CC BY
52
Изучение противовирусной активности триазавирина в отношении возбудителя клещевого энцефалита в культуре клеток
С. Я. ЛОГИНОВА', С. В. БОРИСЕВИЧ', В. Л. РУСИНОВ2, У. Н. УЛОМСКИЙ2, В. Н. ЧАРУШИН2, О. Н. ЧУПАХИН2
1 Научно-исследовательский центр «33 Центральный научно-исследовательский испытательный институт» Министерства обороны Российской Федерации, Сергиев Посад
2 Уральский государственный технический университет им. первого Президента России Б. Н. Ельцина, Екатеринбург
Investigation of Triazavirin Antiviral Activity Against Tick-Borne Encephalitis Pathogen in Cell Culture
S. YA. LOGINOVA, S. V. BORISEVICH, V. L. RUSINOV, U. N. ULOMSKY, V. N. CHARUSHIN, O. N. CHUPAKHIN
Central Research Institute No. 33, Ministry of Defense of the Russian Federation, Sergiev Posad B. N. Eltsin Urals State Technical University, Ekaterinburg
Проведённый сравнительный анализ эффективности Триазавирина в отношении вируса клещевого энцефалита в чувствительной культуре клеток и эффективного лекарственного препарата Рибавирина® показал, что исследуемый препарат в концентрации 128 мкг/мл эффективно подавляет репродукцию вируса клещевого энцефалита, штамм Софьин (по накоплению в культуре клеток СПЭВ).
Ключевые слова: клещевой энцефалит, Триазавирин, Рибавирин®, противовирусная эффективность, культура клеток.
The efficacy of Triazavirin against the tick-borne encephalitis virus was estimated in the sensitive cell culture vs. the active drug Ribavirin®. In a concentration of 128 mcg/ml Triazavirin was shown active in inhibition of the tick-borne encephalitis virus reproduction (strain Sofiin) by accumulation in the SKEV cell culture.
Key words: tick-borne encephalitis, Triazavirin, Ribavirin®, antiviral efficacy, cell culture.
Клещевой энцефалит (КЭ) по эпидемической значимости для большинства регионов России, тяжести течения инфекции и летальности занимает существенное место среди природно-очаго-вых вирусных инфекций [1, 2].
В настоящее время эпидемиологическая обстановка в отношении КЭ в Российской Федерации остаётся неблагополучной. Наблюдается расширение нозоареала инфекции в Сибири, на Урале, в Волго-Вятском районе, а также в Северной Европе. За последние 10 лет ежегодно регистрируется от 5163 до 10298 случаев заболевания. За последние 15—20 лет изменилась структура заболеваемости. До 80% больных КЭ составляют невакцинированные городские жители [3]. Таким образом, профессиональный фактор в определении группы риска утратил ведущее значение. Территориально большинство регионов России являются эндемичными в отношении КЭ [4].
Специфическая профилактика КЭ, основанная на вакцинации групп риска, является одним
© Коллектив авторов, 2014
Адрес для корреспонденции: 141306 Московская обл., Сергиев По-сад-6. Центральный научно-исследовательский испытательный институт
из важных средств защиты против этого заболевания [5]. Однако необходимость многократной вакцинации, наличие тенденции к неконтролируемому расширению групп риска и опасность возникновения аллергических реакций и тяжёлых поствакцинальных осложнений, в том числе демиэлинизирующего энцефалита, наличие значительной иммунодефицитной прослойки населения являются практически неустранимыми недостатками системы специфической профилактики КЭ.
Первым этапом лабораторного изучения противовирусной эффективности препаратов являются исследования, проводимые с использованием культур клеток [6—8].
Целью представленной работы являлась оценка эффективности Триазавирина in vitro в отношении вируса клещевого энцефалита. Основой данных исследований является оценка влияния изучаемого препарата на репродукцию вируса в культуре клеток.
Материал и методы
Вирус. В работе использовали вирус клещевого энцефалита, штамм Софьин. Штамм хранится в Специализированной коллекции НИЦ ФГКУ «33 ЦНИИИ» МО РФ.
Изучение влияния Триазавирина на репродукцию вируса клещевого энцефалита в культуре клеток СПЭВ
Препарат Доза препарата, Уровень накопления Подавление репродукции вируса
мкг/мл вируса, lg БОЕ/мл A, lg %
Триазавирин 128 2,9+0,1 2,3+0,1 99,50
64 3,5+0,2 1,7+0,2 98,00
1 4,0+0,1 1,2+0,1 93,30
0,5 4,5+0,1 0,7+0,1 80,30
Рибавирин® 100 2,0+0,2 3,2+0,2 99,99
Контроль (без препарата) 5,2+0,2 — —
Культура клеток. Использована постоянная культура клеток почек свиньи — СПЭВ. В качестве ростовой среды и среды поддержания использовали полусинтетическую среду (ПС-4) на растворе Хенкса, содержащую 7,5 и 2% сыворотки крупного рогатого скота, соответственно.
Исследуемый препарат. Исследуемый препарат Триазавирин синтезирован специалистами ИОС Уральского отделения РАН, г. Екатеринбург, Россия.
Контрольный препарат. Рибавирин® — производства ЗАО «ВЕРОФАРМ», Россия.
Противовирусную эффективность препаратов in vitro оценивали по следующим показателям:
— коэффициент ингибирования (Ки, %);
— подавление репродукции вируса, (A, lg).
