произвести забор биоматериала для бактериоскопического, молекуляр-

но-генетического и бактериологического исследований 1А [53].

Обязательным является исследование биоматериала как минимум из двух локусов: кровь из периферической вены и биоматериал из очага инфекции. В случае если очевидных или потенциальных очагов инфекции несколько, забор биоматериала осуществляется из всех предполагаемых локусов. Взятие крови для микробиологического исследования осуществляется 3-кратно из разных периферических вен с интервалом 20-30 мин. Для забора крови нельзя использовать периферические и центральные венозные катетеры (кроме случаев дифференциальной диагностики катетер-ассоции-рованной инфекции, в таких случаях кровь берется одновременно из катетера и периферической вены). Если у пациента имеет место тяжелая инфекция, а для получения биоматериала из инфекционного очага требуется неопределенно долгое время (бронхоскопия, оперативное вмешательство, инвазивная манипуляция и т.д.), АМП назначаются сразу после забора крови на стерильность, а биоматериал из инфекционного локуса получают, как только это будет возможно.

3.3. Выбор оптимального АМП

В зависимости от того, верифицирован ли возбудитель инфекции, АМТ делят на целенаправленную (направленную против установленного возбудителя инфекции) и эмпирическую, при которой возбудитель неизвестен.

При эмпирическом выборе назначение АМП проводят с учетом наиболее вероятных возбудителей данной инфекции и их предполагаемой чувствительности с учетом данных локального микробиологического мониторинга в медицинской организации. Методология такого подхода к проведению антимикробной терапии и его реализации на практике детально изложена в Российских клинических рекомендациях «Программа СКАТ (стратегия контроля антимикробной терапии) при оказании стационарной медицинской помощи» [11]. При назначении стартовой эмпирической антимикробной терапии (ЭАМТ) обязательной является стратификация пациентов в соответствии с риском наличия резистентности возбудителей к различным группам антибиотиков (табл. 3).

При эмпирическом назначении антибиотика всегда сохраняется вероятность избыточности или неэффективности, поэтому период ее проведения должен быть максимально коротким, а при правильной организации работы и использовании современных методов лабораторных исследований не превышать 48 ч. После получения результатов исследований необходимо оценить возможность и целесообразность коррекции терапии (продолжить без изменения, провести деэскалацию, дополнить и пр.), но в любом случае с этого момента терапия должна стать этиотропной и проводиться в полном соответствии с принципами А. Флеминга [6, 61]. Такую терапию можно будет считать оптимальной.

При проведении целенаправленной терапии учитывают следующие аспекты:

• Активность действия в отношении установленного возбудителя или возбудителей. Используемый АМП должен обладать специфическим антибиотическим действием на возбудителя при максимально узком спектре активности. Если установлено несколько возбудителей, то следует назначать либо монотерапию препаратом, спектру активности которого они соответствуют, либо адекватную комбинацию препаратов.

• Способность проникать и создавать терапевтические концентрации в различных тканях и жидкостях организма (спинномозговая жидкость (СМЖ), клапаны сердца, кости и др.) при назначении в дозах, соответствующих официальной инструкции к препарату. Применение АМП в дозах ниже терапевтических недопустимо [1, 8].

• При повышении минимальной подавляющей концентрации (МПК) у проблемных микроорганизмов для получения клинического эффекта антибиотика необходимо увеличить его концентрацию в крови и очаге (для концентрационно-зависимых антимикробных препаратов) или увеличить кратность и/или продолжительность его введения (для антибиотиков с времязависимым действием). В этом случае назначение антибиотиков в дозах, превышающих рекомендуемые в официальной инструкции, может осуществляться по решению врачебной комиссии, которое фиксируется в медицинских документах пациента.

• В ряде случае у пациентов с жизнеугрожаю-щими инфекционными осложнениями (септический шок, вентиляторассоциированная пневмония) показано назначение комбинации АМП, обладающих синергическим эффектом в отношении устойчивых к большинству антибиотиков микроорганизмов [14, 23, 53] (1В).

• При проведении эмпирической и этиотроп-ной терапии необходимо учитывать вероятность возможных нежелательных реакций, связанных с особенностями пациента (возраст, масса тела, ал-лергологический и фармакологический анамнез, функция почек и печени, беременность, кормление грудью, прием других лекарственных средств).

3.4. Путь введения препарата

Основными путями введения АМП являются внутривенный, внутримышечный, пероральный, ингаляционный. Альтернативные пути введения (интраартериальный, эндолимфатический, вну-трибрюшной) не изучены с точки зрения безопасности, не имеют доказанных преимуществ и не разрешены к применению. Выбор пути введения определяется тяжестью состояния пациента, а также параметрами фармакокинетики и фарма-кодинамики препарата. У больных в удовлетворительном и среднетяжелом состоянии предпочтителен пероральный прием препарата. При тяжелом течении заболевания пациенты должны получать АМП внутривенно.

3.5. Оценка эффективности АМТ

Клинический эффект от проводимой антибактериальной терапии у пациентов с сепсисом необходимо оценивать ежедневно. На основании динамики клинических и лабораторных показателей ССВР, маркеров бактериального воспаления, выраженности органных нарушений, оцененных по SOFA, решается вопрос о продолжении, усилении и окончании проводимой терапии.

Отсутствие эффекта не должно автоматически вести к смене АМТ. В первую очередь следует исключить наличие недренированных или несанирован-ных очагов инфекции (абсцесс, несостоятельность анастомоза, раневая инфекция и т. д.), провести поиск новых очагов, оценить вероятность неинфекционного генеза сохраняющихся симптомов, рассмотреть вопрос о наличии небактериальной инфекции (системный микоз, вирусная инфекция). Коррекцию эмпирического режима антибактериальной терапии следует проводить через 48-72 ч после начала лечения при отсутствии клинического улучшения и/или выделения резистентного к проводимой терапии возбудителя. Исключение составляют случаи стремительного ухудшения состояния пациента или получение результатов микробиологического исследования, требующие коррекции антибактериальной терапии. У пациентов в тяжелом состоянии, находящихся в ОРИТ, наряду оценкой динамики состояния по балльным шкалам (SOFA, MODS), в качестве информативных показателей адекватности антибактериальной терапии могут быть использованы количественные значения прокальцитонина и С-реактивного белка (с учетом низкой специфичности последнего).

3.6. Длительность АМТ

В большинстве случаев длительность эффективной АМТ составляет 5-7 сут, этого времени достаточно для уменьшения микробной массы ниже критического уровня. Исключение составляют бактериальный эндокардит, туберкулез, гнойный менингит, инфекции, вызванные неферментиру-ющими полирезистентными грамотрицательны-ми микроорганизмами, бактериемия, вызванная S. аигет, кандидемия и инвазивный кандидоз (ИК) у пациентов с иммунологическим дефицитом, включая нейтропению.

Условиями отмены АМТ являются клинические признаки эффективности терапии, адекватная хирургическая санация очага инфекции (если необходимо), уменьшение проявлений ССВР, снижение уровня ПКТ до 80% от исходного уровня или нормальных значений. При решении вопроса об отмене АМТ следует ориентироваться прежде всего на отсутствие клинических проявлений инфекционного процесса, остальные признаки являются косвенными. Необоснованно длительное применение антибиотиков приводит к появлению и распространению резистентных микроорганизмов, развитию у больных новых нозокомиальных «суперинфекций», аллергических и/или токсических реакций. В ко-

нечном итоге это ухудшает состояние пациента и снижает эффективность лечения.

4. Алгоритм назначения ЭАМТ с учетом стратификации пациентов по риску антибиотикоре-зистентности

Наибольшее число назначений антибиотиков происходит эмпирически без или до определения чувствительности микроорганизма, вызвавшего инфекцию.

Адекватная ЭАМТ предполагает эффективное действие в отношении всех этиологически значимых возбудителей инфекции данной локализации в достаточной дозе с учетом риска инфицирования полирезистентными возбудителями.

В современных условиях выбор ЭАМТ должен быть основан на знании ряда факторов, определяющих особенности этиологической структуры возбудителей инфекции. К ним относятся [11, 12]:

- условия возникновения инфекции: внеболь-ничная или инфекция, связанная с оказанием медицинской помощи;

- локализация инфекции (определение ключевых возбудителей инфекции, выбор АМП с учетом фармакокинетических особенностей);

- факторы риска наличия полирезистентных микроорганизмов.

Глобальный рост резистентности возбудителей к антибиотикам приводит к высокой вероятности возникновения внебольничных инфекций, вызванных резистентной флорой, что делает определяющим выявление факторов риска наличия полирезистентных микроорганизмов у пациента. Наиболее важными возбудителями инфекции с точки зрения их распространенности и потенциала формирования антибиотикорезистентности являются энтеробак-терии, продуцирующие ß-лактамазы расширенного спектра (БЛРС) и карбапенемазы, метициллин-ре-зистентный золотистый стафилококк (MRSA), не-ферментирующие грамотрицательные бактерии (НФГОБ) - P. aeruginosa, A. baumannii/haemolyticus, обладающие множественной устойчивостью к антибиотикам.

4.1. Факторы риска инфекций, вызванных полирезистентными штаммами микроорганизмов [13, 14]

4.1.1. Факторы риска инфекций, вызванных энтеробактериями - продуцентами БЛРС [20, 40,55,57, 62, 66]:

- госпитализация в течение предшествующих 3 мес. или текущая госпитализация;

- прием антибиотиков (цефалоспорины III-IV поколений, фторхинолоны) по любому поводу в течение предшествующих 3 мес.;

- пребывание в учреждениях длительного ухода (дом престарелых, дом ребенка, хоспис);

- гемодиализ;

- коморбидность: сахарный диабет, цирроз печени, хроническая болезнь почек;

- поездка за границу в течение последних 6 нед. в регион с высоким уровнем антибиотикорезистент-

ности (Индия, Китай, Турция, Греция, Италия, Испания, Африка и др.).

4.1.2. Факторы риска инфекций, вызванных MRSA [27, 43, 44]:

- высокая распространенность MRSA в отделении, где находится пациент;

- предшествующая (в течение 3 мес.) госпитализация с выполнением хирургических вмешательств и инвазивных процедур (особенно с имплантацией);

- антибиотики широкого спектра (фторхиноло-ны, в меньшей степени цефалоспорины III-IV поколений);

- наличие внутрисосудистого катетера;

- назальное носительство MRSA;

- в/в наркомания;

- наличие трофических язв или пролежней.

4.1.3. Факторы риска инфекций, вызванных полирезистентной P. aeruginosa [21, 22, 28, 30, 46, 48, 49]:

- длительное нахождение в ОРИТ;

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

- искусственная вентиляция легких > 4 сут;

- стернотомия;

- наличие бронхоэктазов, муковисцидоза;

- наличие уретрального катетера.

4.1.4.Факторы риска инфекций, вызванных карбапенемрезистентными энтеробактериями [47,50, 66]:

- предшествующая терапия карбапенемами;

- высокая распространенность карбапенемре-зистентных энтеробактерий в отделении, где находится пациент;

- колонизация кишечника пациента карбапе-немрезистентными энтеробактериями.

4.2. Стратификация пациентов по риску наличия резистентных возбудителей и инвазивного канди-доза [11,12]

С учетом факторов риска наличия антибиотико-резистентных микроорганизмов пациентов с инфекцией целесообразно стратифицировать на 4 типа (табл. 3).

Тип I. Внебольничные инфекции без факторов риска полирезистентных возбудителей.

Тип II. Внебольничные инфекции с факторами риска полирезистентных возбудителей (риск БЛРС (устойчивость к цефалоспоринам, фторхинолонам, защищенным пенициллинам), полирезистентных пневмококков).

Тип III. Нозокомиальные инфекции. Следует выделять 2 подтипа - а и b:

- IIIa: вне ОРИТ, без предшествующего применения АМП (риск БЛРС);

- IIIb: длительная текущая госпитализация (> 7 дней), и/или нахождение в ОРИТ > 3 дней, и/или предшествующее применение АМП (риск БЛРС, карбапенем-резистентных энтеробакте-рий, полирезистентных НФГОБ (P. aeruginosa, Acinetobacter spp.), MRSA).

Тип IV. Нозокомиальные инфекции с риском ИК.

При определении типа пациента целесообразно уточнять наличие отдельных факторов риска ин-

Таблица 3. Стратификация госпитализированных пациентов по риску наличия резистентных возбудителей и инвазивного кандидоза с целью определения тактики эмпирической АМТ

Table 3. Stratification of hospitalized patients by the risk of resistant pathogens and invasive candidiasis to determine tactics of empirical antimicrobial therapy

Показатели Тип I Тип II Тип Illa Тип ШЬ Тип IV

Характер инфекции Внебольничная инфекция без факторов риска полирезистентных возбудителей Внебольничная с факторами риска продуцентов БЛРС, энтеробактерий, устойчивых к ФХ и/или DRSP Нозокомиальная без факторов риска ПРВ Нозокомиальная без факторов риска ПРВ Нозокомиальная инфекция с факторами риска инвазивного кандидоза

Обращение за медицинской помощью Не было обращений за медицинской помощью в течение последних 3 мес. Обращение за медицинской помощью (дневной стационар поликлиники, гемодиализ, нахождение в учреждениях длительного ухода) или госпитализация в последние 3 мес. Длительность нахождения в стационаре < 7 дней (вне ОРИТ), отсутствие оперативных вмешательств Длительность нахождения в стационаре > 7 дней (в ОРИТ > 3 дней) или инфекция, возникшая после оперативных вмешательств Длительная госпитализация с факторами риска инвазивного кандидоза: • в/в катетер, • хирургическое вмешательство на органах брюшной полости, • выраженный

Терапия антибиотиками > 1 сут Не было АБТ в предшествующие 90 дней АБТ в предшествующие 90 дней Не получал АБТ или антибактериальную профилактику более 24 ч Предшествующая АБТ мукозит, • полное парентеральное питание, • применение ГКС или

Характеристики пациента Пациенты без тяжелой сопутствующей патологии Тяжелая сопутствующая патология (ХПН, цирроз печени, сахарный диабет, алкогольная висцеропатия, наркомания, ВИЧ) Любые пациенты Тяжелое течение основного заболевания или наличие тяжелой коморбидности иммуносупрессанта

Дополнительные факторы риска ПРВ Нет Поездка за границу в регион с высоким уровнем ПРВ Нет Факторы риска М^А, карбапенемустойчивых энтеробактерий, Р. aeruдinosa/Acinetobacter Предшествующая терапия/ профилактика азолами

Вероятные ПВР или грибы Candida Нет Энтеробактерии -продуценты БЛРС и/или устойчивые к ФХ или DRS Энтеробактерии -продуценты БЛРС Энтеробактерии -продуценты БЛРС и карбапенемаз; М^А; НФГОБ Те же бактерии (IIIb тип) + Candida spp.

