CC BY
36
торой встречаются отдельные продольно направленные мышечные клетки (рис. 3).
Рис. 3. Гладкомышечные клетки в наружной стенке грудного протока
Также в стенке грудного протока у маралов распределяются питающие сосуды (vasa vasorum lumphorum) (рис. 4).
Таким образом, нами установлено, что строение грудного протока у маралов характеризуется наличием сложной гистологической картины, что позволяет ярче представить значимость лимфатической системы как основной системы, выполняющей защитную функцию организма.
+
Рис. 4. Питающий сосуд в стенке грудного протока
Библиографический список
1. Куприянов В.В. Микролимфология / В.В. Куприянов и др. — М.: Медицина, 1983.
2. Лукъянчеко Б.Я. Лимфология / Б.Я. Лукъянчеко. — М.: Медицина, 1966.
3. Чумаков В.Ю. Лимфатическое русло сердца некоторых млекопитающих / В.Ю. Чумаков. — Абакан, 1997.
+
УДК 636.294:612.35.001.5 В.М. Жуков,
Е.С. Ленская
ИССЛЕДОВАНИЯ ПЕЧЕНИ МАРАЛОВ В ПОСТМОРТАЛЬНЫЙ ПЕРИОД
Ключевые слова: маралы, посмертные изменения, печень, судебная ветеринария, деструктивные изменения, гистологическая характеристика.
Проблема определения давности смерти имеет большую актуальность не только для судебной ветеринарии, но и для специалистов медико-биологического профиля. Изготовление качественных гистопре-паратов во многом зависит от сроков хранения органов. Поэтому в практической работе по диагностике болезней печени необходимо в первую очередь исключить посмертные изменения.
При макроскопическом исследовании трупов пантовых оленей в парках специализированных хозяйств Горного Алтая мы столкнулись с ситуациями, когда нужно было определить сроки с момента наступления смерти у животных.
Для этого мы поставили задачу — установить закономерности изменений, развивающихся в печени в постмортальный период.
Методика исследования
После убоя у маралов извлекали кусочки печени и размещали ее в лотках при комнатной температуре +200С в закрытом помещении. В ряде случаев пе-
чень сохранялась в трупе животного. Анализ постмортальных изменений проводили через 2, 24, 48, 72 и 96 ч после убоя и гибели с применением методов внешнего осмотра и патологогистологического исследования. Всего исследовано 20 животных.
Результаты исследования
После смерти у пантовых оленей, как у и других видов животных, наступает охлаждение внутренних органов до температуры окружающей среды. При этом окоченение трупа маралов проявляется выраженным уплотнением мышц и исчезает через 24-48 ч [1, 2].
При исследовании и внешнем осмотре внутренних органов констатировали проявление гипостатического полнокровия или трупного гипостаза в печени вследствие переполнения кровеносных и лимфатических сосудов и скопления тканевой жидкости, особенно в тех участках, которые располагались в нижней части трупа. По мере увеличения срока с момента смерти цвет печени постепенно становится темно-красным. В крупных сосудах образуются свертки крови черно-красного цвета, рыхлой или умерено плотной консистенции. На разрезе поверхность органа гладкая и влажная. При этом отчетливо видны просветы желчных протоков и сосудов.
При трупном разложении печень увеличивается в объеме, грязно-бурого цвета, дряблой консистенции, легко распадается и имеет крайне неприятный запах
[2, 3].
Через 2 ч после смерти животного печень в объеме не увеличена, блестящая, красно-бурого цвета, консистенция мяг-
кая, структура рисунка на разрезе хорошо выражена.
Гистологическим исследованием установлено, что структура гепатоцитов хорошо сохраняется. Ядра округлой формы и лишь единичные подвергаются пикнозу. Цитоплазма гепатоцитов содержит небольшое количество очагов глыбчатого распада. В краевых зонах печеночной дольки ядра деформированы больше, чем в центре. Кроме того, наблюдается снижение интенсивности их окраски и лизис (рис. 1).
Через 24 ч. Макрокартина: незначительно увеличивается в объеме, структура рисунка на разрезе сглаживается, дрябловатой консистенции, красно-бурого цвета.
Микрокартина: в центральной части печеночной дольки ядра гепатоцитов становятся более бледными и появляются светлые пузырьки с жидким содержимым. Обнаруживается также масса лизирован-ных элементов стромы. Ядра клеток находятся на разных стадиях рексиса и лизиса. Кровеносные сосуды сохраняют отчетливую организацию стенок. Эндотелий сосудов набухает (рис. 2).
Через 48 ч. Макрокартина: увеличивается в объеме, дряблой консистенции, сероватого цвета, на разрезе рисунок сглажен.
Микрокартина: сохраняются лишь сла-бовыраженные контуры гепатоцитов. Наблюдаются признаки дискомплексации печеночных балок. Ядра клеток воспринимают окраску очень слабо. Лишь соединительнотканные элементы окрашиваются достаточно контрастно (рис. 3).
