CC BY
4
УДК 619:616.15
КЛИНИКО-ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЕ И РОСТО-ВЕСОВЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ КРЫС ПРИ ИЗУЧЕНИИ ЭФФЕКТИВНОСТИ СВЧ ОБРАБОТКИ ЗЕРНА, ПОРАЖЕННОГО
МИКОТОКСИНАМИ
Якупова Л.Ф. - к.б.н., доцент, Папуниди Э.К.- д.б.н., профессор, Жубантаева А.Н. - аспирант
ФГБОУ ВО «Казанская государственная академия ветеринарной медицины
имени Н.Э. Баумана»
Ключевые слова: гематологические показатели, биохимические показатели крови, лабораторные животные, микотоксины, СВЧ-обработка
Keywords: hematological parameters, biochemical parameters of blood, laboratory animals, mycotoxins, microwave processing
метаболизма грибов
Качество производимого и получаемого в результате обработки зерна зависит от качества продуктов питания, поставляемых на наш рынок. Свойства используемого зерна для кормления, оказывают решающее влияние на рост, развитие, здоровье и продуктивность скота. Поражение зерна
микроорганизмами грибной и
бактериальной этиологии способствует ухудшению качества зерна, его технологических показателей, потерям сухого вещества, загрязнению
высокотоксичными и канцерогенными продуктами микроскопических микотоксинами.
В настоящее время существует множество способов обеззараживания зерна. Электрофизические методы наиболее привлекательны с точки зрения экологии и возможности встраивания в технологические линии послеуборочной обработки зерна. Микотоксикозы птиц -одна из наиболее значимых в экономическом отношении проблем современного птицеводства.
В настоящее время контаминации микотоксинами кормов в животноводстве и птицеводстве является важнейшей и актуальной проблемой [1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 12].
Известно, что при скармливании кормов, контаминированных
проблема
микотоксинами, в естественных условиях токсический эффект выражен сильнее, чем в экспериментальных условиях при введении эквивалентного количества чистых микотоксинов [8, 9].
Одним из наиболее эффективных электрофизических методов разрушения токсинов в кормах является сверхвысокочастотная обработка (СВЧ), которая дополнительно устраняет нежелательную микрофлору и повышает питательную ценность обработанного сырья или готового корма [10, 11].
В связи с этим целью исследований было изучение влияния на организм лабораторных животных скармливания корма, содержащего микотоксины, подвергнутого СВЧ-обработке, отдельно и совместно с цеолитом, а также на показатели крови и интенсивность их роста.
Материал и методы
исследований. В проведении опыта использовали 60 крыс-самок линии Вистар в возрасте 10 недель. Лабораторных животных содержали в виварии Казанской государственной академии ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана. Лабораторные животные имели свободный доступ к воде и кормам, условия содержания для всех подопытных групп было одинаковым.
Работа проведена на 6-ти подопытных группах по 10 самок в каждой
живой массой от 221 до 225 г в течение 30-ти дней. Из 6-ти групп наблюдаемых животных 3 группы были контрольные: 1-ая - контрольная группа - получала основной рацион, состоящий из зерна ячменя из расчета 30 г на каждое животное; 2-ая-положительно
контрольная, которая к основному рациону получала цеолит в количестве 3% от основного рациона, и 3-ая - отрицательно контрольная, получавшая корм,
содержащий Т-2 токсин и охратоксин А в количестве 0,1 и 0,053мг/кг соответственно.
Остальные три - опытные группы животных: 4-ая - получала токсичный корм, подвергнутый СВЧ-обработке при частоте 915 ГГц и мощности 50 кВт в течение 90 сек, 5-ая опытная группа получала корм, содержащий
микотоксиныи цеолит в количестве 3 % от основного рациона и 6-ая опытная группа получала корм, содержащий микотоксины и подвергнутый СВЧ-обработке, и цеолит в количестве 3 %. Регулярно оценивали общее клиническое состояние
лабораторных животных, потребление корма и реакцию на внешние раздражители, акты мочеиспускания и
дефекации.
Для изучения интенсивности роста подопытных животных в начале и в течение опыта проводили индивидуальное взвешивание перед утренним кормлением. Исследования крови крыс провели в ветеринарной лаборатории ВЕТТЕСТ с помощью гематологического анализатора MindrayBC-2800 VET.
Результат исследований.
Результаты индивидуальных взвешиваний подопытных животных в начале опыта не выявили существенных изменений среди групп опыта. На 10-ые сутки опыта у животных контрольных групп
наблюдалось увеличение массы тела на 5; 7,5 и 3,7 % соответственно. В опытных группах масса тела подопытных животных также увеличилась на 2,3 и 3,1 % (Рисунок 1).
