Научная статья на тему 'Клональное микроразмножение некоторых видов аквариумных растений в культуре in vitro'

Клональное микроразмножение некоторых видов аквариумных растений в культуре in vitro Текст научной статьи по специальности «Биологические науки»

CC BY
855
178
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
КЛОНАЛЬНОЕ МИКРОРАЗМНОЖЕНИЕ / АКВАСКЕЙПИНГ / АКВАРИУМНЫЕ РАСТЕНИЯ / КУЛЬТУРА IN VITRO

Аннотация научной статьи по биологическим наукам, автор научной работы — Немцова Е.В., Новиков Д.М., Выхорь Т.П.

Изучено влияние состава питательных сред на морфометрические показатели некоторых аквариумных растений, размножаемых микроклонально. Приводятся результаты изучения влияния состава питательных сред Мурасиге-Скуга, Кворина-Лепуавра, Андерсона, а также среды Андерсона с добавлением аморфного диоксида кремния на коэффициент размножения, длину побегов, количество и длину корней растений регенерантов Rotala indica, роталы Макрандра ( Rotala macrandra ), гигрофилы щитовидной ( Hygrophila corymbosa sp. Stricta ), альтернантеры Рейнека ( Alternanthera reineckii sp. Mini ) и линдернии круглолистной ( Lindernia rotundifolia ). Выявлено стимулирующее рост действие аморфного кремнезема в составе питательной среды Андерсона на микропобеги роталы индийской.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Похожие темы научных работ по биологическим наукам , автор научной работы — Немцова Е.В., Новиков Д.М., Выхорь Т.П.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Текст научной работы на тему «Клональное микроразмножение некоторых видов аквариумных растений в культуре in vitro»

Бюллетень Брянского отделения РБО, 2018. № 3 (15). С. 42-48.

Bulletin of Bryansk dpt. of RBS, 2018.

N 3 (15). P. 42-48.

ФИЗИОЛОГИЯ И БИОХИМИЯ РАСТЕНИЙ

УДК 58.085

Клональное микроразмножение некоторых видов

аквариумных растений в культуре IN VITRO

© Е. В. Немцова, Д. М. Новиков, Т. П. Выхорь

E. V. Nemtsova, D. M. Novikov, T. P. Vykhor'

The microclonal propagation of some aquarium plants

ФГБОУ «Брянский государственный университет имени академика И. Г. Петровского» 241036, Россия, г. Брянск, ул. Бежицкая, 14. Тел.: +7 (4832) 66-68-34, e-mail: elenanemz@mail.ru

Аннотация. Изучено влияние состава питательных сред на морфометрические показатели некоторых аквариумных растений, размножаемых микроклонально. Приводятся результаты изучения влияния состава питательных сред Мурасиге-Скуга, Кворина-Лепуавра, Андерсона, а также среды Андерсона с добавлением аморфного диоксида кремния на коэффициент размножения, длину побегов, количество и длину корней растений регенерантов Rotala indica, роталы Макрандра (Rotala macrandra), гигрофилы щитовидной (Hygrophila corymbosa sp. Stricta), альтернантеры Рейнека (Alternanthera reineckii sp. Mini) и линдернии круглолистной (Lindernia rotundifolia). Выявлено стимулирующее рост действие аморфного кремнезема в составе питательной среды Андерсона на микропобеги роталы индийской.

Ключевые слова: клональное микроразмножение, акваскейпинг, аквариумные растения, культура in vitro.

Abstract. The article reveals the results of the study of the influence of different culture media on the microclonal propagation of aquarium plants. The effect of Murashige-Skoog, Quoirin-Lepoivre and Anderson media on number of explants and their length, number of shoots per explant and their length is given. The aquarium plants tested were Rotala indica, Rotala macrandra, Hygrophila corymbosa sp. Stricta, Alternanthera reineckii sp. Mini, Lindernia rotundifolia. The morphometric characteristics and the shoot multiplication of Rotala indica explants were found efficient for the modified Anderson medium containing amorphous silica.

Keywords: microclonal propagation, aquascaping, aquarium plants, in vitro culture.

