Исследование реакции тканей лабораторных животных на имплантацию новых образцов сосудистых эндопротезов Текст научной статьи по специальности «Биотехнологии в медицине»

Патология кровообращения и кардиохирургия. 2016. Т. 20. № 2. С. 87-94 ОРИГИНАЛЬНАЯ СТАТЬЯ

РО!: 10.21688-1681 -3472-2016-2-87-94 Сосудистая хирургия

Исследование реакции тканей лабораторных животных на имплантацию новых образцов сосудистых эндопротезов

© Иванов А.В., Липатов В.А., Лазаренко С.В., Жердев Н.Н., Северинов Д.А.

Курский государственный медицинский университет Министерства здравоохранения Российской Федерации, 305041, Курск, ул. Карла Маркса, 3

Поступила в редакцию 7 апреля 2016 г. Принята к печати 26 мая 2016 г.

Для корреспонденции: Северинов Дмитрий Андреевич. Email: dmitriy.severinov.93@mail.ru

Актуальность Цель

В статье рассмотрена одна из актуальных проблем ангиохирургии - выбор пластического материала для ре-конструктивно-восстановительных оперативных вмешательств.

Изучить реакциию биологических тканей на имплантацию сосудистых эндопротезов.

Для исследования использовали основовязаное лавсановое полотно и вязаный двойной велюровый сосудистый эндопротез, изготовленный из волокон полиэстера и пропитанный модифицированным желатином. Исследования проводили на 60 крысах линии Вистар массой 200-250 г (самцы) без внешних признаков заболеваний. Животных разделили на 4 группы соответственно числу фирм-производителей и срокам выведения из эксперимента (15-е и 30-е сут.). В стерильных условиях операционного блока под общим наркозом крысам рассекали кожный и подкожно-жировой слои по паравертеб-ральной линии. Тупым путем формировали два кармана в подкожной клетчатке глубиной 3,5 см, куда помещали образец сосудистой заплаты. Операционную рану ушивали наглухо с захватом мышечного слоя. Гистологические препараты изготавливали по стандартным методикам, окрашивали гематоксилин-эозином и по Маллори. На микрофотографиях оценивали строение перипротезной капсулы, а также состав клеточного слоя капсулы. В каждой из групп мы оценивали клеточный индекс - отношение клеток фибробластического ряда к клеткам воспалительного инфильтрата. Показатель более 1 свидетельствовал о преобладании репа-ративных тенденций, менее 1 - о превалировании воспалительных изменений. Статистическую обработку полученных данных проводили с применением методик описательной и вариационной статистики.

Смена фаз воспалительной реакции протекает быстрее в зоне имплантации лавсановых заплат, что проявляется достоверным увеличением количества клеток-резидентов с 62,4 до 80,5% и уменьшением клеток-нерезидентов в 1,7 раза на тех же сроках соответственно. Реакция тканей более выражена на полиэстеровый имплант, это подтверждается незначительным снижением с 53,5 до 43,7% количества клеток воспалительного инфильтрата, ростом клеток фибробластического ряда с 46,5% (15-е сут.) до 56,3% (30-е сут.).

Реакция тканей лабораторных животных менее выражена на основовязаный лавсановый имплант. Эндо-васкулярное закрытие может служить альтернативой и позволяет избежать открытой операции у пациентов с выраженной сопутствующей патологией и подходящей анатомией. Однако внутрибольничная летальность остается высокой, даже после успешной имплантации окклюдера.

Имплантация • Эндопротез • Лавсан • Сосудистая хирургия • Биосовместимость

Материал и методы

Результаты

Заключение

Ключевые слова

Как цитировать: Иванов A.B., Липатов В.А., Лазаренко С.В., Жердев H.H., Северинов Д.А. Исследование реакции тканей лабораторных животных на имплантацию новых образцов сосудистых эндопротезов. Патология кровообращения и кардиохирургия. 2016;20(2):87-94. DOI: 10.21688-1681-3472-2016-2-87-94

В настоящее время в Российской Федерации в структуре общей заболеваемости болезни сердечно-сосудистой системы составляют 14,2%, в структуре смертности населения от наиболее распространенных причин - 53,2%. Такие вы-

сокие показатели позволяют прогнозировать в ближайшие годы значительный рост числа пациентов с этой патологией [1]. Категория граждан, страдающих сердечно-сосудистыми заболеваниями и нуждающихся в медицинской, в боль-

Статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0.