Примечание: БЛРС - ß-лактамазы расширенного спектра; ПРВ - полирезистентные возбудители;

ИК - инвазивный кандидоз; ФХ - фторхинолоны; DRSP - полирезистентный Streptococcus pneumoniae;

MRSA - метициллинорезистентный Staphylococcus aureus; НФГОБ - неферментирующие грамотрицательные бактерии

(Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter spp.)

фицирования проблемными полирезистентными микроорганизмами (MRSA, P. aeruginosa, карбапе-немрезистентные энтеробактерии), не вошедшими в таблицу стратификации, и при их наличии относить пациента к IIIb типу.

Стратификация риска антибиотикорезистентно-сти у пациентов носит рекомендательный характер, и отдельные факторы риска могут варьировать по своей значимости и срокам реализации в зависимости от конкретного лечебного учреждения, особенностей пациента и его анамнеза. Факторы длительности текущей госпитализации и срока возникновения послеоперационной инфекции могут быть изменены в большую или меньшую сторону в зависимости от уровня организации инфекционного контроля в стационаре. При оценке факта

предшествующей АМТ следует помнить, что риск БЛРС в большей степени повышает назначение цефалоспоринов Ш-1У поколений, тогда как риск карбапенемрезистентности зависит от предшествующего использования карбапенемов и фторхино-лонов.

Перед назначением ЭАМТ пациент должен быть стратифицирован по риску наличия полирезистентных микроорганизмов, данные о типе пациента необходимо отражать в медицинской документации.

4.3. Алгоритм определения типа пациента

Оценка риска (см. табл. 3) может носить субъективный характер на основании наличия или отсутствия определенных признаков в том или ином типе. Для формализации расчетов каждому из признаков может быть присвоен определенный удельный вес:

все признаки I типа - 0 баллов, все признаки II, 111а и ШЬ типов - 1 балл.

Общий принцип: первично пациенту устанавливается тот тип, сумма баллов в котором наибольшая. Если имеет место ситуация, когда в разных типах набирается одинаковое количество баллов, то присваивается значение типа с более высоким рангом.

I тип присваивается, если во всех полях таблицы значится «0», т. е. отсутствуют указания на наличие любого из факторов риска.

Для типов II, Ша, ШЬ: если во II типе больше баллов, чем в Ша, но в Ша типе присутствует признак «длительность нахождения в стационаре < 7 дней (вне ОРИТ)», то присваивается Ша тип. Если во II или Ша типе больше баллов, чем в ШЬ, но в ШЬ типе присутствует хотя бы один из признаков «длительность нахождения в стационаре > 7 дней», «длительность нахождения в ОРИТ > 3 дней» или «инфекция, возникшая после оперативных вмешательств», то присваивается ШЬ тип. В ШЬ типе признак «тяжелое течение основного заболевания» не должен быть определяющим для отнесения пациента к данному типу и должен рассматриваться только в совокупности с другими факторами риска, характерными для ШЬ типа.

В рекомендациях СКАТ [11, 12, 30] приведен перечень антибактериальных препаратов для эмпирического назначения в зависимости от стратификации пациентов по риску наличия антибиоти-корезистентных микроорганизмов и ИК. Данные рекомендации носят общий характер и могут служить основой для разработки алгоритмов АМТ в медицинских организациях. Учитывая тот факт, что уровень устойчивости нозокомиальных возбудителей к антибиотикам может сильно отличаться в разных лечебных учреждениях, необходимо создание локальных протоколов ЭАМТ, основанных на данных об антибиотикорезистентности в конкретном стационаре. Формирование таких протоколов поможет повысить эффективность проводимой ЭАМТ, снизить количество осложнений, добиться уменьшения доли антибиотикорезистентных микроорганизмов, сократить использование антибиотиков и расходы медицинской организации [2, 3, 67].

5. Схемы антибактериальной терапии инфекций, вызванных полирезистентными штаммами микроорганизмов

Целенаправленная АМТ должна начинаться с момента микробиологической идентификации возбудителя инфекции и быть основана на знании чувствительности микроорганизма к АМП и механизмов антибиотикорезистентности с учетом локализации инфекционного очага. При выборе схемы АМТ необходимо опираться на показания, способ применения и дозы, указанные в официальной инструкции к препарату. При проведении целенаправленной АМТ грамположительных инфекций и инфекций, вызванных грамотрицательными бактериями, являющихся классическими продуцентами ЕББЬ, в большинстве случаев возможно проведение

монотерапии, в то время как при лечении инфекций, вызванных карбапенемустойчивыми штаммами, как правило, рекомендовано использование комбинаций АМП с различными механизмами действия в зависимости от характера возбудителя и значений МПК (приложение № 1).

6. Рекомендации по дозированию антимикробных препаратов у пациентов в критическом состоянии

Основные режимы дозирования АМП указаны в инструкции по медицинскому применению препарата. В инструкции рекомендованные дозы антибиотика рассчитываются на основании фармакоки-нетики и фармакодинамики для чувствительных к антибиотику микроорганизмов. Со временем происходит закономерный процесс снижения чувствительности микроорганизмов к АМП (что отражается в увеличении МПК) и появления устойчивых штаммов. Однако в инструкции рекомендованный режим дозирования не претерпевает коррекции. Экспериментальные и клинические исследования показали, что период времени, когда свободная концентрация АБ остается выше МПК (1Г), является основным параметром оптимального киллинга бактерий, обеспечивающего клинический эффект. Концентрация АБ ниже МПК позволяет многим микробам возобновить рост в короткий период после окончания постантибиотического эффекта.

Кроме повышения МПК микроорганизмов, отсутствие ожидаемого клинического эффекта может быть связано со снижением концентрации антибиотика в плазме больного, обусловленного увеличением объема распределения антибиотика и повышенным клиренсом, который наблюдается у 50-60% пациентов в первые сутки пребывания в ОРИТ. Критично увеличение СгС1 > 130 мл/мин [58]. Поэтому при повышении МПК возбудителя к антимикробному препарату для поддержания эффекта на прежнем уровне для антибиотиков с концентрационно-зависимым антимикробным действием (аминогликозиды, фторхи-нолоны) необходимо увеличить их концентрацию в крови, а для антибиотиков с времязависимым действием (в-лактамные антибиотики) - кратность и/или продолжительность введения каждой дозы.

Это объясняет сложившуюся практику назначения некоторых АМП в дозах, превышающих рекомендуемые в медицинской инструкции, а также изменение режима дозирования у пациентов в критическом состоянии при развитии тяжелых форм инфекции.

Для лечения тяжелых МИБЛ-инфекций возможно (и целесообразно) увеличение суточной дозы ванкомицина до 3-4 г (при выделении штаммов МИБЛ со сниженной чувствительностью к ванко-мицину, что подтверждается определением МПК на уровне 1,5-2 мкг/мл). Следует помнить, что максимально разрешенная по инструкции суточная доза даптомицина составляет 6 мг/кг, хотя в отдельных публикациях имеются данные о применении препарата при ангиогенных инфекциях в бо-

лее высоких дозах: 8-10 мг/кг [5]. Также в научной литературе можно встретить рекомендации о применении тигециклина в более высокой (по сравнению с разрешенной в инструкции) суточной дозе - 200 мг при лечении инфекций, вызванных карбапенемрезистентными энтеробактериями и ацинетобактером.

Более адекватный эффект аминогликозидов прогнозируется при применении гентамицина в дозе 5 мг/кг в сутки и амикацина - 20 мг/кг в сутки. Аминогликозиды характеризуются концентраци-онно-зависимым киллингом, поэтому целесообразно суточную дозу аминогликозида вводить внутривенно однократно в виде в виде 30-минутной инфузии. Антимикробное действие р-лактамных антибиотиков является концентрационно-независимым и определяется временем сохранения терапевтических концентраций антибиотика (выше МПК) в течение интервала дозирования. Поэтому при необходимости увеличения суточной дозы р-лактама целесообразно увеличивать кратность введения препарата, а не величину разовой дозы. Оптимизация фарма-кодинамических показателей достигается также при продленной инфузии р-лактамных антибиотиков. Клинические данные о продленных инфузиях р-лак-тамов ограничены, однако фармакодинамические и клинические исследования документируют преимущество такого введения антибиотиков при лечении инфекций, вызванных полирезистентными микроорганизмами. При лечении тяжелых инфекций целесообразно р-лактамные антибиотики вводить внутривенно в течение 2-3-часовой инфузии. Продленные инфузии разрешены в инструкции по медицинскому применению дорипенема (оригинальный препарат дорипрекс - 4-часовая инфузия) и оригинального меропенема (меронем - 3-часовая инфу-зия), однако имеются клинические данные, свидетельствующие об эффективности такого введения и других оригинальных карбапенемов, цефтазидима, цефепима (максипима), пиперациллина/тазобакта-ма (тазоцина). Более длительные инфузии (свыше 3 ч) нежелательны из-за возможной нестабильности антибиотика в инфузионном растворе.

Примеры дозирования антимикробных препаратов у пациентов в критическом состоянии приведены в табл. 4.

7. Антибактериальная терапия инфекций в особых случаях

7.1. Рекомендации по назначению, дозированию антимикробных и противогрибковых препаратов у детей до 18 лет

Правила выбора антимикробных препаратов у пациентов детского возраста в целом строятся на тех же позициях, что и у взрослых пациентов. В то же время при проведении антимикробной терапии у детей необходимо учитывать ряд принципиальных особенностей [65].

1. Многие антимикробные препараты имеют возрастные ограничения по применению. Это может быть связано с высоким риском нежелательных реакций, специфичных для определенного возраста, и/или отсутствием клинических исследований у детей. В частности, тетрациклины и тигециклин противопоказаны к применению у детей до 8 лет в связи с нежелательным влиянием на костную ткань и зубную эмаль. Фторхинолоны в целом противопоказаны для применения до 18 лет из-за риска нежелательного влияния на хрящевую ткань (установлено для неполовозрелых особей некоторых видов животных). Однако в ряде стран отдельные фтор-хинолоны разрешены для использования у детей по определенным показаниям (в России разрешено применение ципрофлоксацина у пациентов детского возраста с муковисцидозом, а также для лечения и профилактики сибирской язвы). По мнению экспертов, фторхинолоны могут быть использованы при жизнеугрожающих инфекциях у детей в случае отсутствия более безопасной альтернативы. В этих же ситуациях может рассматриваться возможность применения других антибактериальных препаратов, противопоказанных или не рекомендованных для применения у детей (дорипенем, даптомицин и др.).

2. У многих антимикробных препаратов имеются существенные возрастные особенности фарма-кокинетики, обусловленные анатомо-физиологи-ческой незрелостью детского организма в первые месяцы жизни, в особенности у недоношенных. Это может приводить к увеличению риска развития обычных или появлению специфических нежелательных реакций, что требует использования у детей в определенном возрасте особой дозировки и/или особого режима применения анти-

Таблица 4. Рекомендации по коррекции дозирования антимикробных препаратов у пациентов в критическом состоянии

Table 4. Recommendations for adjustment of antimicrobial drugs' doses in critically ill patients

Группа антимикробных препаратов Нормальная функция почек

Аминогликозиды Амикацин 1,5-2 г/сут

Лактамы Эртапенем 0,5-1,0 каждые 12 ч, меропененм 1-2 г, каждые 6-8 ч продленные инфузии (3 ч), пиперациллина-тазобактам 4,5 г через 6 ч

Гликопептиды Ванкомицин 1,0 болюс, затем 2,0 г/сут, продленные инфузии 24 ч

Фосфомицин 4 г каждые 6 ч

Фторхинолоны Ципрофлоксацин 1 200 мг/сут, левофлоксацин 500 мг/12 ч

Тигециклин 100-200 мг первоначальная доза, затем по 50-100 мг/12 ч

Линкозамиды Клиндамицин 600-900 мг/12 ч

микробных препаратов. В частности, применение цефтриаксона и сульфаниламидов у новорожденных сопряжено с риском гипербилирубинемии и развития ядерной желтухи.

При использовании хлорамфеникола в первые месяцы жизни возрастает риск характерных нежелательных реакций (в частности, гемотоксичности) в связи с повышением концентрации в крови из-за замедления метаболизма препарата в печени, что требует мониторинга его концентрации в крови.

3. Доза антимикробных препаратов у детей (за редким исключением) рассчитывается на массу тела пациента. При назначении парентеральных антимикробных препаратов у детей предпочтение отдается внутривенному введению, так как внутримышечное введение болезненно и сопряжено у детей с повышенным риском инъекционных осложнений. Для перорального приема антимикробных препаратов у детей должны использоваться специальные пероральные формы антимикробных препаратов - суспензии, диспергированные таблетки, которые могут быть легко проглочены ребенком. Доза антимикробного препарата у детей, так же как у взрослых пациентов, обычно определяется тяжестью инфекционного заболевания, в отдельных случаях - видом и свойствами возбудителя.

Режимы дозирования антимикробных препаратов у детей для лечения инфекций, вызванных полирезистентными возбудителями, приведены в приложении № 2.

Решение о назначении и дозировании антимикробных и противогрибковых препаратов у детей, при отсутствии указаний в инструкции о применении препарата в педиатрии, а также не относящихся к перечню ЖНВЛП, необходимо оформлять консилиумом.

7.2. Применение антимикробных препаратов у пациентов с почечной и печеночной недостаточностью

При нарушении функции печени - основного метаболизирующего органа - инактивация некоторых антибиотиков (макролиды, линкозамиды, тетрациклины и др.) может существенно замедляться, что сопровождается увеличением концентрации АМП в сыворотке крови и повышением риска их токсического воздействия. Кроме того, в условиях печеночной недостаточности риску нежелательного влияния таких АМП подвергается и сама печень, что приводит к дальнейшему нарушению функций гепатоцитов и создает угрозу развития печеночной комы. Поэтому при клинических и лабораторных признаках печеночной недостаточности (повышение уровня билирубина, активности трансаминаз, изменения холестерина, белкового обмена) для АМП, метаболизирующихся в печени, следует предусмотреть уменьшение дозы.

При почечной недостаточности период полувыведения многих АМП может удлиняться в несколько раз. Поэтому перед назначением АМП, которые активно выводятся с мочой (аминогликозиды,

ß-лактамы и др.), необходимо определить клиренс креатинина и при его снижении либо уменьшить суточные дозы антибиотиков, либо увеличить интервалы между отдельными введениями. Это особенно актуально при тяжелой почечной недостаточности с дегидратацией, когда даже первая доза должна быть снижена. В ряде случаев, если имеются выраженные отеки, может потребоваться обычная (или даже несколько завышенная) первоначальная доза, которая позволит преодолеть избыточное распределение АМП в жидкостях организма и достичь нужной концентрации (бактерицидной или бакте-риостатической) в крови и тканях.

