CC BY
16ISSN 0868-5886
НАУЧНОЕ ПРИБОРОСТРОЕНИЕ, 2013, том 23, № 1, с. 106-114 ХРОМАТОГРАФИЯ, ПЦР-, ДНК-АНАЛИЗ =
УДК 543.544.17
© В. Д. Гладилович, Е. В. Шрейнер, Я. А. Дубровский, П. Д. Колоницкий, К. А. Краснов, Е. В. Бабина, Е. А. Мурашко, В. Н. Бабаков, О. А. Кельциева, И. А. Краснов, М. С. Ануров, Я. В. Русских, Е. Н. Чернова, З. А. Жаковская, Н. Г. Суходолов, А. А. Селютин, М. Л. Александрова, Е. П. Подольская
ИССЛЕДОВАНИЕ СПЕЦИФИЧНЫХ СВОЙСТВ РЕГУЛЯРНОГО МУЛЬТИМОЛЕКУЛЯРНОГО СОРБЕНТА Fe(Ш)
В настоящее время проблема специфичного выделения различных веществ из сложных смесей, в том числе биологических образцов, стоит весьма остро. Одним из методов, позволяющих решать такие задачи, является металл-аффинная хроматография. Исторически ее использовали для обогащения фосфорсодержащих пептидов, однако представляется возможным применять ее для обогащения и других классов веществ. В работе проведено исследование специфичных свойств нового регулярного мультимолекулярного сорбента на основе стеарата железа(Ш). Показано, что с помощью металл-аффинной хроматографии на РММС Fe(Ш) могут быть успешно выделены и проанализированы такие типы соединений, как фосфорорганические соединения (фосфорилированные пептиды, фосфонилированные пептиды, пестициды), фторкислоты (перфто-роктановая сульфокислота), токсины цианобактерий (микроцистин-КЯ).
Кл. сл.: металл-аффинная хроматография, регулярный мультимолекулярный сорбент, стеарат железа (III), фосфорилированные пептиды, фосфонилированные пептиды, пестициды, фторкислоты, микроцистин
ВВЕДЕНИЕ
Объектом исследования данной работы являются сорбенты для металл-аффинной хроматографии (МАХ), предназначенные для разделения и выделения различных веществ в аналитической химии, биохимии, медицине. В основе данного хроматографического метода лежит различное сродство органических соединений к ионам некоторых металлов, обусловленное образованием координационных связей между металлом и гетеро-атомами в молекулах органических соединений (кислород, сера, фосфор, азот). Ионы металлов связывают различными способами. Самым популярным является метод хелатирования иона металла полидентантными лигандами, иммобилизованными на вспомогательной подложке (силика-гель, агароза, сефароза, сшитый сополимер полистирола и дивинилбензола и др.).
Принцип этого метода впервые был сформулирован в работе Пората в 1975 году. С тех пор метод нашел применение в различных областях науки. Основные направления использования металл-аффинных сорбентов [1-3] следующие.
1. Металл-аффинная хроматография является высокоспецифичным методом пробоподготовки, который успешно применяется при решении многих протеомных задач для снижения числа маскирующих пептидов в образце, а также обогащения
пептидных смесей некоторыми типами пептидов (например, фосфорсодержащими, серасодержа-щими) для последующего масс-спектрометри-ческого анализа [4, 5].
2. Специфичное выделение или разделение химических веществ (в том числе макромолекул, например белков) из матриц различного типа [6]. В данном случае выбор условий хроматографиче-ского разделения, а также иммобилизованного иона металла зависит от свойств анализируемых биомолекул.
3. Ионообменные смолы [7]. Ионообменные смолы являются полимерными органическими соединениями, содержащими функциональные группы, способные вовлекаться в ионный обмен. Новейшие методы ионообменной хроматографии, в частности высокоэффективная хроматография (ВЭЖХ), широко используются в фармакологии (при создании и определении лекарственных веществ), в клинической биохимии (при определении биологически активных веществ в физиологических жидкостях), в биотехнологических процессах и производствах и других областях.
4. Очистка производных ДНК и олигонуклео-тидов, меченных остатками гистидина. Благодаря относительно высокому аффинному сродству ионов металла к гистидину отчистка таких соединений с помощью МАХ в большинстве случаев приводит к такой степени отчистки макромолекул,
которая является достаточной для большинства методов исследования [8].