шинстве случаев именно хирургической, помощи, требует пристального внимания врачей-специалистов узкого профиля - кардиологов и сердечно-сосудистых хирургов [2]. Стоит отметить, что для каждой отдельно взятой реконструк-тивно-восстановительной операции выбирают подходящий кондуит в частном порядке - с учетом индивидуальных особенностей организма пациента.

В связи с этим одной из актуальных междисциплинарных проблем является разработка качественного и доступного пластического материала для закрытия поврежденного участка сосудистого русла. В первую очередь это связано с высокой ценой материалов, которую устанавливают фирмы-изготовители. В России такой дефицит также обусловлен тем, что отечественные производители не имеют возможности предоставить необходимое количество сосудистых эндо-протезов ангиохирургам [3].

решение проблемы состоит в разработке и внедрении в хирургическую практику новых образцов сосудистых эндо-протезов, способствующих благополучному течению послеоперационного периода и посттравматическому восстановлению сосудистой стенки [4].

Попытки сформулировать характеристики так называемого идеального протеза были предприняты уже во второй половине XX века (период становления сосудистой хирургии) [5]. Такой имплантат должен:

• быть доступен для хирурга во всем ассортименте размеров и длин;

• подходить для использования в любом участке тела;

• выдерживать долговременную имплантацию в организм и не обладать токсическими или аллергическими побочными эффектами [6, 7];

• обладать достаточной эластичностью, адаптивностью, гибкостью;

• легко прошиваться и при этом не травмироваться;

• исключать возможность разволокнения линии отреза протеза и образования жестких складок в местах изгиба [8, 9];

• иметь гладкую, атравматичную для форменных элементов крови, атромбогенную и резистентную к инфекции поверхность просвета [10];

• обладать возможностью многократной стерилизации [11].

Однако ни один из представленных на сегодняшний день протезов, как синтетического, так и органического происхождения, не имеет всех вышеперечисленных характеристик [12, 13].

Для решения этих проблем ведущие отечественные и зарубежные фирмы-производители медицинских изделий и материалов разрабатывают новые сосудистые имплантаты и заплаты (как правило на основе полимерных волокон), требующие изучения и экспериментальной апробации для определения их безопасности и клинической состоятельности

Цель: исследовать реакцию биологических тканей на имплантацию сосудистых эндопротезов в эксперименте in vivo.

Материал и методы

В качестве материала для исследования использовали имплант фирмы «Линтекс» (Санкт-Петербург, Россия) - основовязаное лавсановое полотно, а также образец фирмы B.Braun (Мелзунген, Германия), представляющий собой вязаный двойной велюровый сосудистый эндопротез, изготовленный из волокон полиэстера и пропитанный модифицированным желатином.

Исследования проводили на 60 крысах линии Вис-тар массой 200-250 г (самцы) без внешних признаков заболеваний, прошедших карантин и содержащихся в условиях экспериментально-биологической клиники Курского государственного медицинского университета. распределение лабораторных животных по группам исследования представлено ниже.

Группа наблюдения Подгруппа наблюдения

(образец материала) (срок выведения из эксперимента)

Подгруппа 1.1

Группа 1 15-е сут., п = 15

«Линтекс» Подгруппа 1.2

30-е сут., п = 15

Подгруппа 2.1

Группа 2 15-е сут. , п = 15

B.Braun Подгруппа 2.2

30-е сут., п = 15

Под общим наркозом с соблюдением международных норм гуманного обращения с животными (Европейская конвенция «О защите позвоночных животных, используемых для экспериментов или в иных научных целях», Страсбург, 1986) в стерильных условиях операционного блока кафедры оперативной хирургии и топографической анатомии им. профессора А.Д. Мяс-никова Курского государственного медицинского университета крысам по паравертебральной линии рассекали кожный и подкожно-жировой слои. Тупым путем на протяжении всего разреза формировали два кармана в подкожно-жировой клетчатке глубиной 3,5 см. В каждый карман помещали образец сосудистой заплаты размерами 2 х 2 см. Операционную рану ушивали наглухо с захватом мышечного слоя с целью изоляции сформированных карманов, содержащих экспериментальные образцы. Послеоперационную рану обрабатывали антисептиками.