Дозы антимикробных препаратов у пациентов с почечной и печеночной недостаточностью приведены в приложении № 3.

7.3. Применение антимикробных препаратов при беременности и кормлении грудью

Рациональное и эффективное применение антибиотиков во время беременности предполагает выполнение следующих условий:

P необходимо использовать лекарственные средства только с установленной безопасностью применения при беременности, с известными путями метаболизма (критерии FDA);

P при назначении АМП следует учитывать срок беременности: ранний или поздний. Поскольку срок окончательного завершения эмбриогенеза установить невозможно, то необходимо особенно тщательно подходить к назначению АМП до 5 мес. беременности;

P в процессе лечения необходим тщательный контроль за состоянием матери и плода.

Рекомендации по применению антимикробных препаратов при беременности и кормлении грудью представлены в приложении № 4.

8. Профилактика, диагностика и лечение инва-зивного кандидоза

Candida spp. - важные нозокомиальные патогены, они составляют 8,4% возбудителей внутрибольнич-ных инфекций в крупных стационарах Российской Федерации.

ИК характеризуется тяжестью клинических проявлений и высокой летальностью, которая, по данным проведенного в РФ крупного исследования ИК у больных в ОРИТ (КРИТ), составила 57%. Большинство случаев ИК возникает у больных в ОРИТ, а также у онкологических и гематологических пациентов [4].

В российских ОРИТ у взрослых больных основными возбудителями ИК являются C. albicans (42-48%), C. glabrata (14-24%), C. parapsilosis (2-17%), С. tropicalis (5-15%) и C. krusei (5-16%), реже (1-3%) выявляют C. lusitaniae, C. guilliermondii, C. kefyr и пр. Вид Candida spp. коррелирует с чувствительностью к противогрибковым лекарственным средствам in vitro. Например, C. albicans обычно чувствителен к флуконазолу, а не-albicans Candida часто устойчивы. В российских ОРИТ чувствительность к флуконазолу снижена у 21% возбудителей

ИК. Устойчивость к эхинокандинам (анидулафун-гину, каспофунгину и микафунгину) встречается очень редко.

Факторы риска развития ИК у взрослых пациентов в ОРИТ: использование центрального венозного катетера (ЦВК), применение антибактериальных лекарственных средств, тяжелое состояние больного (медиана APACHE II - 13, SOFA - 6), хирургическое лечение или перфорация желудочно-кишечного тракта, инфицированный панкреонекроз, искусственная вентиляция легких, полное парентеральное питание, гемодиализ, применение стероидов и иммуносупрессоров. ИК чаще развивается у мужчин старшего возраста.

Кандидемия (циркуляция Candida spp. в кровеносном русле) и острый диссеминированный кандидоз (ОДК - кандидемия в сочетании с очагом/очагами диссеминации или множественные очаги диссеми-нации) составляют до 90% всех случаев ИК.

Клинические признаки кандидемии неспецифичны и не отличаются от симптомов бактериального сепсиса: рефрактерное к применению антибактериальных лекарственных средств повышение температуры тела > 38°C выявляют у 82% больных, синдром полиорганной недостаточности - у 48%, ДВС-синдром - у 13%. При ОДК возможно поражение практически всех органов и тканей, но наиболее часто в патологический процесс вовлекаются кожа и подкожная клетчатка, головной мозг, почки, сердце, легкие и органы зрения.

Диагностика ИК основана на выделении Candida spp. из крови и других стерильных в норме локусов (СМЖ, биоптат и пр.). Стандартный метод диагностики ИК - посев крови - обладает недостаточной диагностической чувствительностью. Увеличение объема крови (> 40 мл/сут для взрослого пациента) при посеве повышает эффективность диагностики ИК. Среднее время выявления Candida spp. при посеве крови составляет 3 дня и может достигать 8 дней для C. glabrata. При выделении возбудителя ИК должны быть определены его вид и чувствительность in vitro стандартным методом. Быстрые методы диагностики ИК (T2Candida и тест на (1,3)-^-Б-глюкан) не зарегистрированы для применения в нашей стране.

Риск развития ИК у больных в ОРИТ без факторов риска (нейтропении на фоне применения цитостати-ков, трансплантации кроветворных стволовых клеток, трансплантации печени и пр.) невысок, поэтому рутинная первичная антифунгальная профилактика не рекомендуется. У больных в ОРИТ показанием для первичной антифунгальной профилактики может быть повторная перфорация желудочно-кишечного тракта или инфицированный панкреонекроз. В этих ситуациях целесообразно назначение системных противогрибковых препаратов (флуконазол 12 мг/кг в

сутки в первый день, затем по 6 мг/кг в сутки или каспофунгин 70 мг в первые сутки, затем 50 мг в сутки). Назначение для профилактики инвазивного микоза неадсорбируемых полиеновых антибиотиков (нистатина, натамицина и др.) неэффективно и нецелесообразно, так же как и применение флуконазола в дозе менее 6 мг/кг в сутки.

Раннее эмпирическое назначение эхинокандинов повышает выживаемость больных ИК. Показанием для эмпирической терапии ИК у больных в ОРИТ является лихорадка неясной этиологии продолжительностью более 4-6 сут, резистентная к адекватной терапии антибактериальными препаратами широкого спектра действия в сочетании с наличием двух и более факторов риска (применение антибактериальных лекарственных средств, ЦВК, хирургическое вмешательство на органах брюшной полости, полное парентеральное питание, применение ГКС или иммуносупрессантов). При наличии факторов риска ИК и клинических признаков септического шока эмпирическую терапию следует начинать немедленно. Препараты выбора для эмпирической терапии ИК - анидулафунгин, каспофунгин и ми-кафунгин. При назначении эмпирической терапии ИК следует заменить ЦВК (не по проводнику), а также посеять кровь (> 40 мл в сутки для взрослого пациента), материал из возможных локусов ИК и дистальный фрагмент ЦВК.

При выделении Candida spp. из стерильных в норме локусов (кровь, СМЖ и пр.) в течение 24 ч следует назначить противогрибковое лекарственное средство и заменить ЦВК (не по проводнику). Анидулафун-гин, каспофунгин и микафунгин - препараты выбора для целенаправленной терапии всех вариантов ИК, кроме менингита и эндофтальмита. Триазольные лекарственные средства (вориконазол, флукона-зол) можно назначать только в случае выделении чувствительного к препарату возбудителя ИК при стабильном состоянии пациента, а также для лечения кандидозного менингита и эндофтальмита. Кроме того, вориконазол и флуконазол используют для деэ-скалационной терапии после стабилизации больного на фоне применения эхинокандина. Липосомальный амфотерицин В и липидный комплекс амфотерици-на В применяют при неэффективности, токсичности или недоступности эхинокандинов. Амфотерицин В, позаконазол и итраконазол не рекомендованы для лечения ИК (приложение № 5).

9. Критерии качества оказания помощи с использованием лекарственных средств для лечения инфекций, вызванных полирезистенными микроорганизмами

Критерии качества оказания медицинской помощи с использованием лекарственных средств для лечения инфекций, вызванных полирезистенными микроорганизмами, представлены в табл. 5.

Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии у них конфликта интересов. Conflict of Interests. The authors state that they have no conflict of interests.

Таблица 5. Критерии качества оказания помощи с использованием лекарственных средств для лечения инфекций, вызванных полирезистенными микроорганизмами

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Table 5. Quality criteria of care with the use of drugs aimed to treat infections caused by multiresistant microorganisms

N п/п Критерии качества Оценка выполнения

1 Наличие обоснования в медицинской документации проведения антимикробной терапии (основной, сопутствующий диагноз или осложнение с соответствующим кодом МКБ) Да/нет

2 Наличие результатов микробиологического исследования биологического материала (крови, мокроты, бронхоальвеолярного смыва/лаважа, мочи, раневого отделяемого, экссудата) с определением чувствительности возбудителя к антибиотикам Да/Нет

3 При выявлении карбапенемрезистентных штаммов грамотрицательных бактерий детекция основных классов карбапенемаз (сериновые, металло-р-лактамазы) Да/Нет

4 Коррекция антимикробной терапии с учетом результатов микробиологического исследования Да/Нет

5 При выявлении полирезистентных бактерий или грибов назначение схем антимикробной терапии в соответствии с данными методическими рекомендациями Да/Нет

6 Коррекция дозы антимикробных препаратов с учетом тяжести состояния больного Да/Нет

7 Ежедневная оценка эффективности проводимой антимикробной терапии с оценкой выраженности воспалительной реакции, органной дисфункции по SOFA, динамики биомаркеров инфекции Да/Нет

Приложение № 1. Схемы АМТ инфекций, вызванных нозокомиальными штаммами микроорганизмов, обладающими множественной устойчивостью к антибиотикам

Annex no. 1. Regimens of antimicrobial therapy of infections caused by nosocomial strains with multiple antibiotic resistance

Инфекции, вызванные грамположительными микроорганизмами

Инфекции, вызванные MRSA

№ МНН Описание схемы ЖНВЛП Условия применения (УП) и примечания

УП. При МПК ванкомицина < 1 мг/л стандартный режим дозирования. При МПК ванкомицина > 1 мг/л увеличение дозы по решению ВК: нагрузочная доза 25-30 мг/кг, затем 15-20 мг/кг с интервалом 8-12 ч

1 Ванкомицин 1,0 г х 2 р/сут в/в в течение 1 ч Да [12, 45] Прим. Оптимальным способом выбора режима дозирования ванкомицина является его коррекция на основании терапевтического лекарственного мониторинга. Низкая активность в отношении МSSA

2 Линезолид 600 мг х 2 р/сут в/в Да Прим. Применение при бактериемии, инфекционном эндокардите не оптимально

3 Цефтаролина фосамил 600 мг х 2 р/сут в/в в течение 1 ч Да Прим. В случае тяжелого течения инфекции (сепсис, септический шок) доза может быть увеличена до 600 мг х 3 р/сут

4 Даптомицин 6 мг/кг х 1 р/сут в/в струйно в течение 2 мин или в/в инфузия в течение 30 мин Да Прим. При бактериемии и бактериальном эндокардите по решению ВК увеличение дозы до 8-12 мг/кг в сутки [24, 34]. При бактериальных эндокардитах, ассоциированных с имплантацией внутрисердечных устройств, возможна комбинация с цефтаролином по решению ВК

5 Телаванцин 10 мг /кг х 1 р/сут в/в в течение 1 ч Да

6 Тедизолид 200 мг х 1 р/сут в/в в течение 1 ч Да

7 Тигециклин Первая нагрузочная доза 100 мг в/в в течение 1 ч, затем по 50 мг х 2 р/сут в/в в течение 1 ч Да Прим. Возможно применение в виде монотерапии при смешанных инфекциях, вызванных MRSA и грамотрицательными микроорганизмами, чувствительными к тигециклину

8 Далбаванцин 1,5 г в/в однократно либо 1 г в первые сутки, затем 0,5 г через 7 дней в/в Нет

Инфекции, вызванные ванкомицинрезистентными энтерококками (VRE)

9 Линезолид 600 мг х 2 р/сут в/в Да Прим. Применение при бактериемии, инфекционном эндокардите не оптимально

10 Тедизолид 200 мг х 1 р/сут в/в инфузия в течение 1 ч Да

11 Тигециклин Первая нагрузочная доза 100 мг в/в в течение 1 ч, затем по 50 мг х 2 р/сут в/в в течение 1 ч Да Прим. Возможно применение в виде монотерапии при смешанных инфекциях, вызванных VRE и грамотрицательными микроорганизмами, чувствительными к тигециклину

12 Даптомицин 10-12 мг/кг х 1 р/сут в/в струйно в течение 2 мин или в/в инфузия в течение 30 мин Да Прим. Учитывая превышение дозировки, рекомендованной в инструкции к препарату, назначение производится по решению ВК

Приложение № 1. Продолжение Annex no. 1. Continued

№ МНН Описание схемы ЖНВЛП Условия применения (УП) и примечания

13 Далбаванцин 1,5 г однократно либо 1 г в первые сутки, затем 0,5 г через 7 дней в/в Нет УП. Может быть назначен после определения чувствительности к препарату. Прим. Не активен в отношении энтерококков с резистентностью к ванкомицину типа VanA

14 Телаванцин 10 мг/кг х 1 р/сут в/в инфузия в течение 1 ч Да УП. Может быть назначен после определения чувствительности к препарату. Прим. Некоторые штаммы характеризуются сниженной чувствительностью in vitro

Инфекции, вызванные грамотрицательными микроорганизмами

Инфекции, вызванные карбапенемрезистентными штаммами Enterobacterales (Klebsiella spp., Escherichia coli, Enterobacter spp. и др.)

