CC BY
326199
ФмтотЕФЯяух
УДК: 615.322
ЛЕКАРСТВЕННЫЕ РАСТЕНИЯ ИНГИБИРУЮЩИЕ ТИРОЗИНАЗУ
(ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
КАРОМАТОВ ИНОМЖОН ДЖУРАЕВИЧ
руководитель медицинского центра «Магия здоровья»,
город Бухара, Республика Узбекистан САИДОВА МАЛИКА СУЛЕЙМОНОВНА преподаватель Бухарского медицинского колледжа.
Город Бухара. Республика Узбекистан. АННОТАЦИЯ
В статье приводится обзор литературы по лекарственным травам обладающих свойством ингибировать фермент тирози-назу. Тирозиназа относится к металлопротеидам и является единственным ферментом в организме человека, животных и у растений, катализирующим многоступенчатую реакцию превращения тирозина в меланины в присутствии кислорода по схеме: тирозин -> 3,4-диоксифенилаланин —> фенилаланин-3,4-хинон -> 2-карбокси-2,3-дигидро-5,6-диоксииндол —> индол-5,6-хинон -> меланин. Воздействие на этот процесс перспективно для синтеза средств отбеливающих кожу и оказывающих терапевтическое воздействие при меланоме.
Ключевые слова: тирозиназа, меланин, лекарственные травы, фитотерапия
HERBS THE INHIBITING TYROSINEAZE (THE REVIEW OF LITERATURE)
KAROMA TOVINOMZHON DZHURA YEVICH
head of the medical center"Health Magic" the city of Bukhara,
Republic of Uzbekistan
SAIDOVA MALIKA SULEYMONOVNA
teacher of the Bukhara medical college. City of Bukhara.
Republic of Uzbekistan.
ABSTRACT
The review of literature on herbs by possessing property to inhibit tyrosinase enzyme is provided in article. Tirozinaza treats metalloproteida and is the only enzyme in a human body, animals and at plants, catalyzing multistage reaction of transformation of a tirozin into melanina in the presence of oxygen according to the scheme: tyrosin —> ; 3,4 dioxyphenylalanine —> phenylalanine-3,4-quinone —>; a 2-carboxy-2,3-dihydro-5,6-dioxyindole —>; indole-5,6-quinone —> melanin. Impact on this process is perspective for synthesis of the means bleaching skin and making therapeutic impact at a melanoma.
Keywords: tirozinaza, melanin, officinal herbs, phytotherapy
ТИРОЗИНАЗАНИ ИНГИБИРЛАЙДИГАН ДОРИВОР УСИМЛИКЛАР
(АДАБИЁТ ШАРХИ)
КАРОМАТОВ ИНОМЖОН ДЖУРАЕВИЧ
«Магия здоровья» тиббий марказ бошлиги. Бухоро ш.,
Узбекистон Республикаси САИДОВА МАЛИКА СУЛЕЙМОНОВНА Бухоро тиббий колледж уцитувчиси. Бухоро ш.,
Узбекистон Республикаси АННОТАЦИЯ
Мацолада тирозиназа ферментини ингибирлаш хусусияти булган доривор усимликлар хацида адабиёт шархи келтирилган. Тирозиназа металлопротеидлар туркумига киради ва усимликлар хайвонлар ва инсон орагнизмида яккаю ягона меланин синтезида цатнашидаган ферментдир. Меланин хосил булиши ушбу схемада утади: тирозин -> 3,4-диоксифенилаланин —> фенилаланин-3,4-
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №3-март(20) 2018
хинон -> 2-карбокси-2,3-дигидро-5,6-диоксииндол —> индол-5,6-хинон -> меланин. Ушбу процессга таъсир цилиш терини оцлаш ва меланома касаллигини даволашда сабоцлидир.
