CC BY
28
МЕДИКО-БИОЛОГИЧЕСКИЕ НАУКИ
УДК 547.262:618.29-008.9
МЕТАБОЛИЧЕСКИЙ ИМПРИНТИНГ ПРЕНАТАЛЬНОЙ АЛКОГОЛЬНОЙ ИНТОКСИКАЦИИ
Валерий Евгеньевич ВЫСОКОГОРСКИЙ, Наталья Михайловна КУРЧ
ГБОУ ВПО Омская государственная медицинская академия Минздрава России 644010, г. Омск, ул. Ленина, 12
Проведено исследование влияния пренатальной алкогольной интоксикации на биохимические показатели крови и поджелудочной железы потомства в различные сроки постнатального периода (15, 30 и 60 сутки). В результате воздействия пренатальной алкогольной интоксикации уровень глюкозы и глюкозаминов нарушается во все исследуемые сроки, содержание триглицеридов восстанавливается к 30 суткам, гликопротеинов и глюкуроно-вой кислоты в поджелудочной железе - к 60 суткам, а уровень инсулина, глюкагона, активность амилазы в плазме крови и содержание белковых и небелковых сульфгидрильных групп в поджелудочной железе в ранние сроки соответствует показателям контрольной группы, но значительно изменяется на 60 сутки постнатального периода. Полученные данные свидетельствуют о том, что пренатальная алкогольная интоксикация не только существенно влияет на метаболические показатели поджелудочной железы и плазмы крови в ранние сроки пост-натального периода, но и оказывает на них модифицирующее воздействие при достижении репродуктивного периода онтогенеза.
Ключевые слова: пренатальная алкогольная интоксикация, метаболический импринтинг, метаболизм, углеводный обмен, поджелудочная железа.
Период внутриутробного развития является определяющим в развитии метаболических и морфологических нарушений, развивающихся в отдаленный период жизни. Многочисленные данные, подтверждающие это явление, послужили обоснованием для развития концепции «им-принтинга», «фетального программирования» [4, 11, 16].
Метаболический импринтинг рассматривается как адаптивный феномен, развивающийся в отдаленные периоды жизни в результате воздействия на плод гипоксии, стресса, дисбаланса нутриентов и других факторов. Нарушение питания плода приводит к изменению показателей развития нервной системы [20], снижению числа клеток поджелудочной железы и нарушению секреции инсулина [15], развитию ожирения после достижения половой зрелости [18]. Нарушение метаболизма глюкозы в период внутриутробного развития может вызвать сахарный диабет 2 типа во взрослом возрасте [17].
Исследование механизма развития метаболического импринтинга привело к развитию представлений о важной роли нейроэндокринных нарушений и участии в этом процессе гипота-ламо-гипофизарно-адреналовой системы [7, 8]. В последние годы появились убедительные данные о нарушении эпигенетических механизмов
[12, 21]. К факторам, вызывающим у взрослых такие распространенные заболевания, как атеросклероз, диабет, ишемическая болезнь сердца, относятся внутриутробный недостаток кислорода, дефицит компонентов питания, различные интоксикации [4, 11], в том числе алкогольная [5]. Установлено, что хроническая патология печени самок крыс различного происхождения, в частности алкогольного, обусловливает рождение физиологически незрелого потомства [1, 4]. Однако отсутствуют убедительные биохимические подтверждения вышеуказанных клинических наблюдений и эпидемиологических исследований, а также четкие представления о механизме нарушений отдельных звеньев метаболизма в результате воздействия пренатальной алкогольной интоксикации.
Цель исследования: выяснить характер метаболических нарушений в поджелудочной железе при воздействии пренатальной алкогольной интоксикации в различные сроки постнатального онтогенеза.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
Исследование проведено на 310 потомках белых беспородных крыс. С целью моделирования пренатальной алкогольной интоксикации поло-
Высокогорский В.Е. - д.м.н., проф. кафедры биохимии, е-таП: vve-bio@mail.ru Курч Н.М. - к.б.н., старший преподаватель кафедры биохимии, е-таП: nkurch@mail.ru
возрелым самкам ежесуточно интрагастрально вводили раствор этанола в дозе 4 г/кг массы животного в течение всего срока гестации. Потомство этих самок составило группу «Алкоголь». Другая группа самок получала соответствующий объем физиологического раствора (группа «Контроль»). Животных выводили из эксперимента путем цервикальной дислокации под эфирным наркозом в возрасте 15, 30 и 60 суток с соблюдением принципов гуманности, изложенных в Европейской конвенции (Страсбург, 1986, ETS № 123).