Оценка противовирусной эффективности используемых лекарственных препаратов осуществлена в соответствии с требованиями МЗ РФ [9].
Результаты и обсуждение
Изучение противовирусных препаратов в культуре клеток складывается из нескольких этапов: оценки токсичности соединения для культуры клеток и определения уровня подавления репродукции вируса. Показателем токсичности соединения для культуры клеток служит показатель максимально переносимой концентрации (МПК), который составляет 1/2 максимальной концентрации препарата, не оказывающей на клетки токсичного действия (по данным прижизненного морфологического исследования). Изучение эффективности Триаза-вирина проводили в концентрациях, соответствующих МПК и ниже.
Вирус клещевого энцефалита хорошо размножается только в культуре клеток СПЭВ [10]. Известно, что оптимальная множественность инфицирования культуры клеток при оценке противовирусной эффективности препаратов должна составлять от 0,01 до 0,0001 БОЕ/клетку [7, 8].
Величина инфицирующей дозы вируса клещевого энцефалита при оценке эффективности составляла 0,003 БОЕ/клетку. На каждую дозу препарата использовали не менее 5 пробирок с монослоем культуры клеток двухсуточного возраста. После адсорбции вируса в течение 60 мин при температуре от 36,5 до 37,5°С монослой трижды промывали питательной средой ПС-4 на растворе Хенкса, содержащей 2% сыворотки КРС и по 100 ЕД/мл пенициллина и стрептомицина,
затем вносили свежую среду. Для изучения противовирусной эффективности препараты вносили в поддерживающую среду через 1 ч после инфицирования и инкубировали в течение 48 ч при температуре от 36,5 до 37,5°С. По окончании инкубации проводили криодеструкцию клеток: трёхкратным быстрым замораживанием (в крио-стате при температуре минус 30°С) и быстрым оттаиванием (водяная баня при комнатной температуре). Уровень накопления возбудителя в исследуемых пробах определяли посредством титрования проб при использовании метода получения негативных колоний вируса в монослое культуры клеток СПЭВ под твёрдым агаровым покрытием.
Результаты изучения подавления репродукции вируса клещевого энцефалита, представленные в таблице, свидетельствуют о том, что Триазавирин в культуре клеток СПЭВ в концентрации, соответствующей максимально возможной концентрации (128 мкг/мл), эффективно подавляет репродукцию вируса клещевого энцефалита. Отмечено снижение уровня накопления вируса на 2,3 lg. При этом коэффициент ингибирования составил 99,5%. Показана зависимость уровня подавления репродукции вируса от концентрации препарата. При внесении Триазавирина в концентрации 0,5 мкг/мл (составляющей 1/256 МПК) в ростовую среду уровень ингиби-рования репродукции вируса клещевого энцефалита составил 80,3%.
Следовательно, Триазавирин в широком диапазоне концентраций эффективно подавляет репродукцию вируса клещевого энцефалита.
Следует отметить, что сравнительный анализ препарата сравнения Рибавирина® и Триазави-рина показал сопоставимые показатели их противовирусной эффективности в отношении вируса клещевого энцефалита in vitro.
Таким образом, в опытах in vitro Триазавирин проявил высокую эффективность в отношении вируса клещевого энцефалита и может рассматриваться как перспективный препарат для профилактики и терапии инфекции, вызываемой этим возбудителем, после изучения его активности на адекватной модели с использованием лабораторных животных.
ЛИТЕРАТУРА
1. Коренберг Э.И., Ковалевский Ю.В. Основные черты эко-эпидемио-логии клещевого энцефалита. Материалы. круглого стола в рамках У1 Российско-Итальянской науч. Конф. «Инфекционные болезни: диагностика, лечение, профилактика», 14—16 декабря 2000, С.-Пб.: 2000; 13—20.
2. Болотин Е.И. Анализ географических различий проявления клещевого энцефалита. Паразитология 1999; 33: 5: 369—375.
3. Злобин В.И., Львов Д.К. Современная эпидемиологическая обстановка и стратегия профилактики клещевого энцефалита. Материалы тезисов докладов Всероссийской научной конференции «Современные научные и прикладные аспекты клещевого энцефалита», 15—16 ноября 2007, М.:2007; 46—48.
4. Письмо Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека «О перечне территорий, эндемичных клещевому вирусному энцефалиту», № 01/1520-8-32 от 27.02.2008 г.
5. СП 3.1.3.2352-07 «Профилактика клещевого вирусного энцефалита». М.: 2008.
6. Вотяков В.И., Галегов I.A., Бореко Е.И.и др. Первичное изучение антивирусных свойств синтетических и природных соединений. Метод реком. Минск, 1986.
7. Чижов Н.П., Ершов Ф.И, Индулен М.К.Основы экспериментальной химиотерапии вирусных инфекций. Рига, 1988.
8. Вотяков В.И., Андреева О.И., Мишаева Н.П. Оценка специфического действия антивирусных веществ при экспериментальных вирусных энцефалитах. Минск, 1986.
9. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. М.: Минздрав РФ, 2005.
10. Кравченко А.Т., Васильев ВН. Сравнительное изучение свойств двух штаммов вируса клещевого энцефалита в культуре тканей. Вопр вирусол 1960; 6: 649—653.