DOI: 10.22281/2307-4353-2018-3-42-48

Введение

Новым направлением в современной аквариумистике является акваскейпинг (англ. aquascaping) - создание декоративных водных «ландшафтов» в аквариуме. Существует множество направлений и стилей аквадизайна, основанных на многообразии способов оформления внутреннего пространства аквариума. Одним из них является использование водных растений, размножаемых в культуре in vitro. Как правило, водные растения хорошо размножаются вегетативно, однако в искусственных условиях часто подвержены заболеваниям, например, в результате избыточного размножения цианобактерий и водорослей. Поэтому в последнее время для аквадизайна используется оздоровленный материал, свободный от внутренних инфекций. Одним из эффективных способов получения растений, не содержащих патогенов, является клональное микроразмножение - метод получения большого количества оздоровленных клонов в стерильной культуре in vitro. В настоящее время многие аквариумные растения, используемые в коммерческих целях, размножаются таким способом, например, Lilaeop-sis, Rotala, Utricularia и др. Растения, размноженные микроклонально, не содержат внутренних инфекций и быстро адаптируются к субстрату и образуют красочный покров.

Клональное микроразмножение аквариумных растений с целью применения их в акваскейпинге - быстроразвивающееся, но слабоизученное направление. Лишь немногие виды водных растений размножаются в культуре тканей и только для некоторых разработаны составы питательных сред и оптимизированы условия клонального микроразмножения. Успешными являются результаты по клонированию гибридов Nymphaea (Lakshmanan, 1994) и Cryptocorine (Kane, 1990). Разработана технология клонального микроразмножения Nymphoides peltata (S. G. Gmel.) O. Kuntz. (Menyanthaceae) - определены оптимальный режим стерилизации, оптимальные концентрации цитокининов на стадии микроразмножения (Малаева, 2017).

Разработаны технология введения в культуру in vitro и этапы клонального микроразмножения растений Lilaeopsis brasiliensis Affolter (Apiaceae) - одного из популярных в акваскейпинге видов растений, страдающего от обрастания водорослями. Изучены режимы стерилизации, влияние концентрации фитогормонов и регуляторов роста (Сосина, 2016).

В современной литературе существуют методики размножения in vitro представителей семейства Amaranthaceae - например, для культивирования Alternanthera sessilis (L.) R. Br. ex DC. успешно применяется питательная среда Мурасиге-Скуга, содержащая 6-БАП и 2,4-D в концентрации 1 мг/л (Singh, 2009).

Для культивирования Lindernia antipoda (L.) Alston (Linderniaceae) оптимизирован состав среды Мурасиге-Скуга, содержащей половину от общего количества всех минеральных и органических компонентов, а также определены оптимальные концентрации регуляторов роста для размножения и укоренения мериклонов (Jabir, 2016).

Целью данного исследования стало изучение влияния типа питательной среды на культивирование некоторых видов аквариумных растений in vitro. Объектами исследования являлись растения-регенеранты селеционного гибрида роталы индийской (Rotala indica (Willd.) Koehne), роталы Макрандра (R. macrandra Koehne) (Lythraceae), гигрофилы щитовидной (Hygrophila corymbosa Lindau sp. Stricta) (Acanthaceae), альтернанте-ры Рейнека (Alternanthera reineckii Griseb. sp. Mini) и линдернии круглолистной (Lindernia rotundifolia (L.) Alston).

Rotala indica - одно из растений, которое хорошо адаптируется к большинству типу водных условий, быстро растёт и распространяется по поверхности субстрата. В настоящей работе использовался гибрид роталы индийской, известной как Аммания Бонсай (Ammania sp. «Bonsai»), который используется только аквариумистами и не встречается в природе. Представляет собой невысокое растение с прочным прямостоячим стеблем и небольшими овальными листьями, расположенными попарно по всей длине стебля. При хорошем уходе кончики листьев красные, что создает хороший декоративный эффект.

R. macrandra имеет листья яйцевидной формы с волнистыми краями, крупные - до 5 см, располагаются на длинном стебле супротивно. Нижняя сторона листа окрашена в пурпурный цвет, верхняя - от красного до зелёного.