Базовые препараты

1 Цефтазидим/ авибактам По 2,5 г х 3 р/сут в/в в виде инфузии объемом 100 мл с постоянной скоростью в течение 120 мин Да УП. При инфекциях, вызванных Е^егоЬа^ега^, продуцирующими карбапенемазы групп КРС и/или ОХА-48. При отсутствии сочетанной продукции карбапенемаз группы металло-р-лактамаз (MBL) возможна монотерапия, в случае сочетанной продукции КРС и/или ОХА-48 + MBL показана комбинированная терапия

2 Цефтолозан/ тазобактам По 1,5 г в/в х 3 р/сут в/в в течение 60 мин Да УП. При инфекциях, вызванных карбапенемрезистентными штаммами Е^егоЬа^егае с подтвержденной чувствительностью к цефтолозан/тазобактаму при отсутствии продукции карбапенемаз, подтвержденной культуральными или ПЦР методами, может быть использован в качестве монотерапии. Прим. При лечении нозокомиальной пневмонии в дозировке 3 г х 3 р/сут каждые 8 ч в/в

3 Тигециклин Первая нагрузочная доза 100 мг в/в в течение 1 ч, затем по 50 мг х 2 р/сут в/в в течение 1 ч Да УП. При инфекциях, вызванных Е^егоЬа^ега^, продуцирующими сериновые карбапенемазы и/или MBL в комбинированном режиме, в том числе с карбапенемами. Прим. В случае тяжелого течения инфекции (сепсис, септический шок) возможно применение высоких доз по решению ВК: первая нагрузочная доза 200 мг, затем 100 мг х 2 р/сут [24, 29]

4 Меропенем 2 г в/в инфузия в течение 3 ч х 3 р/сут (в первые сутки непосредственно перед первой инфузией введение нагрузочной дозы 2 г в/в болюсно) Да УП. В случае отсутствия продукции карбапенемаз, подтвержденной культуральными или ПЦР методами. Применение схемы возможно при инфекциях, вызванных Е^егоЬа^егае при МПК к меропенему < 32 мг/л [17, 24, 65]. Прим. Превышение максимальной суточной дозы в первые сутки должно быть оформлено решением ВК

5 Дорипенем По 1 г в течение 4 ч х 3 р/сут в/в (в первые сутки непосредственно перед первой инфузией введение нагрузочной дозы 1 г в/в болюсно) Нет УП. В случае отсутствия продукции карбапенемаз, подтвержденной культуральными или ПЦР методами. Применение схемы возможно при инфекциях, вызванных Е^егоЬа^егае при МПК к меропенему < 32 мг/л [17, 24, 65]. Прим. Превышение максимальной суточной дозы в первые сутки должно быть оформлено решением ВК

6 Имипенем/ циластатин По 1 г (в пересчете на имипенем) 4 р/сут в/в Да УП. При инфекциях, вызванных Е^егоЬа^егае с чувствительностью к имипенему/циластатину при увеличенной экспозиции (I) [17]

Антибиотики для комбинации с базовыми препаратами*

7 Азтреонам По 2,0 г х 3-4 р/сут в/в Нет УП. При инфекциях, вызванных ЕПегоЬайега^, продуцирующими MBL

8 Полимиксин В 2,5 мг/кг в сутки в/в, доза делится на два введения Нет

9 Амикацин 20-30 мг/кг х 1 р/сут в/в в течение 30 мин Да Прим. Учитывая превышение дозировки, рекомендованной в инструкции к препарату, назначение производится по решению ВК [56]

10 Фосфомицин 4 г в/в инфузия в течение 1 ч х 4 р/сут Да Прим. В случае тяжелого течения инфекции (сепсис, септический шок) возможно применение высоких доз по решению ВК: 6 г в/в инфузия в течение 1 ч х 4 р/сут под контролем Ыа крови (с осторожностью у пациентов с сердечной недостаточностью) [41]

11 Эртапенем 1 г х 1 р/сут в/в Да УП. Может быть добавлен к меропенему при инфекциях, вызванных Е^егоЬа^ега^, продуцирующими карбапенемазы группы КРС

Инфекции, вызванные карбапенемрезистентной (CPR) P. aeruginosa (в большинстве случаев схема АМТ должна включать комбинацию из 2 и более АМП, приведенных ниже) [23]

Базовые препараты

1 Цефтолозан/ тазобактам По 1,5 г в/в х 3 р/сут в/в в течение 60 мин Да УП. При инфекции, вызванной CPR P. aeruginosa при отсутствии продукции карбапенемаз, подтвержденной культуральными или ПЦР методами (вероятны другие механизмы антибиотикорезистентности). Может быть использован в качестве монотерапии при наличии чувствительности. Прим. При лечении нозокомиальной пневмонии в дозировке 3 г х 3 р/сут каждые 8 ч в/в

Приложение № 1. Окончание

Annex no. 1. The end

№ МНН Описание схемы ЖНВЛП Условия применения (УП) и примечания

2 Цефтазидим/ авибактам По 2,5 г в/в в виде инфузии объемом 100 мл с постоянной скоростью в течение 120 мин каждые 8 ч Да УП. При наличии чувствительности in vitro возможно проведение монотерапии

3 Меропенем 2 г в/в в течение 3 ч х 3 р/сут (в первые сутки непосредственно перед первой инфузией введение нагрузочной дозы 2 г в/в болюсно) Да УП. При инфекциях, вызванных CPR P. aeruginosa с МПК к меропенему < 32 мг/л при отсутствии продукции карбапенемаз, подтвержденной культуральными или ПЦР методами [17, 24, 65]. Прим. Превышение максимальной суточной дозы в первые сутки должно быть оформлено решением ВК

4 Дорипенем Дорипенем 1 г в течение 4 ч х 3 раза в сут в/в (в первые сутки непосредственно перед первой инфузией введение нагрузочной дозы 1 г в/в болюсно) Нет УП. При инфекциях, вызваных CPR P. aeruginosa с МПК к меропенему < 32 мг/л при отсутствии продукции карбапенемаз, подтвержденной культуральными или ПЦР методами [17, 24, 65]. Прим. Превышение максимальной суточной дозы в первые сутки должно быть оформлено решением ВК

5 Имипенем/ циластатин Имипенем/циластатин 1 г (в пересчете на имипенем) 4 р/сут в/в Да При инфекциях, вызванных P. aeruginosa с чувствительностью к имипенему/циластатину при увеличенной экспозиции (I) [17]

Антибиотики для комбинации с базовыми препаратами*

6 Фосфомицин 4 г х 4 р/сут в/в инфузия в течение 1 ч [41] Да Прим. В случае тяжелого течения инфекции (сепсис, септический шок) возможно применение высоких доз по решению ВК: 6 г в/в инфузия в течение 1 ч х 4 р/сут под контролем Na крови (с осторожностью у пациентов с сердечной недостаточностью)

7 Полимиксин В 2,5 мг/кг в сутки в/в, доза делится на два введения Нет

8 Азтреонам 2 г х 6 р/сут в/в [6] Нет УП. При инфекциях, вызванных P. aeruginosa, продуцирующей карбапенемазы группы MBL. Прим. Учитывая превышение дозировки, рекомендованной в инструкции к препарату, назначение производится по решению ВК

9 Амикацин 20-30 мг/кг х 1 р/сут в/в в течение 30 мин [56] Да Прим. Учитывая превышение дозировки, рекомендованной в инструкции к препарату, назначение производится по решению ВК

Режимы терапии при инфекциях, вызванных штаммами CPR Acinetobacter spp. [35]

Базовые препараты

1 Меропенем По 2 г в/в в течение 3 ч х 3 р/сут (в первые сутки непосредственно перед первой инфузией введение нагрузочной дозы 2 г в/в болюсно) Да УП. При инфекциях, вызванных CPR Acinetobacter spp. с МПК к меропенему < 32 мг/л, в составе комбинированной терапии [17, 24, 65]. Прим. Превышение максимальной суточной дозы в первые сутки должно быть оформлено решением ВК

2 Дорипенем По 1 г в течение 4 ч х 3 р/сут в/в (в первые сутки непосредственно перед первой инфузией введение нагрузочной дозы 1 г в/в болюсно) Нет УП. При инфекциях, вызванных CPR Acinetobacter spp. с МПК к меропенему < 32 мг/л, в составе комбинированной терапии [17, 24, 65]. Прим. Превышение максимальной суточной дозы в первые сутки должно быть оформлено решением ВК

3 Имипенем/ циластатин По 1 г (в пересчете на имипенем) 4 р/сут в/в Да УП. При инфекциях, вызванных Acinetobacter spp. с чувствительностью к имипенему/циластатину при увеличенной экспозиции (I), в составе комбинированной терапии [17]

4 Тигециклин Первая нагрузочная доза 100 мг в/в в течение 1 ч, затем по 50 мг х 2 р/сут в/в в течение 1 ч Да УП. Может быть использован в комбинации, в том числе с карбапенемами. Прим. В случае тяжелого течения инфекции (сепсис, септический шок) возможно применение высоких доз по решению ВК: первая нагрузочная доза 200 мг, затем 100 мг х 2 р/сут [24, 29]

5 Цефепим/ сульбактам По 2 г (по сульбактаму) х 2 р/сут в/в Нет УП. Только в составе комбинированной терапии

6 Ампициллин/ сульбактам По 1 г (по сульбактаму) х 4 р/сут в/в Да УП. Только в составе комбинированной терапии

Антибиотики для комбинации с базовыми препаратами*

7 Полимиксин В [43] 2,5 мг/кг в сут в/в, доза делится на два введения Нет

8 Ко- тримоксазол 160 мг (по триметоприму) х 2 р/сут в/в в течение 1,5-2 ч Да Прим. В случае тяжелого течения инфекции (сепсис, септический шок) применение не оптимально

9 Тобрамицин 3-5 мг/кг х 1 р/сут в/в Да

10 Амикацин 20-30 мг/кг х 1 р/сут в/в в течение 30 мин [56] Да Прим. Учитывая превышение дозировки, рекомендованной в инструкции к препарату, назначение производится по решению ВК

Примечание: * - препараты для комбинации - 1-2 препарата из прилагаемого перечня используются в комбинации с базовыми препаратами. ВК - врачебная комиссия медицинской организации

Приложение № 2. Схемы АМТ инфекций, вызванных нозокомиальными штаммами микроорганизмов, обладающими множественной устойчивостью к антибиотикам, у детей

Annex no. 2. Regimens of antimicrobial therapy of infections caused by nosocomial strains with multiple antibiotic resistance in children

№ МНН лекарственных препаратов Возрастная категория Описание схемы ЖНВЛП Примечание

Инфекции, вызванные S. aureus, включая MRSA

1 Ванкомицин 0-18 лет Ванкомицин 10 мг/кг в/в 3 раза в сутки

2 Линезолид 5-18 лет Линезолид 10 мг/кг в/в 2 раза в сутки

3 Цефтаролин 0-2 года Цефтаролин 8 мг/кг в/в 3 раза в сутки

2-18 лет Цефтаролин 12 мг/кг в/в 3 раза в сутки

Инфекции, вызванные карбапенеморезистентными Enterobacterales

4 Цефтазидим/ авибактам 0-18 лет Цефтазидим/авибактам Enterobacterales, продуцирующих КРС или ОХА-48 Ожидается регистрация в России у детей от 3 месяцев

5 Цефтазидим/ авибактам + азтреонам 0-2 года Цефтазидим/авибактам + азтреонам - детям в возрасте: 1 неделя - 2 года - 30 мг/кг 4 раза в сутки, старше 2 лет - 50 мг/кг 4 раза в сутки Enterobacterales, продуцирующих КРС или ОХА-48 и метал-ло^-лактамазы и P. aeruginosa

2-18 лет Цефтазидим /авибактам + азтреонам - детям в возрасте: 1 неделя - 2 года - 30 мг/кг 4 раза в сутки, старше 2 лет -50 мг/кг 4 раза в сутки

6 Меропенем + полимиксин В 0-1 год Полимиксин В до 1 года - суточная доза 4 мг/кг в 2 введения, старше года - вводная доза 2,0-2,5 мг/кг в течение 1 ч, затем 1,25-1,5 мг/кг каждые 12 ч в/в не ЖНВЛП

2-18 лет Полимиксин В вводная доза 2,0-2,5 мг/кг в течение 1 ч, затем 1,25-1,5 мг/кг в/в 2 раза в сутки + меропенем 10-20 мг/кг в/в 3 раза в сутки

7 Имипенем + полимиксин В 0-1 год Полимиксин В 4 мг/кг в сутки в/в в 2 введения + имипенем 15 мг/кг 4 раза в сутки не ЖНВЛП

2-18 лет Полимиксин В вводная доза 2,0-2,5 мг/кг в течение 1 ч, затем 1,25-1,5 мг/кг в/в 2 раза в сутки + имипенем 15 мг/кг 4 раза в сутки

8 Меропенем + тигециклин 8-11 лет Меропенем 10-20 мг/кг в/в 3 раза в сутки + тигециклин 1,2 мг/кг в/в 2 раза в сутки

12-18 лет Меропенем 10-20 мг/кг в/в 3 раза в сутки + тигециклин 50 мг в/в 2 раза в сутки

9 Имипенем + тигециклин 8-11 лет Имипенем 15 мг/кг 4 раза в сутки + тигециклин 1,2 мг/кг в/в 2 раза в сутки

12-18 лет Имипенем 15 мг/кг 4 раза в сутки + тигециклин 50 мг в/в 2 раза в сутки

10 Фосфомицин + полимиксин В Фосфомицин 200-400 мг/кг в сутки (разделенные на 3 введения) в/в + полимиксин В вводная доза 2,0-2,5 мг/кг в течение 1 ч, затем 1,25-1,5 мг/кг в/в 2 раза в сутки

Инфекции, вызванные карбапенеморезистентными Acinetobacter spp.

11 Тигециклин + цефоперазон/ сульбактам 8-11 лет Цефоперазон/сульбактам 40-80 мг/кг в сутки в 2-4 введения; при тяжелых, длительно протекающих инфекциях по 160 мг/кг в сутки. Максимальная суточная доза - 160 мг/кг в сутки + тигециклин 1,2 мг/кг в/в 2 раза в сутки

12-18 лет Цефоперазон/сульбактам 40-80 мг/кг в сутки в 2-4 введения; при тяжелых, длительно протекающих инфекциях по 160 мг/кг в сутки. Максимальная суточная доза - 160 мг/кг в сутки + тигециклин 50 мг в/в 2 раза в сутки

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

12 Тигециклин+ цефепим / сульбактам 8-11 лет Тигециклин 1,2 мг/кг в/в 2 раза в сутки + цефепим/сульбактам 100 мг/кг в/в 2 раза в сутки

12-18 лет Тигециклин 50 мг в/в 2 раза в сутки + цефепим/сульбактам 100 мг/кг в/в 2 раза в сутки

13 Триметоприм/ сульфаме-токсазол + тигециклин 8-11 лет Тигециклин 1,2 мг/кг в/в 2 раза в сутки + триметоприм/сульфаметоксазол 3 мг/кг (по триметоприму) в/в 2 раза в сутки

12-18 лет Тигециклин 50 мг в/в 2 раза в сутки + триметоприм/сульфаметоксазол 960 мг в/в 3 раза в сутки

Приложение № 2. Окончание

Annex no. 2. The end

№ МНН лекарственных препаратов Возрастная категория Описание схемы ЖНВЛП Примечание

14 Тобрамицин + тигециклин 8-11 лет Тигециклин 1,2 мг/кг в/в 2 раза в сутки + тобрамицин 300 мг ингаляционно с помощью небулайзера 2 раза в сутки

12-18 лет Тигециклин 1,2 мг/кг в/в 2 раза в сутки + тобрамицин 300 мг ингаляционно с помощью небулайзера 2 раза в сутки

15 Тигециклин + полимиксин В 8-11 лет Тигециклин 1,2 мг/кг в/в 2 раза в сутки + полимиксин В вводная доза 2,0-2,5 мг/кг в течение 1 ч, затем 1,25-1,5 мг/кг в/в 2 раза в сутки

12-18 лет Тигециклин 50 мг в/в 2 раза в сутки + полимиксин В вводная доза 2,0-2,5 мг/кг в течение 1 ч, затем 1,25-1,5 мг/кг в/в 2 раза в сутки

Полимиксин В + цефепим / сульбактам Полимиксин В вводная доза 2,0-2,5 мг/кг в течение 1 ч, затем 1,25-1,5 мг/кг в/в 2 раза в сутки + цефепим/сульбактам 100 мг/кг в/в 2 раза в сутки