Для биохимического исследования использовали сыворотку крови и супернатанты гомогена-тов поджелудочной железы. Уровень глюкозы измеряли глюкозооксидазным методом с помощью набора «Глюкоза-ФКД» (Россия). Для определения активности панкреатической амилазы использовали набор «Панкреатическая а-амилаза» («Витал Диагностикс СПб», Россия), содержания триглицеридов - набор «Triglicerides liquid MONO reagent» («Hospitex diagnostics», Италия), инсулина - набор «Rat Insulin ELISA Kit», глю-кагона - «Rat Glucagon ELISA Kit» (CUSABIO BIOTECH Co., Ltd, Китай). Содержание гексоз гликопротеинов поджелудочной железы определяли орциновым методом [3], глюкуроновой кислоты и гликозаминогликанов - методом [10] (осаждение этанолом и определение в надосадке содержания глюкуроновой кислоты с помощью карбазольной реакции Дише, в осадке - глико-заминогликанов гидролизом трихлоруксусной кислотой с последующей фотометрией). Концентрацию молочной кислоты в печени измеряли по реакции с параоксидифенилом, пирувата - модифицированным методом Умбрайта [2]. Концентрацию восстановленного глутатиона, количество доступных SH-групп определяли по методу J. Sedlak [19].
Статистический анализ данных проводили с использованием непараметрического критерия Манна-Уитни. Параметры, приводимые в таблицах, имеют следующие обозначения: Ме - меди-
ана, Q1 - нижний квартиль, Q3 - верхний квартиль. Критическое значение уровня значимости принималось равным 0,05.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
Хорошо известным проявлением фетального программирования является низкая масса тела новорожденных, и при воздействии пренатальной алкогольной интоксикации масса тела потомства крыс была существенно ниже, чем в контрольной группе (табл. 1).
По характеру изменений все метаболические показатели можно разделить на три группы. Первая группа - значительное нарушение биохимического маркера во все наблюдаемые сроки до по-ловозрелости потомства, что отражает, вероятно, тяжесть пренатального воздействия алкогольной интоксикации. Наиболее длительно и значительно изменялись показатели углеводного обмена (табл. 2). Эти нарушения имели противоположную направленность: если уровень глюкозы значительно снижался, то содержание гликозамин-гликанов, наоборот, существенно увеличивалось, особенно в ранний постнатальный период. В течение всего периода наблюдений установлено снижение в печени концентрации пировиноград-ной кислоты и значительное увеличение содержания лактата.
Уровень второй группы метаболитов - три-глицеридов, гексоз гликопротеинов и глюкуроно-вой кислоты - существенно изменялся в ранние сроки постнатального периода, но затем восстанавливался к 60 суткам после рождения (см. табл. 2). Нарушения содержания данных метаболитов в плазме крови и ткани поджелудочной железы свидетельствуют, вероятно, об адаптивном характере этих сдвигов, нормализующихся при достижении репродуктивного возраста.
Особый интерес представляет третья группа метаболитов, уровень которых не изменялся существенно в ранние сроки постнатального периода, но появлялись значительные отклонения
Таблица 1
Масса тела животных и поджелудочной железы, Ме (Q1-Q3)
Показатель Группа Возраст животных
15 суток 30 суток 60 суток
Масса животного, г Контроль 20,5 (15,7-21,7) 38,0 (31,3-49,0) 85,0 (73,0-100,0)
Алкоголь 18,00 (15,8-20,2) 26,0 (21,7-37,1)* 67,8 (52,1-80,0)*
Масса поджелудочной железы, мг Контроль 20,5 (15,7-21,7) 38,0 (31,3-49,0) 85,0 (73,0-100,0)
Алкоголь 18,00 (15,8-20,2)* 26,0 (21,7-37,1)* 67,8 (52,1-80,0)*
Примечание. Здесь и в табл. 2 обозначены статистически значимые отличия от величин соответствующих показателей группы контроля: * - прир < 0,05, ** - прир < 0,01.
