CC BY
125
изучение биологических своист1
нового оСТЕопЛАСТИЧЕСКого МАТЕР1
на основе недеминерализованного коллагена, содержащего фактор роста эндотелия сосудов при замещении костных дефектов
УДК 617.5-089.844-092-77-018.74:547.962.9 Поступила 3.10.2011 г.
АА Мураев, к.м.н., ассистент кафедры челюстно-лицевой хирургии и имплантологии ФПКВ1;
С.Ю. Иванов, д.м.н., профессор, зав. кафедрой челюстно-лицевой хирургии и имплантологии ФПКВ1;
АА Артифексова, д.м.н., профессор, зав. кафедрой патологической анатомии1;
В.М. Рябова, старший лаборант кафедры челюстно-лицевой хирургии и имплантологии ФПКВ1;
Е.В. Володина, аспирант лаборатории генной терапии рака2;
И.Н. Полякова, зав. отделом3
Жижегородская государственная медицинская академия, Н. Новгород, 603005, пл. Минина и Пожарского, 10/1;
2Институт биологии гена РАН, Москва, 119334, ул. Вавилова, 34/5;
3ЗАО «Протеинсинтез», Москва, 115035, 3-й Кадашевский пер., 6/2
Цель исследования — оценить in vivo эффективность нового остеопластического материала на основе недеминерализованного коллагена, содержащего фактор роста эндотелия сосудов, при замещении костных дефектов.
Материалы и методы. Эксперименты проводили на 16 кроликах породы шиншилла. Исследуемый новый материал для замещения костных дефектов разработан в ЗАО «Протеинсинтез» (Москва). За основу взят недеминерализованный костный коллаген в виде крошки (ООО «НПК ВИТАФОРМ», Москва), который насыщали фактором роста эндотелия сосудов по оригинальной методике. Дефект создавался в гребне подвздошной кости.
Результаты. Установлено, что новый биокомпозиционный материал для замещения костных дефектов на основе недеминерализованного костного коллагена, насыщенного фактором роста эндотелия сосудов, обладает остеокондуктивными и остеоиндуктивными свойствами и потенцирует неоангиогенез. Этот материал способен более эффективно индуцировать регенерацию костной ткани по сравнению с немодифицированным коллагеновым матриксом, преимущественно за счет формирования кровеносного русла в зоне регенерации.
Ключевые слова: направленная костная регенерация, костезамещающий материал, недеминерализованный коллаген, фактор роста эндотелия сосудов, ФРЭС.
English
Biological properties study of a new osteoplastic nondemineralized collagen-based material containing vascular endothelial growth factor in bone defect replacement
АA Muraev, PhD, Tutor, the Department of Maxillo-Facial Surgery and Implantology, the Faculty of Doctors’ Advanced Training1; s.Yu. Ivanov, D.Med.Sc., Professor, Head of the Department of Maxillo-Facial Surgery and Implantology, the Faculty of Doctors’ Advanced Training1;
Для контактов: Мураев Александр Александрович, тел. моб. +7 920-026-13-22, e-mail: muraev@rambler.ru
А.А. Artifexova, D.Med.Sc., Professor, Head of the Department of Pathological Anatomy1;
V.M. Ryabova, Senior Laboratory Technician, the Department of Maxillo-Facial Surgery and Implantology,
the Faculty of Doctors’ Advanced Training1;
Е.V. Volodina, Postgraduate, Tumour Gene Therapy Laboratory2;
I.N. Polyakova, Head of the Department3
1Nizhny Novgorod State Medical Academy, Minin and Pozharsky Square, 10/1, Nizhny Novgorod, Russian Federation, 603005;
2Gene Biology Institute of RAS, Vavilova St., 34/5, Moscow, Russian Federation, 119334;
3Close Joint Stock Company “Proteinsynthesis”, 3rd Kadashevsky pereulok, 6/2, Moscow, Russian Federation, 115035
The aim of the investigation is to assess in vivo the efficiency of a new osteoplastic non-demineralized collagen-based material containing vascular endothelial growth factor in bone defect replacement.
