Научная статья на тему 'МАТЕРИАЛЫ ДЛЯ БИОМЕДИЦИНЫ НА ОСНОВЕ ПРОИЗВОДНЫХ И СОПОЛИМЕРОВ ХИТОЗАНА'

МАТЕРИАЛЫ ДЛЯ БИОМЕДИЦИНЫ НА ОСНОВЕ ПРОИЗВОДНЫХ И СОПОЛИМЕРОВ ХИТОЗАНА Текст научной статьи по специальности «Биотехнологии в медицине»

CC BY
32
11
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
ПРОИЗВОДНЫЕ / СОПОЛИМЕРЫ / ХИТОЗАН / МИКРОЧАСТИЦЫ / МАКРОПОРИСТЫЕ ГИДРОГЕЛИ / НЕТКАНЫЕ ВОЛОКНИСТЫЕ МАТЕРИАЛЫ
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Текст научной работы на тему «МАТЕРИАЛЫ ДЛЯ БИОМЕДИЦИНЫ НА ОСНОВЕ ПРОИЗВОДНЫХ И СОПОЛИМЕРОВ ХИТОЗАНА»

188

МАТЕРИАЛЫ V НАЦИОНАЛЬНОГО КОНГРЕССА ПО РЕГЕНЕРАТИВНОЙ МЕДИЦИНЕ

заболеваниями, особенно превентивное введение, позволяет повысить эффективность лечения ХСН, развивающейся при кардиотоксичной ХТ.

Литература:

1. Злокачественные новообразования в России в 2013 году (заболеваемость и смертность). Под ред. Каприна А.Д., Ста-ринского В.В., Петровой Г.В. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ «ФМИЦ им. П.А. Герцена» Минздрава России; 2015.

2. A.A. Matthews; Sh.P. Hinton; S. Stanway; et al. Lund J Natl Compr Canc Netw 2021; 19(3): 275-284.

3. Заплутанов В.А., Литовкин А.В., Белов В.Г. и др. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2016;5(2):25-28.

МАТЕРИАЛЫ ДЛЯ БИОМЕДИЦИНЫ

НА ОСНОВЕ ПРОИЗВОДНЫХ

И СОПОЛИМЕРОВ ХИТОЗАНА

Т.Н. Попырина1, Т.С. Демина1, 2, Т.А. Акопова1

1 Институт синтетических полимерных материалов им. Н.С. Ениколопова РАН, Москва, Россия

2 Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России, Москва, Россия

e-mail: tanjapopyrina@yandex.ru

Ключевые слова: производные, сополимеры, хитозан, микрочастицы, макропористые гидрогели, нетканые волокнистые материалы.

Ввиду большого количества требований, предъявляемых к материалам биомедицинского назначения, необходимо регулировать их свойства, в том числе за счет расширения спектра доступных технологий формования. Хитозан — продукт деацетилирования линейного полисахарида хитина, является ценным природным полимером и обладает способностью к биодеградации и биосовместимостью. Однако, существуют технологические ограничения при формовании материалов на его основе. Модифицирование его химической структуры позволит использовать различные подходы к получению трехмерных материалов с регулируемой структурой и свойствам.

Цель работы заключалась в разработке технологических подходов к получению материалов биомедицинского назначения в форме микрочастиц, нетканых микроволокнистых материалов и макропористых гидрогелей на основе производных и сополимеров хитозана.

Ряд производных и сополимеров хитозана с олиго-лактидами получен с использованием механохимиче-ских методов в отсутствие катализаторов и инициаторов процессов. Макропористые гидрогели на их основе были получены методом лиофильной сушки с последующей термообработкой [1]. Согласно данным сканирующей электронной микроскопии, все образцы гидрогелей обладали макропористой структурой с разветвленной системой взаимосвязанных пор широкого диапазона размеров, а также имели высокие степени влагопогло-щения, зависящие от химической структуры сополимера.

Микрочастицы из полилактида, покрытые хитозаном или его производными и сополимерами, были получены методом испарения растворителя из эмульсии «масло/ вода» [2]. Применение в качестве эмульгатора в дисперсионной среде производных и сополимеров хитоза-на позволило увеличить выход микрочастиц и изменить их распределение по размерам. Микрочастицы обладали сферической формой и однородной морфологией

поверхности. Качественный анализ химической структуры поверхности микрочастиц, проведенный с использованием селективного по отношению к аминогруппам хитозана флуоресцентного красителя, подтвердил наличие гидрофильных фрагментов полисахарида. Это позволило использовать полученные микрочастицы в качестве исходного материала для формования трехмерных структур методом поверхностно-селективного лазерного спекания [3].

Методом электроформования из сополимеров хитозана с олиго/полиэфирами были сформованы нетканые микроволокнистые материалы с широким распределением волокон по размерам и с выраженной шероховатостью поверхности. Качественный анализ химической структуры поверхности материала подтвердил наличие на ней гидрофильных фрагментов [4].

Литература:

1. Popyrina T.N. et. al. Polym. Sci. Ser. B. 2021. V. 63. № 5. P. 536-543.

2. Demina T. et. al. Polymers. 2021. V. 13. № 18. P. 3045.

3. Demina T.S. et. al. J. Mater. Res. 2022. V. 37. № 4. P. 933-942.

4. Demina T.S. et. al. RSC Adv. 2019. V. 9. № 64. P. 37652-37659.

ВЛИЯНИЕ СУКЦИНАТА НА ДИФФЕРЕНЦИРОВКУ КЛЕТОК С2С12

М.О. Порошина, Ю.В. Абаленихина, А.В. Щулькин, Е.Н. Якушева

ФГБОУ ВО Рязанский государственный медицинский университет им. И.П. Павлова Министерства здравоохранения Российской Федерации, Рязань, Россия

e-mail: mia.poroshina@yandex.ru

Ключевые слова: миогенез, сукцинат, клеточная линия С2С12.

Сукцинат (анион янтарной кислоты) локализован в ма-триксе митохондрий, является важнейшим метаболитом цитратного цикла, а также вносит существенный вклад в образование аденозинтрифосфата (АТФ). Изучен путь сукцината как лиганада: при передаче сигнала через сук-цинатные рецепторы (SUCNR1) происходит индукция мобилизации Са2+, активация протеинкиназы С, фосфоли-рирование внеклеточных регулируемых киназ (ERK1/2), что может способствовать синтезу и дифференцировке структурных белков миотрубок [1]. Поэтому настоящее исследование посвящено изучению влияния сукцината на дифференцировку клеток С2С12.

Исследование выполнено на клеточной линии мышин-ных миобластов С2С12, предоставленной Институтом биологии гена (Москва). Экспериментальные группы: клетки до дифференцировки — инкубация 7 дней в питательной среде с 10%-эмбриональной бычьей сывороткой; индукция дифференцировки миобластов — инкубация 7 дней в питательной среде с 2%-лошадиной сывороткой [2]; индукция дифференцировки миобластов с добавлением сукцината (Acros Organics, США) — клетки инкубировали 7 дней в дифференцировочной питательной среде с сукцинатом в концентрации 10мкМ. Методом вестерн-блот определяли содержание миозина и а-актина. Анализ результатов производили с помощью программы «StatSoft Statistica 13.0». Для оценки статистической значимости различий использовали

Гены & Клетки XVII, №3, 2022

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.