CC BY
74
УДК 636.087.8:636.5.084
ИЗМЕНЕНИЕ МИКРОБОЦЕНОЗА КИШЕЧНИКА ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ КРОССА ^ F-15 ПРИ ПРИМЕНЕНИИ ВЕТОМА 3 И ВЕТОМА 3.22
Г.А. НОЗДРИН, доктор ветеринарных наук, зав. кафедрой
Н.В. РЕВКОВ, аспирант Новосибирский ГАУ А.И. ЛЕЛЯК, директор А.А. ЛЕЛЯК, зав. лабораторией НПФ «Исследовательский центр»
М.Г. ПЕТРАШ
А.Н. ЛУКЬЯНОВ
E-mail: [email protected]
Резюме. Исследования проводили с целью изучения влияние пробиотиков ветом 3 и ветом 3.22, в различных дозах, на состав микрофлоры кишечника цыплят. Ветом 3 представляет собой мелкодисперсный порошок, ветом 3.22 - жидкость. Для ее достижения было проведено две серии опытов. В 1-й серии цыплятам опытной группы ветом 3 задавали в дозе 100 мг/кг живой массы через автоматические поилки ежедневно до 34-х сут. возраста. Во второй серии опытов цыплятам задавали ветом 3.22 в дозе 3 мкл/кг живой массы до 34-х сут. возраста в I опытной группе ежедневно, во II опытной группе через день. В обоих опытах в первые 5 дн. кроме изучаемых препаратов давали антибиотики, цыплят-бройлеров контрольных групп выращивали по стандартной для предприятия схеме. Отбор фекалий для определения качественного и количественного состава микрофлоры проводили на 1-е, 15-е и 35-е сут. На 15-е сут. исследований при применении ветома 3 и ветома 3.22 титр Proteus vulgaris снизился на 2 порядка и приблизился к норме. Количество кишечной палочки с пониженной активностью (лактозонегативной) уменьшилось в 2,8 раза. Содержание бифидо- и лактобактерий в 10 раз превышало величину аналогичного показателя в контрольной группе. В возрасте 35 сут. картина в основном оставалась аналогичной. Таким образом, ветом 3 и ветом 3.22 позитивно влияли на показатели нормофлоры и способствовали более раннему формированию микробиоценоза у цыплят.
Ключевые слова: бройлеры, пробиотики, бактериальные штаммы, микробоценоз.
В последнее десятилетие в Российской Федерации успешно развивается отрасль птицеводства. Для обеспечения высокой эффективности и рентабельности выращивания птицы на многих предприятиях используют пробиотические препараты, которые стимулируют интенсивность роста и повышают качество получаемой продукции [1...3]. Широко применяются препараты, в состав которых входят аэробные спорообразующие бактерии рода Bacillus [4, 5].
Цель наших исследований - изучить влияние пробиотиков ветом 3 и ветом 3.22, задаваемых цыплятам-бройлерам перорально с водой в различных дозах, на состав микрофлоры их кишечника.
Условия, материалы и методы. Производственные эксперименты проводили в ЗАО «Алтайский бройлер» на цыплятах-бройлерах кросса ISA F-15 при их напольном содержании в период с мая 2009 г. по май 2010 г. Птица получала полнорационный комбикорм, сбалансированный по питательным и биологически активным веществам. Воду и корм задавали по технологической схеме принятой на предприятии.
Для достижения поставленной цели было поставлено две серии опытов. Для первой сформировали 2 группы -опытная и контрольная - численностью 22758 и 22459 гол. соответственно. В опытной группе птице задавали препарат ветом 3 в дозе 100,0 мг/кг живой массы через
автоматические поилки ежедневно до 34-х сут. включительно. Первые 5 дн. препарат давали совместно с антибиотиками. Для второй серии опытов было сформировано 2 опытных и одна контрольная группа с численностью поголовья 23261, 23962 и 23951 гол. соответственно. Препарат ветом 3.22 задавали в дозе 3 мкл/кг живой массы в I опытной группе ежедневно, во II опытной группе через день. В остальном схема и продолжительность эксперимента аналогичны ранее изложенным. В контроле в обоих экспериментах цыплят-бройлеров выращивали по стандартной для предприятия схеме.