Materials and methods. The experiments were carried out on 16 chinchilla rabbits. A new material under study was developed by Close Joint Stock Company “Proteinsynthesis” (Moscow) to replace bone defects. Non-demineralized bone collagen in the form of crumbs (LLC “Research and Production Company VITAFORM”, Moscow) taken as a basis was saturated with vascular endothelial growth factor according to an original technique. The defect was made in iliac bone crest.
Results. A new biocomposite material based on non-demineralized bone collagen saturated with vascular endothelial growth factor for bone defect replacement was stated to have osteoconductive and osteoinductive properties and potentiate neoangiogenesis. The material is able to induce bone tissue regeneration more effectively compared to non-modified collagen matrix mainly due to circulatory bed formation in regeneration area.
Key words: guided bone regeneration, bone replacement material, non-demineralized collagen, vascular endothelial growth factor, VEGF.
Костезамещающие материалы активно используются в стоматологии, челюстно-лицевой хирургии и травматологии. Среди них широко распространены материалы на минеральной основе (гидроксиапатит, трикальций фосфат и керамика), на основе коллагена животного происхождения и их композиции [1-8].
Исследования, разработка и производство различных костезамещающих материалов составляют существенный сегмент современной отрасли наукоемких технологий. Несмотря на многообразие костезамещающих материалов различного содержания и свойств, на сегодняшний день среди них нельзя выделить «идеальный», подходящий для использования в различных областях хирургии.
В челюстно-лицевой хирургии и стоматологии костезамещающие материалы используются для восстановления врожденных и приобретенных дефектов и деформаций костей черепа, в частности челюстей. Неадекватное восстановление качества и количества костей может приводить либо к рецидивам основного заболевания, либо к отсутствию возможности установки дентальных имплантатов и дальнейшей реабилитации зубо-челюстной системы [9-14].
При разработке новых биоматериалов для восстановления костных дефектов следует учитывать механизмы репаративной регенерации костной ткани. Костезамещающие материалы должны не только являться каркасом для формирующейся кости (остеокон-дукция) и стимулировать созревание костных клеток (остеоиндукция), но и инициировать эти процессы в соответствующие стадии репаративной регенерации. Большой интерес представляют исследования, посвященные биологической роли фактора роста эндотелия сосудов — ФРЭС (от англ. vascular endothelial growth factor — VEGF) в регенерации костной ткани [15-17]. Доказано, что ФРЭС может синергично взаимодействовать с остеогенными протеинами, такими как BMP4, стимулируя костеобразование и заживление кости,
увеличивая мобилизацию клеток, пролонгируя их жизнеспособность и индуцируя ангиогенез [18]. Также показано, что активность ФРЭС важна для ВМР2-ин-дуцированного костеобразования: он увеличивает костеобразование и регенерацию за счет стимулирования ангиогенеза. Взаимодействие ФРЭС, BMP2 и BMP4 имеет различные, пока еще не до конца изученные молекулярные механизмы [19].
Таким образом, создание новых комбинированных костезамещающих материалов, обладающих, наряду с остеиндуктивными и остеокондуктивными свойствами, способностью индуцировать ангиогенез, является перспективным направлением.
Цель исследования — оценить in vivo эффективность нового остеопластического материала на основе недеминерализованного коллагена, содержащего фактор роста эндотелия сосудов, при замещении костных дефектов.
Материалы и методы. Новый материал для замещения костных дефектов разработан в ЗАО «Протеинсинтез» (Москва). За основу взят недеминерализованный костный коллаген в виде крошки (ООО «НПК ВИТАФОРМ», Москва), который насыщали ФРЭС по оригинальной методике [20, 21].
Влияние разработанного материала на регенерацию костной ткани изучали in vivo. В качестве экспериментальной модели процесса репаративной регенерации костной ткани использована модель «критического костного дефекта», общепринятая в настоящее время при исследовании заживления костных экспериментальных дефектов, в которые помещают костезамещающий материал [22]. В нашем эксперименте костный дефект создавался в гребне подвздошной кости (рис. 1).