Выделение органических соединений с помощью металл-аффинных сорбентов чрезвычайно перспективно. Использование различных ионов металлов дает возможность регулировать сродство сорбента к различным веществам, при этом значительно возрастает специфичность разделения по сравнению с другими методами. Разнообразие свойств металл-аффинных сорбентов позволяет решать большое число аналитических задач.
Но одними из наиболее распространенных на сегодняшний день объектами исследования с помощью металл-аффинной хроматографии являются фосфорилированные соединения и фосфобел-ки. Нами было сделано предположение о возможности использования в качестве аналитических объектов не только фосфорилированных, но и фосфонилированных пептидов, пестицидов, а также соединений, имеющих пептидную природу (токсины цианобактерий). Кроме того, учитывая тот факт, что трехвалентные металлы являются жесткими кислотами Льюиса, соответственно, по теории Пирсона, они должны взаимодействовать с жесткими основаниями, к которым относится кислород и фтор, и чтобы доказать это предположение, в качестве объекта, содержащего фтор, была выбрана перфтороктансульфоновая кислота.
В последние годы ведутся активные поиски новых металл-аффинных сорбентов, и недавно был разработан новый регулярный мультимолекуляр-ный сорбент на основе стеарата трехвалентного железа. В работе [9] было показано, что он действительно обладает свойствами металл-аффинного сорбента и имеет достаточно высокую сорбцион-ную емкость по фосфорилированному пептиду, т. е. может быть применен в классических фосфо-протеомных исследованиях. Однако интерес представляет изучение и других специфичных свойств данного сорбента.
Таким образом, целью работы было исследовать специфичность нового регулярного мульти-молекулярного сорбента на основе стеарата Fe(Ш) для таких типов соединений, как токсины циано-бактерий (микроцистин-ЯК), фторкислоты (пер-фтороктановая сульфокислота), фосфорорганиче-ские соединения (фосфонилированные пептиды, пестициды).
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
Металл-аффинная хроматография микроцистина-RR на РММС Fe(Ш)
2 коллапсированных РММС Fe(Ш) поместили в носик между двумя мембранами для исключения вымывания сорбента. Сорбент при помощи шпри-
ца промыли 20 мкл ацетонитрила, затем 20 мкл 0.1 % ТФУ. После этого через сорбент трижды медленно пропустили 5 мкл раствора микроцис-тина-КЯ в воде (концентрация 5 нг/мл). Затем снова промыли 20 мкл 0.1 % ТФУ и провели последовательную элюцию 5 мкл 0.4 М водным аммиаком и 0.5 % водным пиперидином по 5 мкл каждого. Проскок и элюаты анализировали методом MALDI TOF.
Металл-аффинная хроматография перфтороктансульфоновой кислоты на РММС Fe(Ш)
20 коллапсированных монослоев РММС Fe(Ш) перенесли в спиновую колонку. Колонку поместили в микропробирку объемом 1.5 мл и с помощью центрифуги (3 мин при 5000 об./мин) удалили избыток жидкой фазы. Затем в колонку поместили 100 мкл 100 % ацетонитрила и в тех же условиях его удалили. Для проведения анализа в спиновую колонку, содержащую промытый ацетонитрилом сорбент, добавили 100 мкл раствора перфтороктансульфоновой кислоты в 0.1 % ТФУ в воде с концентрацией 1 мкг/мл и оставили на 20 минут на перемешивающей платформе, после чего избыток жидкой фазы также удалили при помощи центрифуги. Проскок оставили для проведения масс-спектрометрического анализа. Для исключения неспецифичной сорбции сорбент промыли 100 мкл 0.1 % ТФУ в воде и удаленный центрифугированием раствор также оставили для масс-спектрометрического анализа. Элюирование с сорбента проводили в два этапа. На первом этапе в спиновую колонку поместили 100 мкл 0.5 % раствора пиперидина в воде и на 5 мин оставили на перемешивающей платформе. Раствор удалили при помощи центрифугирования и затем к сорбенту добавили 100 мкл 100 % ацетонитрила, который через 5 мин также удалили центрифугированием. Оба элюата сохранили для масс-спектрометри-ческого анализа.
