ИЗУЧЕНИЕ ВЛИЯНИЯ РАЗЛИЧНОГО СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ НА ФОРМИРОВАНИЕ МОРФОЛОГИЧЕСКИХ СТРУКТУР КАРТОФЕЛЯ В КУЛЬТУРЕ IN VITRO Текст научной статьи по специальности «Сельское хозяйство, лесное хозяйство, рыбное хозяйство»

УДК 635.21:6340.164:631.527

А.И. ЧЕРЕМИСИН1, И.А. ЯКИМОВА1, В Н. КУМПАН2, А.П. КЛИНГ2 1 Омский аграрный научный центр, Омск

Омский государственный аграрный университет им. П.А. Столыпина, Омск

ИЗУЧЕНИЕ ВЛИЯНИЯ РАЗЛИЧНОГО СОСТАВА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ НА ФОРМИРОВАНИЕ МОРФОЛОГИЧЕСКИХ СТРУКТУР КАРТОФЕЛЯ

В КУЛЬТУРЕ IN VITRO

Целью исследований является изучение семенной продуктивности мини-клубней картофеля. Объект исследований - сорта картофеля разных групп спелости, созданные в лаборатории селекции ФГБНУ «Омский АНЦ» - Алена, Хозяюшка, Былина Сибири и Триумф. В качестве материала для проведения исследований были представлены растения-регенеранты и тепличные мини-клубни картофеля. Опыты проводились на питательных средах Мурасиге - Скуга с различным содержанием сахарозы и добавлением витаминов. Выбраны оптимальные питательные среды и витамины для ускорения роста черенков и увеличения коэффициента размножения. В качестве контроля использовали стандартную среду в методике НИИКХ им. Лорха. По результатам выявлена достоверность различий по изучаемым показателям как между разными генотипами, так и между различными концентрациями сахарозы и витаминов в питательной среде. В итоге исследований установлено: более активный рост растений отмечен на среде с повышенными содержаниями сахарозы до 4% и витаминов - 2 мг/л. Высота растений всех сортов увеличилась на 7-12,8% по сравнению с контролем, увеличилось и количество междоузлий. Анализ структуры урожая тепличных мини-клубней показывает, что по основному показателю, количеству клубней на сосуд - 7,6-9,4 шт., наиболее продуктивны растения сортов Былина Сибири и Хозяюшка, а по массе клубней до 200,9 г/растение - сорт Алена.

Ключевые слова: картофель, сорта, питательная среда, микрорастения in vitro, сахароза, витамины.

Введение

Основы высокой эффективности всей системы семеноводства закладываются на этапе производства оригинального семенного материала. Улучшение качества семенного картофеля - одно из важнейших условий получения стабильного урожая и повышения эффективности его производства. Безвирусная система семеноводства картофеля направлена на оздоровление сортов от вирусных и других болезней и размножение оздоровленного материала в стерильных условиях, предохраняющих его от повторного инфицирования. Размножение растений методом верхушечной меристемы предусматривает проведение многократных черенкований, позволяющих в течение всего года регулярно получать запланированное количество безвирусных растений [1; 2].

Наиболее важный фактор эффективного применения метода апикальной меристемы - состав питательной среды, его основные ингридиенты - макро- и микроэлементы, сахара, витамины и регуляторы роста. Свидетельством хорошей оценки эффективности микроклонального размножения является стабильное развитие растений из черенков, без видимых изменений в органогенезе, с характерными для сорта биометрическими показателями (высокой биомассой, сформированными черенками, листьями и развитыми корнями). Основные факторы, обеспечивающие параметры роста и развития микрорастений - сортовые особенности и состав питательной среды. Поддержание оптимального микроклимата и строгое соблюдение по составу компонентов питательной среды - обязательное условие микроклонального размножения [3-5]. Произвольное изменение состава питательной среды и светового режима может привести к сущест-