Для проведения эксперимента использовались 16 кроликов породы шиншилла массой 2-3 кг, которые были разделены на две группы: основную и контрольную (группу сравнения) по 8 животных. В качестве имплантируемого материала применяли крошку недеми-
Рис. 1. Схематическое изображение сформированных дефектов в подвздошной кости у экспериментальных кроликов (а) и заполнение их костезамещающим материалом (б)
нерализованного коллагена в объеме G,5 мм3: в 1-й группе — насыщенную ФРЭС, во 2-й группе — без ФРЭС. Исследования проводили в соответствии с Приказом Министерства высшего и среднего образования СССР №742 13.11.84 г. «Об утверждении правил проведения работ с использованием экспериментальных животных».
Всех животных оперировали под наркозом путем внутримышечной инъекции 4 мл раствора Золетила-^
(Франция). После введения в наркоз и проведения местной анестезии (раствор лидокаина 1%, 2 мл) с помощью цилиндрической фрезы диаметром б мм формировали два сквозных отверстия на расстоянии б мм друг от друга. Животным 1-й группы в созданный дефект помещали крошку недеминерализованного костного коллагена, насыщенного ФРЭС. Перед внесением в дефект кости материал смешивали с кровью из операционной раны, мягкие ткани над дефектом ушивали наглухо. Через 1G дней швы снимали и продолжали наблюдение за животными. Кроликам 2-й группы по описанной методике костные дефекты заполняли крошкой неде-минерализованного коллагена без насыщения ФРЭС и ушивали их наглухо.
Через 2 нед и 1 мес по 4 животных из каждой группы выводили из эксперимента. Фрагмент кости с имплантированным материалом иссекали и отправляли на гистоморфологическое исследование. Данное исследование проводилось на кафедре патологической анатомии НижГМА.
Результаты. Гистологическое исследование костной ткани животных 2-й (контрольной) группы через 2 нед после операции показало, что крошка из недеминера-лизованного коллагена практически по всей площади дефекта сохраняет свою структуру. Вокруг костных фрагментов наблюдается диффузный воспалительный инфильтрат, в котором доминируют макрофагальные элементы с наличием небольшого количества нейтро-фильных лейкоцитов. Кроме того, есть единичные фокусы рассасывания крошки из недеминерализованного коллагена макрофагами.
У животных 1-й (основной) группы в двухнедельный срок эксперимента выявлено практически полное от-
сутствие крошки из недеминерализованного коллагена с наличием множественных зон лакунарного и пазушного рассасывания имплантата.
Клеточно-тканевые соотношения в области имплантированной костной крошки (табл. 1) в каждой группе имели свои особенности.
В основной группе животных отмечены более быстрая резорбция крошки из недеминерализованного коллагена макрофагами и формирование грануляционной ткани, которая, созревая, трансформируется в зрелую соединительную ткань, что особенно заметно на периферии костного дефекта.
Гистологическое исследование у животных контрольной группы через 1 мес эксперимента выявило отсутствие фрагментов крошки из недеминерализо-ванного коллагена с образованием на ее месте грануляционной и соединительной ткани (рис. 2). Соединительная ткань формируется у животных этой группы на периферии костного дефекта и представляет собой тонковолокнистую ткань с небольшим числом кровеносных сосудов.
В эти же сроки эксперимента у животных основной группы в центре костного дефекта определяются зоны зрелой соединительной ткани с большим количеством тонкостенных кровеносных сосудов, а на периферии дефекта идет формирование зон хрящевой и костной ткани, причем костная ткань формируется в виде зрелой кости с наличием остеонов типичного строения (рис. 3).