Металл-аффинная хроматография метафоса на РММС Fe(Ш)
В микропробирку поместили 2 коллапсирован-ных монослоя РММС Fe(Ш), промыли 50 мкл аце-тонитрила, микропробирку центрифугировали 10 мин при 10 000 об./мин, супернатант отбросили. Затем сорбент промыли 50 мкл 0.1 % ТФУ, супер-натант после центрифугирования 10 мин при 10 000 об./мин также отбросили. После этого в микропробирку с сорбентом добавили 40 мкл раствора метафоса в 50 % ацетонитриле (концентрация 660 мкг/мл) и 40 мкл 0.1 % ТФУ и оставили на 15 минут, после чего микропробирку центрифугировали 10 мин при 10 000 об./мин, затем суперна-
тант отбросили. К сорбенту добавили 200 мкл 0.1 % ТФУ для промывки, оставили на 10 мин, после чего микропробирку центрифугировали 10 мин при 10 000 об./мин и супернатант отбросили. Элюирование проводили последовательно 50 мкл 0.4 М водного аммиака и 70 мкл 0.5 % пиперидина с отбором фракций в чистые микропробирки.
Металл-аффинная хроматография пептидов модифицированного зарином альбумина человека на РММС Fe(Ш)
В спиновую колонку поместили 5 коллапсиро-ванных монослоев РММС Ее(Ш), промыли 50 мкл ацетонитрила, микропробирку центрифугировали 2 мин при 5000 об./мин, супернатант отбросили. Затем сорбент промыли 100 мкл 0.1 % ТФУ, су-пернатант после центрифугирования 2 мин при 5000 об./мин также отбросили. После этого в спиновую колонку с сорбентом добавили 50 мкл раствора пептического гидролизата сывороточного альбумина человека, модифицированного зарином (исходная концентрация зарина 10-1 мг/мл), и оставили на 15 мин, после чего микропробирку центрифугировали 2 мин при 5000 об./мин, затем су-пернатант отбросили. К сорбенту добавили 100 мкл 0.1 % ТФУ для промывки, оставили на 10 мин, супернатант удалили. Элюирование проводили 50 мкл 0.5 % пиперидина, фракцию после центрифугирования 10 мин при 10 000 об./мин отобрали в чистую микропробирку для последующего масс-спектрометрического анализа.
Масс-спектрометрический анализ методом MALDI-TOF и MALDI-TOF-TOF
Масс-спектрометрический анализ проводили с помощью времяпролетного масс-спектрометра Ахта РегБэтапсе с источником ионов МАЕШ, оснащенном УФ-лазером (337 нм) при следующих настройках: режим детектирования отрицательных ионов (анализ перфтороктансульфоновой кислоты) или положительных ионов (микроцистины, фосфонилированные пептиды) с использованием рефлектрона при следующих настройках ионного
источника: напряжение 20 кВ, напряжение на линзах (lens) 6.5 кВ, напряжения на рефлектроне (Ref) 24.38 кВ. Ионы детектировали в диапазоне m/z от 280 до 5000, в режиме рефлектрона. Масс-спектры регистрировали при помощи программы MALDI-MS Shimadzu Biotech (Shimadzu, Япония). Калибровку в режиме отрицательных ионов проводили по стандартным пикам матрицы и двум пептидам [М - Н]- 336.18 Да и [М - Н]-724.39 Да. Калибровку в режиме положительных ионов проводили по масс-спектру смеси пептидов: ангиотензин 2 (МН+ = 1046.542 Да), ангиотензин 1 (МН+ = 2296.685 Да), N-ацетилренин (МН+ = = 1800.943 Да), аденокортикотропный гормон (117) (МН+ = 2093.086 Да).
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Выделение метаболитов цианобактерий
В настоящее время существует много сообщений о массовом развитии в водоемах цианобакте-рий, синтезирующих токсины — микроцистины. Микроцистины представляют собой циклические пептиды и при попадании в организм человека или животных вызывают интоксикацию организма с последующим некрозом печени. Это делает важным не только обнаружение класса токсических веществ, но и идентификацию индивидуальных соединений, т. к. они обладают разной степенью токсичности [10].
К наиболее обширному классу гепатоксинов относятся более 80 циклических гепта- (микро-цистины) и пентапептидов (нодуларины) с молекулярной массой в интервале 800-1100 Да, содержащих редкие аминокислоты. Например, циклические пептиды микроцистины состоят из семи аминокислот, пять из которых постоянны в составе соединений этого класса, а две L-аминокислоты — вариабельны. Фармакологическое действие мик-роцистинов обусловлено наличием АДДА-фрагмента 3-амино-9-метокси-10-фенил-2,6,8 три-метилдека-4,6-диеновой кислоты (рис. 1), который является характеристичным для данного класса соединений [11].