Животных выводили из эксперимента передозировкой наркоза. В каждом случае проводили аутопсию: иссекали участок справа и слева от позвоночника в местах размещения имплантатов с захватом мышечной ткани. Полученный биоматериал фиксировали в 10%-м буферном нейтральном формалине в течение 7 сут. По стандартной методике изготавливали парафиновые блоки и микропрепараты. Гистологические препараты окрашивали гематоксилин-эозином и по Маллори.

Микроскопирование препаратов выполняли посредством световой микроскопии с помощью микроскопа Livenhuk 320 при увеличениях х 100 и 400. Для морфометрической оценки фотографировали препараты с использованием цифровой насадки Livenhuk c310 и программы Scope Tek ScopePhoto (версия х 86, 3.1.268).

На полученных микрофотографиях оценивали строение соединительно-тканной капсулы, выраженность ее слоев и степень зрелости коллагеновых волокон. Также исследовали состав клеточного слоя капсулы, расположенного непосредственно вокруг нитей протеза.

В каждой из групп экспериментального исследования оценивали клеточный индекс (КИ) — отношение клеток фибробластического ряда (резидентов) к клеткам воспалительного инфильтрата (нерезидентам).

Формула, по которой рассчитывали КИ:

клетки - резиденты

Клеточный индекс (КИ) = - ,

клетки - нерезиденты

где: клетки-резиденты - общее количество макрофагов, фибробластов и фиброцитов; клетки-нерезиденты - общее количество лейкоцитов в клеточном слое капсулы.

При КИ <1 делали вывод о преобладании воспалительных изменений, характерных для ! фазы течения раневого процесса, при КИ >1 - о преобладании репа-ративных тенденций, характерных для !! фазы согласно М.И. Кузину [15].

Статистическую обработку полученных результатов проводили с применением методик описательной (расчет средних арифметических, стандартных отклонений и средних ошибок средних) и вариационной статистики. Для определения достоверности отличий средних применяли непараметрический критерий Манна - Уит-ни. Статистически достоверными считали различия средних арифметических, если р<0,05. В качестве программной среды для обработки данных использовали программу Б1ай$йса (версия 6.0).

Рис. 1. Капсула вокруг протеза из материала «Линтекс» на 15-е сут. после имплантации в паравертебральную область (микрофото): а - окраска гематоксилин-эозином; б - окраска по Маллори. Микрофото. Ув. х 400. Длинные стрелки указывают на трабекулы, отходящие от капсулы внутрь пучка волокон, короткие - на участок со сниженной оксифилией.

Fig. 1. Capsule around "Lintex"tissue-based prosthesis at 15 days after implantation in the paravertebral site (microphotograph): a -hematoxylin-eosin stain; б - Mallory stain; Microphotograph. Magnification x 400. K - tissue-connective capsule; B - prosthesis fibers. The long arrows point to trabecules outgoing from the capsule into the fiber band, the short ones show the area with decreased oxyphillia

б

а

Таблица 1 Соотношение различных типов клеток в клеточном слое перипротезной капсулы на 15-е сут. после имплантации

Образец Величина Фибробласты Фиброциты Лимфоциты Макрофаги Нейтрофилы Эозинофилы Моноциты