Отбор фекалий для определения качественного и количественного состава микрофлоры проводили на 1-е, 15-е и 35-е сут. Посевы и идентификацию микроорганизмов осуществляли согласно общепринятым методикам.
Используемые в производственных опытах лечебнопрофилактические препараты для ветеринарного применения ветом 3 и ветом 3.22 содержат в качестве действующего начала бактерии Bacillus amyloliquefaciens штамм ВКПМ В-10642 в концентрации не менее 106 КОЕ/г и 109 КОЕ/см3 соответственно, а также наполнитель. Ветом 3 представляет собой мелкодисперсный порошок, ветом 3.22 - жидкость.
Данные, полученные в ходе эксперимента, обрабатывали с использованием стандартных компьютерных программ. Достоверность определяли с помощью критерия Стьюдента.
Результаты и обсуждение. До применения препаратов микрофлора кишечника цыплят-бройлеров в опытных и контрольных группах достоверно не различалась (табл. 1).
У всех цыплят наблюдали повышенное содержание лактозонегативной кишечной палочки - (172.. ,246)х 105, что в 100 раз превосходит норму. Кроме того, при изучении условно-патогенных энтеробактерий, в образцах фекалий у всех цыплят выявлен Proteus vulgaris в высоких титрах - не менее 1х107 КОЕ/г (в норме 1х104 КОЕ/г). Содержание бифидо- (28...44х108 КОЕ/г) и лактобактерий (10х108 КОЕ/г), энтерококков (62.101 х108 КОЕ/г) и кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью (19.21 х109 КОЕ/г), а также прочих представителей нормофлоры (клостридии, сапрофитный стафилококк, грибы рода Candida) в исследованных образцах соответствовало норме.
На 15-е сутки в 1-й серии опытов при использовании ветома 3 содержание бифидо- и лактобактерий у цыплят в опытной группе было выше величины аналогичного показателя в контроле в 10 раз (1х108 и 1 х 107 КОЕ/г; 1 х 109 и 1 х 108 КОЕ/г соответственно), энтерококков - в 4,2 раза, кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью - в 2,3 раза.
Численность кишечной палочки с пониженной активностью (лактозонегативной) на 15-е сут. опыта в опытной группе снизилась, по сравнению с контрольной, в 2,8 раза, а титр P. vulgaris - на 2 порядка и приблизился к норме (1х105 КОЕ/г).
Во 2-й серии опытов в случае применения ветома
3.22 на 15-е сут. содержание бифидобактерий и лактобактерий в кишечнике птицы I и II опытных групп в 10
Таблица 1. Количественный состав микрофлоры кишечника цыплят-бройлеров кросса ISA F-15*
1 серия опытов 2 серия опытов
Группа микроорганизмов I опытная контроль I опытная II опытная кон-
группа группа группа троль
до применения препаратов
Бифидобактерии 28x108 44x108 33x108 40x108 37x108
Лактобактерии 10x108 10x108 10x108 10x108 10x108
Энтерококки 101 x 108 81 x108 62x108 74x108 66x108
Клостридии 1 x105 1 x105 1 x105 1x105 1x105
E. coli с нормальной фер-
ментативной активностью 21 x109 17x109 21x109 19x109 20x109
E. coli с пониженной
активностью (лактозо-
негативные) 172x105 246x105 209x105 195x105 195x105
Другие условно-патогенные
энтеробактерии и бактерии P. vulgaris P. vulgaris P. vulgaris P. vulgaris P. vulgarls
1x107 1x107 1x107 1x107 1x107
Стафилококк сапрофитный,
эпидермальный 1 x102 1 x102 1 x102 1x102 1x102
Грибы рода Candida 1 x103 1 x103 1 x103 1x103 1x103
15-е сутки опыта
Бифидобактерии 1 x108 1 x107 10x108 10x108 1x108
