CC BY
6
Таким образом, наши исследования с искусственной ультрафиолетовой радиацией, а также с солнечной радиацией дали идентичные результаты: палочка смегмы по устойчивости к действию ультрафиолетовой радиации близка к устойчивости туберкулезной палочки, первая оказалась несколько более устойчивой, чем туберкулезные. Небольшое превышение устойчивости кислотоупорного сапрофита по отношению К ультрафиолетовой радиации сравнительно с туберкулезными палочками является в данном случае положительной особенностью этого сапрофита, позволяющий использовать его в качестве теста; это делает более надежными пробы, поставленные при помощи такого теста, что важно в связи с вариабильностью устойчивости различных штаммов туберкулезных палочек.
Ввиду возможного колебания устойчивости культуры В. Бшедшае, сохраняемой в различных лабораториях, использование такой культуры в качестве теста возможно только в том случае, если исследование производится по описанной методике.
Когда наша работа была окончена, в печати появилась работа О. П. Архиповой, в которой предлагается использовать кислотоупорные сапрофиты как тест для оценки
различных химических средств дезинфекции при туберкулезе.
\
I
Выводы
1. Бактерицидное действие радиации ртутно-увиолевой лампы на туберкулезные палочки весьма значительно: спустя 3 минуты облучения ртутно-увиолевой лампой на расстоянии 25 см в наших опытах достигалось полное отсутствие роста туберкулезных палочек на питательной среде.
2. Чувствительность кислотоупорных сапрофитов В. Ь. НаЫпоуИзсЬ и В. Р1ауиш к ультрафиолетовой радиации ртутно-увиолевой лампы и к прямому солнечному свету значительно менее выражена, чем чувствительность взятых для исследования туберкулезных культур человеческого и бычьего типа.
3. Культура В. Эп^тае по своей чувствительности к ультрафиолетовой радиации ртутно-увиолевой лампы и к прямому солнечному свету приближается к чувствительности туберкулезных палочек, отличаясь от них несколько большей устойчивостью к ультрафиолетовой радиации, что представляет положительную особенность В. 5те2шае как теста по отношению к туберкулезным палочкам.
4. Ввиду возможного изменения устойчивости культуры В. Бгг^тае в разных лабораториях при ее сохранении на питательных средах использование В. Бше^шае в качестве теста возможно только в том случае, если она отвечает определенным требованиям.
От редакции. Гибель микроорганизмов, взвешенных в воздушной среде, происходит при иной интенсивности ультрафиолетового излучения, чем при посеве культур на питательные среды.
Для решения вопроса о возможности использования В. Бше^шае в качестве теста при определении бактерицидного действия ультрафиолетового излучения на туберкулезные палочки, желательно сравнить резистентность обоих видов микробов в воздухе.
ЛИТЕРАТУРА
А р х и п о в а О. П., Труды Центр, научно-исслед. дезинфекц. ин-та, в. 7, стр. 103—107, М„ 1951.
Поступила 24/1V 1954 г.
•йг -йг -й-
К МЕТОДИКЕ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АКТИВНОГО ХЛОРА В ВОЗДУХЕ
Кандидат медицинских наук Н. Г. Полежаев Из Института общей и коммунальной гигиены АМН СССР
Имеющиеся методы колориметрического определения малых количеств активного хлора при помощи солянокислого диметилпарафенилендиамина показывают высокую чувствительность и могут быть использованы для определения хлора (в присутствии хлористого водорода) в случае отсутствия других окислителей, которые вызывают аналогичную окраску в испытуемом растворе.
В этих методах поглощение хлора, как известно, ведут непосредственно в разбавленном подкисленном соляной кислотой растворе солянокислого диметилпарафенилендиамина и реакция происходит уже в момент прососа исследуемого на хлор воздуха. Получаемая в растворе окраска нестойка и для установления количества по-
глощенного хлора требует быстрого ее сравнения с колориметрической, обычно искусственной шкалой. К тому же повышенные количества хлора могут вредно влиять на получаемую окраску, частично или целиком ее обесцвечивая.