Через 1 мес эксперимента были проведены морфометрический анализ площади тканевых структур в ре-
Таблица 1
Клеточно-тканевые соотношения в группах животных через 2 нед от начала операции (M±m)
Группа Число мононуклеаров на 100 клеток Число нейтрофильных лейкоцитов на 100 клеток Площадь костной крошки Площадь соединительной ткани Площадь грануляционной ткани Площадь костных лакун
Основная (n=8) 86,3±11,4 10,5±1,7* 5,7±0,6** 19,8±2,5* 57,6±11,2* 10,2±2,1**
Контрольная (n=8) 76,7±21,3 21,9±4,3 25,3±4,2 6,2±0,4 22,0±2,5 44,7±6,9
* — статистически значимая разница значений с контрольной группой, р^^б; ** — р^ДО^
Рис. 2. Область костного дефекта у животных контрольной группы через 1 мес эксперимента (гематоксилин, эозин; ок. 15, об. 40): а — грануляционная ткань; б — формирование соединительной ткани с небольшим количеством кровеносных сосудов
Рис. 3. Область костного дефекта у животных основной группы через 1 мес эксперимента (гематоксилин, эозин; ок. 15, об. 40): а — формирование соединительной ткани, в толще которой определяется большое количество кровеносных сосудов, в центральной зоне дефекта; б — хрящевая ткань и в — костная ткань с наличием ос-теонов на периферии дефекта
генерате (табл. 2) и оценка площади сосудистого русла, которую выполняли только в фокусах разрастания соединительной ткани в регенерате, поскольку хрящевая и костная ткани в силу своих анатомических особенностей содержат небольшое количество сосудов (табл. 3). Морфометрически измеряли площадь кровеносных сосудов, число сосудов на единицу площади соединительной ткани и коэффициент отношения площади кровеносных сосудов к площади соединительной ткани.
Полученные данные свидетельствуют, что в основной группе животных определяется большая площадь
кровеносных сосудов в зрелой соединительной ткани. Этот факт является ключевым в развитии конечных этапов регенераторного процесса — созревания грануляционной ткани с последующим формированием зрелой фиброзной ткани с наличием всех функционально-морфологических элементов (в частности, кровеносных сосудов), что обеспечивает формирование костной ткани через этап образования хрящевой ткани. Последовательность процессов соответствует полной физиологической регенерации (реституции), обеспечивая развитие новообразованной костной ткани в облас-
Таблица 2
Тканевые соотношения в зоне регенерации через 1 мес эксперимента (M±m)
Группа Костная крошка Грануляционная ткань Соединительная ткань Новообразованная хрящевая ткань Новообразованная костная ткань
Основная(n=8) 0 5,3±0,6** 34,6±9,1* 15,8±3,3** 43,11±12,00**
Контрольная(n=8) 6,6±1,1 31,1±4,0 52,1±7,2 0 4,5±0,3
* — статистически значимая разница значений с контрольной группой, р^^б; ** — р^^Т.
Таблица 3
Соотношение площадей сосудистого русла в зоне соединительной ткани в регенерате через 1 мес эксперимента (M±m)
Группа Площадь сосудистого русла, мкм2 Сосудисто-тканевой коэффициент Число сосудов на единицу площади соединительной ткани
Основная(n=8) 43,2±3,5* 0,937±0,002* 8,4±0,9*
Контрольная (n=8) 5,6±0,7 0,105±0,001 2,1±0,1
* — статистически значимая разница значений с контрольной группой, р^^^
ти костного дефекта. В то же время в группе контроля к концу 1-го месяца эксперимента в зоне костного дефекта формируется грубоволокнистая соединительная ткань в виде грубого рубца, содержащего небольшое количество кровеносных сосудов. Это не только замедляет процесс регенерации, но и приводит к неполной репарации ткани (субституции), что снижает прочностные характеристики кости.
Заключение. Новый биокомпозиционный материал для замещения костных дефектов на основе недеми-нерализованного костного коллагена, насыщенного фактором роста эндотелия сосудов, обладает остео-кондуктивными и остеоиндуктивными свойствами и потенцирует неоангиогенез. Этот материал способен более эффективно индуцировать регенерацию костной ткани по сравнению с немодифицированным коллагеновым матриксом, преимущественно за счет формирования кровеносного русла в зоне регенерации.