Рис. 1. Марал. Печень через 2 ч после смерти. Увеличение 100х. Микрофото. Окраска гематоксилин-эозином:
1 — сохранившиеся гепатоциты;
2 — очаги глыбчатого распада;
3 — набухание эндотелиальных клеток
Рис. 2. Марал. Печень через 24 ч после смерти.
Увеличение 400х. Микрофото. Окраска гематоксилин-эозином: 1 — лизированные ядра гепатоцитов; 2 — сохранившиеся ядра
Рис. 3. Марал. Печень через 48 ч после смерти.
Увеличение 400х. Микрофото Окраска гематоксилин-эозином:
1 — слабоокрашенные ядра гепатоцитов;
2 — начальные признаки дископлексации
печеночных балок
Рис. 4. Марал. Печень через 72 ч после смерти. Увеличение 400х. Микрофото. Окраска гематоксилин-эозином:
1 — фрагментация печеночных балок;
2 — глыбчатая бесструктурная масса.
Через 72 ч. Макрокартина: печень неравномерно окрашена. На ее поверхности видны участки в виде расплывчатых пятен серого цвета, не резко отграниченные от остальной ткани. Они различной формы и величины, в центре заметны полости, возникшие вследствие выделения газов гни-
лостными бактериями при разложении ткани печени.
Микрокартина: аутолиз гепатоцитов, сопровождается фрагментацией печеночных балок. Гепатоциты разъединяются, округляются и становятся бесформенными. Лизированные ядра практически не
воспринимают окраску. Клетки заполнены глыбчатой бесструктурной массой (рис. 4).
На 4-е сутки, т.е. через 96 ч после смерти, печень увеличена в объеме, грязно-бурого цвета, дряблой консистенции и легко рвется, со зловонным запахом.
При микроскопическом исследовании сохраняется лишь общая топография структур печени, не воспринимающих красителей. Параллельно обнаруживаются единичные слабоокрашенные ядра лизи-рованных клеток. В паренхиме органа видна обильная микрофлора.
Таким образом, проведенными исследованиями установлено, что наиболее существенные постмортальные структурные изменения в печени маралов происходят сначала в периферических, а затем в центральных отделах органа. Посмертные
изменения печени необходимо учитывать при проведении судебно-ветеринарной экспертизы и взятии патологического материала для гистологического исследования.
Библиографический список
1. Лазовский Ю.М. Трупные изменения / Ю.М. Лазовский / / Многотомное руководство по патологической анатомии. — М., 1956. — Т. 4. — Кн. 1. — С. 200-309.
2. Хижнякова К.И. Возможности судебно-медицинской экспертизы при определении времени наступления смерти / К.И. Хижнякова. — М., 1973. — С. 40-43.
3. Хижнякова К.И. Исследование желудочно-кишечного тракта при определении давности смерти / К.И. Хижнякова, Л.Н. Моралев. — М.: Медицина, 1986. — С. 142.
+ + +
УДК 619:618.177-089.888.11 Д.В. Попов,
Н.В. Безбородов
СПОСОБ ВЫЗЫВАНИЯ СУПЕРОВУЛЯЦИИ У КОРОВ-ДОНОРОВ
Ключевые слова: трансплантация эмбрионов, коровы-доноры, суперовуляция, иммуномодулятор тимоген.
Одним из важных этапов биотехнологии трансплантации эмбрионов крупного рогатого скота является гормональное вызывание суперовуляции у коров-доноров. Для вызывания суперовуляции в яичниках коров используют гонадотропины в сочетании с простагландинами. Этот способ позволяет вызвать суперовуляцию в яичниках у 70% коров. Одним из существенных недостатков способа вызывания суперовуляции является крайне высокая степень вариабельности числа овуляций и качества оплодотворенных эмбрионов [1]. Отмечено, что среднее число овуляций, оцениваемых при извлечении яйцеклеток или эмбрионов, составляет 8,6 ± 5,8 [2]. Считают, что лишь половина коров, реагирующих на введение гонадотропинов, может дать 4-5 эмбрионов, пригодных
для трансплантации. Такая эффективность вызывания суперовуляции связана с влиянием эстрогенов на зародыши в полости матки, уровнем прогестерона, размеров зародышей, соответствием размеров зародышей их возрасту, наличием аномальных ооцитов, степени рассасывания желтого тела яичника, индивидуальным гормональным фоном животного, породой и возрастом животного, уровнем кормления, индивидуальной реакцией организма на гонадотропные препараты и другими факторами [3].
Гормональная стимуляция яичников у коров, вызывающая полиовуляцию, связана с активизацией метаболических процессов в организме коров-доноров. Поэтому для обеспечения овогенеза, оплодотворения и биологически полноценного формирования и развития эмбрионов коров-доноров необходимо обеспечить биологически активными веществами, способствующими полноценному развитию процессов суперовуляции.