Калит сузлар: тирозиназа, меланин, доривор усимликлар, фитотерапия
ТИРОЗИНАЗА (монофенол, дигидроксифенилалании: кислород оксидоредуктаза, КФ 1.14.18.1; син.: монофенол-монооксигеназа, ортофенолаза, катехолоксидаза, полифенолоксидаза, лакказа; о- и n-дифенолоксидаза, ортофенолаза, урушиол-оксидаза) — фермент, относящийся к классу оксидоредуктаз и катализирующий реакцию между двумя донорами водорода с включением атома кислорода из O2 в молекулу одного из них. Тирозиназа относится к металлопро-теидам и является единственным ферментом в организме человека, животных и у растений, катализирующим многоступенчатую реакцию превращения тирозина в меланины в присутствии кислорода по схеме: тирозин -> 3,4-диоксифенилаланин —> фенилаланин-3,4-хинон -> 2-карбокси-2,3-дигидро-5,6-диоксииндол —> индол-5,6-хинон -> меланин.
Нарушения пигментации являются серьезными косметическими проблемами, которые весьма сложно поддаются терапии. К сожалению, большинство препаратов не проявляют достаточной клинической эффективности - [8, с.72]. По наблюдениям дерматологов, в течение месяца активной практики к ним за профессиональной помощью обращаются как минимум десять пациентов с проблемой пигментных пятен - [7]. Поиск новых средств для осветления кожи перспективна в косметологии и дерматологии.
Многие лекарственные растения имеют свойство ингибировать фермент тирозиназу, тем самым оказывая отбеливающее воз-
действие на кожу. Кроме того, ингибирование тирозиназы перспективно при лечении меланомы.
Гесперидин апельсинового сока ингибирует фермент тирози-назу и процесс образования меланина в коже - [32, р.657].
Ресвератрол ингибирует фермент тирозиназу и перспективен для использования как отбеливающее кожу средство - [54, р. 168; 56; 5, с.174].
Выявлены свойства спиртового экстракта виноградных косточек ингибировать фермент тирозиназу - [29, р.229; 4, с.48]. Добавление экстракта косточек винограда, в состав отбеливающих, солнцезащитных кремов улучшают их эффективность - [21, р.59].
Экстракты зимних опят, благодаря 1',3'-дилинеленоилу-2'-линолейилглицеролу обладают анти тирозиназной активностью -[34, р.683; 40, р.455].
Экстракты цветков Inula britannica L., в основном сесквитерпены ингибируют тирозиназу, процессы меланогенеза предупреждая развитие меланомы - [19, р.572].
Ориганозид душицы ингибирует фермент тирозиназу, которая играет большую роль в пигментации кожи. Это открывает большие перспективы использования душицы как противопигментного средства в косметологии - [46, р.175].
6-шогаол имбиря ингибирует фермент тирозиназу и процесс меланогенеза - [43, р.525; 63, р.291].
Выявлены анти-тирозиназные свойства экстракта стручков какао - [36].
Биочанин В клевера ингибирует тирозиназу и меланогенез, это открывает перспективы использования травы как отбеливающего кожу средства - [47, р.916].
Водные экстракты плодов лопуха обладают выраженной антитирозиназной активностью - [55].
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №3-март(20) 2018
Экспериментальные исследования спиртового экстракта сухой кожицы лука выявили, что она ингибирует синтез меланина в организме, также ингибирует фермент тирозиназу участвующего в этом процессе - [11, р.212; 12, р.261].
Экстракт цветков магнолии ингибирует фермент тирозиназу, процесс образования меланина, и может использоваться как отбеливающее кожу средство - [31; 3, с.306].
Оливковое масло ингибирует активность тирозиназы крови -[42, р.4123].
Фенольные вещества галлов ингибируют тирозиназу, тем самым ингибируют процессы меланогенеза - [49, р.1924].
Экстракты цветков персиков обладают выраженной анти тирозиназной активностью, перспективны для использования в качестве средства отбеливающие кожу - [52, р. 187].
Желтый пигмент сафлора картамин ингибирует фермент тирозиназу, тормозит процесс меланогенеза - [18].
Путрисцеин, определенный в софоре японской оказывает ингибирующее воздействие на тирозиназу меланоцитов кожи - [48, р.627].
Экстракты тысячелистника подавляют производство меланина, посредством ингибирования тирозиназы - [58].
Фенольные вещества хмеля обладают антитирозиназной активностью - [38, р.745].
Исследования показали наличие антитирозиназной активности у экстрактов шандры - [53].