© Черемисин А.И., Якимова И.А., Кумпан В.Н., Клинг А.П., 2019

венному замедлению и изменению в росте меристемной ткани. Как следует из практики проведения многочисленных экспериментов по изучению большого состава питательных сред: наиболее пригодны для меристем картофеля среды на минеральной основе по Мурасиге - Скуга, отличающиеся более полным содержанием питательных веществ и высоким - макро- и микроэлементов [6]. Метод выделения апикальных меристем и получение из них безвирусных микроклонов служит основным способом освобождения растений картофеля от патогенов. В ходе вегетативного размножения микроклонов их черенки культивируют в условиях in vitro при искусственном освещении. В связи с этим следует ожидать, что лучше сформированный фотосинтетический аппарат позволит им иметь преимущество в росте и развитии при доращивании на светоустановках [7; 8]. Известно, что на формирование клубней у картофеля большое влияние оказывают углеводы. Для повышения эффективности ускоренного размножения исходного оздоровленного посадочного материала для оригинального семеноводства картофеля на безвирусной основе ряд авторов предлагает вводить в состав питательной среды дополнительные ингредиенты, с учетом особенностей различных генотипов на культивирование в условиях in vitro. Рост растения в пробирке происходит в течение нескольких недель в зависимости от достижения им нужной высоты и количества междоузлий, по которым происходит черенкование. С увеличением высоты растений увеличивается и количество междоузлий, следовательно, будет выше коэффициент размножения пробирочных растений и сократится период получения необходимого объема исходного посадочного материала [9; 10].

Цель исследований - изучение влияния различного состава питательной среды на формирование морфологических структур в культуре in vitro и семенную продуктивность мини-клубней картофеля.

Условия, материалы и методы

Объект исследований - сорта картофеля Алена, Хозяюшка, Былина Сибири, Триумф. В качестве материала исследований были представлены апикальная меристема, растения-регенеранты и тепличные мини-клубни картофеля. Опыты проводились в четырехкратной повторности по методикам ВНИИКХ (1995) и РАСХН (2002) [11; 12]. Полученные в опытах экспериментальные данные математически обрабатывали дисперсионным методом в изложении Б.П. Доспехова, 2011 [13]. Качество семенного материала определяли в соответствии с ГОСТ Р 55329-2012: Картофель семенной. Приемка и методы анализа [14].

Размножение исходных оздоровленных растений проводилось на жидкой агари-зированной среде Мурасиге - Скуга в стерильных условиях. Для проведения опытов отбирали зеленые микрорастения с типичными сортовыми признаками. Расчеренкованные растения-регенеранты картофеля высаживали на питательных средах, различающихся по содержанию сахарозы и витаминов В1, В6 и С. Навески витаминов растворяли в 10 мл воды, доводили дистиллированной водой до объема 100 мл и полученный раствор добавляли в готовую питательную среду по 1 и 2 мл/л соответственно с вариантами опыта. В питательную среду Мурасиге - Скуга добавляли ростовые регуляторы 0,04 мг/л кинетина, 1 мг/л индолилуксусной кислоты (ИУК), 0,2 /л мг феруловой кислоты. После отрастания пробирочных растений до образования 4-6 листочков их извлекали из пробирки и черенковали в чашке Петри. Черенки сажали в пробирки с питательной средой на глубину междоузлий. После пробирки выставляли в штативах на стеллажи с освещением 4-5 тыс. люкс люминесцентными лампами, поддерживали температуру ночью 17-18°С, днем - 22-24°С и относительную влажность 70-80%. Подросшие растения черенковали на сегменты с одним междоузлием и высаживали на пи-

тательную среду в пробирки диаметром 2 см с концентрацией сахарозы и витаминов в соответствии с вариантами опыта. Экспланты в течение 20 сут культивировали при длинном 16-часовом фотопериоде, далее проводились учеты и наблюдения вариантов опыта. В каждом из вариантов выращивали по 20 растений указанных сортов. В процессе вегетации микрорастений измеряли показатели, характеризующие развитие: их высоту и количество междоузлий на одно растение. Затем осуществлялась высадка оздоровленных пробирочных растений в сосуды в условиях теплицы. В основе торфоми-нерального субстрата использовали нейтрализованный верховой очищенный торф, производство - ЗАО «Пельгорское» (содержание NH4 + NO2 - 110 мг/л; Р2О5 - 115 мг/л; К2О - 180 мг/л). Полученный урожай мини-клубней отсортировывали по фракциям и закладывали на хранение для последующего размножения в полевых питомниках супер-суперэлиты.

