CC BY
67
ОРИГИНАЛЬНАЯ СТАТЬЯ и клиниТсГаГ;^ том 2, № 1
МЕХАНИЗМЫ РЕЗИСТЕНТНОСТИ БИФИДОБАКТЕРИИ К ЛИПОЛИТИЧЕСКИМ ФЕРМЕНТАМ STAPHYLOCOCCUS AUREUS
ЗАХАРОВА Ю.В.1, ОТДУШКИНА Л.Ю.1, ЛЕВАНОВА Л.А.1, СУХИХ А.С.2
Кафедра микробиологии, иммунологии и вирусологии, 2Централъная научно-исследовательская лаборатория ФГБОУ ВО «Кемеровский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Кемерово, Россия
ORIGINAL ARTICLE
MECHANISMS OF BIFIDOBACTERIA RESISTANCE TO LIPOLYTIC ENZYMES OF STAPHYLOCOCCUS AUREUS
YULIYA V. ZAKHAROVA, LYUDMILA Y. OTDUSHKINA, LYUDMILA A. LEVANOVA, ANDREY S. SUKHIKH
Kemerovo State Medical University (22a, Voroshilova Street, Kemerovo, 650056), Russian Federation
Резюме
Цель. Изучение механизмов устойчивости мембраны бифидобактерий разных видов к действию липаз Staphylococcus aureus.
Материалы и методы. Исследовали количественный и качественный состав жирных кислот мембран бифидобактерий до и после воздействия на них липолитических ферментов S.aureus с помощью газовой хроматографии с масс-спектрометрическим детектором (ГХ-МС).
Результаты. У Bifidobacterium breve основную массу мембранных жирных кислот составляли олеиновая (С 18:1; 80,3 мкг), пальмитиновая (С 16:0; 53,9 мкг), линолевая (С 18:2; 29,4 мкг) кислоты. У B.bifidum и B.longum доминировали насыщенные пальмитиновая (С 16:0; 21,2 мкг и 21,8 мкг соответственно) и стеариновая (С 18:0; 18,8 мкг и 11,9 мкг соответственно) кислоты. После воздействия липаз S.aureus у B.breve увеличивалось в 2 раза содержание насыщенных жирных
кислот, снижалась в 7 раз масса ненасыщенных кислот и изменялось разнообразие жирнокислот-ного состава. У B.bifidum и B.longum под влиянием липолитических ферментов золотистого стафилококка происходило снижение массы насыщенных жирных кислот.
Заключение. Механизмы резистентности мембраны бифидобактерий к воздействию липолитических ферментов S.aureus являются ви-доспецифичными. У B. breve происходит изменение жидко-кристаллического состояния мембраны, которое осуществляется за счет уменьшения разнообразия и изменения соотношения насыщенных и ненасыщенных жирных кислот. Клеточные мембраны B.longum и B. bifidum характеризуются устойчивостью к действию липаз стафилококков, что обусловлено высоким содержанием насыщенных жирных кислот.
Ключевые слова: бифидобактерии, стафилококки, ГХ-МС, жирные кислоты, устойчивость.
English ► Abstract
Aim. To study the mechanisms of Bifidobacteria membrane resistance to the lipases of Staphylococcus aureus.
Materials and Methods. Quantitative and
qualitative composition of fatty acids in membranes of Bifidobacteria was evaluated before and after exposure to the lipolytic enzymes of S. aureus using gas chromatography-mass spectrome-try.
Results. Membrane of Bifidobacterium breve consisted of oleic (C 18:1; 80,3 pg), palmitic (C 16:0; 53,9 pg), and linoleic (C 18:2; 29,4 pg) acid, while membranes of B. bifidum and B. longum were composed mainly of palmitic (C 16:0; 21,2 pg and 21,8 pg, respectively) and stearic (C 18:0; 18,8 pg and 11,9 pg, respectively) acid. Upon exposure to the S. aureus lipase, the proportion of saturated fatty acids in the membrane of B. breve increased twofold, with the corresponding sevenfold decrease in unsaturated fatty acids and altered diversity of fatty acid composition. However, this
was not the case for the membranes of B. bifidum and B. longum.
Conclusions. Mechanisms of Bifidobacteria resistance to the lipolytic enzymes of S. aureus are species-specific. In B. breve, a change in the liquid-crystalline state of the membrane occurs; however, the membranes of B. longum and B. bifidum are resistant to the action of S.aureus lipases due to the high content of saturated fatty acids.