Hygrophila corymbosa sp. Stricta - растение с мощным прочным стеблем, от которого отходят крупные, расположенные попарно листья вытянутой формы. Внешняя сторона листа - от жёлтой и зелёной до красной и багровой окраски. Нижняя - с серебристым металлическим оттенком. Может достигать довольно крупных размеров и подниматься над водой.

Alternanthera reineckii sp. Mini - растение с округлым прямостоячим стеблем красного цвета и супротивно расположенными листьями. Соседние пары листьев расположены перпендикулярно друг другу. Листья широколанцетные, с коротким черешком с заострённой верхушкой и основанием клиновидной формы, красного цвета. В данной работе использовалась гибридная форма альтернантеры мини, отличающаяся от исходной формы небольшими размерами (5-10 см в высоту).

Lindernia rotundifolia имеет прямой стебель до 30-50 см в высоту с овальными листьями, расположенными попарно. Листья нежно-салатового цвета с белыми прожилками. Растение хорошо приживается, быстро растёт и сильно ветвится, создавая привлекательный фон.

Методика исследования

Объектом исследования стали микропобеги перечисленных выше аквариумных растений, размножаемых в культуре in vitro. Культивирование растений-регенерантов осуществлялось на питательных средах Мурасиге-Скуга (MS, Murashige, 1966), Кворина-Лепуавра (QL, Quoirin, 1977), Андерсона (AM, Anderson, 1975), а также на среде Андерсона с добавлением аморфного диоксида кремния «Ковелос», производимого ООО «Экокремний». Препарат предварительно стабилизировали 1х раствором минеральной части среды Андерсона и вносили в питательную среду перед автоклавированием в количестве 50, 100, 150 мг/л (в пересчёте на диоксид кремния).

Побеги отделяли от первичного эксплантата, делили на черенки и высаживали на питательную среду. Культивирование микропобегов осуществляли при 20°С под лампами дневного света при 16-часовом фотопериоде. Длительность субкультивирования составляла 8 недель. Определяли среднюю длину побегов и корней, коэффициент размножения и среднее число корней растений регенератов.

Все эксперименты проводили в двукратной повторности, на каждый вариант опыта по 30-40 микропобегов. Статистическую обработку результатов исследования проводили с использованием программы MS Excel'2010; отличия достоверны при p<0,05.

Результаты и обсуждение

Результаты исследования влияния типа питательных сред, а также введения в их состав аморфного кремнезёма на морфометрические параметры роталы индийской Rotala indica в культуре in vitro представлены в табл. 1 и на рис. 1.

Таблица 1

Влияние типа питательной среды на растения-регенеранты Rotala indica в культуре in vitro (* - отличия достоверны при p<0,05)

Показатель Коэффициент размножения, шт. Длина побега, мм Число корней, шт. Длина корней, мм

Среда Андерсона (контроль) 1,11±0,08 6,76±0,37 7,82±1,14 12,67±0,84

Среда Андерсона + 50 мг SiO2/л 1,73±0,24* 8,93±0,51 15,40±1,08* 17,47±0,55*

Среда Андерсона + 100 мг SiO2/л 1,58±0,18* 8,58±0,46 13,00±0,88* 16,25±0,95*

Среда Андерсона + 150 мг SiO2/л 1,63±0,18* 8,37±0,54 11,38±1,33* 16,75±1,26*

Среда Андерсона (+активированный уголь, 600 мг/л) 1,92±0,26* 5,85±0,55 7,77±0,39 15,31±1,49

Среда Мурасиге-Скуга, MS 1,36±0,20 6,27±0,35 5,36±0,97 6,90±1,32*

Среда Кворина-Лепуавра, QL 1,91±0,34* 4,90±0,30 7,41±1,43 8,45±1,75

Применение аморфного кремнезёма положительно влияло на побего- и корнеобразова-ние R. indica. Оптимальной средой для размножения роталы индийской являлась среда Андерсона с добавлением 50 мг SiO2^ - в этом случае средняя длина побега растений регене-рантов составляла 8,93±0,51 мм (в 1,3 раза больше показателя контрольного варианта), длина корней - 17,47±0,55 мм (в 1,4 раза больше показателя контрольного варианта), среднее число корней на микропобег - 15,40±1,08 шт (в 2 раза больше показателя контрольного варианта). Коэффициент размножения R. indica при использовании аморфного кремнезема в количестве 50 мг/л составлял 1,73±0,24, что в 1,6 раз больше, чем при использовании среды Андерсона, не содержащей аморфного диоксида кремния.