В дальнейшем проводили наблюдения за процессом отрастания и формирования морфологических структур. Полученные микрорастения высаживали в теплице в вазоны с почвенным субстратом, состоящим из смеси торфа и песка с добавлением расчетной дозы удобрений. Во время вегетации обрабатывали инсектицидами «Кинфос» 0,2 л/га, «Биская», 0,2 л/га и фунгицидами «Браво», 2 л/га, «Инфинито», 1,2 л/га.

Варианты опыта

Питательные среды: 1 - среда МС, стандартная концентрация сахарозы - 3% (контроль); 2 - среда МС, концентрация сахарозы - 2% + витамины 1 мг/л; 3 - среда МС, концентрация сахарозы - 4% + витамины 2 мг/л.

Сорта: Алена, Триумф, Хозяюшка, Былина Сибири.

Результаты и обсуждение

В процессе работы изучали влияние разных факторов на рост и развитие растений из черенков, высаженных на питательную среду в соответствии со схемой опыта. При посадке на глубину междоузлия наблюдается ускорение корнеобразования и увеличение количества междоузлий на стебле. По результатам исследований установлено: темпы роста черенков зависят от освещенности, фотопериода и состава питательной среды. Оптимальное соотношение всех показателей и элементов питания способствует увеличению корневой системы, высоты растений и количеству междоузлий. По мнению Н.В. Лебедевой (2012), большое влияние на морфогенез пробирочных растений оказывает наличие в составе питательной среды витаминов, стимулирующих развитие корневой и вегетативной системы растений и позволяющих полнее использовать содержащиеся в почве полезные вещества и обеспечивать быстрый рост растений [15]. В наших исследованиях их более активный рост отмечен на среде с повышенным до 4% содержанием сахарозы и 2% витаминов. Высота растений-регенерантов при культивировании in vitro находилась в прямой зависимости от состава питательной среды. Выявлено положительное влияние на рост растений питательной среды с повышенным содержанием сахарозы и добавлением витаминов, это способствовало получению хорошо развитых растений, их высота на 20-е сут достигала 5,7-8,2 см, превысив растения на стандартной среде по этому показателю на 0,7-1,2 см в зависимости от изучаемого сорта.

Наибольшая прибавка у сортов Алена - 12% и Хозяюшка - 12,8%. У растений сорта Триумф меньшая отзывчивость на увеличение концентрации сахарозы и витаминов. Дисперсионный анализ полученных результатов выявил достоверность различий по изучаемым показателям как между различными генотипами, так и между разными концентрациями сахарозы и витаминов в питательной среде. Анализ показал, что максимальное влияние на изменчивость длины растений оказывал генотип. Состав пита-

тельной среды был менее значимым, но отмечена определенная тенденция по увеличению длины растений и количеству междоузлий при увеличении концентрации сахарозы и витаминов (табл. 1).

Таблица 1

Биометрические показатели растений картофеля в культуре in vitro (2018-2019)

Сорт Вариант Высота растений, см Количество междоузлий, шт. Коэффициент размножения

Алена 1-й (контроль) 5,0 2,6 2,9

2-й 4,7 2,6 2,6

3-й 5,7 3,2 3,4

Триумф 1-й (контроль) 6,3 3,3 3,5

2-й 6,6 3,2 3,3

3-й 7,0 3,7 4,2

Былина Сибири 1-й (контроль) 7,1 3,4 5,3

2-й 7,0 3,5 4,8

3-й 8,2 3,9 5,8

Хозяюшка 1-й (контроль) 5,9 3,3 4,2

2-й 6,1 3,2 4,0

3-й 6,8 3,6 4,4

НСР05 0,55 0,30

Установлено, что средняя длина меристемных растений картофеля в варианте опыта с концентрацией сахарозы 4% и контрольном варианте (3%) достоверно превосходила длину растений в варианте с концентрацией 2%. Между 1-м и 3-м вариантами по этому показателю достоверных различий не выявлено, разница между ними составила 0,5-0,8 см при средней высоте растений от 5,0 до 7,8 см.