Keywords: bifidobacterium, staphylococcus, gas chromatography-mass spectrometry, fatty acids, resistance.
Введение
Большое разнообразие и в то же время специфичность мембранных жирных кислот микроорганизмов обеспечивает возможность проведения родовой и даже видовой идентификации бактерий [1, 2]. Однако, являясь основным компонентом фосфолипидов, жирные кислоты определяют также физико-химическое состояние мембраны - ее текучесть и вязкость [2, 3]. Только при определенных параметрах текучести и вязкости данной оболочки у бактерий осуществляется рост и размножение, транспорт веществ, функционирование мембранных ферментов [3, 4]. Состав фосфолипидов определяет также гидрофобность клеток, адгезивные свойства, чувствительность к антибактериальным препаратам, устойчивость к перекисному окислению [5, 6, 7]. Бактериальная цитоплазматическая мембрана является ключевой мишенью для стрессовых факторов микросреды биотопа. На физические и химические воздействия микроорганизмы реагируют определенными метаболическими реакциями и изменением состава мембранных фосфолипидов [8, 9]. Регулирование бактериями параметров текучести мембраны для поддержания собственного гомеостаза при воздействии внешних факторов среды получило название гомеофазовой адаптации [10]. Стратегия модуляции жирнокислотного состава мембраны лежит в основе выживания штаммов во внешней среде при воздействии дезинфицирующих и антисептических средств, мембранных токсинов, резких перепадов температуры и давления. В связи с этим различные механизмы гомеофазовой адаптации активно изучаются для разработки превентивных мер по формированию госпитальных штаммов в экологической системе стационаров [10, 11]. Су-
щественный интерес представляют собой исследования модификации липидного состава цитоплазматической мембраны у бактерий, входящих в состав кишечного микросимбио-ценоза, так как разнообразие входящих в него микросимбионтов и их метаболитов формирует особые экологические факторы и условия. Остается открытым вопрос о регулировании текучести мембраны у бифидобактерий при взаимодействии их с условно-патогенными и патогенными бактериями, выделяющими ли-политические ферменты, что необходимо для уточнения механизмов доминирования бифи-добактерий в кишечном микросимбиоценозе и в поддержании нормобиоценоза.
Цель исследования
Изучение механизмов устойчивости мембраны бифидобактерий разных видов к действию липаз Staphylococcus aureus.
Материалы и методы
Объектом исследования были фекальные изоляты Bifidobacterium breve, B.bifidum, B.longum. Выделение бифидобактерий осуществляли на Бифидум-среде (ФБУН ГНЦ ПМБ, Оболенск). Для создания анаэробных условий применяли анаэростаты (BBL, США) и газогенерирующие пакеты (НПО «Новое дело», Санкт-Петербург). Идентификацию бифидобактерий осуществляли с помощью коммерческих тест-систем ANAERO-TEST 23 (Lachema, Чехия).
Продуцент липаз S.aureus также был изолирован из кишечника. Идентифицирован с помощью тест-системы «Пластины биохимические для дифференциации стафилококков» (г. Нижний Новгород). Штамм характеризовался продукцией лецитиназы и липазы, активность
которых количественно исследовали спектро-фотометрическим методом с использованием набора «LIPASA liquicolor» (HUMAN, Германия) на приборе СФ-2000.
Для получения экзометаболитов стафилококка проводили культивирование штамма в МПБ (г. Нижний Новгород) при 370С в течение 24 часов. Суточную бульонную культуру центрифугировали при 3000 об/мин 15 минут, отбирали супернатанты, обрабатывали их хлороформом 20 минут, центрифугировали при 3000 об/мин 15 минут и снова отбирали супер-натанты. Стерильность экзометаболитов определяли путем высева супернатанта на среду Мюллера-Хинтона (НИЦФ, Санкт-Петербург) и последующим инкубированием при 370 С в течение 24 часов.
Полученные экзометаболиты добавляли в объеме 0,3 мл в 2,7 мл жидкой Бифидум-среды (ФБУН ГНЦ ПМБ, г. Оболенск), куда помещали по 1 колонии бифидобактерий, выращенных на плотной Бифидум-среде (ФБУН ГНЦ ПМБ, г. Оболенск) в анаэробных условиях.