Через 20 дней тенденция к увеличению массы тела сохранялась в контрольных группах, за исключением 3-ей, а также в опытных группах. В 1-й и 2-й группах масса тела подопытных животных была выше, чем в 4-й, 5-й и 6-й группах на 5; 7,3 и 4,1 % и 7,6; 7,4 и 6,6%. В 3 -й группе животных на 20-е сутки масса тела животных снизилась на 11,2 %.
Рисунок 1 -Динамика живой массы подопытных животных
Группы опыта
Показатель 1 - контрольна 2 - положительно 3 - отрицательно 4 -опытная 5 -опытна 6 -опытна
я контрольная контрольная я я
М орфологические показатели
Эритроци в начале 8,08± 8,12± 7,9± 8,2± 8,10± 8,0±
ты, 1012/л опыта 0,1 0,1 0,1 0,2 0,1 0,07
в конце 8,38± 9,1± 5,4± 6,26± 7,1± 7,5±
опыта 0,3 0,8 1,7 1,1 0,5 0,2
Лейкоцит в начале 12,5± 12,6± 12,9± 12,7± 12,5±2, 12,4±
ы, 109/л опыта 2,1 2,1 2,4 2,2 1 2,0
в конце 12,8± 13,9± 8,6± 9,15± 9,9± 10,2±
опыта 2,3 3,1 0,6 0,2 0,2 0,4
Гемоглоб в начале 155,3± 156,7± 158± 157,3± 155,7± 155,8±
ин, г/л опыта 3,3 2,3 1,4 1,9 3,0 2,9
в конце 157± 172± 92± 99,6± 108,±3, 114,±
опыта 2,1 8,4 4,8 4,2 6 3,2
биохимические показатели
Креатини в начале 75,4± 72,8± 74,4± 75,2± 73,2± 75,8±
н, опыта 0,4 0,1 1,0 2,35 1,1 1,0
мкмоль/л в конце 78,1± 78,2± 94,6± 85,5± 87,4± 86,2±
опыта 0,25 0,25 1,05 1,8 0,98 1,15
АСТ, в начале 152,6± 154,6± 156,2± 152,2± 152,4± 156,2±
Ед/л опыта 1,2 0,75 0,55 2,35 1,55 2,05
в конце 148,1± 158,2± 201,5± 192,0± 184,3± 172,4±
опыта 0,5 0,4 0,6 1,7 2,0 2,45
АЛТ, в начале 76,2± 75,6± 76,6± 76,4± 78,2± 76,8±
Ед/л опыта 0,2 0,33 0,55 1,5 1,75 1,05
в конце 75,9± 77,6± 93,4± 89,4± 86,2± 82,6±
опыта 0,1 0,55 0,65 0,5 1,5 1,0
Глюкоза в начале 7,6± 7,4± 7,2± 7,3± 7,2± 7,4±
ммоль/л, опыта 0,15 0,1 0,18 0,13 0,15 0,08
в конце 7,8± 8,0± 4,5± 6,5± 5,2± 7,6±
опыта 0,08 0,08 0,3 0,15 0,33 0,26
Общий в начале 75± 78,6± 77,2± 76,8± 79,0± 78,0±
белок, г/л опыта 1,0 0,45 0,8 2,0 1,7 1,7
в конце 77,0± 82,0± 58,3± 62,2± 68,3± 71±
опыта 0,23 0,27 0,45 1,5 0,95 1,4
В конце исследования средняя масса крыс всех опытных групп, кроме 3-й, была выше исходной на 20; 28,7; 3,2; 6,2 и 8,4 %. В 3-й группе средняя масса тела была ниже исходных данных на 18,4 %. Необходимо отметить, что масса крыс опытных групп в конце опыта была выше, чем масса животных 3-й группы на 27,4; 28,6 и 32,5 %.
При этом первые признаки интоксикации регистрировались у
животных 3-ей группы на 15-й день - у животных отмечалась пугливость, усиление жажды и снижение аппетита. У животных с 4-ой по 6-ую группы признаки микотоксикоза были не выражены.
Для изучения влияния СВЧ-обработки зерна и цеолита отдельно и в сочетании на степень детоксикации кормов у подопытных животных изучали некоторые морфологические и
биохимические показатели крови
животных в начале и в конце опыта.