Инфекции, вызванные карбапенеморезистентными P. aeruginosa

16 Меропенем + полимиксин В Меропенем 10-20 мг/кг в/в 3 раза в сутки + полимиксин В вводная доза 2,0-2,5 мг/кг в течение 1 ч, затем 1,25-1,5 мг/кг в/в 2 раза в сутки

17 Имипенем + полимиксин В Имипенем 15 мг/кг 4 раза в сутки + полимиксин В вводная доза 2,0-2,5 мг/кг в течение 1 ч, затем 1,25-1,5 мг/кг в/в 2 раза в сутки

18 Меропенем + фосфомицин 3 месяца -12 лет Меропенем 10-20 мг/кг в/в 3 раза в сутки + фосфомицин 200-400 мг/кг в сутки (разделенные на 3 введения) в/в

19 Имипенем + фосфомицин 3 месяца -18 лет Имипенем 15 мг/кг 4 раза в сутки + фосфомицин 200-400 мг/кг в сутки (разделенные на 3 введения) в/в

20 Пиперациллин/ тазобактам + амикацин Пиперациллин/тазобактам 100/12,5 мг/кг в/в 3 раза в сутки + амикацин 15-20 мг/кг в/в 1 раз в сутки

Инфекции, вызванные штаммами, продуцирующими металло^-лактамазы

21 Тигециклин + фосфомицин 8-11 лет Тигециклин 1,2 мг/кг в/в 2 раза в сутки + фосфомицин 200-400 мг/кг в сутки (разделенные на 3 введения) в/в

12-18 лет Тигециклин 50 мг в/в 2 раза в сутки + фосфомицин 200-400 мг/кг в сутки (разделенные на 3 введения) в/в

22 Тигециклин + Полимиксин В 8-11 лет Тигециклин 1,2 мг/кг в/в 2 раза в сутки + полимиксин В вводная доза 2,0-2,5 мг/кг в течение 1 ч, затем 1,25-1,5 мг/кг в/в 2 раза в сутки не ЖНВЛП

12-18 лет Тигециклин 50 мг в/в 2 раза в сутки + полимиксин В вводная доза 2,0-2,5 мг/кг в течение 1 ч, затем 1,25-1,5 мг/кг в/в 2 раза в сутки

Инвазивный кандидоз

23 Анидулафунгин 0-18 Не разрешен к применению у детей Нет

24 Каспофунгин 2-12 70 мг/м2 в 1-е сутки, затем 50 мг/м2 в 1 сут (но не более 70 мг/сут) Да Доза зависит от площади поверхности тела

25 Микафунгин 0-16 < 40 кг 2 мг/кг в сутки; > 40 кг 100 мг/сут При отсутствии положительной клинической динамики или персистенции возбудителя доза может быть увеличена до 200 мг/день для пациентов с массой тела > 40 кг или до 4 мг/кг в день для пациентов с массой тела < 40 кг Да Возможно увеличение дозы при неэффективности

26 Вориконазол 2-12 лет, < 50 кг в/в: из расчета 9 мг/кг 2 раза в сутки в качестве насыщающей дозы и 8 мг/кг 2 раза в сутки в качестве поддерживающей; внутрь: 9 мг/кг 2 раза в сутки Да У детей - линейная фармакокинетика

27 Флуконазол 0-18 6-12 мг/кг в сутки в 1 введение Да У детей обычно применяют дозы выше, чем у взрослых

28 Липидный комплекс амфотерицина В 0-18 5 мг/кг в 1 с Да У детей токсичность ниже, чем у взрослых

29 Липосомальный амфотерицин В 3 месяца -18 лет 5 мг/кг в 1 с Да У детей токсичность ниже, чем у взрослых

Приложение № 3. Дозирование антимикробных препаратов у пациентов с почечной и печеночной недостаточностью

Annex no. 3. Doses of antimicrobial drugs in the patients with liver and kidney failure

АМП Изменение дозировки при клиренсе креатинина* Необходимость в изменении дозировки при недостаточности функции печени**

> 50 мл/мин 10-50 мл/мин < 10 мл/мин

Пенициллины

Ампициллин/сульбактам 100% каждые 6-8 ч 100% каждые 12 ч 100% каждые 24-48 ч -

Пиперациллин/тазобактам 100% каждые 6 ч 60-70% каждые 6 ч 60-70% каждые 8 ч -

Цефалоспорины

Цефепим/сульбактам 100% каждые 12 ч 100% каждые 16-24 ч 100% каждые 24-48 ч -

Цефоперазон/сульбактам 100% каждые 12 ч 50% каждые 12 ч 25% каждые 12 ч +

Цефотаксим/сульбактам 100% каждые 6 ч 100% каждые 8-12 ч 100% каждые 24 ч -

Цефтазидим/авибактам 100% каждые 8-12 ч 50-75% каждые 12-24 ч 25-50% каждые 24-48 ч -

Цефтолазан/тазобактам

Карбапенемы

Имипенем 100% каждые 6 ч 50% каждые 8-12 ч 25-50% каждые 12 ч -

Меропенем 100% каждые 6 ч 50% каждые 12 ч 50% каждые 24 ч -

Дорипинем

Монобактамы

Азтреонам 100% каждые 8-12 ч Нагрузочная доза 100%, затем 50% нагрузочной дозы каждые 6-12 ч Нагрузочная доза 50%, затем 25% нагрузочной дозы каждые 6-12 ч +

Аминогликозиды

Амикацин Нагрузочная доза, затем 50-90% нагрузочной дозы каждые 12-24 ч Нагрузочная доза, затем 10-50% нагрузочной дозы каждые 24-72 ч Нагрузочная доза, затем 10% нагрузочной дозы каждые 72-96 ч -

Гентамицин Нагрузочная доза, затем 80-90% нагрузочной дозы каждые 8-12 ч Нагрузочная доза, затем 35-80% нагрузочной дозы каждые 12 ч или 60-90% каждые 24 ч Нагрузочная доза, затем 10-35% нагрузочной дозы каждые 12 ч или 20-60% каждые 24 ч -

Тобрамицин Нагрузочная доза, затем 80-90% нагрузочной дозы каждые 8-12 ч Нагрузочная доза, затем 35-80% нагрузочной дозы каждые 12 ч или 60-90% каждые 24 ч Нагрузочная доза, затем 10-35% нагрузочной дозы каждые 12 ч или 20-60% каждые 24-48 ч -

Тетрациклины

Тетрациклин 100% каждые 6 ч 100% каждые 12-24 ч Не применяется Не применяется

Хинолоны/фторхинолоны

Левофлоксацин 100% каждые 12-24 ч Нагрузочная доза, затем 50% каждые 24 ч Нагрузочная доза, затем 25% каждые 24 ч -

Моксифлоксацин 100% каждые 24 ч 100% каждые 24 ч 100% каждые 24 ч +

Гликопептиды

Ванкомицин > 80 мл/мин - 100% каждые 6-12 ч 50-80 мл/мин - 100% 1 раз в каждые 24-72 ч 100% 1 раз в каждые 3-7 дней 100% 1 раз в каждые 7-14 дней -

Линкозамиды

Клиндамицин 100% каждые 6 ч 100% каждые 6 ч 100% каждые 6 ч +

Оксазолидиноны

Линезолид 100% каждые 12 ч 100% каждые 12 ч 100% каждые 12 ч +

Нитроимидазолы

Метронидазол 100% каждые 6-8 ч 100% каждые 8 ч 50% каждые 8-12 ч +

Полимиксины

Полимиксин В 1-1,5 мг/кг каждые 24 ч 1-1,5 мг/кг каждые 48-72 ч 1 мг/кг каждые 5 дней -

Сульфаниламиды и ко-тримоксазол

Сульфаниламиды и ко-тримоксазол 100% 50% Не применяются Не применяются

Приложение № 3. Окончание

Annex no. 3. The end

АМП Изменение дозировки при клиренсе креатинина* Необходимость в изменении дозировки при недостаточности функции печени**

> 50 мл/мин 10-50 мл/мин < 10 мл/мин

Вориконазол в/в или п/о 100% каждые 24 ч Пероральный 100% каждые 24 ч Пероральный 100% каждые 24 ч +

Анидулафунгин 100% каждые 12-24 ч 100% каждые 12-24 ч 100% каждые 12-24 ч -

Каспофунгин 100% каждые 12-24 ч 100% каждые 12-24 ч 50-100% каждые 12-24 ч -

Микафунгин 100% каждые 12-24 ч 100% каждые 12-24 ч 100% каждые 12-24 ч Не применяется

Флуконазол 100% каждые 24 ч 50% каждые 24 ч 50% каждые 24 ч +

Приложение № 4. Рекомендации по применению антимикробных препаратов при беременности и кормлении грудью

Annex no. 4. Guidelines for use of antimicrobial drugs in the pregnant and breast feeding women

АМП Категория FDA* Официальная информация производителя: Беременность/ кормление грудью Особенности действия при беременности Особенности действия при кормлении грудью

Антимикробные препараты

Ампициллин, ампициллин/ сульбактам B С осторожностью / с осторожностью Быстро проходит через плаценту, но в низких концентрациях. Снижает как плазменный уровень, так и экскрецию эстриола с мочой путем нарушения гидролиза конъюгированных стероидов в кишечнике. Эстриол мочи используется для оценки состояния фетоплацентарной системы, снижение его уровня может быть признаком дистресс-синдрома Проникает в грудное молоко

Пиперациллин/ тазобактам В С осторожностью / с осторожностью Нет данных. См. пиперациллин Проникает в грудное молоко в низких концентрациях

Цефалоспорины Проходят через плаценту в низких концентрациях. Отрицательного влияния на плод не выявлено Проникают в грудное молоко. Возможно изменение кишечной микрофлоры, сенсибилизация ребенка, кандидоз, кожная сыпь

Цефиксим, цефоперазон, цефоперазон/ сульбактам, цефотаксим, цефтазидим, цефтриаксон, цефепим В С осторожностью / с осторожностью Проходят через плаценту, особенно хорошо цефоперазон и цефтазидим. Отрицательного влияния на плод не выявлено Проникают в грудное молоко в низких концентрациях. Не следует применять цефиксим и цефтибутен из-за отсутствия соответствующих клинических исследований

Карбапенемы

Имипенем/ циластатин C С осторожностью / с осторожностью Есть данные о тератогенном действии у животных. Исследований у человека не проведено Нет данных о безопасности применения при кормлении грудью

Меропенем В С осторожностью / с осторожностью Данные о тератогенном действии у животных отсутствуют. Исследований у человека не проведено Нет данных о безопасности применения при кормлении грудью

Монобактамы

Азтреонам В С осторожностью / с осторожностью Проходит через плаценту. Адекватных и строго контролируемых исследований у человека не проведено Проникает в грудное молоко в низких концентрациях

Аминогликозиды Проходят через плаценту. Высокий риск ототоксичности и нефротоксичности Проникают в грудное молоко в низких концентрациях. Возможно влияние на микрофлору кишечника

Амикацин D Запрещено / с осторожностью Проходит через плаценту в высоких концентрациях. Высокий риск ототоксичности Проникает в грудное молоко в низких концентрациях. Адекватных и строго контролируемых исследований не проводилось

Приложение № 4. Продолжение Annex no. 4. Continued

АМП Категория FDA* Официальная информация производителя: Беременность/ Кормление грудью Особенности действия при беременности Особенности действия при кормлении грудью

Гентамицин С По жизненным показаниям/ с осторожностью Проходит через плаценту в средних концентрациях. Адекватных и строго контролируемых исследований у женщин не проводилось Проникает в грудное молоко в низких концентрациях

Неомицин - Запрещено / с осторожностью Данные о безопасности отсутствуют Данные о безопасности отсутствуют

Нетилмицин D С осторожностью / с осторожностью Проходит через плаценту в высоких концентрациях Проникает в грудное молоко в низких концентрациях

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Тобрамицин D По жизненным показаниям/ с осторожностью Проходит через плаценту в высоких концентрациях. Высокий риск ототоксичности Проникает в грудное молоко в низких концентрациях

Тетрациклины

Доксициклин, тетрациклин D Запрещено / запрещено Проходят через плаценту, накапливаются в костях и зубных зачатках плода, нарушая их минерализацию. Высокий риск гепатотоксичности Проникают в грудное молоко. Нарушение развития зубных зачатков, линейного роста костей, фотосенсибилизация, изменение кишечной микрофлоры, кандидоз

Хинолоны/ фторхинолоны Адекватных и строго контролируемых исследований у женщин не проведено. Высокий риск артротоксичности Проникают в грудное молоко. Высокий риск артротоксичности

Левофлоксацин С Запрещено / запрещено Нет данных Нет данных

Моксифлоксацин С Запрещено / запрещено Нет данных Нет данных

Ципрофлоксацин С Запрещено / запрещено Проходит через плаценту Проникает в грудное молоко в высоких концентрациях

Гликопептиды Проходят через плаценту, оказывают неблагоприятное действие на плод. Применяются по жизненным показаниям Проникают в грудное молоко. Возможно изменение кишечной микрофлоры, сенсибилизация ребенка

Ванкомицин С Запрещено в I триместре, в остальных -с осторожностью / запрещено Проходит через плаценту. Имеются сообщения о транзиторных нарушениях слуха у новорожденных Проникает в грудное молоко

Тейкопланин - Запрещено / запрещено Нет данных Нет данных

Линкозамиды

Клиндамицин, линкомицин - Запрещено / запрещено Проходят через плаценту в высоких концентрациях. Возможна кумуляция в печени плода Проникают в грудное молоко. Возможно изменение кишечной микрофлоры, сенсибилизация ребенка

Оксазолидиноны

Линезолид С Запрещено / запрещено Нет данных Нет данных

Нитроимидазолы Проходят через плаценту, данные о частоте врожденных дефектов противоречивы, не исключено повреждающее действие на плод в I триместре Проникают в грудное молоко, действие на ребенка не изучено

Метронидазол В Запрещено в I триместре, в остальных -с осторожностью / запрещено Проходит через плаценту в высоких концентрациях. Имеются указания на дефекты головного мозга, конечностей, гениталий Проникает в грудное молоко в высоких концентрациях. Возможна анорексия, рвота, диарея и др.