До и после обработки бифидобактерий эк-зометаболитами стафилококка изучали их биологические свойства, на которые влияет жирнокислотный состав мембраны: гидро-фобность, способность к адгезии и к ауто-агглютинации [3, 6, 12]. Гидрофобность рассчитывали в % согласно [6]. Штаммы считали высокогидрофобными при Н = 60% и >, сред-негидрофобными при Н = 40-59%, низкогидрофобными при Н < 39%. Способность специфически адгезироваться к гликопротеиновым рецепторам кишечника оценивали по индексу адгезивности микроорганизма (ИАМ) [13]. Бактерии считали неадгезивными при индексе адгезии микроорганизмов <1,75; низкоадгезивными - при ИАМ от 1,76 до 2,5; среднеад-гезивными - при ИАМ от 2,51 до 4,0 и высокоадгезивными при ИАМ>4,0.
Жирнокислотный состав бактериальных фосфолипидов определяли с помощью газожидкостной хроматографии с масс-спектроме-трическим детектированием (ГХ-МС). Липид-ная фракция выделена из отмытой изотоническим раствором NaCI бульонной культуры бифидобактерий экстракцией смесью хлороформ : н-гексан (1:1). Полученный экстракт подвергали метилированию. Образец объёмом 1 мл помещали в виалу объемом 1,5 мл, растворитель отдували азотом досуха. К сухому остатку добавляли 500 мкл 3% раство-
ра H2SO4 в MeOH. К полученому раствору добавляли внутренний стандарт (10 мкг ундеце-новой кислоты). Затем образец нагревали при 900С в течение часа. Далее проводили экстракцию 700 мкл гексана. Объем отобранной гек-сановой фракции концентрировали отдувкой растворителя до объема 200 мкл. Полученные пробы, содержащие жирные кислоты в виде метиловых эфиров, использовали для анализа. Метилированные пробы анализировали на хроматомасс-спектрометре Agilent 7000B. Объем пробы 2 мкл, ввод без деления потока. Колонка: ZB-WAX, 30м*0.25мм*0.25мкм, Условия хроматографирования: Oven Program 50 °C for 0 min then 8 °С/мин to 260 °С-5мин, Flow-1мл/мин.
Данные представлены в виде абсолютных и относительных величин. Характер распределения переменных величин в рассматриваемой совокупности определяли с помощью построения гистограмм. В связи с тем, что характер распределения данных не соответствовал нормальному, для статистической обработки применяли непараметрические критерии оценки статистической значимости. Сравнение структуры жирных кислот у бифидобак-терий разных видов проводили с помощью критерия х2. Критический уровень значимости при проверке статистических гипотез в данном исследовании принимался равным 0,05.
Результаты исследования
Среди жирных кислот у Bifidobacterium breve преобладали ненасыщенные, масса которых достигала 119,3 мкг, при этом соотношение масс ненасыщенных жирных кислот к насыщенным составило 2:1. У B.bifidum и B.longum в составе фосфолипидов преобладали насыщенные жирные кислоты (46,6 мкг и 39,5 мкг), а соотношение масс ненасыщенных к насыщенным кислотам составило 1:5 и 1:4 соответственно. Независимо от вида би-фидобактерий среди ненасыщенных кислот большая доля приходилась на изоформы: у B.breve - 73,2%, B.longum - 71,6%, у B.bifidum - 70,1%. Как и у большинства микроорганизмов, жирные кислоты бифидобактерий были представлены длинноцепочечными (С16 -С22), содержание которых у B. breve достигало 189,4 мкг, у B.longum составило 44,2 мкг, у B.bifidum только 28,4 мкг. Масса среднецепо-чечных жирных кислот (С13 - С14) составила 12,3 мкг, 6,3 мкг и 2,5 мкг соответственно. В
составе мембранных липидов регистрировали также очень длинные жирные кислоты (С24), однако их содержание было низким и не превышало 0,88 мкг у B.breve, 0,4 мкг у B.longum и 0,33 мкг у B.bifidum. Разница в содержании жирных кислот с разными типами ацильных цепей у исследуемых видов бифидобактерий была статистически значима (х2=10,2, df=4, p=0,05).