По окончании эксперимента в 1-ой и во 2-ой группах наблюдалась положительная динамика в содержании в крови эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина, особенно она была выражена во 2-ой группе. Так, количество эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина в этой группе к концу опыта увеличилось на 12, 10 и 9,7 %; в первой группе разница с фоновыми показателями составила 3,7; 2,4 и 1,1 %. Стоит отметить, что изучаемые показатели крови не выходили за референсные значения.
С 3-ей по 6-ую группы опыта динамика гематологических показателей была отрицательной, наиболее ярко это проявлялось в 3-ей группе. Количество эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина в крови животных этой группы к концу эксперимента уменьшилось на 31,6; 33 и 41,8%.
В опытных группах с 4-ой по 6-ую наблюдалось понижение количества эритроцитов в крови на 23,6; 12,3 и 6,25 %; лейкоцитов - на 28; 20,8 и 17,7 %; гемоглобина - на 36,7; 30,2 и 26,4 %.
Содержание эритроцитов,
лейкоцитов и гемоглобина в крови животных с 4-ой по 6-ую опытные группы было ниже аналогичных показателей крови животных 1 -ой контрольной группы на 25,3; 15,3 и 10,5 %; на 28,5; 22,6 и 20,3 %; и на 36,5; 30,8 и 27 %, соответственно.
Однако, при сравнении с аналогичными данными в 3 -ей контрольной группе содержание эритроцитов было выше на 16; 31,5 и 38,9 %; лейкоцитов - на 6,4; 15,1 и 18,6 %; гемоглобина - на 8,3; 18 и 24,5 %.
В таблице 1 приведены данные, из которых видно, что к концу эксперимента отмечается положительная динамика во 2-ой группе в содержании в крови аланинаминотрансферазы (АЛТ),
аспартатаминотрансфераза (АСТ),
креатинина, глюкозы, и общего белка. Так, количество аланинаминотрансферазы (АЛТ), аспартатаминотрансфераза (АСТ), креатинина, глюкозы, и общего белка в
этой группе к концу опыта увеличилось на 2,6, 2,3, 7,4, 8,1 и 4,3 %.
У животных 3-ей группы наблюдается повышение
аланинаминотрансферазы (АЛТ) на 21,9 %, аспартатаминотрансфераза (АСТ) на 29 % и креатинина на 27,1 % и снижение глюкозы на 37,5 %, а общего белка - на 24,5 %, соответственно.
Аналогичные изменения произошли в опытных группах с 4-ой по 6-ую. Так, наблюдается увеличение
аланинаминотрансферазы (АЛТ) на 17,0; 10,2 и 7,6 %, аспартатаминотрансфераза (АСТ) на 26,1; 20,9 и 10,4 % и креатинина на 13,7; 19,4 и 13,7 % на фоне снижения глюкозы в 4-ой и 5-ой опытных группах на 11,0 и 27,8%. В сыворотке крови животных 6-ой опытной группы отмечено незначительное увеличение глюкозы на 2,7%, а также снижение общего белка - на 19,0; 13,5 и 8,9 %, соответственно.
Заключение. Таким образом, на основании полученных данных можно сделать вывод, что применение электрофизического метода
обезвреживания токсинов в кормах, такого как микроволновая обработка, снижает токсическое действие микотоксинов на организм лабораторных животных, что подтверждается сохранением прироста массы подопытных животных и благоприятным воздействием на морфологические показатели крови. Кроме того, у подопытных животных наблюдается понижение активности печеночных ферментов относительно аналогичных показателей в сыворотке крови животных группы отрицательного контроля и менее выраженные проявления почечной недостаточности, углеводного и белкового обменов, о чем свидетельствует разница в содержании креатинина, общего белка и глюкозы в крови животных опытных групп и группы отрицательного контроля. Стоит отметить, что наилучший эффект наблюдается при
комбинированном применении СВЧ-обработки зерна, пораженного
микотоксинами, и применения сорбента.
Полученные результаты
показывают, что сверхвысокочастотная обработка зерна, содержащего
микотоксины, снижает токсическое действие токсинов, содержащихся в кормах, что проявляется сохранением прироста массы тела и положительным влиянием на клинико-гематологические показатели животных.
ЛИТЕРАТУРА:
1. Антипов, В. Система мероприятий по профилактике микотоксикозов животных и птиц / В. Антипов, В. Васильев // Ветеринария сельскохозяйственных животных. - 2009. -№ 9. - С. 18-21.
2. Бессарабов, Б. Микотоксикозы: диагностика и борьба / Б. Бессарабов // Животноводство России. - 2014. - № 6. -С. 17-19.