1038.51
1058.49 1081.46 11СП-44 1131.42 Ц5
987.18 1031.15
Рис. 2. MALDI-масс-спектр фракций после металл-аффинной хроматографии микроцистина-ЯЯ на РММС Ре(Ш).
а — элюат 0.5 % пиперидином в воде; б — промывка 0.4 М аммиаком в воде; в — проскок с колонки
Метод жидкостной хроматографии—масс спектрометрии в сочетании с тандемной масс-спектрометрией (МСП) высокого разрешения, применяемый при анализе и изучении цианотоксинов в последние годы, обеспечивает надежную идентификацию, которая достигается комбинацией фрагментных масс-спектров и точных значений молекулярных масс, избирательно характеризующих определяемые соединения, и соответствующих времен удерживания [12]. В связи с пептидной природой микроцистинов, зачастую обеспечивающей наличие активного кислорода, который способен вступать во взаимодействие с ионами металла, возникло предположение о возможности их выделения с применением металл-аффинных сорбентов. Исследование такой возможности было проведено с использованием стандартного раствора микроцистина-ЯЯ.
Результат масс-спектрометрического анализа раствора микроцистина-КЯ в воде (m/z 1038 Да) представлен на рис. 2. Как видно из данных масс-спектров, в экспериментальных образцах, полученных после промывки сорбента раствором аммиака, и в проскоке не наблюдается сигнал с данной массой. В то время как в масс-спектре элюата пиперидином детектируется сигнал, соответствующий микроцистину-ЯЯ. Таким образом, можно сделать вывод, что РММС Fe(Ш) может быть использован как сорбент, альтернативный обра-щеннофазовому, при пробоподготовке для анализа микроцитинов.
Исследование сорбции фторсодержащих кислот на примере перфтороктановой сульфокислоты (ПФОСК)
Перфтороктансульфоновая кислота (рис. 3) применяется в производстве металлопокрытий,
Рис. 3. Структурная сульфоновой кислоты
формула перфтороктан-
средств тушения огня, в фотографии, в производстве полупроводников и литографии, а также в производстве авиационных гидравлических жидкостей. Промышленность Евросоюза потребляет свыше 12 тонн ПФОСК в год. ПФОСК рассматривается как стойкий органический загрязнитель окружающей среды.
Чрезвычайно стабильная в окружающей среде, перфтороктансульфоновая кислота практически не поддается биоразложению. ПФОСК накапливается в организме человека и выводится крайне медленно — от 2 лет до 21 года (у крыс — за 200 дней). Доза отсутствия токсического воздействия — 0.1 мг/кг/день и доза малого токсического воздействия — 1.0 мг/кг/день [13].
Человек может получать ПФОСК вместе с пищей или питьевой водой, поэтому эксперимент по сорбции проводили в водной среде. Также стоит отметить, что ПФОСК очень плохо выделяется методом твердофазной экстракции на обращеннофазовых сорбентах. Получаемые результаты нестабильны и плохо воспроизводимы, поэтому возможность применения РММС Fe(Ш) для выделения ПФОСК является актуальной в прикладном аспекте.
а
в
100 50 0
480
500
520 т/г
49£ 197 ...... д
496 .95 ^ ^...... ..... . г
в
49Е 95 б
Рис. 5. Общая формула фосфорорганических соединений
Рис. 6. Структурная формула метафоса
Рис. 4. MALDI-масс-спектры ПФОС. а — общий спектр образца, взятого на анализ; б — проскок с сорбента; в — промывка 0.1 % ТФУ; г — элюат 0.5 % пиперидином; д — элюат ацетонитрилом
На рис. 4 представлены результаты масс-спектрометрического анализа ПФОСК до (рис. 4, а) и после (рис. 4, б-д) металл-аффинной хроматографии. Как показано на рисунке, в масс-спектрах проскока с сорбента, так же как и промывающего раствора, сигнал, соответствующий ПФОС, практически не наблюдается, в то время как наличие этого сигнала в спектрах элюатов однозначно свидетельствует об успешности металл-аффинного анализа. Что доказывает специфичность РММС Fe(III) к данному классу соединений.