Так как плоды тута ингибируют фермент тирозиназу, участвующую в процессе меланогенеза, то аппликации ими перспективны в косметологии - [45, р.297; 13, р.225; 60, р.357; 9, р.358; 24, р.789; 1, с.258]. Экстракты плодов и веток черной шелковицы также обладают антитирозиназной активностью - [23; 30, р.5; 41, р.187].
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №3-март(20) 2018
Такими свойствами обладают кора корней и корни черного тутовника - [65, р.5371; 39, р.1428] и экстракты веток и листьев белой шелковицы - [35, р.8739; 61, р.1742; 64]. Эти свойства связывают с содержащими в корнях мулберрозидами - [57, р.3043; 15, р.120]. Экспериментальные исследования показали, что дигидроксиресве-ратрол, выделенный из древесины белой шелковицы обладает выраженной антитирозиназной активностью - [17]. Метаболиты, образующиеся при УФО облучении листьев тутовника, защищают организм от повреждающего действия этого облучения - [28, р.2990].
Бетулин и траметенолическая кислота чаги ингибируют фермент тирозиназу, в то время как инотодиол и ланостерол повышают активность этого фермента - [62].
Кора дерева черемухи обладает антитирозиназной активностью, в связи с этим использована в качестве косметического отбеливающего средства - [33, р.2283].
Черный перец ингибирует фермент тирозиназу - [37, р. 1968]. Экспериментальные исследования показали, что пиперин предупреждает поражение и старение клеток кожи под воздействием ультрафиолетового облучения - [59, р.146]. Более выражены эти свойства у синтетического производного пиперина - изопропил пиперата - [20, р.480].
Прием фенхеля и его экстрактов предупреждает поражение, старение кожи и меланогенез под воздействием ультрафиолетового излучения - [6].
Сапонины якорцов регулируют меланогенез, и активность фермента тирозиназы - [25, р. 1018].
У прополиса открыты и фотопротективные свойства от УФ облучения Солнца, которые успешно применяются в производстве солнцезащитных кремов - [22, р.267; 26; 27, р.98; 16; 51; 2, с.189; 10;
14, р.340]. Эти свойства связывают с кофейной кислотой, у которой открыты свойства ингибировать фермент тирозиназу - [44, р. 1401].
Экстракты каперсов повышают активность тирозиназы, стимулируют меланогенез. Это открывает перспективы для использования травы при лечении витилиго, гнездной плешивости и как средства для загара - [50, р.470].
Список литературы:
1. Бабаджанова З.Х., Кароматов И.Д., Жумаев Б.З., Алымова Д.К. Шелковица, тут: применение в древней, современной народной и научной медицине (обзор литературы) - Молодой ученый, 2015, 7, 256-266.
2. Кароматов И.Д. Прополис: использование в медицине -Молодой ученый 2014, 3, 183-199.
3. Кароматов И.Д. Простые лекарственные средства Бухара
2012.
4. Кароматов И.Д., Абдулхаков И.У. Виноградник, виноград, изюм - применение в медицине (обзор литературы) - Современная наука - обществу XXI века. Книга 3 Ставрополь «Логос» 2016, глава II, 35-76.
5. Кароматов И.Д., Ашурова Н.Г., Адизова Д.Р., Райманова З.Н., Мусаева Р.Х. Вино и медицина (обзор литературы) - Наука и общество: от теории к практике - книга 2, Глава V. - Глава VI. 155-187.
6. Кароматов И.Д., Музаффарова С.К. Тураев П.Т. Лечебные свойства фенхеля - Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» 2017 №9 (октябрь)
7. Касихина Е.И. Гиперпигментация: современные возможности терапии и профилактики - Лечащий врач 2011, 6, 73.
8. Колбе Л., Манн Т., Герват В., Бацер Дж., Аллейт С., Шернер К., Венк Г., Штаб Ф. Поиск эффективного ингибитора тирозиназы для лечения гиперпигментации - Косметика и медицина 2016, 3 70-74.
9. Adhikari A., Devkota H.P., Takano A., Masuda K., Nakane T., Basnet P., Skalko-Basnet N. Screening of Nepalese crude drugs traditionally used to treat hyperpigmentation: in vitro tyrosinase inhi-bition - Int. J. Cosmet. Sci. 2008, Oct., 30(5), 353-360.