Полимиксины В С осторожностью / с осторожностью Нет данных о повреждающем действии АМП на плод Нет данных

АМП других групп

Приложение № 4. Окончание

Annex no. 4. The end

АМП Категория FDA* Официальная информация производителя: Беременность/ Кормление грудью Особенности действия при беременности Особенности действия при кормлении грудью

Фосфомицин В С осторожностью / с осторожностью Проходит через плаценту. Имеется информация о его неблагоприятном действии на организм матери и на плод, полученная в экспериментах на животных Нет данных

Сульфаниламиды С, D -если перед родами С осторожностью / с осторожностью Проходят через плаценту в высоких концентрациях, особенно в III триместре. Сведения о неблагоприятном действии на плод противоречивы. При назначении в I триместре беременности возможны аномалии развития. При назначении в поздние сроки беременности: анемия, желтуха, потеря аппетита, рвота, поражение почек. Сульфаниламиды вытесняют билирубин из связей с альбуминами плазмы крови. Несвязанный билирубин проходит через плаценту, может приводить к поражению мозга плода Проникают в грудное молоко. Возможна ядерная желтуха у грудных детей. При дефиците глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы -гемолитическая анемия

Ко-тримоксазол (сульфаметоксазол/ триметоприм) С Запрещено / запрещено См. сульфаниламиды. Триметоприм проходит через плаценту в высоких концентрациях. Триметоприм - активный антагонист фолиевой кислоты. Повышается риск врожденных аномалий (сердечно-сосудистой системы, ЦНС, замедление роста плода). По другим данным, частота пороков развития при использовании ко-тримоксазола не возрастает Триметоприм проникает в грудное молоко в низких концентрациях. См. также сульфаниламиды

Противогрибковые препараты

Амфотерицин В В С осторожностью / с осторожностью Проходит через плаценту. Адекватные данные о безопасности отсутствуют Адекватные данные о безопасности отсутствуют

Анидулафунгин С Запрещено / запрещено Адекватные данные о безопасности отсутствуют Адекватные данные о безопасности отсутствуют

Каспофунгин С Запрещено / запрещено Адекватные данные о безопасности отсутствуют Адекватные данные о безопасности отсутствуют

Микафунгин С Запрещено / запрещено Адекватные данные о безопасности отсутствуют Адекватные данные о безопасности отсутствуют

Вориконазол D Запрещено / запрещено Имеются доказательства риска неблагоприятного действия ЛС на плод человека, полученные на практике. Адекватные данные о безопасности отсутствуют Адекватные данные о безопасности отсутствуют

Флуконазол D (дозы более 400 мг/сут) Запрещено / запрещено Имеются доказательства риска неблагоприятного действия ЛС на плод человека, полученные на практике. Адекватные данные о безопасности отсутствуют Хорошо проникает в грудное молоко, в котором создает концентрации, равные плазменным

Примечание: Для классификации лекарственных препаратов по критериям безопасности для плода на территории России используются данные Американской классификации лекарственных и пищевых препаратов Food and Drug Administration:

А - В результате адекватных строго контролируемых исследований не выявлено риска неблагоприятного действия на плод в I триместре беременности (и нет данных, свидетельствующих о подобном риске в последующих триместрах). В - Изучение репродукции на животных не выявило риска неблагоприятного действия на плод, а адекватных и строго контролируемых исследований у беременных женщин не проведено.

С - Изучение репродукции на животных выявило неблагоприятное действие на плод, а адекватных и строго контролируемых исследований у беременных женщин не проведено, однако потенциальная польза, связанная с применением лекарственных средств у беременных, может оправдывать его использование несмотря на возможный риск.

D - Имеются доказательства риска неблагоприятного действия лекарственных средств на плод человека, полученные при проведении исследований или на практике, однако потенциальная польза, связанная с применением лекарственных средств у беременных, может оправдывать его использование несмотря на возможный риск. Х - Испытания на животных или клинические испытания выявили нарушения развития плода и/или имеются доказательства риска неблагоприятного действия лекарственных средств на плод человека, полученные при проведении исследований или на практике; риск, связанный с применением лекарственных средств у беременных, превышает потенциальную пользу.

Приложение № 5. Схемы лекарственной терапии инвазивных кандидозов и кандидемии

Annex no. 5. Treatment regimens for invasive candidiasis and candidemia

№ МНН Дозировка ЖНВЛП Примечание

1 Анидулафунгин в/в в первые сутки 200 мг, затем по 100 мг 1 раз в сутки в/в Нет Препарат выбора для эмпирической и целенаправленной терапии ИК

2 Каспофунгин в/в в первые сутки 70 мг, затем по 50 мг 1 раз в сутки Да Препарат выбора для эмпирической и целенаправленной терапии ИК

3 Микафунгин в/в 100 мг 1 раз в сутки Да Препарат выбора для эмпирической и целенаправленной терапии ИК

4 Вориконазол в/в или п/о 6 мг/кг 2 раза в 1-е сутки, затем по 4 мг/кг 2 раза в сутки Да Клинически стабильный пациент, возбудитель - чувствительные к вориконазолу Candida spp., менингит и эндофтальмит, деэскалационная терапия

5 Флуконазол в/в или п/о 12 мг/кг в сутки в первый день, затем по 6 мг/кг в сутки Да Клинически стабильный пациент, возбудитель - C. albicans или другие чувствительные к флуконазолу Candida spp., менингит и эндофтальмит, деэскалационная терапия

6 Липосомальный амфотерицин В* в/в 3 мг/кг в 1 с Нет При неэффективности, токсичности или недоступности эхинокандинов

7 Липидный комплекс амфотерицина В* в/в 5 мг/кг в 1 с Нет При неэффективности, токсичности или недоступности эхинокандинов

Примечание: * - средства 2-й линии терапии

ЛИТЕРАТУРА

1. Абдоминальная хирургическая инфекция. Российские национальные рекомендации / Б. Р. Гельфанд, А. И. Кириенко, Н. Н. Хачатрян / М., 2018. - 168 с.

2. Гусаров В. Г., Лашенкова Н. Н., Петрова Н. В. и др. Протоколы эмпирической антимикробной терапии как инструмент улучшения качества неотложной медицинской помощи пациентам с инфекцией в многопрофильном хирургическом стационаре // Медицинский алфавит. - 2016. -Т. 33, № 4. - Неотложная медицина. - С. 2-24.

3. Гусаров В. Г., Нестерова Е. Е., Оприщенко И. В. и др. Клинические и фар-макоэкономические результаты использования протокола эмпирической антимикробной терапии в многопрофильном стационаре // Вестник Национального медико-хирургического Центра им. Н. И. Пирогова. -2015. - Т. 10, № 4. - С. 100-103.

4. Диагностика и лечение микозов в отделениях реанимации и интенсивной терапии: Российские рекомендации / Отв. ред. Н. Н. Климко. - 2-е изд. доп. и перераб. - М.: Фармтек, 2015. - 96 с.

5. Карпов О. Э., Замятин М. Н., Гусаров В. Г. и др. Протоколы эмпирической антимикробной терапии стационара ФГБУ «НМХЦ им. Н.И. Пирогова» Минздрава России (четвертая редакция, 2018 г.) // Медицинский алфавит. - 2019. - Т. 1, № 16. - Неотложная медицина и кардиология. - С. 58-71.

6. Козлов С. Н. Современная антимикробная химиотерапия / Козлов С. Н., Козлов Р. С. - М.: Медицинское информационное агентство, 2017 - 398 с.

7. Найговзина Н. В., Попова А. Ю., Бирюкова Е. Е. и др. Оптимизация системы мер борьбы и профилактики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи в Российской Федерации // ОРГЗДРАВ: Новости. Мнения. Обучение. Вестник ВШОУЗ. - 2018. - № 1 (11). - С. 17-26.

8. Нозокомиальная пневмония у взрослых. Российские национальные рекомендации. Москва, 2016. - 176 с.

9. План мероприятий на 2019-2024 годы по реализации Стратегии предупреждения распространения антимикробной резистентности в Российской Федерации на период до 2030 года. Утвержден распоряжением Правительства Российской Федерации от 30 марта 2019 г. № 604-р. Ьйрз://™^^ garant.ru/products/ipo/prime/doc/71677266/

10. Попов Д. А. Сравнительная характеристика современных методов определения продукции карбапенемаз // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. - 2019. - Т. 21, № 2 - С. 125-133.

11. Программа СКАТ (стратегия контроля антимикробной терапии) при оказании стационарной медицинской помощи / Белобородова В. Б., Брусина Е. Б., Козлов Р. С. и др./ Российские клинические рекомендации. Межрегиональная общественная организация «Альянс клинических химиотерапевтов и микробиологов»; Российская ассоциация специалистов по хирургическим инфекциям (РАСХИ); Национальная ассоциация специалистов по контролю инфекций, связанных с оказанием медицин-

REFERENCES

1. Abdominalnaya khirurgicheskaya infektsiya. Rossiyskie natsionalnye rekomendatsii. [Abdominal surgical infection, Russian national guidelines]. B.R. Gelfand, A.I. Kirienko, N.N. Khachatryan. Moscow, 2018, 168 p.

2. Gusarov V.G., Lashenkova N.N., Petrova N.V. et al. Empirical antimicrobial treatment protocols as a tool to improve the quality of emergency medical care for patients with infection in a multidisciplinary surgical in-patient unit. Meditsinsky Alfavit. 2016, vol. 33, no. 4, Neotlozhnaya Meditsina, pp. 2-24. (In Russ.)

3. Gusarov V.G., Nesterova E.E., Oprischenko I.V. et al. Clinical and pharmacoeconomic results of empirical antimicrobial therapy protocol in a multidisciplinary hospital. Vestn. Natsionalnogo Mediko-Khirurgicheskogo Tsentra im. N.I. Pirogova, 2015, vol. 10, no. 4, pp. 100-103. (In Russ.)

4. Diagnostika i lechenoye mikozov v otdeleniyakh reanimatsii i intensivenoy terapii. Rossiyskiye rekomendatsii. [Diagnostics and treatment of fungal infection in critical care departments. Russian national guidelines]. N.N. Klimko, eds., 2nd ed., suppl. and amend., Moscow, Farmtek Publ., 2015, 96 p.

5. Karpov O.E., Zamyatin M.N., Gusarov V.G. et al. empirical antimicrobial therapy protocol in the in-patient unit of National Medical and Surgical Center named after N.I. Pirogov of the Russian Ministry of Health (4rd edition, 2018). Meditsinsky Alfavit. 2019, vol. 1, no. 16, Neotlozhnaya Meditsina i Kardiologiya, pp. 58-71. (In Russ.)

6. Kozlov S.N. Sovremennaya antimikrobnaya khimioterapiya. [Modern anti-microbe chemotherapy]. Kozlov S.N., Kozlov R.S. Moscow, Meditsinskoye Informatsionnoye Agentstvo Publ., 2017, 398 p.

7. Najgovzina N.V., Popova A.Yu., Biryukova E.E.et al. Optimization of activities aimed to control and prevent infections associated with medical care provision in the Russian Federation. ORGZDRAV, Novosti, Mneniya, Obuchenie, Vestnik VShOUZ, 2018, no. 1 (11), pp. 17-26. (In Russ.)

8. Nozokomialnaya pnevmoniya u vzroslykh. Rossiyskie natsionalnye rekomendatsii. [Nosocomial pneumonia in adults. Russian national guidelines]. Moscow, 2016, 176 p.

9. Plan meropriyatiy na 2019-2024 gody po realizatsii Strategii preduprezhdeniya rasprostraneniya antimikrobnoy rezistentnosti v Rossiyskoy Federatsii na period do 2030 goda. [Action plan for 2019-2024 on the implementation of Strategy on Antimicrobial Resistance Prevention in the Russian Federation till 2030]. Approved by Edict no. 604-p by the RF Government as of March 30, 2019. Available: https://www.garant.ru/products/ipo/prime/doc/71677266/.

10. Popov V.A. Comparative characteristics of modern methods for carbapenemase products. Klinicheskaya Mikrobiologiya i Antimikrobnaya Khimioterapiya, 2019, vol. 21, no. 2, pp. 125-133. (In Russ.)

11. Programma SKAT (Strategiya Kontrolya Antimikrobnoy Terapii) pri okazanii statsionarnoy meditsinskoy pomoschi. Rossiyskie klinicheskie rekomendatsii. [SATC Program (Strategy for Anrimicrobial Therapy Control) for in-patient care medical care. Russian guidelines]. Beloborodova V.B., Brusina E.B., Kozlov R.S. et al. The Interregional Non-Governmental Organization Alliance

ской помощи; Межрегиональная ассоциация по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии; Общероссийская общественная организация «Федерация анестезиологов и реаниматологов». М., 2018.

12. Программа СКАТ (Стратегия Контроля Антимикробной Терапии) при оказании стационарной медицинской помощи: Российские клинические рекомендации / Под ред. С. В. Яковлева, Н. И. Брико, С. В. Сидоренко, Д. Н. Проценко. - М.: Перо, 2018. - 156 с.

13. Романов А. В., Дехнич А. В., Сухорукова М. В. и др. Антибиотикорези-стентность нозокомиальных штаммов Staphylococcus aureus в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования МАРАФОН в 2015-2016 // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. - 2019. - Т. 21. в печати.

14. Руднов В. А., Кулабухов В. В. Сепсис-3: обновленные ключевые положения, потенциальные проблемы и дальнейшие практические шаги // Вестник анестезиологии и реаниматологии. - 2016. - Т. 13, № 4. - С. 4-11.

15. Эйдельштейн М. В., Шек Е. А., Сухорукова М. В. и др. Антибиотикоре-зистентность нозокомиальных штаммов Enterobacterales в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования «Марафон 2015-2016». // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. - 2019. - Т. 21, №. 2. - С. 143-155.

16. Шек Е. А., Сухорукова М. В., Эйдельштейн М. В. и др. Антибиотикоре-зистентность, продукция карбапенемаз и генотипы нозокомиальных штаммов Аcinetobacter spp. в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования «Марафон 2015-2016» // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. - 2019. -Т. 21, №. 2. - С. 178-187.

17. Штейнберг Л. Л., Упницкий А. А., Белоусов Ю. Б. Особенности применения карбапенемов в лечении нозокомиальной пневмонии // Лечебное дело. - 2014. - № 1. - C. 27-32.

18. Эйдельштейн М. В., Шек Е. А., Сухорукова М. В. и др. Антибиотикорези-стентность, продукция карбапенемаз и генотипы нозокомиальных штаммов Pseudomonas aeruginosa в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования «Марафон 2015-2016» // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. - 2019. -Т. 21, № 2. - С. 168-178.

19. Яковлев С. В. Суворова М. П., Белобородов В. Б. и др. Распространенность и клиническое значение нозокомиальных инфекций в лечебных учреждениях России: исследование ЭРГИНИ // Антибиотики и химиотерапия. - 2016. - Т. 61. - С. 5-6.

20. Aaftab G. P., Patil A. B., Medegar S. Multivariate analysis of risk factors for ESBL and AmpC producing Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae at a Tertiary Care Hospital in Karnataka: A case control study // Indian Journal

of Microbiology Research. - 2018. - Vol. 5, № 1. - Р. 1-6.