Внесение аморфного диоксида кремния в состав среды Андерсона в других количествах (100 и 150 мг/л) являлось менее эффективным, однако также приводило к существенному увеличению параметров роста растений регенерантов R. indica, по сравнению с контрольным вариантом.

Оптимальными для получения большого количества мериклонов R. indica являлись среда Андерсона с добавлением активированного угля (0,6 г/л) и среда Кворина-Лепуавра - в

этом случае коэффициент размножения был максимален и составлял 1,92±0,26 и 1,91±0,34 соответственно, что в 1,5-2 раза больше, чем при использовании других сред.

Выявлена существенная зависимость между составом питательной среды и укореняемо-стью растений регенерантов R. indica - использование среды Андерсона, в том числе содержащей активированный уголь или аморфный кремнезем, приводило к достоверному увеличению длины корней в 1,8-2,2 раза по сравнению с другими типами сред (QL, MS).

Для получения мериклонов с максимальной длиной микропобегов и объёмом корневой системы целесообразно использование сред с аморфным кремнезёмом. Длина побегов опытных растений в 1,3-1,8 раза превышала длину мериклонов ротал, культивируемых с использованием других питательных сред, длина корней - в 1,4-2 раза.

Рис. 1. Растения-регенеранты Rotala indica в культуре in vitro: контроль - среда AM, вариант 1 - среда AM + аморфный диоксид кремния (50 мг/л), вариант 2 - среда AM + аморфный диоксид кремния (100 мг/л), вариант 3 - среда AM + аморфный диоксид кремния (150 мг/л), вариант 4 - среда AM + 0,6 г/л активированного угля, вариант 5 - среда MS, вариант 6 - среда QL.

Результаты исследования влияния состава питательной среды на растения-регенеранты R. macrandra в культуре in vitro приводятся в табл. 2.

Таблица 2

Влияние типа питательной среды на растения-регенеранты Rotala macrandra в культуре in vitro (* - отличия достоверны при p<0,05)

Показатель Среда Кворина-Лепуавра, QL Среда Мурасиге-Скуга, MS Среда Андерсона (+ активированный уголь, 600 мг/л)

Коэффициент размножения, шт. 3,42±0,51 3,80±0,21 2,6±0,28

Длина побега, мм 5,32±0,45 4,10±0,12 4,81±0,32

Число корней, шт. 2,40±0,18 0 6,55±0,38*

Длина корней, мм 4,90±0,37* - 1,80±0,16

Оптимальными для культивирования R. macrandra in vitro являлись среда Кворина-Лепуавра и среда Андерсона с активированным углем. Роталы обычно имеют слабую корневую систему, однако при культивировании in vitro её объём значительно повышается.

При выращивании R. macrandra на среде Кворина-Лепуавра длина корней являлась максимальной и составляла 4,90±0,37 мм, что в 2,7 раза больше, чем при использовании среды Андерсона. Наиболее объёмной являлась корневая система мериклонов R. macrandra на среде Андерсона - 6,55±0,38 шт. на микропобег, что в 2,7 раза больше, чем при использовании среды Кворина-Лепуавра. Растения-регенеранты, выращиваемые на питательной среде Мурасиге-Скуга, не формировали корневой системы.

Коэффициент размножения R. macrandra при использовании всех изученных типов питательных сред варьировал незначительно и составлял 3,80±0,21 при использовании среды Мурасиге-Скуга, 2,6±0,28 - среды Андерсона, содержащей активированный уголь (600 мг/л), 3,42±0,51 - среды Кворина-Лепуавра. Оптимальными средами для получения большего количества мериклонов являлись среда Мурасиге-Скуга и Кворина-Лепуавра.