Количество междоузлий - важный морфологический признак, свидетельствующий о способности генотипов к регенерации и соответственно к увеличению коэффициента размножения микрорастений. Чем выше выход черенков, тем больше микрорастений можно получать при их дальнейшем тиражировании с целью ускоренного размножения. Об указанном утверждении свидетельствует высокая положительная корреляция между высотой микрорастений и количеством сформированных междоузлий по всем вариантам питательных сред (r = 0,71-0,80, R = 0,75). Проведенные замеры растений по сортам свидетельствуют о достоверном превышении этого показателя в вариантах 1 (контроль) и 3 над вариантом 2 и отсутствии достоверных различий между вариантами 2 и 3. Отмечается, что сорта Алена и Хозяюшка несколько уступали новым сортам Былина Сибири и Триумф как по высоте растений, так и по количеству междоузлий. По нашему мнению, существует определенная сортовая реакция на величину концентрации сахарозы и витаминного состава в питательной среде. По всем изучаемым сортам установлено повышение коэффициента размножения при повышении концентрации сахарозы и витаминов в питательном растворе на 7-8% по отношению к контролю. В то время как пониженная концентрация сахарозы приводит к уменьшению данного показателя. Отмечается также, что и корневая система меристемных растений картофеля на более насыщенной среде быстрее приспосабливается к новым условиям произрастания. Приживаемость при высадке в грунте достигает 85-90%, в результате повышается коэффициент размножения, это важно для второго этапа в системе безвирусного семеноводства на безвирусной основе - получения мини-клубней.

Одним из значимых и наиболее сложных этапов микроклонального размножения картофеля является перевод пробирочных растений от стерильных условий произрастания in vitro к условиям произрастания на почвенном субстрате в защищенном грун-

те. Посадку микрорастений проводили в первой декаде июня в торфяной субстрат с регулярными поливами и подкормками микроудобрениями. Анализ структуры урожая тепличных мини-клубней показывает, что по основному показателю, количеству клубней на сосуд - 8,3-9,5 шт., наиболее продуктивны растения среднеспелых сортов Хозяюшка и Былина Сибири. Раннеспелые (особенно сорт Алена) значительно уступали по этому показателю другим сортам. Так, сорт Алена значительно превосходил изучаемые сорта как по массе 1 клубня, так и по продуктивности, с колебаниями по вариантам от 191,5 до 200,9 г соответственно. Средняя масса одного тепличного клубня сорта Алена -более 30 г (на 8-10 г выше аналогичных показателей других сортов). В вариантах опыта с разным содержанием сахарозы и витаминов в последействии существенного превышения урожая мини-клубней над стандартной средой по всем сортам не отмечено (табл. 2).

Таблица 2

Структура урожая мини-клубней картофеля, полученного из оздоровленного материала (2018-2019)

Сорт Вариант Количество клубней, шт./куст Масса клубней, г/куст Средняя масса клубня, г

Алена 1-й (контроль) 6,2 193,6 31,2

2-й 5,8 191,5 33,0

3-й 6,8 200,9 29,5

Триумф 1-й (контроль) 8,0 176,0 22,0

2-й 7,7 166,2 21,6

3-й 8,5 178,6 21,0

Былина Сибири 1-й (контроль) 8,3 180,3 21,7

2-й 8,5 174,6 20,5

3-й 9,4 188,8 20,1

Хозяюшка 1-й (контроль) 7,6 195,0 25,7

2-й 8,5 187,4 22,0

3-й 8,8 198,6 22,6

НСР05 0,52 11,3 1,53

Визуальный осмотр свидетельствует об отсутствии растений с признаками поражения грибными, бактериальными и вирусными болезнями, включая находящиеся в латентной форме и определяемые методом иммуноферментного анализа (ИФА).