21. Aloush V., Navon-Venezia S., Seigman-Igra Y. et al. Multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa: risk factors and clinical impact // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. - 2006. - Vol. 50, № 1. - Р. 43-48.

22. Arruda E. A. G., Marinho I. S., Boulos M. et al. Nosocomial infections caused by multiresistant Pseudomonas aeruginosa // Infection Control & Hospital Epidemiology. - 1999. - Vol. 20, № 9. - Р. 620-623.

23. Bassetti M., Righi E. New antibiotics and antimicrobial combination therapy for the treatment of gram-negative bacterial infections // Current Opinion in Critical Care. - 2015. - Vol. 21, № 5. - Р. 402-411.

24. Bassetti M., Righi E., Carnelutti A. Bloodstream infections in the intensive care unit // Virulence. - 2016. - Vol. 7, № 3. - Р. 267-279.

25. Biedenbach D. J. Toleman M., Walsh T. R. et al. Analysis of Salmonella spp. with resistance to extended-spectrum cephalosporins and fluoroquinolones isolated in North America and Latin America: report from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program (1997-2004) // Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. - 2006. - Vol. 54, № 1. - Р. 13-21.

26. Bush K., Jacoby G. A., Medeiros A. A. A functional classification scheme for beta-lactamases and its correlation with molecular structure // Antimicrobial agents and chemotherapy. - 1995. - Vol. 39, № 6. - Р. 1211-1233.

27. Callejo-Torre F., Bouza J. M. E., Astigarraga P. O. et al. Risk factors for methicillin-resistant Staphylococcus aureus colonisation or infection in intensive care units and their reliability for predicting MRSA on ICU admission // Europe. - 2016. - Vol. 5. - Р. 1-9.

28. Cao B., Wang H., Sun H. et al. Risk factors and clinical outcomes of nosocomial multi-drug resistant Pseudomonas aeruginosa infections // Journal of Hospital Infection. - 2004. - Vol. 57, № 2. - Р. 112-118.

29. De Pascale G., Montini L., Pennisi M. A., et al. High dose tigecycline in critically ill patients with severe infections due to multidrug-resistant bacteria // Critical Care. - 2014. - Vol. 18, № 3. - Р. R90. doi:10.1186/cc13858.

of Clinical Chemotherapists and Microbiologists, The Russian Association of Surgical Infection Specialists (RASKhl); National Professional Association for Control of Infections Associated with Medical Care; The Interregional Association for Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy; Russian Non-Governmental Organization Federation of Anesthesiologists and Resuscitators, Moscow, 2018.

12. Programma SKÄT (Strategiya Kontrolya Äntimikrobnoy Terapii) pri okazanii statsionarnoy meditsinskoy pomoschi: Rossiyskie klinicheskie rekomendatsii. [SATC Program (Strategy for Anrimicrobial Therapy Control) for in-patient care medical care: Russian clinical guidelines]. S.V. Yakovlev, N.I. Briko, S.V. Sidorenko, D.N. Protsenko, eds., Moscow, Pero Publ., 2018, 156 p.

13. Romanov A.V., Dekhnich A.V., Sukhorukova M.V. et al. Antibiotic resistance in nosocomial strains of Staphylococcus aureus in hospitals of Russia: results of multi-center epidemiological study of MARATHON in 2015-2016. Klinicheskaya Mikrobiologiya i Antimikrobnaya Khimioterapiya, 2019, vol. 21. (in print) (In Russ.)

14. Rudnov V.A., Kulabukhov V.V. Sepsis-3: updated main definitions, potential problems and next practical steps. Messenger of Anesthesiology and Resuscitation, 2016, vol. 13, no. 4, pp. 4-11. (In Russ.)

15. Eydelshteyn M.V., Shek EA., Sukhorukova M.V. et al. Antibiotic resistance in nosocomial strains of Enterobacterales in hospitals of Russia: results of multi-center epidemiological study of MARATHON in 2015-2016. Klinicheskaya Mikrobiologiya i Antimikrobnaya Khimioterapiya, 2019, vol. 21, no. 2, pp. 143-155. (In Russ.).

16. Shek EA., Sukhorukova M.V., Eydelshteyn M.V. et al. Antibiotic resistance, carbapenemase products and genotypes of nosocomial strains of Acinetobacter spp. in hospitals of Russia: results of multi-center epidemiological study of MARATHON in 2015-2016. Klinicheskaya Mikrobiologiya i Antimikrobnaya Khimioterapiya, 2019, vol. 21, no. 2, pp. 178-187. (In Russ.)

17. Shteynberg L.L., Upnitskiy A.A., Belousov Yu.B. Specific use of carbapenems for the treatment of nosocomial pneumonia. Lechebnoye Delo, 2014, no. 1, pp. 27-32. (In Russ.)

18. Eydelshteyn M.V., Shek E.A., Sukhorukova M.V. et al. Antibiotic resistance, carbapenemase products and genotypes of nosocomial strains of Pseudomonas aeruginosa in hospitals of Russia: results of multi-center epidemiological study of MARATHON in 2015-2016. Klinicheskaya Mikrobiologiya i Antimikrobnaya Khimioterapiya, 2019, vol. 21, no. 2, pp. 168-178. (In Russ.)

19. Yakovlev S.V., Suvorova M.P., Beloborodov V.B. et al. Prevalence and clinical value of nosocomial infection in the medical units of Russia: ERGINI study. Antibiotiki i Khimioterapiya, 2016, vol. 61, pp. 5-6. (In Russ.)

20. Aaftab G.P., Patil A.B., Medegar S. Multivariate analysis of risk factors for ESBL and AmpC producing Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae at a Tertiary Care Hospital in Karnataka: A case control study. Indian Journal of Microbiology Research, 2018, vol. 5, no. 1, pp. 1-6.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

21. Aloush V., Navon-Venezia S., Seigman-Igra Y. et al. Multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa: risk factors and clinical impact. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2006, vol. 50, no. 1, pp. 43-48.

22. Arruda E.A.G., Marinho I.S., Boulos M. et al. Nosocomial infections caused by multiresistant Pseudomonas aeruginosa. Infection Control and Hospital Epidemiology, 1999, vol. 20, no. 9, pp. 620-623.

23. Bassetti M., Righi E. New antibiotics and antimicrobial combination therapy for the treatment of gram-negative bacterial infections. Current Opinion in Critical Care, 2015, vol. 21, no. 5, pp. 402-411.

24. Bassetti M., Righi E., Carnelutti A. Bloodstream infections in the intensive care unit. Virulence, 2016, vol. 7, no. 3, pp. 267-279.

25. Biedenbach D.J. Toleman M., Walsh T.R. et al. Analysis of Salmonella spp. with resistance to extended-spectrum cephalosporins and fluoroquinolones isolated in North America and Latin America: report from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program (1997-2004). Diagnostic Microbiology and Infectious Disease, 2006, vol. 54, no. 1, pp. 13-21.

26. Bush K., Jacoby G.A., Medeiros A.A. A functional classification scheme for beta-lactamases and its correlation with molecular structure. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 1995, vol. 39, no. 6, pp. 1211-1233.

27. Callejo-Torre F., Bouza J.M.E., Astigarraga P.O. et al. Risk factors for methicillin-resistant Staphylococcus aureus colonisation or infection in intensive care units and their reliability for predicting MRSA on ICU admission. Europe, 2016, vol. 5, pp. 1-9.

28. Cao B., Wang H., Sun H. et al. Risk factors and clinical outcomes of nosocomial multi-drug resistant Pseudomonas aeruginosa infections. Journal of Hospital Infection, 2004, vol. 57, no. 2, pp. 112-118.

29. De Pascale G., Montini L., Pennisi M.A., et al. High dose tigecycline in critically ill patients with severe infections due to multidrug-resistant bacteria. Critical Care, 2014, vol. 18, no. 3, pp. R90. doi:10.1186/cc13858.

30. Dellit T. H., Owens R. C., McGowan J. E., et al. Infectious Diseases Society of America and the Society for Healthcare Epidemiology of America guidelines for developing an institutional program to enhance antimicrobial stewardship // Clinical Infectious Diseases. - 2007. - Vol. 44, № 2. - P. 159-177.

31. Doumith M., Ellington M. J., Livermore D. M. et al. Molecular mechanisms disrupting porin expression in ertapenem-resistant Klebsiella and Enterobacter spp. clinical isolates from the UK // Journal of Antimicrobial Chemotherapy. -2009. - Vol. 63, № 4. - P. 659-667.

32. Doyle D., Peirano G., Lascols C. et al. Laboratory detection of Enterobacteriaceae that produce carbapenemases // Journal of Clinical Microbiology. - 2012. -Vol. 50, №. 12. - P. 3877-3880.

33. European Centres for Disease Prevention and Control (ECDC). Antimicrobial resistance surveillance in Europe 2011. Annual report of the European Antimicrobial Resistance Surveillance Network (EARS-Net).

34. Falcone M., Russo A., Venditti, M. et al. Considerations for higher doses of daptomycin in critically ill patients with methicillin-resistant Staphylococcus aureus bacteremia // Clinical Infectious Diseases. - 2013. - Vol. 57, № 11. -P. 1568-1576.

35. Garnacho-Montero J., Dimopoulos G., Poulakou G. et al. Task force on management and prevention of Acinetobacter baumannii infections in the ICU // Intensive Care Medicine. - 2015. - Vol. 41, № 12. - P. 2057-2075.

36. Gazin M., Lammens C., Goossens H. et al. Evaluation of GeneOhm VanR and Xpert vanA/vanB molecular assays for the rapid detection of vancomycin-resistant enterococci // European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. - 2012. - Vol. 31, № 3. - P. 273-276.

37. Ghibu L., Miftode E., Teodor A. et al. Risk factors for Pseudomonas aeruginosa infections, resistant to carbapenem // Revista medico-chirurgicala a Societatii de Medici si Naturalisti din Iasi. - 2010. - Vol. 114, № 4. - P. 1012-1016.

38. Giske C. G., Gezelius L., Samuelsen 0. et al. A sensitive and specific phenotypic assay for detection of metallo-ß-lactamases and KPC in Klebsiella pneumoniae with the use of meropenem disks supplemented with aminophenylboronic acid, dipicolinic acid and cloxacillin // Clinical microbiology and infection. - 2011. -Vol. 17, № 4. - P. 552-556.

39. Gniadkowski M. Evolution of extended-spectrum ß-lactamases by mutation // Clinical Microbiology and Infection. - 2008. - Vol. 14. - P. 11-32.

40. Goyal D., Dean N., Neill S. et al. Risk Factors for Community-Acquired Extended-Spectrum Beta-Lactamase - Producing Enterobacteriaceae Infections - A Retrospective Study of Symptomatic Urinary Tract Infections // Open forum infectious diseases. - US : Oxford University Press, 2019. - Vol. 6,

№ 2. - ofy357., https://doi.org/10.1093/ofid/ofy357.

41. Grabein B., Graninger W., Baño J. R. et al. Intravenous Fosfomycin - back to the future. Systematic review and meta-analysis of the clinical literature // Clinical Microbiology and Infection. - 2017. - Vol. 23, № 6. - P. 363-372.

42. Greissl C., Saleh A., Hamprecht A. Rapid detection of OXA-48-like, KPC, NDM, and VIM carbapenemases in Enterobacterales by a new multiplex immunochromatographic test // European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. - 2019. - Vol. 38, № 2. - P. 331-335.

43. Haley C. C., Mittal D., LaViolette et al. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection or colonization present at hospital admission: multivariable risk factor screening to increase efficiency of surveillance culturing // Journal of Clinical Microbiology. - 2007. - Vol. 45, № 9. - P. 3031-3038.

44. Kao K. C., Chen C. B., Hu H. C. et al. Risk factors of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection and correlation with nasal colonization based on molecular genotyping in medical intensive care units: a prospective observational study // Medicine. - 2015. - Vol. 94. - №. 28. doi: 10.1097/MD. 0000000000001100.

45. Liu C., Bayer A., Cosgrove S. E. et al. Clinical practice guidelines by the Infectious Diseases Society of America for the treatment of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections in adults and children // Clinical Infectious Diseases. - 2011. - Vol. 52, № 3. - P. e18-e55.

46. Merchant S., Proudfoot E. M., Quadri H. N. et al. Risk factors for Pseudomonas aeruginosa infections in Asia-Pacific and consequences of inappropriate initial antimicrobial therapy: A systematic literature review and meta-analysis // Journal of Global Antimicrobial Resistance. - 2018. - Vol. 14. - P. 33-44.

47. Nicolas-Chanoine M. H., Vigan M., Laouenan C. et al. Risk factors for carbapenem-resistant Enterobacteriaceae infections: a French case-control-control study // European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. - 2019. - Vol. 38, № 2. - P. 383-393.

48. Ohmagari N., Hanna H., Graviss L. et al. Risk factors for infections with multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa in patients with cancer // Cancer. - 2005. - Vol. 104, № 1. - P. 205-212.

30. Dellit T.H., Owens R.C., McGowan J.E., et al. Infectious Diseases Society of America and the Society for Healthcare Epidemiology of America guidelines for developing an institutional program to enhance antimicrobial stewardship. Clinical Infection Diseases, 2007, vol. 44, no. 2, pp. 159-177.

31. Doumith M., Ellington M.J., Livermore D.M. et al. Molecular mechanisms disrupting porin expression in ertapenem-resistant Klebsiella and Enterobacter spp. clinical isolates from the UK. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 2009, vol. 63, no. 4, pp. 659-667.

32. Doyle D., Peirano G., Lascols C. et al. Laboratory detection of Enterobacteriaceae that produce carbapenemases. Journal of Clinical Microbiology, 2012, vol. 50, no. 12, pp. 3877-3880.

33. European Centres for Disease Prevention and Control (ECDC). Antimicrobial resistance surveillance in Europe 2011. Annual report of the European Antimicrobial Resistance Surveillance Network (EARS-Net).

34. Falcone M., Russo A., Venditti, M. et al. Considerations for higher doses of daptomycin in critically ill patients with methicillin-resistant Staphylococcus aureus bacteremia. Clinical Infection Diseases, 2013, vol. 57, no. 11, pp. 1568-1576.

35. Garnacho-Montero J., Dimopoulos G., Poulakou G. et al. Task force on management and prevention of Acinetobacter baumannii infections in the ICU. Intensive Care Medicine, 2015, vol. 41, no. 12, pp. 2057-2075.

36. Gazin M., Lammens C., Goossens H. et al. Evaluation of GeneOhm VanR and Xpert vanA/vanB molecular assays for the rapid detection of vancomycin-resistant enterococci. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases, 2012, vol. 31, no. 3, pp. 273-276.