Длина побегов мериклонов R. macrandra также варьировала незначительно - максимальные значения наблюдались при использовании среды Кворина-Лепуавра (5,32±0,45 мм), менее благоприятной являлась среда Андерсона, содержащая активированный уголь (4,81±0,32 мм). Минимальная длина побегов растений регенерантов R. macrandra наблюдалась при использовании среды Мурасиге-Скуга - 4,10±0,12 мм.

Результаты исследования влияния состава питательной среды на растения-регенеранты Hygrophila corymbosa в культуре in vitro приводятся в табл. 3.

Таблица 3

Влияние типа питательной среды на растения-регенеранты Hygrophila corymbosa в культуре in vitro

Показатель Среда Андерсона (+ активированный уголь, 600 мг/л) Среда Кворина-Лепуавра, QL Среда Мурасиге-Скуга, MS

Коэффициент размножения, шт. 1,22±0,23 1,10±0,10 1,10±0,14

Длина побега, мм 22,31±2,61 24,87±1,59 12,56±1,21

Число корней, шт. 4,20±1,21 8,12±0,66 3,23±0,54

Длина корней, мм 22,34±1,74 13,52±1,22 5,37±0,76

Оптимальными для культивирования H. corymbosa in vitro являлись питательные среды Андерсона и Кворина-Лепуавра - при их использовании длина микропобегов опытных растений в 2 раза превышала длину мериклонов на среде Мурасиге-Скуга и составляла 22,31±2,61 мм и 24,87±1,59 мм соответственно. Длина растений-регенерантов при использовании питательной среды Мурасиге-Скуга составляла 12,56±1,21 мм.

Коэффициент размножения H. corymbosa в культуре in vitro был небольшим при использовании любого типа питательных сред, варьировал незначительно и составлял 1,22±0,23, 1,10±0,10 и 1,10±0,14 при использовании питательной среды Андерсона, Кворина-Лепуавра и Мурасиге-Скуга соответственно.

Наибольшее число корней у мериклонов H. corymbosa наблюдалось при использовании среды Кворина-Лепуавра - показатель составил 8,12±0,66, что в 2-2,5 раза больше, чем при использовании других сред. Применение среды Андерсона, содержащей 600 мг/л активированного угля, приводило к формированию меньшего числа корней, которое составило 4,20±1,21 шт.

Оптимальным для укоренения растений регенерантов H. corymbosa являлось использование среды Андерсона, содержащей 600 мг/л активированного угля - в этом случае длина корней составляла 22,34±1,74 мм, что в 1,7 раза больше чем при использовании среды Кворина-Лепуавра (13,52±1,22 мм) и в 4,2 раза больше, чем при использовании среды Мурасиге-Скуга (5,37±0,76 мм).

Данные по влиянию состава питательной среды на параметры роста Alternanthera reineckii sp. Mini в культуре in vitro приведены в табл. 4.

Оптимальной средой для размножения A. reineckii являлась среда Мурасиге-Скуга - в этом случае коэффициент размножения составлял 2,02±0,32, что в 2 раза больше, чем при использовании других видов питательных сред. Средняя длина растений-регенерантов A. reineckii на среде Мурасиге-Скуга составляла 8,08±0,62 мм, длина корней - 16,81±2,31 мм, число корней на эксплант - 28,24±1,87 шт.

Таблица 4

Влияние типа питательной среды на растения-регенеранты Alternanthera reineckii sp. Mini в культуре in vitro

Показатель Среда Андерсона + 150 мг 8Ю2/л Среда Квори-на-Лепуавра Среда Андерсона (+ активированный уголь, 600 мг/л) Среда Му-расиге-Скуга

Коэффициент размножения, шт. 1,12±0,12 1,14±0,16 1,22±0,21 2,02±0,32

Длина побега, мм 6,12±0,88 9,47±0,90 7,63±0,77 8,08±0,62

Число корней, шт. 9,03±0,31 16,21±1,21 33,45±2,33 28,24±1,87

Длина корней, мм 4,51±0,55 10,11±0,89 19,82±2,12 16,81±2,31

Приемлемым для укоренения мериклонов A. reineckii являлось использование среды Андерсона, содержащей активированный уголь (600 мг/л) - в этом случае такие морфометри-ческие показатели, как длина побегов и корней, количество корней растений регенерантов коррелируют с аналогичными показателями растений, культивируемых на среде Мурасиге -Скуга. Однако коэффициент размножения мериклонов A. reineckii на среде Андерсона, содержащей активированный уголь, почти в два раза меньше (1,22±0,21).