Исследование сорбции фосфорсодержащих пестицидов
Фосфорорганические пестициды представляют собой эфиры различных кислот: фосфорной, фосфористой, тиофосфорной, дитиофосфорной, пи-рофосфорной [14-16].
Для анализа остаточных количеств ФОС в почвах, воде, продуктах питания растительного и животного происхождения, различных тканях организма человека наиболее распространенными на сегодняшний день являются хроматографические методы исследования как наиболее точные и на-
дежные. Также наиболее современными и широко используемыми методами определения ФОС являются тандемные (комбинированные) методы: ГХ-МС, РХ-МС, ВЭЖХ-МС, РХ-МС-МС и другие комбинации масс-спектрального и хроматографи-ческого методов контроля [17]. Для количественного определения фосфорсодержащих пестицидов необходимо их выделять из достаточно сложных матриц, причем на сегодняшний день отсутствуют методы специфичной эктракции этого класса соединений. На основании химической структуры фосфорсодержащих пестицидов (рис. 5) было сделано предположение, что ряд соединений, обладающих атомами кислорода, соединенными с фосфором, может быть выделен методом металл-аффинной хроматографии на РММС Fe(III). В качестве модельного объекта был выбран метафос (метилпаратион) (рис. 6).
Количественный анализ элюатов после металл-аффинной хроматографии был проведен по методу ВЭЖХ-УФ. УФ-спектр стандартного раствора ме-тафоса представлен на рис. 7, а.
На хроматограмме, полученной после проведения элюции раствором аммиака (рис. 7, б), наблюдается пик, значение времени удерживания которого соответствует метафосу, что является доказательством наличия данного соединения в смеси. Также на основании полученных данных можно сделать вывод о возможности применения металл-аффинной хроматографии на РММС Fe(III) для выделения фосфорсодержащих пестицидов.
Выделение пептидов, модифицированных остатком зарина
Также к фосфорорганическим соединениям относится ряд боевых отравляющих веществ, таких как зарин, зоман, RVX и т. п. Было показано, что ФОС, в том числе и зарин, способны образовывать аддукты с белками крови [18].
■
5.СН 4.0: з.а-; 20-| Я ftfH -1ХН -ifi; ■3J0j
-5 Lr
: ^iniiiini
Рис. 7. Хроматограммы: а — стандартного раствора метафоса; б — элюата после металл-аффинной хроматографии на РММС Ре(Ш) (фракция 0.4 М водный аммиак)
1638.75{г4897}
100 80
60
40
20 О
1525.68{1-4349} , 1,^56.59{г2707}Ц
1735.66{г3393} 1568.73<г2639> 1740.б[|{г3228}
1838.87{г3158}
1400 1500
1600 1700 1800 1900
m/z
Рис. 8. Масс-спектр образца, содержащего гидролизат сывороточного альбумина человека.
а — до металл-аффинной хроматографии на сорбенте РММС Ре(Ш); б — после металл-аффинной хроматографии (элюат 0.5 % водным пиперидином)
б
а
В последние годы успешно проводятся работы по разработке методик извлечения из биообразцов фосфонилированных пептидов с использованием метода металл-аффинной хроматографии. Причем одним из применяемых сорбентов является коммерческий гель PHOS-Select Iron Affinity Gel (Sigma Aldrich), содержащий ионы железа (III).
Ранее в работах [19, 20] была показана возможность выделения аддуктов фосфорорганических соединений с сывороточным альбумином методом металл-аффинной хроматографии на сорбентах, содержащих Fe(III) и Ti(IV). Следовательно, можно было ожидать, что РММС Fe(III) способны по-
казать аналогичные результаты.