М 32,7 29,7 10,6 5 9,3 3,8 8,9

«Линтекс» м 2,54 2,31 2,27 2,16 2,0 1,62 2,02

СОС 0,44 0,42 0,69 0,97 0,66 0,83 0,68

М 17,1 19,4 20,8 12,1 14,1 7,1 9,4

м 2,63 2,58 3,99 2,47 2,47 2,12 2,01

B.Braun

СОС 0,68 0,62 0,74 0,78 0,78 0,7 0,66

P_1 0,000 0,000 0,000 0,119 0,661 0,000 0,009

М - среднее значение; м - стандартное отклонение; СОС - средняя ошибка средней арифметической; Р_1 - достоверность отличия средних значений количества различных типов клеток при имплантации материалов фирм «Линтекс» по отношению к B.Braun

Результаты

При исследовании микропрепаратов подгруппы 1.1 установлено, что у всех животных вокруг протеза сформирована мощная капсула, имеющая неодинаковую толщину на всем протяжении и выраженную двухслойную организацию. Наружный слой капсулы представлен плотной волокнистой соединительной тканью (ПВСТ), состоящей из параллельно ориентированных пучков коллагеновых волокон, среди которых ядра механоцитов округло-овальной или вытянутой формы (рис. 1).

Следует отметить, что внутрь протеза от волокнистого слоя капсулы отходят трабекулы, также организованные из ПВСТ, и «разделяющие» пучки волокон протеза, окружаю-

щие отдельные нити протеза. Меньшая оксифилия пучков волокон позволяет сделать вывод о меньшей степени зрелости коллагена в трабекулах по сравнению с наружным слоем капсулы. На всех без исключения препаратах не удается определить границу между волокнистым слоем капсулы и фасциями окружающих ее мышц. Это свидетельствует о завершенности интеграции капсулы в соединительно-тканную строму паравертебральной области лабораторных животных.

Клеточный состав капсулы показывает, что более половины (62,4%) общего количества клеток составляют фиброб-ласты и фиброциты соответственно. Общее количество фагоцитирующих клеток и их предшественников достигает 27,6% (табл. 1).

а

Рис. 2. Капсула вокруг протеза из материала фирмы B.Braun на 15-е сут. после имплантации в паравертебральную область: а - окраска по Маллори; б - окраска гематоксилин-эозином. Микрофото. Ув. х 400. К - перипротезная капсула; В - волокна протеза. Стрелкой указаны «выстоящие» нити импланта, деформирующие капсулу

Fig. 2. Capsule around B. Braun Company's tissue-based prosthesis at 15 days after implantation in the paravertebral site: a - Mallory stain; б - hematoxylin-eosin stain. Microphotograph. Magnification x 400. K - tissue-connective capsule; В - prosthesis fibers. The arrow points to protruding strands of the implant distorting the capsule

• да*'

ш

Рис. 3. Капсула вокруг протеза из материала «Линтекс» на 30-е сут. после имплантации в паравертебральную область: а - окраска гематоксилин-эозином; б - окраска по Маллори. Микрофото. Ув. х 400. К - перипротезная капсула; В - волокна протеза. Трабекулы, отходящие от капсулы внутрь пучка волокон, указаны длинными стрелками, участок со сниженной оксифилией -короткими)

Fig. 3. Capsule around "Lintex" tissue-based prosthesis at 30 days after implantation in the paravertebral site (microphotograph): a - hematoxylin-eosin stain; б - Mallory stain; Microphotograph. Magnification x 400. K - tissue-connective capsule; B - prosthesis fibers. The trabecules outgoing from the capsule into the fiber band are indicated with long arrows, while short arrows show the area with decreased oxyphillia

б

а

Микроскопирование гистологических препаратов животных, которым в паравертебральную область имплантировали протез фирмы B.Braun (подгруппа 2.1), показало, что материал импланта также покрыт капсулой из ПВСТ, фиксирующей и одновременно отграничивающей его от окружающих структур (рис. 2).

У всех животных этой подгруппы на поверхности капсулы, обращенной к коже, и на противоположной стороне обнаруживаются «выстоящие» нити материала, которые деформируют капсулу в местах контакта. Оказываемое давление настолько велико, что приводит к изменению строения пучков волокон в таких местах: обычно здесь отсутствуют ядра клеток, а пучки коллагеновых волокон окрашиваются неравномерно. В указанных местах отмечается реорганизация волокнистого слоя капсулы, что подтверждается неравномерностью ее окраски (см. рис. 5).