Данные по влиянию состава питательной среды на параметры роста мериклонов Linder-nia rotundifolia в культуре in vitro представлены в табл. 5. Оптимальной средой для размножения L. rotundifolia являлась среда Мурасиге-Скуга - в этом случае средняя длина растений регенерантов составляла 30,1±4,5 мм (в 2-5 раз больше, чем при использовании других питательных сред), длина корней - 14,61±0,99 мм (в 1,6-3,5 раз больше, чем при использовании других питательных сред), число корней на микропобег - 18,17±1,97 шт. (в 1,6-3,8 раз больше, чем при использовании других питательных сред).

Таблица 5

Влияние типа питательной среды на растения-регенеранты Lindernia rotundifolia в культуре in vitro

Показатель Среда Андерсона + 150 мг 8Ю2/л Среда Андерсона ^активированный уголь, 600 мг/л) Среда Мурасиге-Скуга, MS Среда Кворина-Лепуавра, QL

Коэффициент размножения, шт. 12,2±2,23 1,21±0,55 7,63±0,24 3,82±0,57

Длина побега, мм 6,02±1,13 10,82±2,54 30,11±4,50 16,80±2,87

Число корней, шт. 4,81±1,36 7,50±1,34 18,17±1,97 11,41±1,69

Длина корней, мм 9,02±1,34 4,20±0,56 14,61±0,99 7,02±0,99

Наибольшее количество мериклонов L. rotundifolia развивалось при использовании среды Андерсона, содержащей 150 мг SiO 2/л - в этом случае коэффициент размножения являлся максимальным и составлял 12,2±2,23, что в несколько раз выше, чем при использовании других сред. Однако выращенные на такой среде мериклоны характеризовались минимальной длиной побега - 6,02±1,13 мм, что в 2-5 раз меньше, чем при использовании других сред.

Коэффициент размножения L. rotundifolia при использовании среды Мурасиге-Скуга составлял 7,63±0,24, что в 2 раза больше, чем при использовании среды Кворина-Лепуавра и в 6 раз больше, чем при использовании среды Андерсона с активированным углём.

Заключение

Выявлены наиболее оптимальные типы питательных сред для культивирования некоторых видов аквариумных растений in vitro. Оптимальной средой для размножения Rotala indica являлась среда Андерсона, содержащая аморфный диоксид кремния в количестве 50 мг/л. Для культивирования in vitro Hygrophila corymbosa и Rotala macrandra оптимальными являлись среда Кворина-Лепуавра и среда Андерсона, содержащая активированный уголь. Растения-регенеранты R. macrandra, полученные на питательной среде Мурасиге-Скуга, не формировали корневой системы. Для размножения Alternanthera reineckii и Lindernia rotun-difolia оптимальной являлась среда Мурасиге-Скуга.

Список литературы

Сосина А. В., Чередниченко М. Ю. 2016. Введение в культуру in vitro и клональное микроразмножение Lilaeopsis brasiliensis (Glaz.) Affolter // Мат. VII Междунар. науч.-практ. конф. «Биотехнология как инструмент сохранения биоразнообразия растительного мира (физиологобиохимические, эмбриологические, генетические и правовые аспекты)», посвященной 30-летию отдела биотехнологии растений Никитского ботанического сада, г. Ялта, Республика Крым, Россия. 25 сентября - 1 октября 2016 г. Симферополь: «АРИАЛ». С. 126-127. [SosinaA. V., CherednichenkoM. Yu. 2016. Vvedenie v kul'turu in vitro i klonal'noe mikrorazmnozhenie Lilaeopsis brasiliensis (Glaz.) Affolter // Mat. VII Mezhdunar. nauch.-prakt. konf. «Biotekhnologiya kak instru-ment sokhraneniya bioraznoobraziya rastitel'nogo mira (fiziologobiokhimicheskie, embriologicheskie, geneticheskie i pravovye aspekty)», posvyashchennoi 30-letiyu otdela biotekhnologii rastenii Nikitskogo botanicheskogo sada, g. Yalta, Respublika Krym, Rossiya. 25 sentyabrya - 1 oktyabrya 2016 g. Simferopol': «ARIAL». P. 126-127.]