10. Angelo G., Lorena C., Marta G., Antonella C. Biochemical Composition and Antioxidant Properties of Lavandula angustifolia Miller Essential Oil are Shielded by Propolis against UV Radiations -Photochem. Photobiol. 2013, Dec 23.
11.Arung E.T., Furuta S., Ishikawa H., Tanaka H., Shimizu K., Kondo R. Melanin biosynthesis inhibitory and antioxidant activities of quercetin-3'-O-beta-D-glucoside isolated from Allium cepa - Z. Naturforsch. C. 2011, May-Jun., 66(5-6), 209-214.
12. Arung E.T., Wijaya Kusuma I., Shimizu K., Kondo R. Tyrosinase inhibitory effect of quercetin 4'-O-£-D-glucopyranoside from dried skin of red onion (Allium cepa) - Nat. Prod. Res. 2011, Feb., 25(3), 256-263.
13. Bernard P., Berthon J.Y. Resveratrol: an original mechanism on tyrosinase inhibition - Int. J. Cosmet. Sci. 2000, Jun., 22(3), 219-226.
14. Bolfa P., Vidrighinescu R., Petruta A., Dezmirean D., Stan L., Vlase L., Damian G., Catoi C., Filip A., Clichici S. Photoprotective effects of Romanian propolis on skin of mice exposed to UVB irradiation - Food Chem. Toxicol. 2013, Dec., 62, 329-342.
15. Burlando B., Clericuzio M., Cornara L. Moraceae Plants with Tyrosinase Inhibitory Activity: A Review - Mini Rev. Med. Chem. 2017, 17(2), 108-121.
16. Butnariu M.V., Giuchici C.V. The use of some nanoemulsions based on aqueous propolis and lycopene extract in the skin's protective mechanisms against UVA radiation - J. Nanobiotechnology 2011, Feb 4, 9, 3.
17. Chaita E., Lambrinidis G., Cheimonidi C., Agalou A., Beis D., Trougakos I., Mikros E., Skaltsounis A.L., Aligiannis N. Anti-Melanogenic Properties of Greek Plants. A Novel Depigmenting Agent from Morus alba Wood - Molecules. 2017, Mar 23, 22(4). pii: E514. doi: 10.3390/molecules22040514.
18. Chen Y.S., Lee S.M., Lin C.C., Liu C.Y., Wu M.C., Shi W.L. Kinetic study on the tyrosinase and melanin formation inhibitory activities of carthamus yellow isolated from Carthamus tinctorius L. - J. Biosci. Bioeng. 2012, Oct 10.
19. Choo S.J., Ryoo I.J., Kim K.C., Na M., Jang J.H., Ahn J.S., Yoo I.D. Hypo-pigmenting effect of sesquiterpenes from Inula britannica in B16 melanoma cells - Arch. Pharm. Res. 2014, May, 37(5), 567-574.
20. Choochana P., Moungjaroen J., Jongkon N., Gritsanapan W., Tangyuenyongwatana P. Development of piperic acid derivatives from Piper nigrum as UV protection agents - Pharm. Biol. 2015, Apr., 53(4), 477-482. doi: 10.3109/13880209.2014.924020.
21. Costa A., Lindmark L., Arruda L.H., Assumpgao E.C., Ota F.S., Pereira Mde O., Langen S.S. Clinical, biometric and ultrasound assessment of the effects of daily use of a nutraceutical compo-sed of lycopene, acerola extract, grape seed extract and Biomarine Complex in photoaged human skin - An. Bras. Dermatol. 2012, Jan-Feb., 87(1), 5261.
22. Couteau C., Pommier M., Paparis E., Coiffard L.J. Photoprotective activity of propolis - Nat. Prod. Res. 2008, Feb 15, 22(3), 264-268.