У B.breve в составе фосфолипидов регистрировали высокое содержание олеиновой (С 18:1; 80,3 мкг), пальмитиновой (С 16:0; 53,9 мкг) и полиненасыщенной линолевой кислоты (С 18:2; 29,2 мкг). У B. bifidum и B.longum среди жирных кислот преобладали насыщенные пальмитиновая (С 16:0) и стеариновая кислоты (С 18:0), масса которых составила 21,2 и 21,8 мкг, а также 18,8 и 11,9 мкг соответственно. Содержание ненасыщенной олеиновой кислоты (С 18:1) у B.bifidum не превышало 5,3 мкг, а линолевой кислоты (С 18:2) - 3,1 мкг. У B.longum содержание олеиновой (С 18:1) и линолевой (С 18:2) кислот было схожим и составило по 3,1 мкг. Установлено, что в составе липидов всех видов бифидобактерий присутствовали метилированные жирные кислоты, которые увеличивают текучесть мембраны. Однако содержание разветвленных жирных кислот у B.breve было в 4,1 раза выше, чем у B.bifidum и в 3 раза выше, чем у B.longum. При этом масса метилированных форм жирных кислот у B.bifidum и B.longum составила только 0,7 и 0,8 мкг соответственно. Различия в количественном содержании жирных кислот у бифидобактерий разных видов были статистически значимы (х2=115,6, df=18, p=0,0003).
После обработки бифидобактерий экзо-метаболитами Staphylococcus aureus структура жирных кислот статистически значимо изменялась у B.breve, что свидетельствует о способности данного вида к гомеофазо-вой адаптации при неблагоприятных условиях (Х2=121,3, df=19, p=0,0004). Прежде всего, у B.breve увеличилось количество насыщенных жирных кислот, за счет чего менялось соотношение масс ненасыщенных и насыщенных жирных кислот, которое составило 1:9. Содержание стеариновой (С 18:0) и пальмитиновой (С 16:0) кислот составило 71,3 мкг и 78,5 мкг соответственно, что в 4,6 и 1,5 раза выше, чем до воздействия липаз стафилококка. Масса олеиновой кислоты (С 18:1) снизилась
в 10 раз - до 7,7 мкг. Также у B.breve снижалось разнообразие жирных кислот. В составе мембранных липидов уже отсутствовали такие насыщенные жирные кислоты с длинными цепями, как эйкозановая (С 20:0), до-козановая (С 22:0), тетракозановая кислоты (С 24:0) и ненасыщенная докозеновая кислота (С 22:1). Уменьшалась в 1,5 раза масса сред-нецепочечных жирных кислот - тридекановой (С 13:0), миристиновой (С 14:0), тетрадецено-вой (С 14:1) - с 6,7 мкг до обработки липазами стафилококка до 4,3 мкг после обработки.
После взаимодействия с метаболитами стафилококка у B.bifidum количественное содержание насыщенных и ненасыщенных жирных кислот практически не изменялось (х2=27,2, df=20, р=0,6). По-прежнему в мембранных липидах преобладали кислоты с высокой степенью насыщения (76%), соотношение содержания ненасыщенных жирных кислот к массе насыщенных составило 1:3. Содержание пальмитиновой (С 16:0) и стеариновой кислот (С18:0) снизилось незначительно до 19,8 мкг и 14,6 мкг соответственно. Не изменилась масса линолевой (С 18:2; 3,01 мкг) и олеиновой (С 18:1; 5,2 мкг) кислот. Однако, у B.bifidum под влиянием липаз золотистого стафилококка увеличивалось разнообразие жирных кислот за счет появления эйкозано-вой (С 20:0), докозановой (С 22:0) и тетрако-зановой (С 24:0) кислот, но их содержание не превышало 1,1 мкг. При этом установлено, что у B.bifidum после воздействия липаз стафилококка увеличилась масса метилированных жирных кислот, так как их содержание возросло в 2 раза.
У В.1опдит, так же, как и у B.bifidum регистрировали относительную устойчивость мембраны к действию липаз S.aureus, так как статистически значимые изменения в жирно-кислотном составе мембраны отсутствовали (х2=30,5, df=21, р=0,6). В составе липидов B.longum после воздействия липолитических ферментов доминирующее место в структуре также занимали насыщенные жирные кислоты (81,3%), масса которых составила 32,5 мкг. При этом сохранилось такое же, как и до воздействия экзометаболитов стафилококков соотношение масс ненасыщенных и насыщенных жирных кислот (1 : 3). Содержание пальмитиновой (С 16:0) и стеариновой кислот (С 18:0) незначительно снизилось до 17,7 мкг
Таблица 1. Биологические свойства бифидобактерий
Наименование B.breve* B.bifidum B.longum
признака, ед.измерения До обработки липазами После обработки липазами До обработки липазами После обработки липазами До обработки липазами После обработки липазами
Аутоагглютинация, % 41,1 20,6 17,7 13,8 11,2 12,8
Гидрофобность, % 86,7 56,2 47,2 45,4 40,5 41,1
Индекс адгезии микроорганизмов 4,2 3,9 1,1 1,2 2,2 1,8
Примечание: * - статистически значимая разница биологических свойств до и после действия липаз S.aureus (р=0,023)
Table 1. Biological B.breve* B.bifidum B.longum
properties of Feature Before After Before After Before After
bifidobacteria exposure to lipases exposure to lipases exposure to lipases exposure to lipases exposure to lipases exposure to lipases
Autoagglutination, % 41.1 20.6 17.7 13.8 11.2 12.8
Hydrophobicity, % 86.7 56.2 47.2 45.4 40.5 41.1
Adhesion index 4.2 3.9 1.1 1.2 2.2 1.8
*p=0.023
и 9,9 мкг соответственно. Уменьшилось и количество олеиновой (С 18:1) и линолевой (С 18:2) кислот до 2,9 и 2,2 мкг. При этом возросла в 1,5 раза масса метилированных форм насыщенных жирных кислот.