Лактобактерии 10x108 1 x108 1 x108 1 x108 1x107
Энтерококки 5x108 0,8x108 1 x108 8x108 0,4x108
Клостридии 1 x105 1 x105 1 x105 1 x105 1x105
E. coli с нормальной фер-
ментативной активностью 21 x109 9x109 40x109 80x109 9x109
E. coli с пониженной
активностью (лактозо-
негативные) 57x105 61 x105 12x105 2x105 162x105
Другие условно-патогенные P. vulgaris P. vulgaris P. vulgaris P. vulgaris P. vulgar-
энтеробактерии и бактерии 1x105 1x107 1x104 1 x105 ls 1x107
Стафилококк сапрофитный,
эпидермальный 1 x102 1 x102 1 x104 1 x104 1x104
Грибы рода Candida 1 x103 1 x103 11,4x103 11,7x103 1x104
35-е сутки опыта
Бифидобактерии 1 x108 1 x107 10x108 10x108 1x108
Лактобактерии 3x108 1 x108 2x108 3x108 2x108
Энтерококки 1 x106 1 x106 7x106 8x106 0,4x106
Клостридии 1 x105 1 x105 1 x105 1 x105 1x105
E. coli с нормальной фер-
ментативной активностью 1,5x109 0,3x109 4x109 8x109 9x109
E. coli с пониженной
активностью (лактозо-
негативные) 3,2x105 15x105 22x105 18x105 160x105
Другие условно-патогенные P. vulgaris P. vulgaris P. vulgaris P. vulgaris P. vulgar-
энтеробактерии и бактерии 1x104 1x107 1x104 1 x104 ls 1x107
Стафилококк сапрофитный,
эпидермальный 1 x102 1 x102 1 x104 1 x104 1x104
Грибы рода Candida 1 x103 1x103 1 x103 1 x103 1x103
*Содержание в норме: бифидобактерии - не менее 1x10е, лактобактерии - не менее 1x10s, энтерококки - не менее 1x10s, клостридии - 1x10s, E. coli с нормальной ферментативной активностью - не менее 1x107, E. coli с пониженной активностью (лактозо-негативные) - 1x10s, E. coli гемолитические - 0, другие условно-патогенные энтеробактерии и бактерии - 1x104, стафилококк золотистый - 0, стафилококк сапрофитный, эпидермальный - 1x104, грибы рода Candida - 1x 104.
раз превышало величины аналогичных показателей в контроле (1x109 и 1x108 КОЕ/г; 1х108 и 1х107 КОЕ/г соответственно). Количество энтерококков в опытных и контрольной группах различалось незначительно и варьировало в пределах (0,4...8)x108 КОЕ/г.
Содержание кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью в I и II опытных группах было выше, чем в контроле, соответственно в 4,4 и 8,8 раз, а лактозонегативной - ниже в 13,5 и 7,3 раза. Титр P. vulgaris у птицы I и II опытных групп уменьшился на 2... 3 порядка (1 x 104 и 1x105КОЕ/г соответственно).
На 35-е сутки опыта количественный и качественный состав микрофлоры кишечника цыплят-бройлеров опытных групп существенно не изменился. Содержание бифидобактерий у цыплят опытной группы в 1-й серии опытов было в 10 раз выше, чем в контроле, во 2 серии опытов оно находилось на одном уровне и составля-
ло 10x108 КОЕ/г. Количество лактобактерий у птицы опытных групп изменялось в пределах от 1...3x108 КОЕ/г. Содержание энтерококков в фекалиях выровнялось и составляло в среднем по группам 0,4...7x10е КОЕ/г.
Численность кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью у 35-суточных цыплят, как и у птицы в возрасте 15 сут., соответствовало норме и составляло в среднем по группам (8...9x109 КОЕ/г). Титры P. vulgaris, в сравнении с 15-суточными цыплятами, изменились незначительно. Содержание протея во всех опытных группах составляло 104 КОЕ/г, тогда как в контроле в обоих сериях опытов оно оставалось на исходном уровне.
