CC BY
61
УДК 615.074
ИЗУЧЕНИЕ ХИМИЧЕСКОГО СОСТАВА КОРНЕЙ СПАРЖИ КИСТЕВИДНОЙ
И.В. Гравель*, А.А. Скибина, А.Н. Кузьменко, Н.Б. Демина, И.И. Краснюк (мл.), С.П. Завадский, А.В. Пирогов1
(Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова; *e-mail: [email protected])
Методами газо-жидкостной и высокоэффективной жидкостной хроматографий изучен химический состав корней спаржи кистевидной. Выявлены вещества-маркеры, характерные для данного вида сырья. Установлено количественное содержание диосцина в корнях A. racemosus.
Ключевые слова: спаржа кистевидная, газожидкостная хроматография, высокоэффективная жидкостная хроматография, протодиосцин, диосцин.
Спаржа кистевидная (Asparagus racemosus) -лекарственное растение (ЛР), широко применяемое в восточной медицине. Растение содержит стероидные сапонины (протодиосцин, диосцин и др.), которые оказывают на организм действие, подобное натуральным гормонам, нормализуют работу женской половой системы, способствуя ускорению перехода эстрадиола в эстрол, влияют на синтез прогестерона. Кроме того, в состав спаржи кистевидной входят изофлавоны, алкалоиды, полисахариды и другие группы биологически активных веществ [1]. Препараты на основе корней A. racemosus нормализуют женскую гормональную систему, обладают антиоксидантным и иммуностимулирующим действием.
Сырье спаржи кистевидной включено в Аюр-ведическую фармакопею [2]. В Государственную фармакопею (ГФ) XIII издания данный вид не входит, однако лекарственное растительное сырье (ЛРС) и препараты на его основе поступают на российский фармацевтический рынок.
Цель нашей работы состояла в качественном и количественном исследовании корней спаржи кистевидной, а также определении веществ-маркеров, характерных для данного вида сырья.
Экспериментальная часть
Пробоподготовка. Объектом исследования служили высушенные корни спаржи кистевидной (г. Мумбаи, Индия) и извлечения на их основе.
Компонентный состав летучей фракции хлороформного и ацетонитрильного извлечений определяли методом газо-жидкостной хроматографии с масс-селективным детектором (ГЖХ-МС). Хлороформное извлечение из сырья получали мето-
дом циркуляционной экстракции. Для этого 35 г высушенных измельченных корней спаржи кистевидной в марлевом мешочке загружали в экстрактор Сокслета и исчерпывающе экстрагировали (на водяной бане) 230 мл смеси хлороформа и 95%-го этилового спирта (10:1) в течение 4 ч. Полученный экстракт концентрировали до объема 100 мл и использовали для дальнейших исследований [3, 4]. Ацетонитрильное извлечение получали настаиванием порошка корней спаржи кистевидной в ацетонитриле (1:1). В процессе пробоподготовки к анализу флаконы с полученными извлечениями помещали в ультразвуковую ванну-мешалку (УЗ-ванну) «Сапфир» (без нагрева) на 10 мин. Затем отбирали 10 мл экстракта в пластиковую колбу и центрифугировали в течение 2 мин на центрифуге «Ohaus Split 16000 rpm» при 16 000 об/мин. После этого микродозатором отбирали 1 мл экстракта с поверхности для предотвращения попадания частиц сырья и помещали в барабан инжектора хромато-масс-спектрометра [5].
Условия хроматографирования. Работу проводили на газовом хроматографе «Agilent Technologies 6850 Series II», детектор масс-селективный «Agilent Technologies 5973 Network», колонка «HP-5MS» (30 м х 0,25 мм), температура колонки 30-240 °С. Скорость подъема температуры 5 °/мин; конечный изотермический участок 10 мин. Температура испарителя 200 °С. Температура инжектора 30 °С; скорость газа-носителя (гелия) 1 мл/мин.
Качественное и количественное определение стероидных сапонинов в порошке спаржи кистевидной проводили методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ).
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова.
Т а б л и ц а 1
Параметры градиентного режима хроматографирования
Время, мин ПФ А, % ПФ В, %
0 70 30
20 50 50
30 30 70
35 30 70
36 70 30
42 70 30
О б о з н а ч е н и я. ПФ А (подвижная фаза А) - деионизо-ванная вода, подкисленная трифторуксусной кислотой до рН 3,0; ПФ В (подвижная фаза В) - ацетонитрил.
