CC BY
25
ДЕЯКІ ПОКАЗНИКИ ИРЕКАЛІКРЕЇН-КАЛІКРЕЇНОВОЇ СИСТЕМИ КРОВІ ТА ЇХ КЛІНІЧНЕ ЗНАЧЕННЯ У ХВОРИХ НА ДИФТЕРІЮ
В.П. Малий, O.K. Полукчи, П.В. Нартов
Харківський національний університет ім. В.Н. Каразіна
РЕЗЮМЕ
Обстежено 90 хворих на дифтерію ротоглотки. Встановлено, що на протязі захворювання відбувається активізація прекалікреїн-калікреїнової системи. Найбільші зміни встановлено у хворих на тяжкі форми захворювання, в терапії яких доцільно використовувати інгібітори протеолізу.
КЛЮЧОВІ СЛОВА: дифтерія, прекалікреїн-калікреїнова система, калікреїн
SOME INDICES OF PREKALLIKREINE-KALLIKREINE BLOOD SYSTEM AND ITS IMPORTANCE DIPHTHERIA PATIENTS
VP. Maly, O.K. Polukchy, P. V. Nartov
The Karazin National University of Kharkov
SUMMARY
90 patients with diphtheria of stomatopharynx were examined. It was determined that activation of prekal-likreine-kallikreine system took place during the course of disease. Patients with severe forms of the disease, for whose therapy it is necessary to use ingibitors of proteolysis, had the most significant changes.
KEY WORDS', diphtheria, prekallikreine-kallikreine system, kallikreine
УДК: 616.71-018.46:612.014.48
МЕТАБОЛИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ КОСТНОМОЗГОВЫХ КЛЕТОК НА ЭТАПАХ ВОССТАНОВЛЕНИЯ ГЕМОПОЭЗА У
ЖИВОТНЫХ ПОСЛЕ ОБЛУЧЕНИЯ И МИЕЛОТРАНСПЛАН-ТАЦИИ
ЕЛ. Романова
Харьковский национальный университет им. В.Н. Каразина
РЕЗЮМЕ
Исследована интенсивность метаболизма миелокариоцитов в период с 10-х по 90-е сутки после летального облучения мышей и трансплантации клеток костного мозга per se, а также обогащенных тимоци-тами. Изучены активность ферментов энергетического обмена и состояние системы перекисное окисление— антиокислительная защита миелокариоцитов. Показано, что на этапе интенсивного восстановления клеточности костного мозга происходит значительное повышение активности ферментов миелокариоцитов. В это же время отмечается активизация процессов ПОЛ, сопровождаясь увеличением антиоксидант -ных ресурсов, позволяющих эффективно контролировать свободнорадикальное окисление в костномозговых клетках.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: метаболизм, костный мозг,
ВВЕДЕНИЕ
Характер и полноценность восстановления миело- и лимфопоэза после облучения и мие-лотрансплантации в существенной степени определяются метаболическими процессами, протекающими в клетках. Особое место в их
трансплантация
обеспечении занимают ферменты. От уровня активности ферментных систем зависит интенсивность процессов пролиферации и диф-ференцировки клеток, способность к реализации свойственных им функций. Учитывая это, целью настоящей работы явилось исследование активности ферментов энергетического
обмена и процессов свободнорадикального окисления, интегрально отражающих метаболизм клеток, на этапах восстановления костного мозга облученных животных, защищенных с помощью сингенной миело- и лимфоми-елотрансплантации.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
Исследования проведены на мышах линии СВА 8-10 недельного возраста массой 20-22 г. Мышей-реципиентов облучали в дозе 9 гр на установке РУМ-17. Костный мозг (5х10б клеток/мышь) и тимоциты (20 х 10б клеток/мышь)
1 оя
трацией через капроновый фильтр. Клетки о мывали путем двукратного центрифугирования 250 g в течение 10 минут, после чего ре-суспендировали в свежем растворе «Гемодез».