В местах, где отсутствуют «выстоящие» нити импланта и, соответственно, механическая деформация капсулы, также нет очагов экссудации полиморфноядерных лимфоцитов. Относительное количество клеток фибробластического ряда в данном материале составляет 36,5%, доля клеток-нерезидентов - 63,5% (табл. 1).

При исследовании препаратов животных подгруппы 1.2 (материал «Линтекс», срок 30 сут.) установлено, что у всех животных вокруг протеза была сформирована мощная пери-

протезная капсула, имеющая неодинаковую толщину на протяжении и выраженную двухслойную организацию (рис. 3).

следует отметить, что морфологические изменения в подгруппе 1.2 соответствуют таковым в подгруппе 1.1 и имеют ряд особенностей: выраженность и большее число соединительно-тканных трабекул, окрасившихся менее интенсивно, чем на 15-е сут., а также - дифференцированных клеток фибробластического ряда (фиброцитов).

В этой подгруппе эксперимента 80,5% составили клетки-резиденты ряда, общее количество фагоцитирующих клеток и их предшественников - 19,5% соответственно (табл. 2).

Исследование микропрепаратов экспериментальной подгруппы животных, выведенных на 30-е сут. (материал B.Braun), показало, что в данной подгруппе, в отличие от подгруппы 2.1 (срок выведения 15 сут., материал B.Braun), обнаруживается гораздо более плотная соединительнотканная капсула, продолжающая деформироваться, но имеющая более выраженное деление на слои. Волокнистый слой капсулы качественно не отличается от такового на предыдущем сроке исследования (при имплантации аналогичного материала). Показатели подсчета относительного количества клеток: клетки фибробластического ряда - 56,3%, клетки-нерезиденты - 43,7% (табл. 2).

Такое изменение количественного и качественного состава слоев перипротезной капсулы говорит о том,

Рис. 4. Капсула вокруг протеза из материала В.Вгаип на 30-е сут. после имплантации в паравертебральную область: а - окраска гематоксилин-эозином; б - окраска по Маллори. Микрофото. Ув. х 100. К - перипротезная капсула; В - волокна протеза

Fig. 4. Capsule around B. Braun Company's tissue-based prosthesis at 30 days after implantation in the paravertebral site: a -hematoxylin-eosin stain; 6 - Mallory stain. Microphotograph. Magnification x 100. K - tissuye-connective capsule; B - prosthesis fibers

что на 30-е сут. после имплантации сосудистых протезов в паравертебральную область происходит становление пролиферативной фазы воспалительного процесса, что подтверждает увеличение числа дифференцированных клеток относительно более раннего срока выведения животных из эксперимента (15-е сут.).

Вычисления КИ проводили с целью объективного сравнения реакции тканей лабораторных животных на имплантируемые материалы. Результаты подсчета КИ представлены в табл. 3.

Согласно полученным данным, наибольшее значение КИ отмечается при имплантации протезов фирмы «Лин-текс» на 30-е сут. - 5,54, а КИ фирмы B.Braun имеет практически в 3 раза меньшее значение. Таким образом, при имплантации лавсановых имплантатов более выраженны

процессы пролиферации, в случае использования имплантатов из полиэстера преобладают процессы экссудации.