Для пробоподготовки в колбу для экстракции вместимостью 50 мл отвешивали точную навеску 0,566 г измельченного сырья спаржи кистевидной и добавляли 20 мл 70%-го метилового спирта, затем экстрагировали в течение 15 мин на УЗ-ванне [6]. Анализ проводили на жидкостном хроматографе «Agilent 1290» со спектро-фотометрическим и масс-спектрометрическим (6460) детекторами. Колонка «Zorbax XDB-C18» («Agilent», США) размером 150x4,6 мм, диаметр частиц сорбента 5 мкм.
Условия хроматографирования. Предколон-ка «Security Guard C18» (4x3 мм; «Phenomenex», США), температура колонки 25 °C, скорость подвижной фазы 1 мл/мин, объем вводимой пробы 20 мкл, градиентный режим для определения протодиосцина и диосцина указан в табл. 1.
Условия УФ-детектирования выбирали на основании данных спектрофотометрического анализа ( длина волны 205 нм при ширине спектральной полосы 4 нм). Условия масс-спектрометрического детектирования: режим сканирования ионов - положительные ионы, диапазон масс сканируемых ионов от 400 до 1500 m/z; давление небулайзера 70 psi; скорость и температура газа-осушителя составляли соответственно 12 л/мин и 350 °С.
Результаты и их обсуждение
Методом ГЖХ-МС в составе хлороформного извлечения из корней спаржи кистевидной идентифицировали 11 веществ (табл. 2, рис. 1).
Одним из веществ-маркеров с большей степенью надежности можно считать обнаруженный в хлороформном экстракте спаржи кистевидной андрост-5,7-диен-3-ол-17-он (1,16%) из группы фитостероидов (рис. 2), однако в составе ацетони-трильного извлечения он не обнаружен. Возможно, это связано с различием индексов полярности растворителей.
Т а б л и ц а 2
Состав хлороформного извлечения из корней спаржи кистевидной
Соединение Время удерживания, мин Отно сительно е содержание, %
2,6,10-триметил-тетрадекан 20,176 1,33
Трет-гексадекантиол 20,28 1,31
2-гексил-деканол 21,204 2,76
Дибутилфталат 21,795 4,91
Эйкозан 22,184 4,36
Андрост-5,7-диен-3-ол-17-он 22,393 1,16
Пентакозан 23,123 5,61
24,019 6,06
24,874 6,91
М-фенил-2-нафтиламин 24,304 20,66
Тетракозан 25,694 7,6
Гентриаконтан 26,521 7,14
27,501 7,07
Бис(2-этилгексил)фталат 26,945 5,74
Рис. 1. Хроматограмма ГЖХ-МС-анализа хлороформного извлечения из сырья спаржи кистевидной. Условия хроматографирования см. в тексте
Рис. 2. Структурная формула андрост-5,7-диен-3-ол-17-она
Рис. 3. Хроматограмма ГЖХ-МС-анализа ацетонитрильного извлечения из сырья спаржи кистевидной. Условия хроматографирования см. в тексте
Компонентный состав и хроматограмма ГЖХ-МС анализа летучей фракции ацетонитрильного извлечения представлены в табл. 3 и на рис. 3. Установлено, что из веществ летучей фракции в хлороформном экстракте преобладал Н-фенил-2-нафтиламин (20,66%), а в ацетонитрильном извлечении - этоксибензол (24,39%) и хлорбензол (20,32%).
В результате ВЭЖХ-МС-анализа корней спаржи кистевидной на хроматограмме обнаружен
пик (рис. 4), отвечающий времени удерживания, близкому к этому показателю для пика стандарта протодиосцина (время удерживания протодиос-цина 22,22 ± 0,05 мин) и масс-спектр с наиболее интенсивным ионом m/z = 1033 (на 2 ед. атомной массы больше, чем у стандартного образца). Скорее всего, это связано с тем, что данное соединение является аналогом протодиосцина с восстановленной кратной связью. Можно предположить, что в исследованном экстракте из ЛРС
Рис. 4. Наложение хроматограмм метанольного извлечения из корней спаржи кистевидной и стандартного раствора протодиосцина. Условия хроматографирования см. в тексте
Рис. 5. Наложение хроматограмм метанольного извлечения из корней спаржи кистевидной и стандартного раствора диосцина. Условия хроматографирования см. в тексте
Т а б л и ц а 3
Состав ацетонитрильного извлечения из сырья спаржи кистевидной
Соединение Время удерживания, мин Отно сительно е содержание, %
Неопентилгликоль 4,699 10,68
Хлорбензол 5,456 20,32
Этилбензол 6,075 7,72
6,137 6,8
Бензилхлорид 8,229 7,33
2-(формилокси)-1-фенил-этанон 8,347 9,36
Этоксибензол 9,042 24,39
М,К-диметил-бензамин 10,842 9,07
содержится восстановленный протодиосцин. Пик со временем удерживания 20,8 мин является диос-цином (рис. 5), так как совпадает по времени удерживания и спектрам со стандартом. Содержание диосцина в образце находится на уровне предела обнаружения, что в пересчете на количество экс-трагента и массу навески составляло 13,2 мг/кг.