Активность гексогеназы (КФ 2.7.1.1), 6-фосфофруктокиназы (КФ 2.7.1.11), пируват-киназы (КФ 2.7.1.40), лактатдегидрогеназы (КФ 1.1.1.27), глюкозо-6-фосфатдегидрогена-зы (КФ 1.1.1.49) определяли при помощи спектрофотометрических методов, в основе которых лежит использование сопряженных систем окисления или восстановления никоти-намидных коферментов [1]. Конечные концентрации компонентов реакционных смесей были следующими:
- для определения активности гексокиназы -5.10-4М глюкозы, 1.10-ЗМ АТФ, 5.10-4М MgCl2, 5.10-4М НАДФ+, 0,3 ME глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы;
- для определения активности 6-фосфо-фруктокиназы -7.10-4М фруктозо-6-фосфа-та, 1.10-ЗМ АТФ, 1.10-ЗМ MgCl2, 5.10-5М НАДФ, 7.10-ЗМ цистеина, 0,3 МЕ фрукто-зобисфосфатальдолазы, 0,3 МЕ триозофос-фатизомеразы, 0,3 МЕ глицерол -3-фосфат-дегидрогеназы (НАД+);
- для определения активности пируваткина-зы - 1.10-ЗМ фосфоенолпирувата, 1.10-2М КС1, 5.10-ЗМ MgCl2, 1.10-ЗМ АДФ, 5.10-5М НАДН, 0,3 МЕ лактатдегидрогеназы;
- для определения активности глюкозо-6-фосфат-дегидрогеназы - 1.10-ЗМ глюкозоб-фосфата, 5.10-4М НАДФ+, 5.10-ЗМ MgS04;
- для определения активности лактатдегидрогеназы - 1.10-ЗМ пирувата натрия, 5.10-5М НАДН, 3.10-ЗМ MgCl2;
- для определения активности НАДФ-изоци-тратдегидрогеназы - 5.10-4М НАДФ+, 1.10-ЗМ MgS04, 1,5.10-ЗМ DL-изоцитрата. Содержание первичных продуктов ПОЛ-
диеновых (ДК), триеновых (ТК), оксодиено-
вводили внутривенно в первые 24 часа после облучения.
Эксперименты проведены на 2-х группах мышей:
- облученных животных, получивших клетки
костного мозга;
- облученных животных, получивших клетки
костного мозга и тимоциты.
Клетки костного мозга выделяли путем вымывания из бедренных костей раствором «Гемодез». Тимоциты получали на среде Игла, содержащей 20% сыворотки, путем мягкой гомогенизации органов с последующей филь-
вых (ОДК) и тетраеновых конъюгатов, которые являются в данном случае продуктами окислительной деструкции полиненасыщен-ных жирных кислот (ПНЖК) с различным количеством двойных связей в молекуле, определяли электрофотометрически [2]; содержание вторичных продуктов ПОЛ, реагирующих с тиобарбитуровой кислотой (МДА) - колориметрически [3]. Содержание витамина А, каротина, витамина Е и его метаболитов: димеров токоферола (ОТФ) и токоферилхинона (ТФХК), определяли спектрофотометрически. Содержание данных веществ пересчитывали по коэффициентам молярной екстинции: для ДК - 27 000 М 'хсм"1; для ТК- 43 400; для ОДК- 22 000; для ретинола - 52 480; для каротина - 2 580; для токоферола - 3 170; для ОТФ-8 600 М'хсм"1 [4]. Общую антиокисли-тельную активность (АОА) определяли в модели термического автоокисления метилолеата в присутствии изучаемых образцов [5].
Полученные данные обработаны статистически с использованием t-критерия Стьюдента.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
В результате изучения динамики восстановления количественных показателей костного мозга облученных реципиентов нами было установлено, что общая клеточность органа у животных, получивших миелотрансплантат, восстанавливается к 30-м пострадиационным суткам, тогда как у реципиентов лимфомиело-трансплантата этот показатель нормализуется уже к 20-м суткам.