Таблица 2
Биохимические показатели плазмы крови и ткани поджелудочной железы в постнатальном онтогенезе,
Ме
Показатель (содержание, активность) Группа Возраст животных
15 суток 30 суток 60 суток
Глюкоза, ммоль/л Контроль 5,74 (5,14-6,39) 6,29 (5,75-9,69) 7,99 (7,00-8,19)
Алкоголь 4,27 (3,55-5,39)* 4,60 (3,72-5,95)* 5,52 (4,84-6,14)*
Гликозамингликаны, мкг/г белка Контроль 7,03 (6,28-8,74) 5,28 (3,56-8,83) 4,45 (3,71-7,30)
Алкоголь 48,84 (27,58-76,93)** 14,12 (10,69-16,74)** 14,80 (10,41-19,04)**
Пируват, ммоль/г Контроль 0,26 (0,22-0,26) 0,23 (0,23-0,26) 0,46 (0,37-0,48)
Алкоголь 0,16 (0,14-0,21)** 0,14 (0,12-0,19)** 0,20 (0,16-0,31)**
Лактат, ммоль/г Контроль 3,96 (3,33-4,23) 3,60 (2,61-4,23) 3,87 (3,06-4,41)
Алкоголь 5,22 (4,86-5,68)** 5,13 (3,78-5,49)** 5,22 (4,59-5,68)**
Триглицериды, ммоль/л Контроль 1,80 (1,24-1,91) 0,96 (0,90-1,10) 0,94 (0,65-1,06)
Алкоголь 2,43 (1,77-3,30)* 1,26 (1,19-1,64)* 0,96 (0,76-1,10)
Гексозы гликопротеинов, мг/г белка Контроль 9,15 (7,00-11,15) 7,84 (4,99-12,59) 10,12 (9,21-11,14)
Алкоголь 11,27 (11,27-16,33)** 27,17 (21,33-31,88)** 10,64 (8,22-12,35)
Глюкуроновая кислота, мкг/г белка Контроль 2,01 (1,65-2,30) 2,82 (2,23-3,65) 2,28 (1,79-2,64)
Алкоголь 9,28 (7,30-12,01)** 22,12 (10,89-29,02)** 2,16 (1,88-2,53)
Панкреатическая амилаза, мкмоль/(схл) Контроль 1,38 (1,28-1,53) 1,40 (1,28-1,53) 1,28 (1,18-1,53)
Алкоголь 1,28 (1,03-1,38) 1,48 (1,33-1,57) 1,67 (1,57-1,72)**
Инсулин, нМЕ/мл Контроль 200,2 (104,3-593,5) 268,7 (209,5-548,3) 449,5 (291,0-802,8)
Алкоголь 226,1 (150,1-638,7) 650,7 (478,4-840,9)* 879,7 (812,3-909,1)*
Глюкагон, нг/мл Контроль 24,9 (14,3-32,3) 34,9 (34,2-39,7) 74,1 (67,1-80,4)
Алкоголь 27,7 (10,8-46,6) 34,3 (15,2-48,5) 34,3 (31,6-49,6)**
Сульфгидрильные группы белков, мкмоль/г белка Контроль 29,51 (20,85-31,64) 31,29 (24,78-35,28) 27,69 (22,85-33,33)
Алкоголь 24,92 (21,30-26,91) 20,34 (19,36-21,42)** 18,96 (15,29-21,32)**
Небелковые сульфгидрильные группы, мкмоль/г белка Контроль 19,85 (19,29-26,90) 22,35 (15,74-23,85) 22,73 (18,27-22,78)
Алкоголь 18,42 (14,85-23,85) 11,12 (9,15-13,59)** 14,72 (10,26-17,52)**
от показателей контрольной группы животных в более поздние сроки и при достижении половоз-релости потомства самок, алкоголизированных во время беременности. Данный характер нарушений наиболее характерен для биохимических маркёров состояния поджелудочной железы. Так, активность панкреатической амилазы в сыворотке крови повышалась только в возрасте 60 суток, в этот же срок при низком уровне гликемии наблюдалось уменьшение содержания глюкагона и увеличение концентрации инсулина более чем в 2 раза (см. табл. 2). Такие изменения уровня гормонов подтверждают представления об участии эндокринной системы в реализации «фетального программирования» [7, 8, 15] и отражают развитие в этот период гормональной дизрегуляции.