Обсуждение

Ответная реакция соединительной ткани на инородное тело из синтетических материалов достаточно изучена. Установлено, что вокруг синтетического импланта по завершении воспалительного процесса и ремоделирования соединительно-тканных структур капсула должна обладать сравнительно небольшой толщиной [15]. Также такая капсула, как правило, характеризуется преобладанием волокнистых элементов матрикса (зрелых фибробластов) над другими клеточными элементами, выраженной пространственной организацией волокон, небольшим количеством

Образец Величина Фибробласты Фиброциты Лимфоциты Макрофаги Нейтрофилы Эозинофилы Моноциты

М 35,7 44,8 4,9 4,2 4,7 2,4 3,3

«Линтекс» м 2,5 2,44 1,26 0,92 1,05 1,07 0,95

СОС 0,5 0,32 0,53 0,62 0,61 0,69 0,52

М 23,9 32,4 11,5 6,8 8,3 6,3 7,8

м 1,92 3,38 2,34 0,98 1,42 1,41 2,63

B.Braun

СОС 0,36 0,52 0,80 0,95 0,68 0,71 1,06

P_2 0,001 0,001 0,001 0,201 0,323 0,001 0,013

Таблица 2 Соотношение различных типов клеток в клеточном слое перипротезной капсулы на 30-е сут. после имплантации

М - среднее значение; м - стандартное отклонение; СОС - средняя ошибка средней арифметической; Р_2 - достоверность отличия средних значений количества различных типов клеток при имплантации материалов фирм «Линтекс» по отношению к B.Braun

Таблица 3 Показатели клеточного индекса при подкожной имплантации образцов сосудистых заплат

Образец Величина 15-е сут. 30-е сут.

М 2,13 5,54

«Линтекс» м 0,89 1,35

СОС 0,18 0,24

0,94 1,95

0,38 0,73

0,08 0,14

0,000_0,000

М - среднее значение; м - стандартное отклонение; СОС - средняя ошибка средней арифметической; Р_3 - достоверность отличия средних значений КИ при имплантации материалов фирм «Линтекс» по отношению к B.Braun

сосудов, очень узким макрофагальным барьером на границе капсулы и импланта [14].

Считается, что данная структура при отсутствии воздействия неблагоприятных факторов может существовать неопределенный период времени, находясь в состоянии динамического равновесия, когда скорости синтеза волокнистого каркаса капсулы и его катаболизма уравновешены [6]. Напротив, если имплант состоит из биодеградируемого материала, макрофагальная реакция усиливается, так как макрофаги и гигантские клетки инородных тел фагоцитируют эти материалы [12]. В зависимости от выраженности макрофагальной реакции, скорости рекрутизации моноцитов в очаг воспаления, наличия и степени развития путей эвакуации макрофагов скорость биодеградации сильно варьирует, но всегда заканчивается полным замещением материала импланта соединительной тканью [3]. Результат такой гистотипической регенерации на месте дефекта подвергается инволюции вследствие ремоделирования, или же на его месте полностью или частично регенерирует специализированная ткань [8, 9].

При оценке особенностей клеточного состава слоев пе-рипротезной капсулы во всех экспериментальных группах мы обнаружили, что сравниваемые материалы обладают разной биологической инертностью. Оптимальными показателями биологической инертности обладает материал отечественной фирмы-производителя: вокруг волокон протеза общее количество фагоцитирующих клеток инфильтрата минимально, а его качественные характеристики свидетельствуют об их меньшей активности (низкая степень полиплоидии, размерность, небольшое количество). Сосудистые протезы на основе лавсановых волокон отечественного производства являются конкурентноспособными и могут быть рекомендованы для дальнейшего использования сосудистыми хирургами в качестве пластического материала для проведения реконс-труктивно-восстановительных оперативных вмешательств.

Выводы

1. Смена фаз слабовыраженной воспалительной реакции протекает быстрее в зоне имплантации лавсановых заплат фирмы «Линтекс», что проявляется достоверным (р<0,05) увеличением количества клеток-резидентов с 62,4% (15-е сут.) до 80,5% (30-е сут.) и уменьшением клеток-нерезидентов в 1,7 раза на тех же сроках соответственно.

2. Реакция тканей более выраженна на полиэстеровый имплант B.Braun, это подтверждается незначительным снижением - с 53,5% (15-е сут.) до 43,7% (30-е сут.) - количества клеток воспалительного инфильтрата, ростом клеток фибробластического ряда с 46,5% (15-е сут.) до 56,3% (30-е сут.).