В связи с тем, что физико-химическое состояние мембраны влияет на биологические свойства микроорганизмов, оценивали способность бифидобактерий к образованию биопленок. Процесс биопленкообразования является многоступенчатым, поэтому исследовали биологические свойства бифидобактерий на каждом из этапов образования биопленок. До взаимодействия с липазами золотистых стафилококков культура B. breve характеризовалась высокой гидрофобностью, высокой адгезивной активностью и высокой способностью к аутоагглютинации (Таблица 1).
После обработки штамма липолитически-ми ферментами аутоагглютинация снизилась в 2 раза, гидрофобность в 1,5 раза, адгезивная активность изменилась незначительно и составила 3,9 (х2=7,1, df=2, p=0,023). Интактные культуры B. bifidum и B.longum имели средние показатели гидрофобности и аутоагглютинации, низкую способность к специфической адгезии. После обработки B.bifidum и B.longum экзометаболитами стафилококка аутоагглю-тинация, гидрофобность, адгезивная способность культур статистически значимо не изменялись (х2 =4,9, df=2, p=0,21) и (х2 =2,9, df=2, Р=0,1).
Обсуждение
Изменение состава фосфолипидов является эволюционным ответом микроорганизмов на физические и химические изменения в окружающей среде, своеобразной адаптацией, которая включается в период роста бактерий [8, 9, 10]. Однако механизмы гомеофазовой адаптации у разных микроорганизмов отличаются. Преобладающей реакцией многих бактерий на внешние воздействия является модификация ацильной цепи липидных структур за счет изменения соотношения насыщенных и ненасыщенных жирных кислот [2, 10]. Также описаны механизмы сокращения или удлинения цепи, изменения в соотношении разветвленных жирных кислот, рост-зависимое метилирование или насыщение циклопропаном, а также цис- транс- изомеризационное преобразование двойных связей (п - диастереометрия) [3, 14]. Вид и степень реакции по изменению состояния мембраны определяют длительность взаимодействия доминантных и ассоциативных микросимбионтов, что наиболее актуально для определения механизмов персистенции резидентов в различных биотопах.
Бифидобактерии являются доминирующими микроорганизмами среди кишечной микрофлоры. Они контролируют качественный и количественный состав сообщества, предотвращают избыточный рост условно-патогенных бактерий [15]. В многочисленном и сложном сообществе кишечника бифидобактерии
постоянно взаимодействуют с индигенными, условно-патогенными или патогенными микроорганизмами и их метаболитами [16, 17, 18]. При этом микробиологическая система кишечника очень долго может сохраняться в стабильном состоянии. В основе лежит способность резидентов оперативно реагировать на прямые или опосредованные воздействия ассоциативных микросимбионтов изменением своих биологических свойств [15, 17].
Исследования показали, что жирнокислот-ный состав мембранных фосфолипидов би-фидобактерий характеризовался видоспеци-фичностью, что подтверждает ранее установленные данные о возможности исследования микробиоценозов или отдельных микросимбионтов с помощью ГХ-МС без выделения чистых культур [1, 2]. Кроме видовых особенностей путей синтеза жирных кислот их состав зависит и от микроокружения, т.е от наличия органических липофильных соединений микробного происхождения, разветвленных ко-роткоцепочечных карбоновых кислот и других метаболитов [3, 14]. В связи с этим клеточная мембрана резидентов кишечного микробиоценоза в целом может быть индикатором наличия ассоциативных микросимбионтов, продуцирующих липофильные экзометаболиты, например, стафилококков.