Содержание лактозонегативной кишечной палочки у цыплят в 1-й серии опытов было ниже, чем в контроле, в 4,7 раза, во 2-й серии опытов у птицы I опытной группы - в 7,3, II - в 8,9 раза.
Количество клостридий, сапрофитного стафилококка и грибов рода Candida во все сроки исследований в обоих сериях опытов не отличалось от установленного до начала опыта у суточных цыплят и соответствовало норме, а гемолитическая кишечная палочка и золотистый стафилококк выявлены не были.
Таким образом, ветом 3 и ветом 3.22 изменяют микробиоз в кишечнике с одинаковой закономерностью. Обеспечивая увеличение количества бифидо- и лактобактерий, они способствуют образованию в кишечнике цыплят антагонистического барьера и формируют колонизационную резистентность, которая предотвращает заселение условно-патогенными и патогенными микроорганизмами. Постоянное присутствие в кишечнике адгезированных на его стенке резидентных микроорганизмов предотвращает размножение патогенов, их внедрение в энтероциты и прохождение через кишечную стенку. Кишечные бактерии нормофлоры защищают хозяина от патогенов, а также формируют переднюю линию слизистой защиты [6]. Ветом 3 и ветом 3.22 способствовали более раннему становлению нормофлоры у цыплят опытных групп.
Выводы. Производственный опыт, в рамках которого антибиотики использовали только в первые 5 дн., а в дальнейшем применяли лечебно-профилактические препараты для ветеринарного применения Ветом 3 в дозе 100 мг/кг живой массы тела (ежедневно) и ветом
3.22 в дозе 3 мкл/кг массы тела (ежедневно и через став микрофлоры кишечного тракта цыплят-бройлеров,
день), показал, что изученные пробиотики положитель- увеличивая содержание нормофлоры и снижая числен-
но воздействуют на количественный и качественный со- ность потенциально патогенных микроорганизмов.
Литература.
1. Антипов В.А. Пробиотики в ветеринарии // Новые фармакологические средства в ветеринарии: Тез. докл. - Ленингр. вет. ин-т., 1989. - с. 7-8.
2. Малик Н.И., Панин А.Н. Ветеринарные пробиотические препараты// Ветеринария. - 2001. - № 1. - с. 46-51.
3. Ноздрин Г.А., Леляк А.И. и др. Влияние ветома-1.1. и ветома-2 на интенсивность роста и развития поросят в подсосный период// Атуальные вопросы ветеринарии: Тез. докл. 1-й науч.-практ. конф. фак. вет. мед. НГАУ. - Новосибирск, 1997. - с. 9-10.
4. Ноздрин Г.А., Иванова А.Б., Шевченко А.И., Ноздрин А.Г. Научные основы применения пробиотиков в птицеводстве. -Новосибирск: Новосиб. гос. аграр. ун-т., 2005. - с
5. Смирнов В.В. и др. Современные представления о механизме лечебно-профилактического действия пробиотиков из бактерий рода Bacillus // Микробиология. - 1993. - Т. SS. - № 4. - с. 92-112.
6. Тараканов Б.В. Механизмы действия пробиотиков на микрофлору пищеварительного тракта и организм животных // Ветеринария. - 2000. - № 1. - с. 47-54.