Литература
1. Абоянц Р.К., Истранов Л.П., Шехтер А.Б., Рубенко Т.Г., Ис-транова Е.В., Антипас Д.Б., Курдюмов С.Г. Гапкол — новый остеопластический материал. Стоматология 1996; 5: 23-25.
2. Агапов В.С., Аснина С.А., Воложин А.И., Малько Е.В., аль Хинди Халед. Применение препаратов калапол и гидроксиа-пол для заполнения полостей после удаления радикулярных кист. Медицинская консультация 1996; 3: 44-45.
3. Аснина С.А., Агапов В.С., Воложин А.И., Белозеров М.Н., Мазур Л.Г., Малько Е.В. Анализ ближайших и отдаленных результатов применения остеопластических материалов гидроксиапол и колапол в поликлинической хирургической практике. В кн.: Юбилейный список работ, посвященный 60-летию кафедры госпитальной хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии. Москва: ММСИ; 1998; с. 25-27.
4. Абдуллаев Ш.Ю., Архипова М.Х. Использование новых биологически совместимых материалов при восстановлении дефектов челюсти. Стоматология 1999; 3: 37-38.
5. Белозеров М.Н. Оценка остеопластических свойств различных биокомпозиционных материалов для заполнения дефектов челюстей. Дис. ... канд. мед. наук. Москва; 2004; 146 с.
6. Кирилова Н.А., Фомичев Н.Г., Подорожная В.Т., Трубников В.И. Новые виды материалов для костной пластики в
свете современных представлений о костных трансплантатах. Хирургия позвоночника 2007; 2: 66-70.
7. Иванов С.Ю., Зайцев А.Б., Ямуркова Н.Ф., Мигура С.А., Гу-бова М.М., Янцен И.Е., Мураев А.А. Экспериментальное исследование особенностей регенерации костных дефектов, заполненных биоматериалом из недеминерализованного коллагена Остеопласт-К с использованием и без использования коллагеновой мембраны Остеопласт. Российский вестник дентальной имплантологии 2010; 2(22): 66-71.
8. Иванов С.Ю., Зайцев А.Б., Ямуркова Н.Ф., Мигура С.А., Губо-ва В.М., Янцен И.Е., Акулов М.М., Мураев А.А. Исследование барьерной функции коллагеновой мембраны «Остеопласт» при заживлении костных дефектов в эксперименте. Соврем технол мед 2011; 3: 35-38.
9. Ревазова З.Э., Катиева Т.А. Клиническое применение биоматериала «Остеопласт-К» в лечении деструктивных форм периодонтита Эндодонтия Today 2007; 1: 25-26.
10. Тер-Асатуров Г.П., Рябов А.Ю., Лекишвили М.В., Юрасо-ва Ю.Б. Экспериментальная сравнительная оценка некоторых биоматериалов, используемых в российской челюстнолицевой хирургии. Российский стоматологический журнал 2009; 4: 11-12.
11. Cheung C. The future of bone healing. Clin Podiatr Med Surg 2005; 22: 631-641.
12. Берлянд А.С. и др. Физико-химические и биологические свойства гидроксиапатита фирмы «Поликом». Новое в стоматологии. Специальный выпуск 1992; 3: 9-11.
13. Воложин А.И., Лиханов В.Б., Гаража С.Н., Сбикин С.С., Докторов А.А., Воложина С.А., Антонов Е.Н., Топольницкий О.З., Попов В.К. Применение синтетического гидроксиапатита в стоматологии, травматологии и хирургии. Биомедицинские технологии 1996; 5: 27-35.
14. Кирилова Н.А., Подорожная В.Т., Легостаева Е.В., Шарке-ев Ю.П., Уваркин П.В., Аронов А.В. Костнопластические биоматериалы и их физико-механические свойства. Хирургия позвоночника 2010; 1: 81-87.