Изменения активности амилазы и уровня гормонов поджелудочной железы сопровождались снижением содержания в ткани этой железы фруктозамина (в 2,1-2,8 раза, р = 0,036), что может быть проявлением стойкой гипогликемии, развивающейся в результате пренатальной алкоголизации.
Как важнейший патогенетический фактор развития метаболических нарушений при воздействии алкогольной интоксикации исследовали уровень сульфгидрильных групп. Если в раннем возрасте потомства (15 суток) не наблюдалось существенных изменений величины данного показателя, то в более поздний срок развития потомства снижалось содержание как белковых, так и небелковых сульфгидрильных групп в ткани поджелудочной железы (см. табл. 2).
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Таким образом, в результате проведенных исследований установлены значительные различия в метаболических реакциях потомства пре-натально алкоголизированных крыс. Если одни метаболические нарушения наблюдаются во все сроки исследования или сохраняются только в ранний период развития, то уровень гормонов поджелудочной железы и содержание в ней сульфгидрильных групп изменяются только в более поздние сроки после рождения. Манифеста-
ция нарушений биохимических показателей при достижении репродуктивного возраста является, вероятно, результатом развития дизрегуляции после пренатального воздействия алкогольной интоксикации во внутриутробном периоде, и это можно рассматривать как «метаболический импринтинг». Полученные результаты подтверждают представления С.И. Колесникова с соавт. [4] об импринтинге в действии токсикантов, о том, что внутриутробные интоксикации вызывают стойкие нарушения, которые проявляются во взрослом организме на различных уровнях, в том числе на регуляторном и метаболическом.
Обнаруженное существенное увеличение содержания лактата в печени, указывающее на преобладание анаэробных процессов, возникает, очевидно, вследствие повреждения митохондрий при воздействии алкогольной интоксикации, так как именно нарушения функций митохондрий являются самым первым проявлением алкогольной интоксикации [9] и вызывают значительные нарушения различных метаболических процессов в организме. Нельзя исключить, что это обусловлено чрезмерной продукцией активных форм кислорода митохондриями плаценты, их освобождением в кровь плода и воздействием на митохондриальную ДНК потомства [12]. Кроме того, известно, что в результате алкогольной интоксикации развиваются эпигенетические нарушения [13, 14].
Нарушения окислительных процессов, углеводного обмена в результате пренатальной алкогольной интоксикации во внутриутробном периоде приводят к развитию дизрегуляции во взрослом организме. Известно, что латентный патологический след может быть «местом наименьшего сопротивления» [6]. Несмотря на то что патогенные воздействия прекращены, в репродуктивном возрасте проявляется недостаточность адаптационных механизмов, и «транзи-торная дизрегуляция» по Г.Н. Крыжановскому приводит к развитию «дизрегуляционной патологии». Стойкие нарушения гликемии пренатально алкоголизированного потомства можно рассматривать как биохимический маркер дизрегуля-ционной патологии, проявляющейся во взрослом организме.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Брюхин Г.В., Сизоненко М.Л. Роль экспериментального поражения печени матери в развитии физиологической незрелости потомства // Бюл. экс-пер. биол. мед. 2012. 154. (11). 544-546.
2. Горячковский А.М. Клиническая биохимия в лабораторной диагностике. Одесса: Экология, 2005. 616 с.
3. Камышников В.С. Справочник по клинико-биохимическим исследованиям и лабораторной диагностике. М., 2004. 920 с.
4. Колесников С.И., Семенюк А.В., Грачев С.В. Импринтинг действия токсикантов в эмриогенезе. М.: Медицинское информационное агентство, 1999. 263 с.
5. Коннор П.Д., Стрейгут А.П. Последствия воздействия алкоголя на внутриутробный плод, проявляющиеся на протяжении всей жизни // Вопр. наркол. 1999. (1). 32-39.
6. Крыжановский Г.Н. Регуляция и дизрегуляция в живых системах // Актуальные проблемы транспортной медицины. 2008. 1. (11). 12-16.
7. Нетребенко О.К. Отделенные последствия характера вскармливания детей на ранних этапах развития // Мед. научный учебно-методич. журн. 2005. (29). 3-20.