Изначально, до обработки B. breve липо-литическими ферментами стафилококка, в состав фосфолипидов мембраны входило большое количество ненасыщенных (олеиновая, линолевая) и разветвленных жирных кислот (изоформы), присутствие которых увеличивает текучесть данной оболочки микроорганизмов и способствует формированию высокой гидрофобности и аутоагглютинации [5, 6, 19].
После воздействия экзометаболитов стафилококка у B.breve отмечали повышение содержания жирных кислот с насыщенной ациль-ной цепью, снижение их разнообразия за счет прекращения синтеза длинноцепочечных кислот, таких как эйкозановая, докозановая, те-тракозановая и докозеновая кислота, и уменьшение массы среднецепочечных жирных кислот. В составе фосфолипидов мембраны изменялось соотношение масс ненасыщенных и насыщенных жирных кислот с 2 : 1 до воздействия экзометаболитов стафилококков до 1 : 9 -после воздействия. Таким образом, мембрана B. breve после взаимодействия с метаболитами стафилококка становится менее текучей и
более ригидной. Изменялись и биологические свойства штамма - аутоагглютинация снижалась в 2 раза, гидрофобность в 1,5 раза. Возможно, изменение жидко-кристаллического состояния мембраны у B.breve предупреждает воздействие на оболочку мембранотоксинов и низкомолекулярных пептидов, выделяемых ассоциативными микросимбионтами и способствует сохранению определенной плотности бактериальной популяции. С другой стороны, снижение текучести мембраны снижает стрессоустойчивость бактерий, что дает возможность предполагать, что данный механизм гомеофазовой адаптации имеет свои преимущества до определенного предела.
Интактная цитоплазматическая мембрана у B.bifidum и B.longum содержала большое количество насыщенных жирных кислот (стеариновой, пальмитиновой), т.е. изначально она отличалась ригидностью к действию ферментов стафилококков. Данные виды бифидобактерий имели средние показатели гидрофобности и аутоагглютинации. После воздействия на них липаз стафилококка количественный состав жирных кислот практически не менялся, но в составе фосфолипидов появлялись жирные кислоты с длинными цепями (эйкозановая, докозановая и тетракозановая). Кроме того, у B.bifidum увеличивалась масса метилированных жирных кислот. При этом биологические свойства, определяющие способность бактерий к био-пленкообразованию, у B.bifidum и B.longum не изменялись. С «естественной» устойчивостью B.bifidum и B.longum к действию экзометаболи-тов ассоциативных микросимбионтов, вероятно, связана более высокая распространенность персистенции данных видов в кишечном ми-кросимбиоценозе у населения и их доминирование в структуре бифидофлоры у разных возрастных групп [20].
Заключение
Таким образом, высокое содержание насыщенных жирных кислот в составе фосфо-липидов цитоплазматической мембраны у B.bifidum и B.longum обусловливает ригидность этой оболочки к действию экзомета-болитов S.aureus с липолитической активностью. У B.breve происходит регулирование текучести мембраны при действии метаболитов стафилококков за счет уменьшения разнообразия и изменения соотношения масс ненасыщенных и насыщенных жирных кислот. По-
лученные результаты раскрывают некоторые механизмы формирования и функционирования кишечного нормобиоценоза и могут быть использованы для поиска и разработки спосо-
бов модификации биологических свойств доминантных микросимбионтов с целью повышения эффективности методов коррекции дис-биотических нарушений. •
Литература / References:
1. Beloborodova NV, Bairamov IT, Olenin AYu, Fedotcheva NI. Exometabolites of some anaerobic microorganisms of human microflora. Biomedical Chemistry. 2011; 57 (1): 95-105. Russian (Белобородова Н.В., Байрамов И.Т., Оленин А.Ю., Федотчева Н.И. Экзометаболиты некоторых анаэробных микроорганизмов микрофлоры человека // Биомедицинская химия. 2011. Т. 57, № 1. С. 95-105).
2. Budnikov GK. Chemical Analysis in Medical Diagnostics. - Moscow: Science, 2010. 504 p. Russian (Будников Г.К. Химический анализ в медицинской диагностике. Москва: Наука, 2010. 504 с.)
3. Titov VN, Lisitsyn DM. Fatty acids. Physical chemistry, biology, and medicine. M. - Tver': Triada Publishing, 2006. 672 p. Russian (Титов В.Н., Лисицын Д.М. Жирные кислоты. Физическая химия, биология и медицина. Москва-Тверь: ООО «Издательство «Триада», 2006. 672 с.)