Малаева Е. В., Синельникова К. П. 2017. Размножение нимфейника щитолистного (Nymphoides peltata (S. G. Gmel.) O. Kuntz. в культуре in vitro // Актуальные вопросы теории и практики биологического образования: мат. XI-й всерос. с междунар. участием науч.-практ. конф., посвященной Году экологии в России. Волгоград. С. 51-53. [Malaeva E. V., Sinel'nikova K. P. 2017. Razmnozhenie nimfeinika shchitolistnogo (Nymphoides peltata (S. G. Gmel.) O. Kuntz. v kul'ture in vitro // Aktual'nye voprosy teorii i praktiki biologicheskogo obrazovaniya: mat. Xl-i vseros. s mezhdunar. uchastiem nauch.-prakt. konf., posvyashchennoi Godu ekologii v Rossii. Volgograd. P. 51-53.]

Anderson W. C. 1975. Propagation of rhododendrons by tissue culture. Part. 1. Development of culture medium for multiplication of shoots // Proc. Intern. Plant Prop. Soc. Vol. 25. P. 1929-1935.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Jabir T., Sheeja G., Anjana R., Sree Lakshmi S., Aneykutty J. 2016. Micropropagation and in vitro flowering of an ornamental aquarium plant Lindernia antipoda (L.) Alston // International Journ. of Aquaculture. Vol. 6. №2 8. P. 1-10.

Kane M. E. 1990. An efficient in vitro plantlet regeneration of Cryptocoryne wendtii and Cryptocoryne becketti through shoot tip culture // Hort. Science. Vol. 25. № 6. P. 687-689.

Lakshmanan P. 1994. In vitro establishment and multiplication of Nymphaea hybrid 'James Brydon' // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. Vol. 36. P. 145-148.

Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. Vol. 15. № 3. P. 473-497.

QuoirinM., LepoivreP. 1977. Etude de milieux adaptes aux cultures in vitro de Prunus. Acta Hort. Vol. 78. P. 437-442.

Singh A., Kandasamy T., Odhav B. 2009. In vitro propagation of Alternanthera sessilis (Sessile Joyweed), a famine food plant // African Journ. of Biotechnology. Vol. 8. № 21. P. 5691-5695.

Сведения об авторах

Nemtsova Elena Valentinovna

Ph. D. in Biology, Ass. Professor of the Dpt. of Biology Bryansk State University named after Acad. I. G. Petrovsky, Bryansk E-mail: elenanemz@mail.ru

Novikov Dmitry Mikhailovich

Postgraduate student oof the Dpt. of Biology Bryansk State University named after Acad. I. G. Petrovsky, Bryansk E-mail: dim.novikow@yandex.ru

Vykhor' Tatyana Pavlovna

Postgraduate student oof the Dpt. of Biology Bryansk State University named after Acad. I. G. Petrovsky, Bryansk E-mail: vyxor2016@mail.ru

Немцова Елена Валентиновна

к. б. н., старший преподаватель кафедры биологии Брянский государственный университет им. акад. И. Г. Петровского, Брянск E-mail: elenanemz@mail.ru

Новиков Дмитрий Михаилович

магистрант кафедры биологии Брянский государственный университет им. акад. И. Г. Петровского, Брянск E-mail: dim.novikow@yandex.ru

Выхорь Татьяна Павловна

магистрант кафедры биологии Брянский государственный университет им. акад. И. Г. Петровского, Брянск E-mail: vyxor2016@mail.ru

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.