23. de Freitas M.M., Fontes P.R., Souza P.M., William Fagg C., Neves Silva Guerra E., de Medeiros Nobrega Y.K., Silveira D., Fonseca-Bazzo Y., Simeoni L.A., Homem-de-Mello M., Oliveira Magalhaes P. Extracts of Morus nigra L. Leaves Standardized in Chlorogenic Acid, Rutin and Isoquercitrin: Tyrosinase Inhibition and Cytotoxicity - PLoS One. 2016, Sep 21, 11(9), e0163130. doi: 10.1371/journal.pone.0163130/
24. de Oliveira A.M., Mesquita M.da S., da Silva G.C., de Oliveira Lima E., de Medeiros P.L., Paiva P.M., de Souza I.A., Napoleao T.H. Evaluation of Toxicity and Antimicrobial Activity of an Ethanolic Extract from Leaves of Morus alba L. (Moraceae) - Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2015, 2015, 513978. doi: 10.1155/2015/513978.
25. Deng Y., Yang L., An S. L. Effect of Tribulus terrestris L decoction of different concentrations on tyrosinase activity and the proliferation of melanocytes - Di Yi Jun Yi Da Xue Xue Bao 2002, Nov., 22(11), 10171019.
26. Fonseca Y.M., Marquele-Oliveira F., Vicentini F.T., Furtado N.A., Sousa J.P., Lucisano-Valim Y.M., Fonseca M.J. Evaluation of the Potential of Brazilian Propolis against UV-Induced Oxidative Stress - Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2011, 2011, 863917.
27. Gregoris E., Fabris S., Bertelle M., Grassato L., Stevanato R. Propolis as potential cosmeceutical sunscreen agent for its combined photoprotective and antioxidant properties - Int. J. Pharm. 2011, Feb 28, 405(1-2), 97-101.
28. Gu X.D., Sun M.Y., Zhang L., Fu H.W., Cui L., Chen R.Z., Zhang D.W., Tian J.K. UV-B induced changes in the secondary metabolites of Morus alba L. leaves - Molecules 2010, Apr 27, 15(5), 2980-2993.
29. Hsu C.K., Chou S.T., Huang P.J., Mong M.C., Wang C.K., Hsueh Y.P., Jhan J.K. Crude ethanol ex-tracts from grape seeds and peels exhibit anti-tyrosinase activity - J. Cosmet. Sci. 2012, Jul-Aug., 63(4), 225-232.
30. Hu X., Yu M.H., Yan G.R., Wang H.Y., Hou A.J., Lei C. Isoprenylated phenolic compounds with tyrosinase inhibition from Morus nigra - J. Asian. Nat. Prod. Res. 2017, Nov 30, 1-6. doi: 10.1080/10286020.2017.1350653/
31. Huang H.C., Hsieh W.Y., Niu Y.L., Chang T.M. Inhibition of melanogenesis and antioxidant pro-perties of Magnolia grandiflora L. flower extract - BMC Complement. Altern. Med. 2012, 12, 72.
32. Huang Y.C., Liu K.C., Chiou Y.L. Melanogenesis of murine melanoma cells induced by hesperetin, a Citrus hydrolysate-derived flavonoid - Food Chem. Toxicol. 2012, Mar., 50(3-4), 653-659.
33. Hwang D., Kim H., Shin H., Jeong H., Kim J., Kim D. Cosmetic effects of Prunus padus bark extract - Korean Journal of Chemical Engineering 2014, 31(12), 2280-2285.
34. Jang S.G., Jeon K.S., Lee E.H., Kong W.S., Cho J.Y. Isolation of 1',3,-dilinolenoyl'-2,-linoleoylglycerol with tyrosinase inhibitory activity from Flammulina velutipes - J. Microbiol. Biotechnol. 2009, Jul., 19(7), 681-684.
35. Jeong J.Y., Liu Q., Kim S.B., Jo Y.H., Mo E.J., Yang H.H., Song
D.H., Hwang B.Y., Lee M.K. Characterization of Melanogenesis Inhibitory Constituents of Morus alba Leaves and Optimization of Extraction Conditions Using Response Surface Methodology - Molecules 2015, May 14, 20(5), 8730-8741. doi: 10.3390/molecules20058730/
36. Karim A.A., Azlan A., Ismail A., Hashim P., Abd Gani S.S., Zainudin B.H., Abdullah N.A. Phenolic composition, antioxidant, anti-wrinkles and tyrosinase inhibitory activities of cocoa pod extract - BMC Complement. Altern. Med. 2014, Oct 7, 14, 381.