Наши исследования метаболической активности клеток костного мозга после облучения и миелотрансплантации показали, что она отличается волнообразным характером. Выявленная закономерность касалась всех изученных ферментов и была присуща животным и
1-ой, и 2-ой группы (Табл. 1.) Так, с 5-х по 15-е посттрансплантационные сутки в 1-й и 2-й
группах животных наблюдалась пониженная, по сравнению с показателями нормальных взрослых животных, ферментативная активность в миелокариоцитах. С 20-х по 30-е сутки во 2-й группе животных и с 20-х по 45-е сутки в 1-й группе активность ферментов энергетического обмена в клетках костного мозга возрастала, превышая показатели нормы. В последующие сроки скорость ферментативных реакций у животных 2-й группы стабилизировалась на уровне нормы взрослых особей и сохранялась такой до конца периода исследования (90-х суток), а у животных 1-й группы вновь испытывала некоторое снижение, нормализуясь лишь к 90-м посттрансплантацион-ным суткам.
Полученные данные свидетельствуют о том, что энергетический метаболизм костномозговых клеток на начальных этапах восстановления миелопоэза характеризуется низкой активностью, свойственной незрелым клеткам, тогда как во время периода интенсивного восполнения клеточности органа он приобретает признаки постнатального гемопоэза, демонстрируя достоверную активизацию ферментных систем миелокариоцитов. Добавление ти-моцитов к миелотрансплантату оказывает стимулирующий эффект на интенсивность ферментативных процессов в период восстановления клеточности костного мозга и стабилизирующее влияние на метаболизм клеток -после завершения этого периода.
В результате исследования процессов ПОЛ в клетках костного мозга после облучения и миелотрансплантации установлено, что восстановление клеточности органа и гемопоэза протекает на фоне их некоторой активизации, что наблюдается у 2-й группы реципиентов вплоть до 30-х суток после трансплантации, а
у 1-й группы - до 45-х, нося при этом более выраженный характер (Табл. 2). Так, у животных 1-й группы в этот период наблюдалось повышение уровня ОДК в 1,6-2,2 раз, тетрае-нов - в 1,8-2,8 раз, а также некоторое повышение содержания ДК, ТК и МДА. У животных
2-й группы отмечалось повышение содержания ОДК в 1,3-1,7 раз, тетраенов - в 1,3-2,0 раз, заметного роста уровня других продуктов ПОЛ не наблюдалось.
Параллельно этому процессу в 1-й и 2-й группах происходило достоверное увеличение уровня активных метаболитов токоферола: димеров токоферола - в 1,4-1,8 раз и 1,5-2,0 раз, токоферилхинона - в 1,3-1,9 и 1,4-2,0 раз соответственно (Табл.З.). Следует заметить, что наблюдаемая активизация процессов ПОЛ на этапах восстановления миелопоэза как в 1-й, так и во 2-й группе животных происходит в пределах физиологической нормы и сопровождается превалирующим усилением функционирования редокс-системы витамина Е, что обеспечивает увеличение общей антиокси-дантной активности клеток костного мозга. Ресурсов АО системы миелокариоцитов в этих условиях достаточно для эффективного контроля ПОЛ.
Таким образом, из полученных нами данных можно заключить, что после облучения и миелотрансплантации процессы энергетического метаболизма в клетках костного мозга нормализуются позднее, чем происходит восстановление клеточности органа. При этом восстановление их у реципиентов миелокариоцитов per se и в комбинации с тимоцитами имеет одинаковые закономерности с преимуществом во времени нормализации показателей метаболизма у животных, получивших лимфомиелотрансплантат.
