CC BY
72
додендронов Адамса и мелколистного. Всего идентифицировано 56 компонентов эфирного масла. Определены преобладающие компоненты для каждого вида.
Установлено, что химический состав эфирных масел этих видов различается не только по качественному составу, но и количественному содержанию компонентов.
QUALITATIVE STRUCTURE OF ESSENTIAL OIL RHODODENDRON ADAMSII AND PARVIFOLIUM, GROWING IN EAST SIBERIA
V.M. Mirovich, T.A. Konenkina, G.M. Fedoseeva (Irkutsk State Medical University, Siberian Institute of Plant Physyology and Biochemistry SB RAS)
The method GC-MS investigates a chemical compound essential oil Rhododendron, growing in East Siberia. It is revealed in Rhododendron adamsii 53, Rhododendron parvifolium 134 components, from them it is identified 27 (34) connections. The basic components of essential oils in Rhododendron adamsii are germacron(26,3%), trans-nerolidol (18,4%), in Rhododendron parvifolium are isoaromadendren epoxyd (13,8%), patschoulol (4,9%).
ЛИТЕРАТУРА 3. МалышевЛ.И. Растительность Восточного Саяна в пре-
1 г тт п v ~ делах Бурятской АССР // Научные чтения памяти М.Г
L Белова Н.В. К химическ°му исследованию растенш Попова*Пятое чтение. — Иркутск, 1963. - С.3-47.
рода рододендтсон5//2^2‘.тительные ресурсы. 1968. 4. Пигулевский Г.В., Белова КВ. К исследованию эфир-
т i>4’ вып. if,- S.25, Г „г ^ Л гг д тт ного масла Rhododendron adamsii Rhed // Журнал орга-
2. Мирович В.М., Федосеева Г.М., Федосеев А.П. и др. Ис- нической химии. н 1964. н Т. 34 № 4. - С.1345-1348.
следование антимикробных свойств рододендронов 5. ФедосеевА.П., Федосеева Г.М., Мирович В.М. и др. Перс-Прибажк;алья // .Актуальна проблемы те°рии и ^ прах- пективы внедрения в медицинскую практику некоторых
тики фармации. Сб. научных статей. Барнаул. Изд видов лекарственных растений Прибайкалья // Сибир-
во Алтайского госуд. ун та, 200. С.213 216.________________ский медицинский журнал. — 2001. — № 3. — С.70-75.
© МАНЮК Е.С., ИЗАТУЛИН В.Г., ВАСИЛЬЕВА Л.С., ИВАНОВА Л. А. - 2008
КОРРЕКЦИЯ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ГИПОТИРЕОЗА РАСТИТЕЛЬНЫМ ПРЕПАРАТОМ «БАЯКОН»
Е. С. Манюк, В.Г. Изатулин, Л. С. Васильева, Л.А. Иванова
(Иркутский государственный медицинский университет, ректор — д.м.н., проф. И.В. Малов, кафедра гистологии и
эмбриологии, зав. — д.б.н., проф. Л.С. Васильева)
Резюме. Изучено влияние растительного препарата аконита байкальского на морфологическое состояние щитовидной железы в условиях экспериментального гипотиреоза. Установлено корригирующее действие препарата «Баякон», которое начинает проявляться через 2 недели после начала его применения и достигает максимума через 8 недель. Ключевые слова: гипотиреоз, морфометрия, «Баякон»._________________________________________
По данным эпидемиологических исследований, в последние два десятилетия отмечается рост заболеваемости щитовидной железы, что вызывает интерес исследователей к данной проблеме. Дисфункция щитовидной железы полиэтиологична, может быть связана с аномалией развития, генетической аутоиммунной патологией, дефицитом Т-супрессоров, воспалительным процессом в ткани щитовидной железы, врожденным дефектом ферментных систем, медикаментозной терапией, струмогенным эффектом дефицита микроэлементов (йод, селен, кобальт, хром, медь и магний) и другими причинами [1,6,10].