3. Показатели клеточного индекса в местах размещения имплантов B.Braun в 1,6 раза (30-е сут.) меньше, чем у заплат фирмы «Линтекс», а на 15-е сут. более чем в 2,8 раза.

4. Наибольшие показатели клеточного индекса отмечаются на 30-е сут. после имплантации лавсанового протеза в паравертебральную область, что говорит о его высоком качестве и порозности. Это способствует оптимальному течению процессов интеграции заплат в сосудистую стенку и позволяет минимизировать реакцию тканей организма на имплантацию.

Финансирование

Исследование не имело спонсорской поддержки. Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов. Список литературы

1. Розанова И.А., Повещенко О.В., Карпенко А.А., Павлова С.В., Сер-геевичев Д.С., Лыков А.П., Бондаренко Н.А., Докучаева А.В. Разработка и изучение in vitro тканеинженерной конструкции на основе политетрафторэтилена и мезенхимальных мультипотентных стро-мальных клеток (сообщение № 1) // Патология кровообращения и кардиохирургия. 2015. Т. 19. № 4-2. С. 20-27.

2. Глянцев С.П., Щелкунов Н.Б., Гекова Т.Ю. Эволюция инноваций в сосудистой хирургии // Верхневолжский медицинский журнал. 2013. Т. 11. № 3. С. 4-10.

3. Лызиков А.А. Применение искусственных протезов при реконструкциях сосудов // Новости хирургии. 2010. Т. 18. № 4. С. 135-145.

4. Герасимов А.А., Жеребятьева С.Р. Проблема выбора пластического материала для реконструктивно-восстановительных операций на магистральных артериях: современное состояние проблемы // Eruditio Juvenium. 2014. № 2. С. 107-116.

5. Vu Q., Xie K., Eckert M., Zhao W., Cramer S.C. Meta-analysis of preclinical studies of mesenchymal stromal cells for ischemic stroke // Neurology. 2014. Vol. 82. № 14. P. 1277-1286. DOI: 10.1212/ WNL.0000000000000278.

М

м

B.Braun

СОС P 2

6. Фокин A.A., Куватов А.В. Важность выбора материала заплаты для пластики артериотомического отверстия при каротидной эндар-терэктомии // Современные проблемы науки и образования. 2013. № 6. С. 1-8.

7. Шевченко Е.В., Тыныныка Л.Н., Михайлова И.П., Сандомирский Б.П., Наумова О.В. Воздействие консервирования на белки внеклеточного матрикса сосудистых протезов // Проблемы криобиологии и криоме-дицины. 2014. Т. 24. № 3. С. 262-267.

8. Алуханян O.A., Винокур A.A., Горбов Л.В. Сравнительная характеристика новых образцов сосудистых заплат из политетрафторэтилена в эксперименте // Aнгиология и сосудистая хирургия. 2012. № 2. С. 45-51.

9. Биосовместимость / под ред. В.И. Севастьянова. М., 1999. 368 с.

10. Ярош AA, Должиков A.A., Солошенко A3., Колпаков A^., Битенс-кая Е.П., Молчанова A.C, Герасименко Д.В. Исследование биосовместимости хирургических имплантатов нового поколения для пластики передней брюшной стенки // Фундаментальные исследования. 2011. № 10-1. С. 186-189.

11. Бокерия ЛА, Aбдулгасанов P.A., Aракелян В.С., Рахимов A.A. Результаты 3000 операций с использованием имплантатов и заплат «БAСЭКС» в сердечно-сосудистой хирургии // Грудная и сердечнососудистая. 2012. № 3. С. 47-51.

12. Новикова С.П., Салохединова P.P., Лосева С.В. Обеспечение биологической безопасности имплантируемых медицинских изделий // Бюллетень НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН. Сердечно-сосудистые заболевания. 2012. Т. 13. № 2. С. 64-69.

13. Basu J., Genheimer C.W., Guthrie K.I., Sangha N., Quinlan S.F., Bruce A.T., Reavis B., Halberstadt C., Ilagan R.M., Ludlow J.W. Expansion of the human adipose-derived stromal vascular cell fraction yields a population of smooth muscle-like cells with markedly distinct phenotypic and functional properties relative to mesenchymal stem cells // Tissue Eng. Part C. Methods. 2011. Vol. 17 (8). P. 843-60. DOI: 10.1089/ten. tec.2010.0697.