4. Schneiter R, Toulmay A. The role of lipids in the biogenesis of integral membrane proteins. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2007; 73 (6): 1224-1232.
5. Gleinser M, Grimm V, Zhurina D, Yuan J, Riedel CU. Improved adhesive properties of recombinant bifidobacteria expressing the Bifidobacterium bifidum-specific lipoprotein BopA. Microb. Cell Fact. 2012; 11: 80.
6. Wang LQ, Meng XCh, Zhang BR,Wang Y, Shang YL. Influence of cell surface properties on adhesion ability of bifidobacteria. Word J. of microbiology and biotechnology. 2010; 26 (11): 1999-2007.
7. Reis A, Spickett CM. Chemistry of phospholipid oxidation. Biochim. Biophys. Acta. 2012; 1818 (10): 2374-2387.
8. Ianutsevich EA, Danilova OV, Groza NV, Tereshina VM. Membrane lipids and cytosol carbohydrates in Aspergillus niger under osmotic, oxidative, and cold impact. Microbiology. 2016; 85 (1): 283-292. Russian (Януцевич Е.А., Данилова О.В., Гроза Н.В., Терё-шина В.М. Мембранные липиды и углеводы цитозоля у Aspergillus niger в условиях осмотического, окислительного и холодового воздействий // Микробиология. 2016. Т.85, № 1. С. 283-292).
9. To TM, Grandvalet C, Tourdot-Marechall R. Cyclopropanation of membrane unsaturated fatty acids is not essential to the acid stress response of Lactococcus lactis subsp. cremoris. Appl. Environ. Microbiol. 2011; 77 (10): 3327-3334.
10. Hartig C, Loffhagen N, Harms H. Formation of trans Fatty Acids Is Not Involved in Growth-Linked Membrane Adaptation of Pseudomonas putida Appl. Environ. Microbiol. 2005; 71(4): 1915-1922.
11. Benamara H, Rihouey Ch, Jouenne T, Alexandre S. Impact of the biofilm mode of growth on the inner membrane phospholipid composition and lipid domains in Pseudomonas aeruginosa. Biochim. Biophys. Acta. 2011; 1808 (1): 98-105.
12. Leonov VV, Kurlovich NA, Sokolova TN. The relation of the hydrophobicity index of microbial cells to their ability to form biofilms. Biophysics. 2014: 59 (6): 1131-1134. Russian (Леонов В.В., Курлович Н.А., Соколова Т.Н. Связь показателя гидрофобности микробных клеток с их биопленкообразующей способностью // Биофизика. 2014. Т.59, №6. С.1131-1134).
13. Brilis VI, Briline TA, Lentsner KhP, Lentsner AA. Method for investigation of microorganism adhesion. Laboratory Work. 1986; (4): 210-212. Russian (Брилис В.И., Брилине Т.А., Ленцнер Х.П., Ленцнер А.А. Методика изучения адгезивного процесса микроорганизмов // Лабораторное дело. 1986. №4. С. 210-212).
14. Bissvanger H. Practical enzymology. M: Binom, 2010. 328 p. Russian (Биссвангер Х. Практическая энзимология. М.: Бином, 2010. 328 с).
15. Bukharin OV, Perunova NB, Ivanova EV. Interaction of Bifidobacterium bifidum with normal microflora in mikrosуmbiocenosis of human gut. Journal of Microbiology, Epidemiology, and Immunobiology. 2012; (4): 51-56. Russian (Бухарин О.В., Перунова Н.Б., Иванова Е.В. Взаимодействие Bifidobacterium bifidum с представителями нормальной микрофлоры в микросимбиоценозе кишечника человека // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2012. №4. С.51-56).
16. Rios-Covian D, Arboleya S, Hernandez-Barranco AM, Alvares-Buylla JR, Ruas-Madiedo P, Gueimonde M et al. Interactions between Bifidobacterium and Bacteroides species in cofermentations are affected by carbon sources, including exopolysaccharides produced by Bifidobacteria. Appl. Environ. Microbiol. 2013; 79 (23): 7518-7524.
17. Mayansky AN, Chebotar IV, Evteeva NI, Rudneva EI. Interspecies interaction of bacteria and the formation of mixed (polymicrobial) biofilm. Journal of Microbiology, Epidemiology, and Immunobiology. 2012; (1): 93-101. Russian (Маянский А.Н., Чеботарь И.В., Евтеева Н.И., Руднева Е.И. Межвидовое взаимодействие бактерий и образование смешанной (полимикробной) биопленки // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2012. №1. С. 93-101).