Заключение

По результатам исследований установлено, что более активный рост растений отмечен на среде с повышенным до 4% содержанием сахарозы с добавлением 2 мл/л витаминов. Установлено, что средняя длина меристемных растений картофеля в варианте опыта с концентрацией сахарозы 4% и в контрольном варианте (3%) достоверно превосходила длину растений в варианте с концентрацией 2%. Высота растений у всех сортов увеличилась на 7-12,8% по сравнению с контролем. Анализ структуры урожая тепличных мини-клубней показывает, что по основному показателю - количеству клубней на сосуд - 6,9-9,5 шт. наиболее продуктивны растения сортов Триумф и Былина Сибири, а по массе клубней с колебаниями 198,6-200,9 г/растение сорта Хозяюшка и Алена. По всем изучаемым сортам отмечено повышение коэффициента размножения при повышении концентрации сахарозы в питательном растворе на 7-8% по отношению к контролю. Зафиксирована прямая связь высоты растений и количества междоузлий с коэффициентом размножения пробирочных растений.

1 1 2 2 A.I. Cheremisin , I.A. Yakimova , V.N. Kumpan , A.P. Kling

1Omsk Agrarian Scientific Center, Omsk

2Omsk State Agrarian University named after P.A. Stolypin, Omsk

Studying the influence of various compositions of nutrient medium on the formation of morphological structures of potatoes in in vitro culture

The aim of the research is studying seed productivity of mini-tubers of potatoes. Object of the research are varieties of potatoes of various groups of ripeness created in the Plant Breeding Laboratory of FSBSI Omsk Agrarian Scientific Centre, viz. "Alyona", "Khozyayushka", "Bylina Sibiri" and "Triumf". The research material was represented by regenerant plants and greenhouse mini-tubers of potatoes. Experiments were carried out on the nutrient mediums Murasige- Skuga with a varied content of sucrose and vitamin additives. The best nutrient mediums and vitamins for the acceleration of growth of cuttings and the increase in the reproduction coefficient were selected. Standard medium according to the method of the Potato Research Institute named after Lorkh was used as a control sample. The analysis of the obtained results revealed the reliability of distinctions as regards the studied indicators, both between various genotypes and between various concentrations of sucrose and vitamins in the nutrient medium. According to the results of the research it has been established that more active growth of plants was noted in the medium with a content of sucrose increased up to 4% and a content of vitamins up to 2 mg/l. The height of plants in all varieties increased by 7-12.8 % in comparison with the control sample, the quantity of interstices increased as well. The analysis of the yield structure of greenhouse mini-tubers shows that according to the key indicator, i.e. the quantity of tubers on a vessel of 7.6-9.4 pieces, plants of the varieties "Bylina Sibiri" and "Khozyayushka" were the most productive, according to the mass of tubers up to 200.9 g/plant the best variety was "Alyona".

Keywords: potatoes, varieties, nutrient medium, microplants, in vitro, sucrose, vitamins.

Список литературы

1. Технологический процесс производства оригинального, элитного и репродукционного семенного картофеля / ФГБУ «Россельхозцентр», ГНУ ВНИИКХ Россельхозакадемии. - М., 2011. -32 с.

2. Бутенко Р.Г. Технологии in vitro в сельском хозяйстве / Р.Г. Бутенко // Сельскохозяйственная биология. - 1983. - Т. 15. - С. 3-7.

3. Таран О.Л. Клональное микроразмножение картофеля: проблемы и перспективы / О.Л. Таран // Вопросы картофелеводства : материалы конференции / ВНИИКХ. - М., 2001. - С. 292-299.

4. Хромова Л.М. Культивирование верхушечных меристем картофеля для оздоровления сортов от вирусной инфекции. Тканевые и клеточные культуры в селекции растений / Л.М. Хромова. -М., 1990. - 55 с.

5. Федорова Ю.Н. Выращивание исходного семенного материала картофеля с использованием модифицированных питательных сред / Ю.Н. Федорова, О.М. Малютина, Л.Н. Игнатьева // Селекция и семеноводство сельскохозяйственных культур : сб. материалов Х Всерос. науч.-практ. конф. -Пенза : РИО ПГСХА, 2006. - С. 121-124.