Таблица 1
Активность ферментов энергетического обмена в клетках костного мозга животных после облучения и трансплантации миелокариоцитов per se (1) и миелокариоцитов в
сочетании с тимоцитами (2)
Сутки после транс- план- тации Труп пы жи- вот- ных Г ексокина-за 6-фосфо- фрукто- киназа Пируват- киназа Лактатде- гидрогена- за Изоцит- ратдегид- рогеназа Глюкозо-6- фосфат- дегидроге- наза
5 1 2 10,6 + 0,5 12,3+0,6*'” 91,1 +5,2 118,8+5,6*'** 21,4 +1,2 27,5+1,4*'** 60,7 + 3,1 69,2 + 3,2*'** 4,1 ±0,2 4,9 ± 0,3*'** 28,3 ± 1,2' 35,6 ± 1,4*-**
10 1 2 11.9 + 0,6 14.9 + 0,7*'** 100,6 +5,4 128,4 +6,3*'** 29,6 +1,5 34,3 +1,7*'** 66,1 +3,4 71,5 + 3,5* 5,0 ±0,3 5,7 ± 0,3*'** 39,6 ± 1,5 44,9 ± 1,7*-**
15 1 2 17,0 + 0,8 17,5+0,8* 129,7 +6,7' 135,9+6,8* 33,9+1,6 37,7 +1,9*'** 70,1 +3,4' 73,0 + 3,5* 5,6 ±0,3 6,0 ± 0,4* 43,7 ± 1,8 50,4 ± 1,9*"**
20 1 2 23,4 + 1,2' 24,2 + 1,2* 178,6 +8,9 189,2 +8,6* 49,7 +2,5 50,9 +2,5* 89,2 + 4,0 95,4 + 4,5* 7,6 ±0,3 7,9 ± 0,4* 62,7 ±2,2' 64,1 ±2,2*
30 1 2 23,9 + 1,2 24,1 + 1,2* 190,1 +8,8 190,6 +8,8* 51,6 +2,6 49,9 +2,5* 91,3+4,3 90,6 + 4,3* 7,5 ±0,3 7,7 ± 0,4* 63,9 ±2,2' 64,0 ± 2,2*
45 1 22,8 + 1,0 179,6 +8,5 49,2 +2,5 89,2 + 4,0 7,5 ±0,3 62,5 ±2,1
2 20,3 ± 1,0 162,5+7,9 46,9 +2,4 86,3 + 4,0 6,8 ±0,3" 59,1 ±2,0
60 1 17,4 + 0,8 140,4+7,0 37,6 +1,9 77,3+3,7 6,2 ±0,3 53,1 ±2,0'
2 20,1 + 1,0” 156,9+7,6” 43,0 +2,2” 83,4 + 3,9 6,9 ±0,3” 57,0 ± 2,0
75 1 17,5+0,8' 140,1 +7,0 38,7 +1,9 78,4 + 3,5 6,4 ±0,3 53,5 ±2,0'
2 19,5+0,9” 158,6+7,2” 43,4 +2,2” 81,9 + 3,9 6,8 ±0,3 57,7 ± 2,0
90 1 18,8 + 0,9 150,9+7,6 41,5+2,1 79,1 +3,9 6,7 ± 0,3 55,9 ± 2,0
2 19,2 + 0,9 153,8+7,4 43,0 +2,3 81,7 + 3,9 6,9 ±0,3 57,6 ± 1,9
Норма 19,3+0,9 157,4+7,6 43,6 +2,3 81,0 + 3,9 6,9 ±0,3 57,6 ± 1,8
1. Активность гексокиназы, глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы, изоцитратдегидрогеназы выражали в нмоль НАДФ+/минхмг белка; 6-фосфофруктокиназы, пируваткиназы, лактатдегидрогеназы - в нмоль НАДН/минхмг белка
2. * - достоверность различий показателей по сравнению с нормой (р<0,05)
** - достоверность различий показателей у животных группы 2 по сравнению с показателями у животных группы 1 (р<0,05)
Таблица 2
Интенсивность ПОЛ и общей АОА в костном мог “ “блученных животных после трансплантации миелокариоцитов per se (1) и в 110 бинации с тимоцитами (2)
Сутки после транс- плантации Груп- пы живот вот- ных Показатели
ДК тк ОДК Тетраены МДА АОА
10 1 2 0,038±0,004 0,037±0,004 0,023±0,003 0,022±0,003 0,068±0,007 0,057±0,006* 1,44±0,15 1,15±0,12*-” 0,27±0,03 0,26±0,03 0,50±0,06 0,56±0,06*
20 1 2 0,041±0,005 0,039±0,005 0,024±0,003 0,022±0,003 0,083±0,009 0,064±0,007*"” 2,01 ±0,22' 1,45±0,15*"” 0,30±0,03 0,28±0,03 0,88±0,09 1,13±0,12*"**