3. Бессарабов, Б. Микозы и микотоксикозы у птиц / Б. Бессарабов // Ветеринария сельскохозяйственных животных. - 2009. - № 10. - С. 13-15.
4. Бессарабов, Б. Ф. Микотоксикозы в птицеводстве и меры борьбы с ними / Б. Ф. Бессарабов, И. И. Мельникова, С. Ю. Садиков // Ветеринария сельскохозяйственных животных. - 2007. -№ 10. - С. 11-16.
5. Вербург, К. Борьба с микотоксинами: от поля до хранилища / К. Вербург // Комбикорма. - 2014. - № 1. -С. 81-82.
6. Галкин, А. Микотоксины: воздействие и ограничение уровней / А. Галкин, Е. Трепалина // Комбикорма. -2015. - № 1. - С. 95-96.
7. Даминов, Р. Хронические микотоксикозы в птицеводстве /
Р. Даминов // Комбикорма. - 2007. - № 1. -С. 85.
8. Папуниди, К. Х. Микотоксины (в пищевой цепи) / К. Х. Папуниди, М. Я. Тремасов, В. И. Фисинин,
A. И. Никитин, Э. И. Семенов // Монграфия. 2-е изд., перераб. и доп. Казань: ФЦТРБ-ВНИВИ, 2017. - 188 с.
9. Папуниди, К. Х. Кормовые отравления и токсикоинфекции животных / К. Х. Папуниди, А. И. Никитин, Э . И. Семенов, В. И. Егоров,
B. И. Степанов, Г. Ш. Закирова- Казань: ФГБНУ «ФЦТРБ-ВНИВИ», 2018. - 212 с
10. Королев, А. А. Анализ применения микроволнового излучения в технологиях стерилизации растительного сырья / А. Королев, С. С. Тюрина, М. В. Тришканева // Научный журнал НИУ ИТМО. Серия «Процессы и аппараты пищевых производств». - 2019. - № 3. - С. 81-91. - DOI: https://doi.org/10.17586/2310-1164-2019-12-3-81-91
11. Соболева, О.М. Электрофизический способ снижения количества микотоксинов в концентрированных кормах / О. М. Соболева, М. М. Колосова, Л. А. Филипович // Достижения науки и техники АПК. - 2019. - Т. 33. - № 4. - С. 60-66. - DOI: 10.24411/0235-2451-201910416
12. Zeolitehepatoprotector and probiotic for aflatoxicosis in pigs international / L. Matrosova, S. Tanaseva, E. Tarasova, N. Mishina [et al.] // International Journal of Mechanical and Production Engineering Research and Development (IJMPERD). -2020. - Vol. 10. - P. 7053-7060.
КЛИНИКО-ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЕ И РОСТО-ВЕСОВЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ КРЫС ПРИ ИЗУЧЕНИИ ЭФФЕКТИВНОСТИ СВЧ ОБРАБОТКИ ЗЕРНА, ПОРАЖЕННОГО
МИКОТОКСИНАМИ
Якупова Л.Ф., Папуниди Э.К., Жубантаева А.Н.
Резюме
Цель данной работы было изучение влияния на организм лабораторных животных скармливания токсичного корма, подвергнутого СВЧ-обработке, на показатели крови и интенсивность их роста. СВЧ обработка токсичного зерна и скармливание его отдельно и в комплексе с цеолитом подопытным животным улучшает весовые показатели. Скармливание подопытным животным корма, содержащего микотоксины, обработанные СВЧ излучениями, снижает токсическое действие токсинов, что проявляется положительным влиянием на клинико-гематологические показатели животных, а сочетанное использование цеолита - как адсорбента, улучшает антитоксический эффект.
CLINICAL-HEMATOLOGICAL AND GROWTH-WEIGHT INDICATORS OF RATS DURING THE STUDY OF THE EFFICIENCY OF MICROWAVE PROCESSING OF GRAIN
UNDER INFLUENCE OF MYCOTOXINS
Yakupova L.F., Papunidi E.K., Zhubantayeva A.N.
Summary
This research purpose is studying the effect on the body of laboratory animals The purpose of this work was to study the effect on the body of laboratory animals of feeding toxic feeds subjected to microwave treatment as well as on blood parameters and the growth rate of animals. Microwave processing of toxic grain and feeding it separately and in combination with zeolite to experimental animals improves weight indicators. Feeding experimental animals with food containing mycotoxins treated with microwave radiation reduces the toxic effect of toxins, which is manifested by a positive effect on the clinical and hematological parameters of animals, and the combined use of zeolite as an adsorbent improves the antitoxic effect.