Известно, что в пептическом гидролизате сывороточного альбумина человека, модифицированного зарином, должны присутствовать два пептида 1638.9 Да (LVRYзaринTKKVPQVST) и 1525.8 Да (VRYзaринTKKVPQVST), содержащие модифицированный тирозин-411, которые могут быть выделены методом металл-аффинной хроматографии. Действительно, после проведения металл-аффинной хроматографии на сорбенте РММС Ре(Ш) в масс-спектрах элюата надежно детектируются сигналы, соответствующие этим двум аддуктам (рис. 8). Кроме того, наличие
Рис. 9. Определение наличия модификации остатком зарина в фрагментных масс-спектрах аддукта LVRYзЧЖнTKKVPQVST
модификации в пептидах было доказано методом тандемной масс-спектрометрии по отщеплению нейтральной частицы (рис. 9). Следует отметить, что практически полное отсутствие примесных сигналов свидетельствует о высоком уровне специфичности РММС Fe(III) к фосфонилированным пептидам.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Таким образом, в результаты работы было показано, что регулярный мультимолекулярный сорбент на основе стеарата железа(Ш) имеет широкий спектр применения в аналитической, биоорганической, экологической химии, и в частности в токсикологическом анализе. Он может быть использован при анализе биообразцов и объектов окружающей среды. Сорбент показывает высокий уровень специфичности, что, как следствие, повышает эффективность как пробоподготовки, так и последующего хроматографического или масс-спектрометрического анализа.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Chaga G.S. Twenty-five years of immobilized metal ion affinity chromatography: past, present and future // J. Biochem. Biophys. Methods. 2001. V. 49. P. 313334.
2. Каньшин Е.Д., Нифантьев И.Э., Пшежецкий А.В. Синтез и тестирование новой аффинной фазы для обогащения и последующего масс-спектрометри-ческого анализа фосфопептидов // Масс-спектро-
метрия. 2008. Т. 5, № 3. С. 195-202.
3. Li Y., Leng T., Lin H., Deng C. et al. Preparation of Fe3O4@ZrO2 core-shell microspheres as affinity probes for selective enrichment and direct determination of phosphopeptides using matrix-assisted laser desorption ionization mass spectrometry // J. Proteome Res. 2007. V. 6, N 11. Р. 4498-4510.
4. Li Y., Liu Y., Tang J. et al. Fe3O4@Al2O3 magnetic core-shell microspheres for rapid and highly specific capture of phosphopeptides with mass spectrometry analysis // J. Chromatogr. A. 2007. V. 1172, N 1. P. 57-71.
5. Li Y, Xu X., Qi D. et al. Novel Fe3O4@TiO2 core-shell micropheres for selective enrichment of phosphopep-tides in phosphoproteome analysis // J. Proteome Res. 2008. V. 7, N 6. Р. 2526-2538.
6. Li Y., Wu J., Qi D. et al. Novel approach for the synthesis of Fe3O4@TiO2 core-shell microspheres and their application to the highly specific capture of phosphopeptides for MALDI-TOF MS analysis // Chem. Commun. (Camb.). 2008. V. 7, N 5. Р. 564-566.
7. Qi D., Lu J., Deng C., Zhang X. Development of core-shell structure Fe3O4@Ta2O5 microspheres for selective enrichment of phosphopeptides for mass spectro-metry analysis // J. Chromatogr. A. 2009. V. 1216, N 29. P. 5533-5539.
8. Рожкова Е.А., Краснов И.А., Суходолов Н.Г. и др. Исследование поверхностных свойств наноструктур (пленок Лэнгмюра—Блоджетт), содержащих ионы железа, и определение их состава с привлечением методов масс-спектрометрии // Научное приборостроение. 2008. Т. 18, № 4. С. 54-60.
9. Кельциева А., Гладилович В.Д., Прусаков А.Н. и др. Регулярные мультимолекулярные сорбенты (РММС). Получение, изучение поверхностных и сорбционных свойств // Научное приборостроение. 2012. Т. 22, №4. С. 50-55.
10. Русских Я.В., Чернова Е.Н., Некрасова Л.В. и др. Сравнение результатов определения цианотоксинов (анатоксина-A и микроцистина-RR) методом хро-мато-масс-спектрометрии, полученных с помощью приборов с различными типами ионных ловушек // Научное приборостроение. 2010. Т. 20, № 4. С. 100-107.
11. Luis M. Botana Seafood and freshwater toxins: pharmacology, physiology and detection. CRC Press, 2008. 941 с.
12. Carmichael W.W., Azevedo S.M., An J.S. et al. Human fatalities from cyanobacteria: Chemical and biological evidence for cyanotoxins // Environ. Health Persp. 2001. V. 109, N 7. P. 663-668.
13. Background documents for the HELCOM Baltic Sea Action Plan: Proposals for measures and actions for the reduction of pollution from hazardous substances for the Baltic Sea Action Plan. September, 2007. URL: (http://www.helcom.fi/BSAP/MinisterialMeeting/ en_GB/BackgroundDocs/).
14. Мельников Н.Н. Пестициды. Химия, технология и применение. М.: Химия, 1987. 712 с.