8. Пивина С.Г., Акулова В.К., Ордян Н.Э. Изменение активности гипоталамо-гипофизарно-адре-нокортикальной системы у пренатально стресси-рованных самок крыс в процессе старения // Бюл. экспер. биол. мед. 2007. 143. (6). 686-689.
9. Теплова В.В., Белослудцев К.Н., Белослудце-ва Н.В., Холмухамедов Э.Л. Митохондрии в гепа-тотоксичности этанола // Биофизика. 2010. 55. (6). 1038-1047.
10. Шараев П.Н., Иванов В.Г., Рябов В.И. и др. Биохимические методы анализа показателей обмена биополимеров соединительной ткани. Ижевск, 1990. 15 с.
11. Barker D.J.P. Mothers, babies and health in later life. Edinburgh: Harcourt Brace & Co Ltd, 1998. 375 p.
12. Bird A. DNA methylation patterns and epige-netic memory // Genes Dev. 2002. 16. (1). 6-21.
13. Cooney C.A., Dave A.A., Wolff G.L. Maternal methyl supplements in mice affect epigenetic variation and DNA methylation of offspring // J. Nutr. 2002. 132. (8 Suppl.). 2393S-2400S.
14. Friso S., Choi S-W. Gene-nutrient interaction and DNA methylation // J. Nutr. 2002. 132. (8 Suppl.). 2382S-2387S.
15. Hill D.J., Duville B. Pancreatic development and adult diabetes // Pediatr. Res. 2000. 48. 269-274.
16. Lucas A., Bock G.R., Wheman J. et al. Programming by early nutrition in man. Chichester: John Wiley & Sons, 1991. 38-55.
17. Nissen P.M., Nebel C., Oksbjerg N., Bertram H.C. Metabolomics reveals relationship between plasma inositols and birth weight: possible markers for fetal programming of type 2 diabetes // J. Biomed. Biotechnol. 2011. 2011. ID 378268.
18. Park K.S., Kim S.K., Kim M.S. et al. Fetal and early postnatal protein malnutrition cause long-term changes in rat liver and muscle mitochondria // J. Nutr. 2003.133. 3085-3090.
19. Sedlak J., Lindsey R. Estimation of total, protein-bound and nonprotein sulfhydryl groups in tissue with Ellmans reagent // Anal. Biochem. 1968. 25. (2). 192-205.
20. Smart J. Undernutrition, learning and memory: review of the experimental studies. London: John Libbey, 1986. 74-78.
21. Waterland R., Garza C. Early postnatal nutrition determines adult pancreatic glucose-responsive insulin secretion and islet gene expression in rats // J. Nutr. 2002. 132. 357-364.
METABOLIC IMPRINGTING IN FETAL ALCOHOLIC INTOXICATION
Valeriy Yevgenyevich VYSOKOGORSKIY, Natalya Mikhaylovna KURCH
Federal Budgetary Educational Facility of Higher Occupational Education «Omsk State Medical Academy» of Minzdrav of Russia 644010, Omsk, Lenin str., 12
Fetal alcohol intoxication effect on offspring biochemical blood and pancreas parameters at different terms of postnatal period (15, 30 and 60 days) has been investigated. Dynamics differences in biochemical parameters of the offspring tissue were found: glucose and glycosamine contents changed in all studied terms; triglycerides level restored to 30 days, glycoproteins and glucuronic acid levels - to 60 days; plasmic insulin, glucagon levels, amylase activity and pancreas protein and non-protein sulfhydryl groups content at the early terms corresponded to the control group but changed considerably on a 60 day of a postnatal period. The data obtained suggest that prenatal alcohol intoxication has a significant impact on the pancreas and blood metabolic parameters not only in the early postnatal period but also renders the inoculation effect when achieving the reproductive period of ontogenesis.
Key words: prenatal alcohol intoxication, metabolic imprinting, metabolism, carbohydrate metabolism, pancreas.
Vysokogorskiy V.Ye. - professor, doctor of medical sciences, professor of the chair of biochemistry, e-mail: vve-bio@mail.ru
Kurch N.M. - candidate of biological sciences, assistant professor of the chair of biochemistry, e-mail: nkurch@mail.ru