Лечебная тактика заболеваний щитовидной железы за последние 10-15 лет заметно не изменилась, а арсенал эффективных лекарственных средств, предназначенных для лечения и профилактики указанной патологии, явно недостаточен. В связи с вышеизложенным, актуальность исследований по изучению эффективных лекарственных средств, предназначенных для лечения и профилактики заболеваний щитовидной железы, не вызывает сомнений [7,9].
Наиболее перспективным в данном отношении представляется препарат аконита байкальского “Баякон”. Биологическая активность аконита байкальского обусловлена содержанием дитерпеновых алкалоидов (зонгорин, напеллин, мезаконитин и гипаконитин) и флавоноидов (гликозиды бикемпферола и бикверцети-на, а также кверцетина и кемпферола) [13,20]. Настойка аконита байкальского представляет собой комплекс веществ, экстрагируемых из травы аконита байкальского 30% раствором этилового спирта с последующим отстаиванием и фильтрацией. Цель исследования заключалась в выявлении возможности коррекции нарушения структуры щитовидной железы растительным препаратом “Баякон” при различной обеспеченности
организма тиреоидными гормонами в условиях экспериментального гипотиреоза.
Материалы и методы
Экспериментальный гипотиреоз моделировали у 96 белых крыс по аналогичной схеме. Животные также были разделены на 3 группы: 1 группа получала мерказолил (“Акрихин”, Россия) в дозе 10 мг на кг массы. Препарат вводили ежедневно, перорально, в составе обычного рациона пищи, в течение 8-х недель; 2 группа получала мерказолил в такой же дозировке, в аналогичные сроки, с последующей коррекцией препаратом “Баякон”. Препарат вводили крысам эндогастрально, ежедневно, в дозировке 0,5 мл на кг массы, с 8-й по 16 неделю эксперимента. Третья группа — интактные животные. На 2-й, 4-й, 8-й, 10-й, 12-й и 16-й неделе эксперимента после декапитации проводили забор морфологического материала [12]. Для морфометрического исследования ЩЖ использовали обе доли, которые фиксировали в 10% растворе формалина и заливали в гистопласт. Серийные срезы толщиной 7 мкм окрашивали гематоксилином и эозином. Часть срезов толщиной 5 мкм окрашивали азуром и эозином [8,11].
Для патоморфологического анализа щитовидной железы нами были использованы алгоритмы гистологического описания, разработанные О.К. Хмельницким [15], для унифицированного патогистологического исследования и объективизации оценки отмеченных изменений [3,4,14].
Так как изменение функциональной активности щитовидной железы сопровождается перестройкой ее гистоструктуры, которая выражается в изменении ее тканевых компонентов, в работе была использована методика определения соотношения тканевых компонентов. Методом точечного счета [2] проводили морфометрию структурных компонентов ЩЖ: фолликулярного эпителия, стромы, интерфолликулярного эпителия, сосудов [5,11,15].
Результаты обрабатывали параметрическими методами вариационной статистики с использованием ^критерия Стьюдента. Значимы различия при р<0,05.
Результаты и обсуждение
При кормлении крыс мерказолилом клиническая симптоматика развивающегося гипотиреоза наблюдалась через 10-12 дней. У экспериментальных животных отмечалась гиподинамия и увеличение массы. После 2х недель моделирования увеличение массы тела составило 11,2+4/100 г массы тела, после 8 недель моделирования — 15,8+7/100 г массы тела.
При вскрытии у всех без исключения животных нами был отмечен доминирующий показатель струмогенного эффекта избытка тиреоидных гормонов в организме на макро- и микроскопическом уровне. Отмечалось достоверное увеличение массы щитовидных желез. При моделировании экспериментального гипотиреоза через 2-е недели масса щитовидных желез составляла 23,7+0,52 мг, на 4-й неделе моделирования — 41,5+1,4 мг, на 8-й неделе моделирования — 46,1 + 1,5 мг. Именно этот признак имеет решающее значение для постановки диагноза — зоб, как самостоятельной нозо-ологической формы патологии щитовидной железы при дифференциальной диагностике.