15. Matthews G.A. Pesticides: Health, Safety and the Environment. Blackwell, 2006.
16. Chowdhury M.A., Banik S., Uddin B. et al. Organo-phosphorus and carbamate pesticide residues detected in water samples collected from paddy and vegetable fields of the savar and dhamrai upazilas in Bangladesh // Int. J. Environ Res. Public Health. 2012. V. 9, N 9. Р. 3318-3329.
17. Швайкова М.Д. Токсикологическая химия. М.: Медицина, 1975. 256 с.
18. Мурашко Е.А., Дубровский Я.А., Подольская Е.П., Бабаков В.Н. Идентификация аддуктов фосфорор-ганических отравляющих веществ с белками крови методами фосфопротеомики // Медицинский академический журнал. 2012. Т. 12, № 3. С. 77-79.
19. Подольская Е.П., Бабаков В.Н. Масс-спектроме-трия с мягкими методами ионизации в токсикологическом анализе (обзор) // Научное приборостроение. 2008. Т. 18, № 4. С. 5-12.
20. Гладилович В.Д., Краснов И.А., Подольская Е.П. и др. Идентификация пептидов сывороточного альбумина, модифицированных фосфорорганическими соединениями, с применением методов хроматографии и масс-спектрометрии // Научное приборостроение. 2010. Т. 20, № 4. С. 84-92.
Институт аналитического приборостроения РАН, г. Санкт-Петербург (Гладилович В.Д., Шрейнер Е.В., Дубровский Я.А., Кельциева О.А., Краснов И.А., Ану-ров М.С., Суходолов Н.Г., Подольская Е.П.)
Институт токсикологии ФМБА России, г. Санкт-Петербург (Гладилович В.Д., Краснов К.А., Бабина Е.В., Александрова М.Л., Подольская Е.П.)
Научно-исследовательский институт гигиены, профпатологии и экологии человека ФМБА России, г. Санкт-Петербург (Дубровский Я.А., Мурашко Е.А., Бабаков В.Н.)
Санкт-Петербургский государственный университет (Шрейнер Е.В., Колоницкий П.Д., Ануров М.С., Суходолов Н.Г., Селютин А.А.)
Научно-исследовательский центр экологической безопасности РАН, г. Санкт-Петербург
(Русских Я.В., Чернова Е.Н., Жаковская З.А.)
Контакты: Шрейнер Екатерина Владимировна, shreyner.ekaterina@gmail.com
Материал поступил в редакцию 12.12.2012.
STUDY OF THE SPECIFIC PROPERTIES OF MULTIMOLECULAR REGULAR SORBENT Fe(III)
V. D. Gladilovich1'2, E. V. Shreyner1,4, Ya. A. Dubrovsky13, P. D. Kolonitsky4, K. A. Krasnov2, E. V. Babina2, E. A. Murashko3, V. N. Babakov3, O. A. Keltsieva1, I. A. Krasnov1, M. C. Anurov1'4, Ya. V. Russkih5, E. N. Chernova5, Z. A. Zhakovskaya5, N. G. Suhodolov14, A. A. Selyutin4, M. L. Alexandrova2, E. P. Podolskaya
1 Institute for Analytical Instrumentation of RAS, Saint-Petersburg 2Institute of Toxicology of FMBA, Saint-Petersburg
3'Research Institute of Hygiene, Occupational Pathology and Human Ecology, Saint-Petersburg 4Saint-Petersburg State University
5'Research Centre for Ecological Safety RAS, Saint-Petersburg
Now the problem of specific separation of a variety of substances from complex mixtures, including biological samples is very acute. One of the methods that allows to solve such problems is the metal-affinity chromatography. Historically, it was used for the enrichment of phosphorus-containing peptides, but it seems possible to
use it for the enrichment of other classes of substances. In the paper the specific properties of a new regular mul-timolecular sorbent based stearate iron (III) were discussed. It was shown that by using metal-affinity chromatography on RMMS Fe(III) such types of compounds as organophosphorus (phosphorylated peptides, phosphony-lated peptides, pesticides), fluorine acid (perfluorooctane sulfonic acid), cyanobacteria toxins (microcystin-RR ) can be successfully identified and analyzed.
Keywords: multimolecular regular sorbent, stearate Fe(III), metal-affinity chromatography, phosphorylated peptides, phosphonylated peptides, pesticides, fluorine acid, microcystin