15. Gerber H.P., Ferrara N. Angiogenesis and bone growth. Trends Cardiovasc Med 2000; 10: 223-228.
16. Zelzer E., McLean W., Fukai N., Reginato A.M., Lovejoy S., D'Amore P.A., Olsen B.R. Skeletal defects in VEGF(120/120) mice reveal multiple roles for VEGF in skeletogenesis. Development 2002; 129: 1893-1904.
17. Maes C., Carmeliet P., Moermans K., Stockmans I., Smets N., Collen D., Bouillon R., Carmeliet G. Impaired angiogenesis and endochondral bone formation in mice lacking the vascular endothelial growth factor isoforms VEGF164 and VEGF188. Mech Dev 2004; 111: 61-73.
18. Deckers М.М., Karperien М., van der Bent C., Yamashita T., Pa-papoulos S.E., Lowik C.W. Expression of vascular endothelial growth factors and their receptors during osteoblast differentiation. Endocrinology 2000; 141: 1667-1674.
19. Peng H., Usas A., Olshanski A., Ho A.M., Gearhart B., Cooper G.M., Huard J. VEGF improves, whereas sFlt1 inhibits, BMP2-induced bone formation and bone healing through modulation of angiogenesis. J Bone Miner Res 2005; 20: 2017-2027.
20. Иванов С.Ю., Мураев А.А., Рябова В.М., Солодкин В.Г., Володина Е.В., Кибардин А.В. Блок композиционного материала для костной тканевой инженерии на основе костного недеминерализованного коллагена, содержащего фактор роста эндотелия сосудов. Заявка на патент, вх. №050959, рег. №2011134417 от 17.08.2011 г.
21. Рябова В.М. Разработка нового биокомпозиционного материала, содержащего фактор роста эндотелия сосудов, для замещения костных дефектов (экспериментальное исследование. Автореф. дис. ... канд. мед. наук. Н. Новгород; 2011; 105 с.
22. Schmid J., Wallkamm B., Hammerle C.H., Gogolewski S., Lang N.P. The significance of angiogenesis in guided bone regeneration. A case report of a rabbit experiment. Clin Oral Implants Res 1997; 8: 244-248.
References
1. Aboyants R.K., Istranov L.P., Shekhter A.B., Rubenko T.G., Istra-nova E.V., Antipas D.B., Kurdyumov S.G. Stomatologia 1996; 5: 23-25.
2. Agapov V.S., Asnina S.A. Volozhin A.I., Mal'ko E.V., аГ Khindi Khaled. Meditsinskaya konsuitatsiya 1996; 3: 44-45.
3. Asnina S.A., Agapov V.S., Volozhin A.I., Belozerov M.N., Mazur L.G., Mal'ko E.V. Yubileynyy spisok rabot, posvyashchennyy 60-letiyu kafedry gospitainoy khirurgicheskoy stomatologii i che-lyustno-litsevoy khirurgii [Festschrift devoted to the 60th anniversary of the Department of Hospital Surgical Dentistry and MaxilloFacial Surgery]. Moscow: MMSI; 1998; p. 25-27.
4. Abdullaev Sh.Yu., Arkhipova M.Kh. Stomatologia 1999; 3: 37-38.
5. Belozerov M.N. Otsenka osteoplasticheskikh svoystv razlichnykh biokompozitsionnykh materialov dlya zapolneniya defektov chely-ustey. Dis. ... kand. med. nauk [The assessment of osteoplastic properties of various biocomposite materials to fill jaw defects. Abstract of Dissertation for the degree of Candidate of Medical Science]. Moscow; 2004; 146 p.
Kirilova N.A., Fomichev N.G., Podorozhnaya V.T., Trubnikov V.I. Hir Pozvonoc 2007; 2: 66-70.
Ivanov S.Yu., Zaitsev A.B., Yamurkova N.F., Migura S.A., Gubova M.M., Yantsen I.E., Muraev A.A. Ross Vestn Dent Implantol 2010; 2(22): 66-71.