37. Khanom F., Kayahara H., Tadasa K. Tyrosinase inhibitory activity of Bangladeshi indigenous me-dicinal plants - Biosci Biotechnol. Biochem. 2000, Sep., 64(9), 1967-1969.
38. Kim D.W., Woo H.S., Kim J.Y., Ryuk J.A., Park K.H., Ko B.S. Phenols displaying tyrosinase inhibition from Humulus lupulus - J. Enzyme. Inhib. Med. Chem. 2016, Oct., 31(5), 742-747. doi: 10.3109/14756366.2015.1063621.
39. Kim J.S., You H.J., Kang H.Y., Ji G.E. Enhancement of the tyrosinase inhibitory activity of Mori Cortex Radicis extract by biotransformation using Leuconostoc paramesenteroides PR - Biosci. Biotechnol. Biochem. 2012, 76(8), 1425-1430.
40. Kim S.Y., Kong W.S., Cho J.Y. Identification of differentially expressed genes in Flammulina velutipes with anti-tyrosinase activity -Curr. Microbiol. 2011, Feb., 62(2), 452-457.
41. Koyu H., Kazan A., Demir S., Haznedaroglu M.Z., Yesil-Celiktas O. Optimization of microwave assisted extraction of Morus nigra L. fruits maximizing tyrosinase inhibitory activity with isolation of bioactive constituents - Food Chem. 2018, May 15, 248, 183-191. doi: 10.1016/j.foodchem.2017.12.049.
42. Kubo I., Kinst-Hori I. Flavonols from saffron flower: tyrosinase inhibitory activity and inhibition mechanism - J. Agric. Food. Chem. 1999, Oct., 47(10), 4121-4125.
43. Kuo P.C., Damu A.G., Cherng C.Y., Jeng J.F., Teng C.M., Lee
E.J., Wu T.S. Isolation of a natural antioxidant, dehydrozingerone from Zingiber officinale and synthesis of its analogues for recognition of effective antioxidant and antityrosinase agents - Arch. Pharm. Res. 2005, May, 28(5), 518-528.
44. Lee J.Y., Choi H.J., Chung T.W., Kim C.H., Jeong H.S., Ha K.T. Caffeic acid phenethyl ester inhibits alpha-melanocyte stimulating hormone-induced melanin synthesis through suppressing transactivation activity of microphthalmia-associated transcription factor - J. Nat. Prod. 2013, Aug 23, 76(8), 1399-1405.
45. Lee K.T., Kim B.J., Kim J.H., HEO M.Y., Kim H.P. Biological screening of 100 plant extracts for cosmetic use (I): inhibitory activities of tyrosinase and dopa auto-oxidation - International Journal of Cosmetic Science 1997, 19, 6, 291-298.
46. Liang C.H., Chou T.H., Ding H.Y. Inhibition of melanogensis by a novel origanoside from Origa-num vulgare - J. Dermatol. Sci. 2010, Mar., 57(3), 170-177.
47. Lin V.C., Ding H.Y., Tsai P.C., Wu J.Y., Lu Y.H., Chang T.S. In vitro and in vivo melanogenesis inhibition by biochanin A from Trifolium pretense - Biosci. Biotechnol. Biochem. 2011, 5, 914-918.
48. Lo Y.H., Lin R.D., Lin Y.P., Liu Y.L., Lee M.H. Active constituents from Sophora japonica exhibiting cellular tyrosinase inhibition in human epidermal melanocytes - J. Ethnopharmacol. 2009, Jul 30,124(3), 625629.
49. Manosroi A., Jantrawut P., Akazawa H., Akihisa T., Manosroi J. Biological activities of phenolic compounds isolated from galls of Terminalia chebula Retz. (Combretaceae) - Nat. Prod. Res. 2010, Dec., 24(20), 1915-1926.
50. Matsuyama K., Villareal M.O., El Omri A., Han J., Kchouk M.E., Isoda H. Effect of Tunisian Capparis spinosa L. extract on melanogenesis in B16 murine melanoma cells - J. Nat. Med. 2009, Oct., 63(4), 468-472.
51. Murase H., Shimazawa M., Kakino M., Ichihara K., Tsuruma K., Hara H. The Effects of Brazilian Green Propolis against Excessive Light-Induced Cell Damage in Retina and Fibroblast Cells - Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2013, 2013, 238279.