CHANGE MICROBOCINOSIS OF THE INTESTINE OF BROILERS CHIKCENS CROSS ISA F-15
WITH VETOM 3 AND VETOM 3.22 G.A. Nozdrin, N.V. Revkov, A.I. Lelyak, A.A. Lelyak, M.G. Petrash, A.N. Lukjanov
Summary. The purpose of research is to study the effect of probiotics vetom 3, & vetom 3.22, at various doses, on the composition of intestinal microflora of chickens. Vetom 3 is a fine powder vetom 3.22 in liquid. To achieve this goal included two series of experiments. In one series of experimental group chickens vetom 3 asked in a dose of 100 mg/kg body weight through automatic waterers daily to 34 day old. The 1st 5 days of preparation specified together with antibiotics. Broiler controls were grown in a standard scheme for the company. In the 2nd series - chickens 1st experimental group asked vetom 3.22 daily at a dose of 3 ml/kg body weight up to 34 day old, the 1st 5 days with antibiotics. In 2nd test vetom 3.22 bird wondered at 3 ml/kg body weight every other day to 34 day old, the 1st 5 days with antibiotics. Chickens - broilers controls were grown in a standard scheme for the company. Tackling feces to determine the qualitative and quantitative composition of microflora was performed on the 1st, 15th, & 35th day. On the 15th day of studies in experimental chickens in applying vetom 3, & vetom 3.22 titer of Proteus vulgaris decreased by 2 orders of magnitude and close to normal. Number of Escherichia coli with reduced activity (lactosonegative) decreased by 2.8 times. The content of Bifidobacteria, & Lactobacillus in 10 times higher than in the control group. Thus, vetom 3, & vetom 3.22 positively influence your normal flora, & promote better early formation microbiota in chickens.
Key words: broiler chickens, probiotic, bacterial strains, mikrobocenoz.
УДК 619:612-08+636.237.21
ПРОФИЛАКТИЧЕСКАЯ И РОСТОСТИМУЛИРУЮЩАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ЖИДКИХ ФОРМ ВЕТОМОВ ПРИ ПРИМЕНЕНИИ ИХ НОВОРОЖДЕННЫМ ТЕЛЯТАМ
Г.А. НОЗДРИН, доктор ветеринарных наук, зав. кафедрой
А.Г. НОЗДРИН, кандидат ветеринарных наук, доцент
А.Б. ИВАНОВА, доктор ветеринарных наук, профессор
Новосибирский ГАУ А.И. ЛЕЛЯK, директор
А.А. ЛЕЛЯK, кандидат биологических наук, зав. лабораторией
НПФ «Исследовательский центр»
E-mail: [email protected]
Резюме. Исследования проводили с целью изучения профилактической и ростостимулирующей эффективности жидких форм пробиотиков ветом 2.26 (действующее начало - Bacillus subtilis штамм В^М В-10641 и Bacillus amyloliquefaciens штамм ВШМ В-10643в количестве не менее 1x10 ШЕ/мл) и ветом 4.24 (действующее начало - Bacillus amyloliquefaciens штамм В^М В-10643в количестве не менее 1x 109 ЮЕ/мл) при выращивании телят чёрно-пёстрой породы. Были сформированы 4 опытных и контрольная группы из новорожденныхживотных черно-пестрой породы. Телятам I и II опытных групп назначали соответственно ветом 2.26 и ветом 4.24 внутрь с молоком в дозе 0,5 мкл/ кг массы тела, а III и IV групп - в дозе 1 мкл/кг массы, 2 раза в
сутки первые 5 сут. подряд, затем с однодневным интервалом в течение месяца. Животным контрольной группы препарат не применяли. Исследование крови и взвешивание проводили до применения препарата и на 30-е, 60-е и 90-е сутки опыта. За опытный период у животных-копытных групп среднесуточный приростживой массы был выше аналогов из контрольной группы на 19,0; 19,2; 39,3 и 38,3 % соответственно. Изменение интенсивности роста телят при скармливании ветома 2.26 и ветома 4.24 происходило с одинаковой закономерностью. В период введения препаратов регистрировали самый низкий прирост живой массы. Наибольшую интенсивность роста отмечали у телят опытных групп на 30-е сут. после прекращения назначения препаратов. Более выраженный ростостимулирующий эффект отмечен при применении пробиотиков в дозе 1 мкл/кг массы. За период эксперимента среди телят опытных групп заболеваний не регистрировали. В контроле нарушение функционального состояния органов пищеварения с диарейным синдромом регистрировали у 80 % животных.
Ключевые слова: ветом 2.26, ветом4.24, пробиотики, абсолютная масса, среднесуточный прирост.
В связи со вступлением Российской Федерации в ВТО необходимо пересмотреть традиционно сложившиеся технологии выращивания животных с использованием фармакологических препаратов и биологически активных добавок. На сегодняшний день одно из перспективных