37. Ghibu L., Miftode E., Teodor A. et al. Risk factors for Pseudomonas aeruginosa infections, resistant to carbapenem. Revista Medico-Chirurgicala a Societatii de Medici si Naturalisti Din Lasi, 2010, vol. 114, no. 4, pp. 1012-1016.

38. Giske C.G., Gezelius L., Samuelsen 0. et al. A sensitive and specific phenotypic assay for detection of metallo-ß-lactamases and KPC in Klebsiella pneumoniae with the use of meropenem disks supplemented with aminophenylboronic acid, dipicolinic acid and cloxacillin. Clinical Microbiology and Infection, 2011, vol. 17, no. 4, pp. 552-556.

39. Gniadkowski M. Evolution of extended-spectrum ß-lactamases by mutation. Clinical Microbiology and Infection, 2008, vol. 14, pp. 11-32.

40. Goyal D., Dean N., Neill S. et al. Risk Factors for Community-Acquired Extended-Spectrum Beta-Lactamase - Producing Enterobacteriaceae Infections - A Retrospective Study of Symptomatic Urinary Tract Infections. Open forum infectious diseases. US, Oxford University Press, 2019, vol. 6, no. 2, ofy357., https://doi.org/10.1093/ofid/ofy357.

41. Grabein B., Graninger W., Baño J.R. et al. Intravenous Fosfomycin - back to the future. Systematic review and meta-analysis of the clinical literature. Clinical Microbiology and Infection, 2017, vol. 23, no. 6, pp. 363-372.

42. Greissl C., Saleh A., Hamprecht A. Rapid detection of OXA-48-like, KPC, NDM, and VIM carbapenemases in Enterobacterales by a new multiplex immunochromatographic test. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases, 2019, vol. 38, no. 2, pp. 331-335.

43. Haley C.C., Mittal D., LaViolette et al. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection or colonization present at hospital admission: multivariable risk factor screening to increase efficiency of surveillance culturing. Journal of Clinical Microbiology, 2007, vol. 45, no. 9, pp. 3031-3038.

44. Kao K.C., Chen C.B., Hu H.C. et al. Risk factors of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection and correlation with nasal colonization based on molecular genotyping in medical intensive care units: a prospective observational study. Medicine, 2015, vol. 94, no. 28. doi: 10.1097/MD.0000000000001100,

45. Liu C., Bayer A., Cosgrove S.E. et al. Clinical practice guidelines by the Infectious Diseases Society of America for the treatment of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections in adults and children. Clinical Infection Diseases, 2011, vol. 52, no. 3, pp. e18-e55.

46. Merchant S., Proudfoot E.M., Quadri H.N. et al. Risk factors for Pseudomonas aeruginosa infections in Asia-Pacific and consequences of inappropriate initial antimicrobial therapy: A systematic literature review and meta-analysis. Journal of Global Antimicrobial Resistance, 2018, vol. 14, pp. 33-44.

47. Nicolas-Chanoine M.H., Vigan M., Laouenan C. et al. Risk factors for carbapenem-resistant Enterobacteriaceae infections: a French case-control-control study. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases, 2019, vol. 38, no. 2, pp. 383-393.

48. Ohmagari N., Hanna H., Graviss L. et al. Risk factors for infections with multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa in patients with cancer. Cancer, 2005, vol. 104, no. 1, pp. 205-212.

49. Paramythiotou E., Lucet J.C., Timsit J.F. et al. Acquisition of multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa in patients in intensive care units: role of antibiotics

49. Paramythiotou E., Lucet J. C., Timsit J. F. et al. Acquisition of multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa in patients in intensive care units: role of antibiotics with antipseudomonal activity // Clinical infectious diseases. - 2004. - Vol. 38, № 5. - P. 670-677.

50. Predic M., Delano J. P., Tremblay E. et al. risk factors for carbapenem-resistant Enterobacteriaceae infection // American Journal of Infection Control. - 2017. -Vol. 45, № 6. - P. S14. DOI: https://doi.org/10.1016Zj.ajic.2017.04.271.

51. Queenan A. M., Bush K. Carbapenemases: the versatile ß-lactamases // Clinical

Microbiology Reviews. - 2007. - Vol. 20, № 3. - P. 440-458.

52. Red Book. 29 Edition; American Academy of Pediatrics. - 2012.

53. Rhodes A., Evans L. E., Alhazzani W. et al. Surviving sepsis campaign: international guidelines for management of sepsis and septic shock: 2016 // Intensive Care Medicine. - 2017. - Vol. 43, № 3. - P. 304-377.

54. Sfeir M. M., Hayden J. A., Fauntleroy K. A. et al. EDTA-modified carbapenem Inactivation method: a phenotypic method for detecting metallo-ß-lactamase-producing Enterobacteriaceae // Journal of Clinical Microbiology. -2019. - Vol. 57, № 5. doi:10.1128/JCM.01757-18.

55. Soraas A., Sundsfjord A., Sandven I. et al. Risk factors for community-acquired urinary tract infections caused by ESBL-producing Enterobacteriaceae -a case-control study in a low prevalence country // PloS one. - 2013. - Vol. 8, № 7. - P. e69581. doi:10.1371/journal.pone.0069581.

56. Taccone F. S., Laterre P. F., Spapen H. et al. Revisiting the loading dose of amikacin for patients with severe sepsis and septic shock // Critical Care. -2010. - Vol. 14, № 2. - P. R53. https://doi.org/10.1093/cid/ciq146.

57. Tuon F. F., Kruger M., Terreri M. et al. Klebsiella ESBL bacteremia-mortality and risk factors // Brazilian Journal of Infectious Diseases. - 2011. - Vol. 15, № 6. - P. 594-598.

58. Udy A. A., Baptista J. P., Lim, N. L. et al. Augmented renal clearance in the ICU: results of a multicenter observational study of renal function in critically ill patients with normal plasma creatinine concentrations // Critical Care Medicine. - 2014. - Vol. 42, № 3. - P. 520-527.

59. Vading M. Samuelsen 0., Haldorsen B. et al. Comparison of disk diffusion, Etest and VITEK2 for detection of carbapenemase-producing Klebsiella pneumoniae with the EUCAST and CLSI breakpoint systems // Clinical Microbiology and Infection. - 2011. - Vol. 17, № 5. - P. 668-674.

60. Van der Zwaluw K., de Haan K., Pluister A. et al. The carbapenem inactivation method (CIM), a simple and low-cost alternative for the Carba NP test to assess phenotypic carbapenemase activity in gram-negative rods // PloS one. - 2015. -Vol. 10, № 3. - P. e0123690.

61. Van Dijk K. et al. A disc diffusion assay for detection of class A, B and OXA-48 carbapenemases in Enterobacteriaceae using phenyl boronic acid, dipicolinic acid and temocillin // Clinical Microbiology and Infection. - 2014. - Vol. 20, № 4. - P. 345-349.

62. Wener K. M. Schechner V., Gold H. S. et al. Treatment with fluoroquinolones or with ß-lactam-ß-lactamase inhibitor combinations is a risk factor for isolation of extended-spectrum-ß-lactamase-producing Klebsiella species in hospitalized patients // Antimicrobial agents and chemotherapy. - 2010. - Vol. 54, № 5. doi:10.1128/AAC.01131-09.

63. WHO: Antimicrobial resistance: global report on surveillance, 2014.

64. Willemsen I. Overdevest I., al Naiemi N. et al. New diagnostic microarray (Check-KPC ESBL) for detection and identification of extended-spectrum beta-lactamases in highly resistant Enterobacteriaceae // Journal of Clinical Microbiology. - 2011. - Vol. 49, № 8. - P. 2985-2987.

65. Yu Z. Pang X., Wu X. et al. Clinical outcomes of prolonged infusion (extended infusion or continuous infusion) versus intermittent bolus of meropenem in severe infection: a meta-analysis // PloS one. - 2018. - Vol. 13, № 7. - P. e0201667.

66. Zaha D. C., Kiss R., Hegedüs C. et al. Recent Advances in Investigation, Prevention, and Management of Healthcare-Associated Infections (HAIs): resistant multidrug strain colonization and its risk factors in an intensive care unit of a university hospital // BioMed Research International. - 2019. doi: 10.1155/2019/2510875. eCollection 2019.

67. Zamyatin M., Gusarov V., Petrova N. et al. Results of antimicrobial stewardship programme implementation in multidisciplinary hospital // ICU Management & Practice. 2018. - Vol. 18, № 2. - P. 125-127.

with antipseudomonal activity. Clinical Infection Diseases, 2004, vol. 38, no. 5, pp.670-677.

50. Predic M., Delano J.P., Tremblay E. et al. risk factors for carbapenem-resistant Enterobacteriaceae infection. American Journal of Infection Control, 2017, vol. 45, no. 6, pp. S14. DOI: https://doi.org/10.10167j.ajic.2017.04.271.

51. Queenan A.M., Bush K. Carbapenemases: the versatile ß-lactamases. Clinical Microbiology Reviews, 2007, vol. 20, no. 3, pp. 440-458.

52. Red Book. 29 Edition; American Academy of Pediatrics. 2012.

53. Rhodes A., Evans L.E., Alhazzani W. et al. Surviving sepsis campaign: international guidelines for management of sepsis and septic shock: 2016. Intensive Care Medicine, 2017, vol. 43, no. 3, pp. 304-377.

54. Sfeir M.M., Hayden J.A., Fauntleroy KA. et al. EDTA-Modified Carbapenem Inactivation Method: a Phenotypic Method for Detecting Metallo-ß-Lactamase-Producing Enterobacteriaceae. Journal of Clinical Microbiology, 2019, vol. 57, no. 5. doi:10.1128/JCM.01757-18.

55. Soraas A., Sundsfjord A., Sandven I. et al. Risk factors for community-acquired urinary tract infections caused by ESBL-producing Enterobacteriaceae -a case-control study in a low prevalence country. PloS one, 2013, vol. 8, no. 7, pp. e69581. doi:10.1371/journal.pone.0069581.

56. Taccone F.S., Laterre P.F., Spapen H. et al. Revisiting the loading dose of amikacin for patients with severe sepsis and septic shock. Critical Care, 2010, vol. 14, no. 2, pp. R53. https://doi.org/10.1093/cid/ciq146.

57. Tuon F.F., Kruger M., Terreri M. et al. Klebsiella ESBL bacteremia-mortality and risk factors. Brazilian Journal of Infectious Diseases, 2011, vol. 15, no. 6, pp. 594-598.

58. Udy A.A., Baptista J.P., Lim, N.L. et al. Augmented renal clearance in the ICU: results of a multicenter observational study of renal function in critically ill patients with normal plasma creatinine concentrations. Critical Care Medicine,

2014, vol. 42, no. 3, pp. 520-527.

59. Vading M. Samuelsen 0., Haldorsen B. et al. Comparison of disk diffusion, Etest and VITEK2 for detection of carbapenemase-producing Klebsiella pneumoniae with the EUCAST and CLSI breakpoint systems. Clinical Microbiology and Infection, 2011, vol. 17, no. 5, pp. 668-674.

60. Van der Zwaluw K., de Haan K., Pluister A. et al. The carbapenem inactivation method (CIM), a simple and low-cost alternative for the Carba NP test to assess phenotypic carbapenemase activity in gram-negative rods. PloS one,

2015, vol. 10, no. 3, pp. e0123690.

61. Van Dijk K. et al. A disc diffusion assay for detection of class A, B and OXA-48 carbapenemases in Enterobacteriaceae using phenyl boronic acid, dipicolinic acid and temocillin. Clinical Microbiology and Infection, 2014, vol. 20, no. 4, pp. 345-349.

62. Wener K.M., Schechner V., Gold H.S. et al. Treatment with fluoroquinolones or with ß-lactam-ß-lactamase inhibitor combinations is a risk factor for isolation of extended-spectrum-ß-lactamase-producing Klebsiella species in hospitalized patients. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2010, vol. 54, no. 5. doi:10.1128/AAC.01131-09.

63. WHO: Antimicrobial resistance: global report on surveillance, 2014.

64. Willemsen I. Overdevest I., al Naiemi N. et al. New diagnostic microarray (Check-KPC ESBL) for detection and identification of extended-spectrum beta-lactamases in highly resistant Enterobacteriaceae. Journal of Clinical Microbiology, 2011, vol. 49, no. 8, pp. 2985-2987.

65. Yu Z. Pang X., Wu X. et al. Clinical outcomes of prolonged infusion (extended infusion or continuous infusion) versus intermittent bolus of meropenem in severe infection: A meta-analysis. PloS one, 2018, vol. 13, no. 7, pp. e0201667.

66. Zaha D.C., Kiss R., Hegedüs C. et al. Recent Advances in Investigation, Prevention, and Management of Healthcare-Associated Infections (HAIs): Resistant Multidrug Strain Colonization and Its Risk Factors in an Intensive Care Unit of a University Hospital. BioMed Research International, 2019. doi: 10.1155/2019/2510875. eCollection 2019.

67. Zamyatin M., Gusarov V., Petrova N. et al. Results of antimicrobial stewardship programme implementation in multidisciplinary hospital. ICU Management & Practice, 2018, vol. 18, no. 2, pp. 125-127.

ИНФОРМАЦИЯ ОБ АВТОРАХ:

Шлык Ирина Владимировна

ФГБОУВПО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И. П. Павлова»,

доктор медицинских наук, профессор кафедры анестезиологии и реаниматологии, заместитель главного врача по анестезиологии и реаниматологии, координатор рабочей группы, заместитель президента и председатель организационно-экономического комитета Ассоциации анестезиологов-реаниматологов. 197022, Санкт-Петербург, ул. Льва Толстого, д. 6-8. E-mail: irina_shlyk@mail.ru (для корреспонденции)

INFORMATION ABOUT THE AUTHORS: Irina V. Shlyk

Pavlov First Saint Petersburg State Medical University, Doctor of Medical Sciences,

Professor of Anesthesiology and Intensive Care Department,

Deputy Chief Doctor for Anaesthesiology

and Intensive Care, Coordinator of Working Group,

Deputy President and Chair of Organization Economic

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Committee of Association of Anesthesiologists

and Resuscitators,

6-8, Lva Tolstogo St.,

St. Petersburg 197022.

Email: irina_shlyk@mail.ru (for correspondence)

Аннотация научной статьи по клинической медицине, автор научной работы — Белобородов В.Б., Гусаров В.Г., Дехнич А.В., Замятин М.Н., Зубарева Н.А.

Похожие темы научных работ по клинической медицине , автор научной работы — Белобородов В.Б., Гусаров В.Г., Дехнич А.В., Замятин М.Н., Зубарева Н.А.