52. Murata K., Takahashi K., Nakamura H., Itoh K., Matsuda H. Search for skin-whitening agent from Prunus plants and the molecular targets in melanogenesis pathway of active compounds - Nat. Prod. Commun. 2014, Feb., 9(2), 185-188.
53. Namjoyan F., Jahangiri A., Azemi M.E., Arkian E., Mousavi H. Inhibitory Effects of Physalis alkekengi L., Alcea rosea L., Bunium persicum B. Fedtsch. and Marrubium vulgare L. on Mushroom Tyrosinase - Jundishapur. J. Nat. Pharm. Prod. 2015, Feb 20, 10(1), e23356.
54. Ndiaye M., Philippe C., Mukhtar H., Ahmad N. The grape antioxidant resveratrol for skin disorders: promise, prospects, and challenges - Arch. Biochem. Biophys. 2011, 508(2), 164-170.
55. Park H., Song K.H., Jung P.M., Kim J.E., Ro H., Kim M.Y., Ma J.Y. Inhibitory Effect of Arctigenin from Fructus Arctii Extract on Melanin
Synthesis via Repression of Tyrosinase Expression - Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2013, 2013, 965312.
56. Park J., Boo Y.C. Isolation of resveratrol from vitis viniferae caulis and its potent inhibition of human tyrosinase - Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2013, 2013, 645257.
57. Park K.T., Kim J.K., Hwang D., Yoo Y., Lim Y.H. Inhibitory effect of mulberroside A and its derivatives on melanogenesis induced by ultraviolet B irradiation - Food Chem. Toxicol. 2011, Dec., 49(12), 30383045
58. Peng H.Y., Lin C.C., Wang H.Y., Shih Y., Chou S.T. The melanogenesis alteration effects of Achillea millefolium L. essential oil and linalyl acetate: involvement of oxidative stress and the JNK and ERK signaling pathways in melanoma cells - PLoS One. 2014, Apr 17, 9(4), e95186. doi: 10.1371/journal.pone.0095186.
59. Verma A., Kushwaha H.N., Srivastava A.K., Srivastava S., Jamal N., Srivastava K., Ray R.S. Piperine attenuates UV-R induced cell damage in human keratinocytes via NF-kB, Bax/Bcl-2 pathway: An application for photoprotection - J. Photochem. Photobiol. B. 2017, Jul., 172, 139-148. doi: 10.1016/j.jphotobiol.2017.05.018.
60. Wang K.H., Lin R.D., Hsu F.L., Huang Y.H., Chang H.C., Huang C.Y., Lee M.H. Cosmetic appli-cations of selected traditional Chinese herbal medicines - J. Ethnopharmacol. 2006, Jul., 19, 106 (3), 353-359.
61. Ya W., Chun-Meng Z., Tao G., Yi-Lin Z., Ping Z. Preliminary screening of 44 plant extracts for anti-tyrosinase and antioxidant activities - Pak. J. Pharm. Sci. 2015, Sep., 28(5), 1737-1744.
62. Yan Z.F., Yang Y., Tian F.H., Mao X.X., Li Y., Li C.T. Inhibitory and Acceleratory Effects of Inonotus obliquus on Tyrosinase Activity and Melanin Formation in B16 Melanoma Cells - Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2014, 2014, 259836.
63. Yao C., Oh J.H., Oh I.G., Park C.H., Chung J.H. [6]-Shogaol inhibits melanogenesis in B16 mouse melanoma cells through activation of the ERK pathway - Acta Pharmacol. Sin. 2013, Feb., 34(2), 289-294.
64. Zhang L., Tao G., Chen J., Zheng Z.P. Characterization of a New Flavone and Tyrosinase Inhibition Constituents from the Twigs of Morus alba L. - Molecules. 2016, Sep 2, 21(9), pii: E1130. doi: 10.3390/molecules21091130.
65. Zheng Z.P., Cheng K.W., Zhu Q., Wang X.C., Lin Z.X., Wang M. Tyrosinase inhibitory consti-tuents from the roots of Morus nigra: a structure-activity relationship study - J. Agric. Food Chem. 2010, May 12, 58(9), 5368-5373.