14. Лазаренко С.В., Липатов В.А., Иванов А.В., Парфенов И.П. Отличительные особенности реакции tunica media и tunica intima аорты на имплантацию различных лавсановых протезов // Курский научно-практический вестник «Человек и его здоровье». 2014. № 4. С. 11-18.

15. Суковатых Б.С., Иванов А.В., Валуйская Н.М., Герасимчук Е.В. Влияние поздней имплантационной тканевой реакции на выбор полипропиленового эндопротеза для превентивной подапоневротичес-кой пластики брюшной стенки // Новости хирургии. 2013. Т. 21. № 5. С. 11-17.

Studying the response of tissues of laboratory animals to implantation of vascular endoprostheses

Aleksandr Ivanov, Vyacheslav Lipatov, Sergey Lazarenko, Nikolay Zherdev, Dmitriy Severinov

Kursk State Medical University, Ministry of Health Care of Russian Federation, 3 Karla Marksa St., 305041, Kursk, Russian Federation Corresponding author. Dmitriy Severinov. Email: dmitriy.severinov.93@mail.ru

Aim: The paper looks at one of pressing problems of angiosurgery, the choice of plastic material to be used in reconstructive interventions and focuses on the response of biological tissues to implantation of vascular endoprostheses.

Methods: To do research on the study material, use was made of vascular dacron implant & a woven double velour vascular endoprosthesis of polyester fibers and impregnated with modified gelatin. 60 Vistar rats (males) weighing 200-250 g were chosen as study objects. The animals were assigned to 4 groups according to the number of firms-manufacturers and the time of removing from the experiment (at 15 and 30 days). Under general anesthesia in the operating room, the rats' skin and subcutaneous fat were dissected along the paravertebral line. Two pouches 3.5 cm deep were formed in the subcutaneous fat by blunt dissection. A 2x2 cm sample of the vascular patch was introduced into each pouch. The surgical wound was closed completely and treated with antiseptics. Histological preparations were stained by using a hematoxylin-eosin/Mallory technique. The obtained microphotographs enabled us to evaluate the structure of the connective-tissue capsule, as well as the content of its cellular layer. A cellular index, the relationship between fibroblast cells and inflammatory infiltrate cells, was calculated in each group. The indicator exceeding 1 demonstrated the predominance of reparative tendencies, if it was below 1, inflammatory changes prevailed. Statistical processing of the data obtained was performed by means of descriptive and variation statistical methods.

Results: Changes of inflammatory reaction phases proceed faster in the zone of implantation of dacron patches, which manifest themselves by a reliable increase in the quantity of resident cells from 62.4% to 80.5% and a decrease in nonresident cells by 1.7 times on the same terms respectively. The reaction of fabrics is more expressed to a polyester implant, which is confirmed by an insignificant decrease from 53.5% to 43.7% of the quantity of inflammatory infiltrate cells and a growth of fibroblast cells from 46.5% (at 15 days) to 56.3% (at 30 days).

Conclusion: The reaction of tissues of laboratory animals is less expressed to a dacron implant. Key words: implantation; endoprosthesis; dacron; vascular surgery; biocompatibility. Received 7 April 2016. Accepted 26 May 2016. Funding: The study had no sponsorship.

Conflict of interest: The authors declare no conflict of interest.

Copyright: © 2016 Ivanov et al. This is an open access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution 4.0 License.

How to cite: Ivanov A, Lipatov V, Lazarenko S, Zherdev N, Severinov D. Studying the response of tissues of laboratory animals to implantation of vascular endoprostheses. Patologiya krovoobrashcheniya i kardiokhirurgiya = Circulation Pathology and Cardiac Surgery. 2016;20(2):87-94. (In Russ.). DOI: 10.21688-1681 -3472-2016-2-87-94