18. Zakharova YuV, Levanova LA. HIV-infected children's intestine microbiocenosis condition. Medicine in Kuzbass. 2015; (4): 2933. Russian (Захарова Ю.В., Леванова Л.А. Состояние микробиоценоза кишечника у ВИЧ-инфицированных детей // Медицина в Кузбассе. 2015. №4. С. 29-33).
19. Zakharova YuV, Sukhikh AS. Chromatographic analyses of membrane fatty acid Bifidobacterium with different hydrophobicity. Sorption and Chromatographic Processes. 2015; (6): 280-287. Russian (Захарова Ю.В., Сухих А.С. Хроматографический анализ жирных кислот клеточных стенок бифидобактерий с различной гидрофобностью // Сорбционные и хроматографические процессы. 2015. №6. С. 280-287).
20. Ivanova EV, Perunova NB, Valyshev AV, Valysheva IV, Bukharin OV. Species characteristic and factors of persistence of gut bifidoflora during healthy state and dysbiosis. Journal of Microbiology, Epidemiology, and Immunobiology. 2009; (2): 89-93. Russian (Иванова Е.В., Перунова Н.Б., Валышев А.В., Валышева И.В., Бухарин О.В. Видовая характеристика и факторы персистенции би-фидофлоры кишечника в норме и при дисбиозах // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2009. №2. С. 89-93).
VOL. 2, № 1 AUNNDDCALMNE|NCAALLMEDICINE ОРИГИНАЛЬНАЯ СТАТЬЯ
Сведения об авторах
Захарова Юлия Викторовна, кандидат медицинских наук, доцент
Корреспонденцию адресовать:
Захарова Юлия Викторовна
650056, Кемерово, ул. Ворошилова 22а, кафедры микробиологии, иммунологии и вирусологии, Е тац- т/2@Ък Ги
ФГБОУ ВО «Кемеровский государственный медицинский университет»
Минздрава России, г. Кемерово, Россия
Вклад в статью: выделение бифидобактерий, идентификация, изучение биологических свойств, получение экзометаболитов стафилококков, статистическая обработка данных, написание статьи.
Отдушкина Лариса Юрьевна, ассистент кафедры микробиологии, иммунологии и вирусологии, ФГБОУ ВО «Кемеровский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Кемерово, Россия Вклад в статью: выделение стафилококков, идентификация, подготовка чистых культур стафилококков для постановки основного опыта.
Леванова Людмила Александровна, доктор медицинских наук, заведующая кафедрой микробиологии, иммунологии и вирусологии, ФГБОУ ВО «Кемеровский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Кемерово, Россия
Вклад в статью: организация забора и доставки исследуемого материала, организация и участие в проведении бактериологических исследований, консультативная помощь, оформление статьи.
Сухих Андрей Сергеевич, кандидат фармацевтических наук, доцент, старший научный сотрудник центральной научно-исследовательской лаборатории, ФГБОУ ВО «Кемеровский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Кемерово, Россия Вклад в статью: пробоподготовка образцов к проведению ГХ-МС, организация хроматографического анализа, проведение спектрофотометрии экзометаболитов стафилококков
Corresponding author:
Dr. Yuliya V. Zakharova, Voroshilova Street 22a, Kemerovo, 650056, Russian Federation E-mail: yvz@bk.ru
Dr. Larisa Y. Otdushkina, MD, Assistant Professor, Department of Microbiology, Immunology and Virology, Kemerovo State Medical University, Kemerovo, Russian Federation
Contribution: performed the microbiology experiments and wrote the manuscript.
Prof. Lyudmila A. Levanova, MD, PhD, Professor, Head of the Department of Microbiology, Immunology and Virology, Kemerovo State Medical University, Kemerovo, Russian Federation
Contribution: conceived and designed the study; wrote the manuscript.
Dr. Andrey S. Sukhikh, MD, PhD, Senior Researcher, Central Research Laboratory, Kemerovo State Medical University, Kemerovo, Russian Federation
Contribution: performed gas chromatography-mass spectrometry. Acknowledgements: There was no funding for this project.
Authors
Dr. Yuliya V. Zakharova, MD, PhD, Associate Professor, Department of Microbiology, Immunology and Virology, Kemerovo State Medical University, Kemerovo, Russian Federation
Contribution: performed the microbiology experiments and wrote the manuscript.
Статья поступила: 02.12.16г. Принята в печать: 18. 01.17г.