Ингибирование мерказолилом функциональной активности щитовидной железы при моделировании гипотиреоза привело через 8 недель к выраженным изменениям, что на 56 сутки наблюдаются как выраженные изменения основных морфометрических параметров, соответствующих снижению функциональной активности органа. Изменились соотношения площадей, занимаемых основными структурами в паренхиме железы. Возросла интенсивность пролиферативных процессов, отдельные фолликулы достигали гигантских размеров за счет перерастяже-ния коллоидом, приобретали неровные очертания, звездчатый рисунок. Все тироциты принимали уплощенную форму за счет увеличения размеров фолликула и растяжения его стенки накопившимся коллоидом. Процесс гиперплазии тиреоидного эпителия носил диффузный характер и развивался у всех без исключения животных. Средний диаметр фолликулов превышал значения в контроле в 2 раза и был равен 119,8+1,2 мкм.
Угнетение гормоногенеза приводило к уменьшению морфометрических показателей эпителиальных компонентов: высота тироци-тов снижалась до 5,4+0,15 мкм (в контроле 7,1+0,56 мкм; р<0,05) (рис. 1), вследствие этого относительный объем фолликулярного эпителия уменьшался до 23,6+0,16% (в контроле 41,4+1,3% р<0,05), объем интерфолликулярного эпителия снижался до 0,27мкм3 (в контроле 0,35 мкм3), а средняя площадь тироцитов равнялась 29,1+0,42 мкм3 (у интактных 37,13+0,77 мкм3; р<0,05).
За счет накопления коллоида внутри фолликулов его относительный объем увеличивался до 70,+0,43% (в контроле 46,2+0,8%; р<0,05), а плотность коллоида до 52,1+0,18 (у интактных 34,6+0,2), за счет чего величина фолликулярно-коллоидного индекса (ФКИ) уменьшилась до 0,33 (у интактных крыс 0,77). Концентрация интрафолликулярного йода уменьшилась до 0,22+0,22 (в контроле 0,35+0,01, р<0,05).
Изменения в структуре фолликулов отразились на стромально-паренхиматозных отношениях, которые изменялись в сторону уменьшения относительного объема стромы 6,6+0,13% (у интактных крыс 11,7+1,0%; р<0,05), индекс склерозирования возрос до 14,18 (у ин-тактных крыс 7,54).
Численность С-клеток не изменялась и равна 0,92+0,04% (у интактных животных 0,9+0,20%)
Относительный объем перифолликулярного сосудистого русла к 16 неделе уменьшился незначительно — до 0,131% (у интактных животных 0,14%) за счет сужения междольковых венул и капилляров, окружающих фолликулы.
Отмечена миграция лаброцитов, большая часть лаб-
роцитов дегранулирована, что указывает на истощение тучноклеточного компонента. Все тканевые базофилы находились в состоянии активной дегрануляции. Число тканевых базофилов в 1 мм2 равно 31,02+0,52 (у интактных крыс 21,42+0,71 в 1 мм2, р<0,05). Индекс дегрануляции возрастал и составлял в этот период 82,14+0,15% (в контроле 70,43+0,61%, р<0,05).
При коррекции экспериментального гипотиреоза препаратом «Баякон» на 16 неделе эксперимента отмечались признаки усиления активности внутриклеточных биосинтетических процессов: увеличение высоты тироцитов, эпителий приобретал кубическую, на отдельных участках призматическую форму, наблюдалось разжижение и эвакуация коллоида.
Средняя высота фолликулярного эпителия увеличивалась до 6,7+0,19 мкм (без коррекции 6,25+0,21 мкм), относительный объем фолликулярного эпителия составлял 24,5+0,37% (без коррекции 24,2+0,37%), интерфолликулярного эпителия 0,28+0,01% (без коррекции 0,28+0,02%), средняя площадь тироцитов составляла 29,7+0,4 мкм2 (без коррекции 29,2+0,51мкм2). Относительный объем коллоида уменьшался до 67,8+0,36% (без коррекции 69,5+0,35%; р<0,05), а коэффициент его резорбции увеличивался (рис. 1). В результате уменьшения относительного объема коллоида фолликулярно-коллоидный индекс (ФКИ) — отношение объемных фракций эпителия и коллоида — увеличился и составил 0,38+0,003 (без коррекции 0,35+0,007; р<0,05). Плотность коллоида уменьшилась до 38,5+0,18 (без
коррекции 41,2±0,34; р<0,05). Концентрация интерфолликулярного йода составила 0,27±0,09 (без коррекции 0,26±0,08).