30 1 2 0,039±0,005 0,035±0,004 0,022±0,003 0,020±0,003 0,072±0,008 0,049±0,005*"” 1,51±0,16 0,94±0,10*"” 0,28±0,03 0,27±0,03 1,01±0,11 1,19±0,12*
45 1 2 0,037±0,004 0,034±0,004 0,020±0,003 0,020±0,003 0,061±0,007 0,046±0,005” 1,29±0,13 0,83± 0,09” 0,26±0,03 0,24±0,03 0,93±0,11 0,90±0,1 Ґ
60 1 2 0,037±0,004 0,034±0,004 0,019±0,003 0,019±0,003 0,045±0,005 0,040±0,004 0,86±0,09 0,80±0,09 0,26±0,03 0,24±0,03 0,57±0,07 0,62±0,07*
1 0,033±0,004 0,020±0,003 0,041±0,005 0,81±0,09 0,23±0,02 0,52±0,06
/ Э 2 0,032±0,004 0,019±0,003 0,041±0,004 0,71 ±0,08 0,23±0,02 0,53±0,06
оп 1 0,033±0,004 0,019±0,002 0,039±0,004 0,75±0,08 0,24±0,02 0,47±0,05
2 0,033±0,003 0,019±0,002 0,038±0,004 0,73±0,08 0,23±0,02 0,46±0,05
Норма 0,032±0,003 0,019±0,002 0,038±0,004 0,72±0,07 0,23±0,02 0,44±0,04
1. ДК-диеновые, ТК- триеновые, ОДК- оксидиеновые, тетраены-тетраеновые конъюгаты ПОЛ, МДА- малоновый диальдегид, АОА- общая антиоксидантная активность.
2. Количество тетраенов выражено в единицах Д/мл; АОА- в относительных единицах, остальные параметры - в мкмоль/мл.
3. * - достоверность различий показателей по сравнению с нормой (р<0,05);
** - достоверность различий показателей у животных группы 2 по сравнению с показателями у животных группы 1 (р<0,05).
Таблица 3
Содержание жирорастворимых витамине и метаболитов токоферола в костном мозге облученных животных после трансплантации миелокариоцитов per se (1) и в комбинации с тимоцитами (2)
Сутки после транс- плантации Г руппы животных Показатели
Токоферол Димеры токоферола Токоферил-хинон (Д/мл) Ретинол Каротин
10 1 2 0,39 ±0,05 0,42 ± 0,05 0,78 ±0,04 0,86 ± 0,05*"** 1,36 ± 0,12 1,57 ±0,15* 0,010 ± 0,002 0,012 ± 0,002 0,37 ± 0,04 0,38 ± 0,04
20 1 2 0,44 ± 0,05 0,46 ± 0,05* 0,91 ±0,05 1,02 ±0,06*'” 1,88 ±0,19 2,10 ±0,22* 0,009 ± 0,002 0,010 ± 0,002 0,44 ± 0,004 0,48 ± 0,004
30 1 2 0,44 ± 0,05 0,43 ± 0,05 0,92 ±0,05 0,81 ±0,05*'” 1,99 ±0,20 1,47 ±0,15*'” 0,011 ±0,002 0,011 ±0,002 0,44 ± 0,04 0,49 ± 0,04
45 1 2 0,43 ± 0,05 0,42 ± 0,05 0,71 ±0,04 0,58 ±0,03*"” 1,38 ± 0,14 1,35 ±0,14* 0,012 ± 0,002 0,012 ± 0,002 0,46 ± 0,04 0,47 ± 0,04
60 1 2 0,41 ±0,04 0,38 ±0,04 0,61 ±0,04 0,55 ±0,03 1,34 ± 0,14 1,25 ±0,15 0,011 ±0,002 0,012 ± 0,002 0,38 ± 0,04 0,39 ± 0,04
75 1 2 0,38 ±0,04 0,36 ± 0,04 0,54 ± 0,03 0,54 ± 0,03 1,27 ±0,13 1,25 ±0,13 0,010 ± 0,002 0,011 ±0,002 0,41 ± 0,04 0,40 ± 0,04
90 1 2 0,37 ± 0,04 0,36 ± 0,04 0,52 ± 0,03 0,52 ± 0,03 1.07 ±0,12 1.07 ±0,12 0,011 ±0,002 0,010 ± 0,002 0,42 ± 0,04 0,43 ± 0,04
Hoi эма 0,36 ± 0,04 0,51 ±0,02 1,05 ±0,11 0,011 ±0,002 0,42 ± 0,04
1. Количество веществ выражено в мкмоль/мл.