Мы внесли в описываемый метод существенные изменения. Принятый в практике в качестве поглотительного раствора разбавленный подкисленный соляной кислотой раствор солянокислого диметилпарафенилендиамина мы заменили 1% раствором иодистого калия (К1) в 1% растворе уксуснокислого натрия (СН3ССОЫа), оказывающего стабилизирующее влияние на реакцию раствора. При поглощении хлора в этот раствор, как известно, в нем выделяется эквивалентное хлору количество иода. В качестве стандартного раствора мы применили раствор иода в нашем поглотительном растворе. 1 мл стандартного раствора содержит 0,01 мг иода. Такой раствор можно приготовить из титрованного раствора иода невысокой концентрации, например, 0,01 н. путем разбавления его 1% раствором иодистого калия в 1% растворе уксуснокислого натрия, т. е. поглотительным раствором. Нами установлено, что иод, растворенный в иодистом калии, в присутствии уксуснокислого натрия, подобно хлору, с солянокислым диметилпарафенилендиамином образует соединение, придающее раствору красный цвет. Определив колориметрическим путем количество иода, выделившегося в поглотительном растворе при отборе проб на хлор, мы легко можем пересчитать это количество иода на эквивалентное ему количество хлора путем умножения полученного результата на 0,28 — частное от деления величины атомного веса хлора на величину атомного веса иода. Поглощение хлора по нашей прописи производится в 2 микроприбора с 2 мл поглотительного раствора (1% раствор К1 в 1% растворе СН3СОСЖа) в каждом со скоростью 15 л в час.
Анализ пробы производится следующим образом. Содержимое каждого микроприбора переводят по отдельности в две микропробирки и в них (одновременно с внесением в пробирки шкалы) вносят по одной капле 0,03% водного раствора солянокислого диметилпарафенилендиамина. Шкала строится одновременно. В 8 микропробирок, начиная со 2-й, вносят стандартный раствор иода в следующих объемах: 0,05—0,1—0,2—0,4—0,6—0,8 и 1 мл. Содержимое всех пробирок шкалы доводят до 2 мл поглотительным раствором и взбалтывают.
В первую микропробирку (контрольную) вносят только 2 мл поглотительного раствора. После этого во все пробирки шкалы (одновременно с пробами) прибавляют по одной капле 0,03% водного раствора солянокислого диметилпарафенилендиамина и содержимое их тотчас же снова взбалтывают. Получаемая шкала отвечает 0—0,0005—0.001—2—4—6—8 и 0,01 мг иода или 0,00014—0,0028 мг хлора. Колори-метрирование производят через 15—20 минут. Для пересчета на хлор полученное количество иода, как уже было указано, умножают на 0,28. Далее полученное количество хлора в объеме отобранного воздуха пересчитывают на количество его в 1 м3 воздуха.
Описываемый метод в измененной нами прописи удобен в том отношении, что при применении его в качестве стандартного раствора можно использовать легко приготовляемый и точный титрованный раствор иода. Далее при поглощении хлора в растворе иодистого калия (Ю) мы имеем выделение эквивалентного ему количества иода, достаточно устойчивого в этом растворе и дающего возможность не спешить с анализом пробы. • ,
К тому же желтая окраска от выделившегося иода в поглотительном растворе, сигнализирующая о повышенном количестве хлора, заранее может предупредить о необходимости разбавления пробы поглотительным раствором, еще до прибавления к ней реактивного раствора солянокислого диметилпарафенилендиамина. Этим избегается опасность непоправимого разрушения колориметрического цветного эффекта, имеющего место при поглощении повышенных количеств хлора непосредственно в разбавленный раствор реактива, как это практикуется по основной первоначальной прописи измененного нами метода.
Поступила 10/ХП 1954 г-
а- -¿г -¿г