Относительный объем перифолликулярного сосудистого русла не изменился и составил 0,134% (без коррекции 0,133%).
Исследование стромы щитовидной железы показало, что ее относительный объем не изменялся и составлял до 6,93±0,19 % (без коррекции 6,78±0,3%), но индекс склерозирования уменьшился до 13,1 (без коррекции 13,7).
Относительный объем С-клеток практически не изменяется 0,91±0,02% (без коррекции 0,9±0,01%).
В соединительнотканной строме ЩЖ увеличилось количество тучных клеток в состоянии дегрануляции. Из данных литературы известно, что тканевые базофи-лы наряду с парафолликулярными клетками обеспечивают гомеостаз биогенных аминов в ЩЖ. Тучные клетки периферических зон могут выступать в качестве переносчиков серотонина и катехоламинов в функционально более активные центральные зоны органа. Серотонин и катехоламины, в свою очередь, стимулируют эндоцитоз коллоида фолликулярными клетками и выведение тиреоидных гормонов в кровь, а также регулируют функциональное состояние микроциркулятор-
Обозначения: светлые столбики — гипотиреоз без коррекции, черные столбики — коррекция гипотиреоза «Баяконом».
Рис. 1. Увеличение коэффициента резорбции коллоида в щитовидной железе под действием препарата «Баякон» у животных с экспериментальным гипотиреозом.
ного русла железы. Число тканевых базофилов, выявленных в 1 мм2, возрастало до 27,41±0,16 (без коррекции 26,30±0,12 в 1 мм2, р<0,05). Индекс дегрануляции лаброцитов возрастал до значения 77,15±0,48% (без коррекции 76,12±0,15%; р<0,05).
Полученные результаты позволили сделать заключение о возможности коррекции экспериментального гипотиреоза с помощью растительного препарата «Ба-якон».
Корригирующее действие этого препарата начинает проявляться после 2 недель его применения, а через 8 недель наблюдается стойкий корригирующий эффект.
Положительный эффект применения препарата «Баякон» в качестве корректора дисфункционального состояния щитовидной железы подтверждает необходимость дальнейших исследований препарата для рекомендации его в клиническую практику.
THE CORRECTION OF THE EXPERIMENTAL HYPOTHYROSIS WITH PLANT PREPARATION OF ACONITUM BAIKALENSE ”BAYACON”
E.S. Manuk, V.G. Izatulin, L.S. Vasilieva (Irkutsk State Medical University)
Influence of a vegetative preparation Aconitum Baikal on a morphological condition of a thyroid gland in conditions of experimental hypothyrosis is studied. It is established the correction action of a preparation «Баякон» which starts to be shown in 2 weeks after the beginning applications and reaches maximum in 8 weeks.
2.
4.
5.
ЛИТЕРАТУРА
Абросимов А.Ю., Ильин А.А., Румянцев П. О. и др. Клинико-морфологическая характеристика фолликулярных опухолей щитовидной железы у лиц молодого возраста, проживающих на загрязненной радионуклида-мигерритории // Пробл. эндокринол. — 2000. — № 2. —
Автандилов В.Г. Проблемы патогенеза и патологоанатомической диагностики болезней в аспектах морфо-метрии. — М.: Медицина, 1984. — 324 с.
Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия: Руководство. — М.: Медицина, 1990. — 382 с.
Агроскин Л.С. Цитофотометрия. Аппаратура и методы анализа клеток по светопоглощению. — М.:Наука, 1977. - 295 с.
Алешин Б.В., Бриндак О.И., Мамина В.В. О состоянии функциональной активности и пролиферации паренхимы в щитовидной железе. Формы пролиферации ти-реоидной паренхимы // Проблемы эндокринологии. -1987. - Т. 33, № 6. - С.67-72.
Балаболкин М.И. Эндокринология. — М.: Медицина, 1998. - 580 с.
Бомаш Н.Ю. Морфологическая диагностика заболеваний щитовидной железы. - М.: Медицина, 1981. -175 с.