Таким образом, изучен компонентный состав извлечений из корней спаржи кистевидной. В составе хлороформного экстракта методом ГЖХ-
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Anupam K. Sachan, Doli R. Das, Seneh L. Dohare, Mohd. Shuaib // Int. J. Pharmacol. Clin Sci. 2012. Vol. 1. N 3. Р. 588.
2. The Ayurvedic Pharmacopoeia of India, Govt. of India Ministry of health &family welfare department of Ayurveda yoga-nathuropathy, Unani Sidha & Homoeopathy (Ay-ush). Part I. New Delhi, 2007. Vol. IV. Р. 167 .
3. Минина С.А., Каухова И.Е. Химия и технология фитопрепаратов. М., 2004. С. 516.
МС идентифицированы 11 веществ, а в составе ацетонитрильного - 7. Из них в качестве маркера может быть предложено соединение из группы фитостероидов - андрост-5,7-диен-3-ол-17-он. Методом ВЭЖХ-МС в сырье спаржи кистевидной обнаружен стероидный сапонин - восстановленный протодиосцин. Установлено количественное содержание диосцина (13,2 мг/кг), который также может являться веществом-маркером для данного вида сырья.
4. Vasundra P.A., Divya priya S. // Asian J. Pharm Clin Res. 2013. N 6. Р. 190.
5. Кузьменко А.Н., Решетняк В.Ю. Стандартизация лекарственного растительного сырья и растительных сборов хроматографическими методами. М., 2010. С. 104.
6. Jaiswal Y., Liang Z., Ho A., Chen H., Zhao Z. // Phy-tochem. Anal. 2014. Vol. 25. N 6. Р. 2522.
Поступила в редакцию 13.12.16
RESEARCH OF CHEMICAL COMPOSITION OF ASPARAGUS RACEMOSUS ROOTS
I.V. Gravel*, A.A. Skibina, A.N. Kuz'menko, N.B. Demina, I.I. Krasnyuk (Jr.), S.P. Zavadskiy, A.V. Pirogov
(State Federal-Funded Educational Institution of Higher Professional Training I.M. Sechenov First Moscow State Medical University of the Ministry of Health of the Russian Federation; *e-mail: [email protected])
Chemical composition of Asparagus racemosus roots was investigated by gas-liquid and high-performance liquid chromatography. Chemical markers specific for the type of raw material were selected. Dioscin quantitative content was determined in the roots of A. racemosus.
Key words: Аsparagus racemosus, gas-liquid chromatography, high-performance liquid chromatography, protodioscin, dioscin.
Сведения об авторах: Гравель Ирина Валерьевна - профессор кафедры фармакогнозии Первого Московского государственного медицинского университета им. И.М. Сеченова, докт. фарм. наук ([email protected]); Скибина Анастасия Алексеевна - аспирант кафедры фармакогнозии Первого Московского государственного медицинского университета им. И.М. Сеченова (askibina93@gmail. com); Кузьменко Алексей Николаевич - профессор кафедры аналитической, физической и коллоидной химии Первого Московского государственного медицинского университета им. И.М. Сеченова, докт. фарм. наук; Демина Наталья Борисовна - профессор кафедры фармацевтической технологии Первого Московского государственного медицинского университета им. И.М. Сеченова, докт. фарм. наук ([email protected]); Краснюк Иван Иванович (мл.) - зав. кафедрой аналитической, физической и коллоидной химии Первого Московского государственного медицинского университета им. И.М. Сеченова, докт. фарм. наук ([email protected]); Завадский Сергей Павлович - доцент кафедры аналитической, физической и коллоидной химии Первого Московского государственного медицинского университета им. И.М. Сеченова, канд. фарм. наук ([email protected]); Пирогов Андрей Владимирович - профессор кафедры аналитической химии химического факультета МГУ имени М.В. Ломоносова, докт. хим. наук.