Ivanov S.Yu., Zaitsev A.B., Yamurkova N.F., Migura S.A., Gubova V.M., Yantsen I.E., Akulov M.M., Muraev A.A. Sovrem Tehnol Med 2011; 3: 35-38.
9.
1G.
11.
12.
13.
14.
1б.
16.
17.
18.
19.
2G.
Revazova Z.E., Katieva T.A. Endod Today 2007; 1: 25-26. Ter-Asaturov G.P., Ryabov A.Yu., Lekishvili M.V., Yurasova Y.B. Rossijskij stomatologicheskij zurnal 2009; 4: 11-12.
Cheung C. The future of bone healing. Clin Podiatr Med Surg 2005; 22: 631-641
Berlyand A.S. et al. Novoe v stomatologii. Spetsiainyy vypusk 1992; 3: 9-11.
Volozhin A.I., Likhanov V.B., Garazha S.N., Sbikin S.S., Doktorov A.A., Volozhina S.A., Antonov E.N., Topol'nitskiy O.Z., Popov V.K. Biomeditsinskie tehnologii 1996; 5: 27-35.
Kirilova N.A., Podorozhnaya V.T., Legostaeva E.V., Sharkeev Yu.P., Uvarkin P.V., Aronov A.V. Hir Pozvonoc 2010; 1: 81-87.
Gerber H.P., Ferrara N. Angiogenesis and bone growth. Trends Cardiovasc Med 2010; 10: 223-228.
Zelzer E., McLean W., Fukai N., Reginato A.M., Lovejoy S., D'Amore P.A., Olsen B.R. Skeletal defects in VEGF(120/120) mice reveal multiple roles for VEGF in skeletogenesis. Development 2002; 129: 1893-1904.
Maes C., Carmeliet P., Moermans K., Stockmans I., Smets N., Collen D., Bouillon R., Carmeliet G. Impaired angiogenesis and endochondral bone formation in mice lacking the vascular endothelial growth factor isoforms VEGF164 and VEGF188. Mech Dev 2004; 111: 61-73.
Deckers M.M., Karperien M., van der Bent C., Yamashita T., Pa-papoulos S.E., Lowik C.W. Expression of vascular endothelial growth factors and their receptors during osteoblast differentiation. Endocrinology 2000; 141: 1667-1674.
Peng H., Usas A., Olshanski A., Ho A.M., Gearhart B., Cooper G.M., Huard J. VEGF improves, whereas sFlt1 inhibits, BMP2-induced bone formation and bone healing through modulation of angiogenesis. J Bone Miner Res 2005; 20: 2017-2027.
Ivanov S.Yu., Muraev A.A., Ryabova V.M., Solodkin V.G., Volodina E.V,. Kibardin A.V. Blok kompozitsionnogo materiala dlya kostnoy tkanevoy inzhenerii na osnove kostnogo nedemineral-izovannogo kollagena, soderzhashchego faktor rosta endoteliya sosudov [Block of composite material for bone tissue engineering based on bone non-demineralized collagen containing vascular endothelial growth factor]. Zayavka na patent, bx. №050959, reg. №2011134417.
Ryabova V.M. Razrabotka novogo biokompozitsionnogo materiala, soderzhashche go faktor rosta endoteliya sosudov, dlya zameshcheniya kostnykh defektov (eksperimentainoe issledo-vanie). Avtoref. dis. ... kand. med. nauk [The development of a new biocomposite material containing vascular endothelial growth factor to replace bone defects (experimental research). Abstract of Dissertation for the degree of Candidate of Medical Science]. Nizhny Novgorod; 2011.
Schmid J., Wallkamm B., Hammerle C.H., Gogolewski S., Lang N.P. The significance of angiogenesis in guided bone regeneration. A case report of a rabbit experiment. Clin Oral Implants Res 1997; 8: 244-248.
уттттттттттттттттттттттттттттттттттттттттттттттттг/’