8. Быков В.Л. Стереологический анализ щитовидной железы (обзор методов) // Арх. ан., гист. и эмбр. — 1979. — № 7. - С.98-106.
9. Глумова В.А., Черенков И.А., Чучкова Н.Н. и др. Структурные изменения при адаптивно-компенсаторнькре-акциях щитовидной железы // Морфология. — 2002. — № 2-3. — С.41.
10. Зимина С.А. Морфофункциональные особенности щитовидной железы при экспериментальном гипоселено-зе: Автореф.дис...канд. мед. наук. 2000. — 22 с.
11. Кириллов Ю.Б., Чумаченко А.И., Аристархов В.Г. и др. Ускоренный морфометрический метод определения функциональной активности щитовидной железы // Пробл. эндокринол. — 1994. — № 4. — С.19-21.
12. Кондаленко В. Ф., Калинин А.И., Одинокова В.А. Ультраструктура щитовидной железы человека в норме и при патологии // Арх. пат. — 1970. — № 4. — С.25-33.
13. Минаева В.Г. Лекарственные растения Сибири. — Новосибирск: Наука, 1991. — 428 с.
14. Мусина Н.Ю., Мусин И.А. Морфологическая характеристика щитовидной железы у молодняка крупного рогатого скота // Морфология. — 2002. — № 2-3. — С.111.
15. Хмельницкий О.К., Третьякова М.С. Щитовидная железа как объект морфометрического исследования // Арх. патологии. — 1998. — № 4. — С.47-49.
© КАХЕРСКАЯ Ю.С., ГОРЯЧКИНА Е.Г., ФЕДОСЕЕВА Г.М. - 2008
СРАВНИТЕЛЬНАЯ МОРФОЛОГО-АНАТОМИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА СЫРЬЯ ОРТИЛИИ ОДНОБОКОЙ И ГРУШАНКИ КРУГЛОЛИСТНОЙ
Ю.С. Кахерская, Е.Г. Горячкина, Г.М. Федосеева
(Иркутский государственный медицинский университет, ректор — д.м.н., проф. И.В. Малов, кафедра фармакогнозии
и ботаники, зав. — д.м.н., проф. Г.М. Федосеева)
Резюме. Изучены и выделены отличительные морфолого-анатомические признаки сырья Orthilia secunda (L.) House и Pyrola rotundifolia (L.). Разработка и внедрение в научную медицину новых лекарственных средств, обладающих противовоспалительным действием, является актуальной задачей настоящего времени.
Ключевые слова: боровая матка, ортилия однобокая, грушанка круглолистная, морфолого-анатомические признаки.
Растения семейства грушанковых (Руго1аееае) - грушанка круглолистная (Руго1а гоШпШЮНа) и ортилия однобокая (ОгШШа 8ееипёа), произрастающие в Иркутской области, издавна используются в тибетской медицине для лечения заболеваний почек и мочеполовой системы, а также как чаенапиточное сырье. В последние годы эти растения достаточно хорошо изучены и включены в составы некоторых БАД-ов (биологически активных добавок) в виде чаев [2,5,6,7,8,9].
Материалы и методы
В задачи настоящей работы входило определение основных отличительных морфолого-анатомических признаков сырья исследуемых растений, с целью его диагностики.
Листья изучали на поверхностных препаратах, приготовленных по стандартной методике: кипятили в 5% ра-
створе щелочи и просветляли в хлоралгидрате. Стебли и черешки предварительно размачивали в водно-спиртовоглицериновом растворе (1:1:1) [З].
Готовые препараты изучали под бинокулярным микроскопом и фотографировали с помощью фотоаппарата NICON на черно-белую пленку KODAK pro, фотоувеличение Х200.
Результаты и обсуждение
В качестве сырья у ортилии однобокой используется трава, которая представляет собой олиственные четырехгранные стебли и их кусочки, длиной от 4 до 14 см, цельные или частично измельченные, плотные. Стебли тонкие (диаметром до 1,5 мм), не ветвистые. Сильно выступают два ребра, расположенные друг напротив друга. Листья коротко-черешковые, продолговато-яйцевидные с острой верхушкой, по краю город-