6. Ходаева В.П. Размножение сортов картофеля в культуре in vitro на различных питательных средах / В.П. Ходаева, В.И. Куликова // Достижения науки и техники АПК, 2016. - Т. 30. - № 10. -С. 66-68.

7. Черемисин А.И. Влияние состава питательной среды при микроклональном размножении сортов и гибридов картофеля / А.И. Черемисин, В.Н. Кумпан // Вестн. Ом. гос. агр. ун-та. - 2017. -№ 4(28). - С. 87-91.

Referenses

1. Tehnologicheskij process proizvodstva ori-ginal'nogo, jelitnogo i reprodukcionnogo semennogo kartofelja / FGBU "Rossel'hozcentr", GNU VNIIKH Rossel'hozakademii. - M., 2011. - 32 s.

2. Butenko R.G. Tehnologii in vitro v sel'skom hozjajstve / R.G. Butenko // Sel'skohozjajstvennaja biologija. - 1983. - T. 15. - S. 3-7.

3. Taran O.L. Klonal'noe mikrorazmnozhenie kartofelja: problemy i perspektivy / O.L. Taran // Vo-prosy kartofelevodstva : materialy konferncii / VNIIKH. - M., 2001. - S. 292-299.

4. Hromova L.M. Kul'tivirovanie verhushech-nyh meristem kartofelja dlja ozdorovlenija sortov ot virusnoj infekcii. Tkanevye i kletochnye kul'tury v selekcii rastenij / L.M. Hromova. - M., 1990. - 55 s.

5. Fedorova Ju.N. Vyrashhivanie ishodnogo semennogo materiala kartofelja s ispol'zovaniem mo-dificirovannyh pitatel'nyh sred / Ju.N. Fedorova, O.M. Maljutina, L.N. Ignat'eva // Selekcija i semeno-vodstvo sel'skohozjajstvennyh kul'tur : sb. materialov X Vseros. nauch.-prakt. konf. - Penza : RIO PGSHA, 2006. - S. 121-124.

6. Hodaeva V.P. Razmnozhenie sortov kartofelja v kul'ture in vitro na razlichnyh pitatel'nyh sredah / V.P. Hodaeva, V.I. Kulikova // Dostizhenija nauki i tehniki APK, 2016. - T. 30. - № 10. - S. 66-68.

7. Cheremisin A.I. Vlijanie sostava pitatel'noj sredy pri mikroklonal'nom razmnozhenii sortov i gi-bridov kartofelja / A.I. Cheremisin, V.N. Kumpan // Vestn. Om. gos. agr. un-ta. - 2017. - № 4(28). -S. 87-91.

8. Elaleem K.G. Effect of Ciltivar and Growth Regulator on in vitro Micropropagationof Potato (So-lanumtuberosum L) / K.G. Elaleem, R.S. Modawi,

8. Elaleem. K.G. Effect of Ciltivar and Growth Regulator on in vitro Micropropagationof Potato (So-lanumtuberosum L) / K.G. Elaleem, R.S. Modawi, M.M. Khalafalla // American-Eurasian Jornal of Sustainable Agriculture, 2009. - V. 3(3). - P. 487-492.

9. Мишуров В.П. Сортовая реакция растений картофеля на условия in vitro и состав питательной среды / В.П. Мишуров, С.М. Семенчин, К.С. Зайну-лина // Картофель и овощи. - 2009. - № 1. - С. 27.

10. Балашова Г.С. Продуктивность картофеля в культуре in vitro в зависимости от состава питательной среды и физических факторов культивирования / Г.С. Балашова // Молодой ученый. -2015. - № 12. - С. 540-542.

11. Методика исследований по культуре картофеля. - М. : ВНИИКХ, 1995. - 105 с.

12. Методика работы с культурой ткани // РАСХН. - 2002. - № 6.

13. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта / Б.А. Доспехов. - М. : Агропромиздат, 2011. - 351 с.

14. ГОСТ Р 55329-2012. Картофель семенной. Приемка и методы анализа. - М. : Статин-форм. - С. 40.