2. * - достоверность различий показателей по сравнению с нормой (р<0,05);
** - достоверность различий показателей у животных группы 2 по сравнению с показателями у животных группы 1 (р<0,05).
ЛИТЕРАТУРА
1. Астауров Б.Л. Методы биологии развития М. :Наука. 1974. С. 349-350.
2. Powell W.S. Chromatography of Lipids for Biomedicine Research and Clinical Diagnostic. // Amsterdam:
Elsev. Sei. Publ. 1987. P. 76-106.
3. Спиричев В.Б., Матусис П.П., Бронштейн Л.М. Экспериментальная витаминология. Минск: Наука и
техника. 1979. С. 20-57.
4. Паранич Л.И., Паранич A.B., Василенко Н.М., Бугай Е.В. Действие нитробензола и его хлорпроиз-водных на некоторые показатели антиокислительного гомеостаза в тканях крыс //Бюлл. эксперим. биол. и мед. 1993. №10. С. 402-405.
5. Паранич A.B. Кониасо А., Бугай Е.В., Копылов A.B. О роли жирорастворимых витаминов А и Е в профилактике биологических эффектов ионизирующего излучения в различных тканях крыс //Радиобиология. 1992. Т.32. Вып.5. С.743-750.
111
МЕТАБОЛІЧНА АКТИВНІСТЬ КІСТКОВОМОЗКОВИХ КЛІТИН НА ЕТАПАХ ВІДНОВЛЕННЯ ГЕМОПОЕЗУ У ТВАРИН ПІСЛЯ ОПРОМІНЕННЯ ТА МІЄЛОТРАНСПЛАНТАЦІЇ
O.A. Романова
Харківський національний університет ім. В.Н. Каразіна
РЕЗЮМЕ
Досліджено інтенсивність метаболізму мієлокаріоцитів у період з 10-ої по 90-у добу після летального опромінення мишей і трансплантації клітин кісткового мозку per se, а також збагачених тимоцитами. Вивчено активність ферментів енергетичного обміну та стан системи перекисне окислення — антиокислюва-льний захист мієлокаріоцитів. Показано, що на етапі інтенсивного відновлення клітинності кісткового мозку відбувається значне підвищення активності ферментів мієлокаріоцитів. Водночас спостерігається активізація процесу ПОЛ, що супроводжується збільшенням антиоксидантних ресурсів, які дозволяють ефективно контролювати вільнорадикальне окислення у кістковомозкових клітинах.
КЛЮЧЕВЬІЕ СЛОВА: метаболізм, кістковий мозок, трансплантація
THE METABOLIC ACTIVITY OF MEDULLAR CELLS AT STAGES OF HAEMOPOESIS RECOVERING OF THE ANIMALS AFTER IRRADIATIATION AND MYELOTRANSPLANTATION
E.A. Romanova
The Karazin National University of Kharkov
SUMMARY
The intensity of myelocariocytes metabolism from the tenth day after lethal irradiation of mice till the ninetieth and transplantation of medullar cells was studied. The activity of energetic metabolic enzymes and the state of the lipid peroxidation — antioxidation protection system of myelocaryocytes was investigated. It was shown that a significant activity increase of myelocaryocytes enzymes took place at the stage of medullar cells
recovery. At the same time the activation of lipid peroxidation processes is accompanied by an increase of antioxidant resources enabling effective control of free-radical oxidation in medullar cells.
KEY WORDS: metabolism, marrow, transplantation
УДК: 616.15 - 089.819:616.411 - 089.87