15. Оптимизация получения растений картофеля в культуре in vitro / Ю.Н. Федорова, А.Н. Ко-ноненко, Н.В. Лебедева // Изв. Санкт-Петербургского гос. агр. ун-та. - 2012. - № 28. -С. 15-17.

M.M. Khalafalla // American-Eurasian Jornal of Sustainable Agriculture, 2009. - V. 3(3). - P. 487-492.

9. Mishurov V.P. Sortovaja reakcija rastenij kartofelja na uslovija in vitro i sostav pitatel'noj sredy / V.P. Mishurov, S.M. Semenchin, K.S. Zajnulina // Kartofel' i ovoshhi. - 2009. - № 1. - S. 27.

10. Balashova G.S. Produktivnost' kartofelja v kul'ture in vitro v zavisimosti ot sostava pitatel'noj sredy i fizicheskih faktorov kul'tivirovanija / G.S. Balashova // Molodoj uchenyj. - 2015. - № 12. - S. 540542.

11. Metodika issledovanij po kul'ture kartofelja. - M. : VNIIKH, 1995. - 105 s.

12. Metodika raboty s kul'turoj tkani // RASHN. - 2002. - № 6.

13. Dospehov B.A. Metodika polevogo opyta / B.A. Dospehov. - M. : Agropromizdat, 2011. - 351 s.

14. GOST R 55329-2012. Kartofel' semennoj. Priemka i metody analiza. - M. : Statinform. - S. 40.

15. Optimizacija poluchenija rastenij kartofelja v kul'ture in vitro / Ju.N. Fedorova, A.N. Kononenko, N.V. Lebedeva // Izv. Sankt-Peterburgskogo gos. agr. un-ta. - 2012. - № 28. - S. 15-17.

Черемисин Александр Иванович, канд. с.-х. наук, Омский аграрный научный центр, Ъю[email protected]; Якимова Инна Александровна, Омский аграрный научный центр, [email protected]; Клинг Анна Петровна, канд. с.-х. наук, доц., Омский ГАУ, [email protected]; Кумпан Владимир Николаевич, канд. с.-х., доц., Омский ГАУ, [email protected].

Cheremisin Alexander Ivanovich, Cand. Agr. Sci., Omsk Agrarian Scientific Center, [email protected]; Yakimova Inna Alexandrovna, Omsk Agrarian Scientific Center, [email protected]; Kling Anna Petrovna, Cand. Agr. Sci., Ass. Prof., Omsk SAU, [email protected]; Kumpan Vladimir Niko-laevich, Cand. Agr. Sci., Ass. Prof., Omsk SAU, [email protected].

УДК 633.11

АС. ЧУРСИН, ИВ. ПОТОЦКАЯ, О.Г. КУЗЬМИН, Ю.С. КРАСНОВА, ИИ. КАРАКОЗ, В.П. ШАМАНИН

Омский государственный аграрный университет им. П.А. Столыпина, Омск

ЭКОЛОГИЧЕСКАЯ ПЛАСТИЧНОСТЬ И СТАБИЛЬНОСТЬ ЯРОВОЙ МЯГКОЙ ПШЕНИЦЫ ИЗ КАЗАХСТАНСКО-СИБИРСКОГО ПИТОМНИКА

(КАСИБ-18)

Представлены результаты изучения 12 сортов яровой мягкой пшеницы из Казахстанско-Сибирского питомника за 2017 и 2018 гг. (КАСИБ-18). В РК находилось шесть географических точек испытания, в РФ - девять.

В опыте изучались сорта: Памяти Азиева, Терция, Астана 2, Омская 35, Саратовская 29, Лютес-ценс 90-12, ОмГАУ-100, Столыпинская 2, Тюменская юбилейная, Тюменочка, Силач, Элемент 22. Экологическая пластичность и стабильность сортов по урожайности зерна определены по методике

© Чурсин А.С., Потоцкая И.В., Кузьмин О.Г., Краснова Ю.С., Каракоз И.И., Шаманин В.П., 2019