CC BY
53
Koshkina Natalia Anatolyevna, Candidate of Biological Sciences, Senior Researcher, All -Russian Research Institute of Sheep and Goat Breeding - branch of the FSBSI "North Caucasus FARC", 355017 Stavropol, Zootechnichesky, 15, E-mail: nata3-00@mail.ru
Kolesnikov Vladimir Ivanovich,Doctor of Veterinary Sciences, Professor, Head of laboratory, All - Russian Research Institute of Sheep and Goat Breeding - branch of the FSBSI "North Caucasus FARC", 355017 Stavropol, Zootechnichesky, 15, E-mail: kvi1149@mail.ru
Lopteva Maria Sergeevna, All - Russian Research Institute of Sheep and Goat Breeding -branch of the FSBSI "North Caucasus FARC", 355017 Stavropol, Zootechnichesky, 15, E-mail: kvi1149@mail.ru
Engashev Sergey Vladimirovich, Corresponding Member of the Russian Academy of Sciences, Professor, General Director of OOO "NVC Agrovetzashchita"
Engasheva Ekaterina Sergeevna, Candidate of Veterinary Sciences, Head of Research Department OOO «NVC Agrovetzashchita»
DOI 10.25930/s3yv-fx84
УДК 576.895.42: 578.8:616-036.21
ИССЛЕДОВАНИЕ ИКСОДОВЫХ КЛЕЩЕЙ НА ЕСТЕСТВЕННУЮ ЗАРАЖЁННОСТЬ ВИРУСАМИ ПРИРОДНО-ОЧАГОВЫХ ИНФЕКЦИЙ
Ю.М. Тохов, Л.И. Шапошникова, Ю.В. Дьяченко
Природно-очаговые инфекции вирусной, бактериальной и протозойной этиологии, возбудителей которых передают иксодовые клещи (семейство Ixodidae), являются в настоящее время актуальной проблемой для медицины и ветеринарии всего мира.
Нозоареалы клещевых инфекций занимают большую часть территории нашей страны, простираясь от дальневосточных регионов до западных границ и совпадая с ареалами клещей - основных переносчиков возбудителей. Ситуация по этим заболеваниям в стране остаётся сложной. Начиная с 1989 г., отмечается стойкая тенденция к росту заболеваемости клещевым энцефалитом (КЭ). Ведущим путём передачи возбудителей является присасывание инфицированного клеща к человеку или животному. Наибольшее медицинское значение для России имеют клещи рода Ixodes: таёжный (Ixodes persulcatus Schulze, 1930) и лесной (Ixodes ricinus Linnaeus, 1758), которые одновременно могут содержать несколько видов возбудителей. При этом имеется высокая вероятность, что в результате присасывания клеща произойдёт микстинфицирование человека или животного. Велико значение клещей рода Hyalomma, в частности, Hyalomma marginatum Koch, 1844, являющихся основными переносчиками вируса Крымской-Конго геморрагической лихорадки (ККГЛ) на территории России. В переносе возбудителей ряда других инфекций (омская геморрагическая лихорадка, клещевой риккетсиоз, марсельская лихорадка, пятнистая лихорадка скалистых гор и т.д.) существенное эпидемическое и эпизоотическое значение имеют клещи родов: Dermacentor, Rhipicephalus, Haemaphysalis.
Неблагоприятное развитие эпидемической и эпизоотической обстановки по при-родно-очаговым болезням, переносчиками которых являются кровососущие членистоногие, определяет важность задачи изучения структурной и функциональной организации природных очагов этих инфекций и совершенствование эпизоотологического мониторинга за переносчиками для своевременного проведения профилактических мероприятий.
Ключевые слова: иксодовые клещи, природно-очаговые болезни, Крымская геморрагическая лихорадка, клещевой энцефалит, эпизоотологический мониторинг
INVESTIGATION OF GULF COAST TICKS ON NATURAL INFECTION WITH VIRUSES OF NATURAL LOCAL INFECTIONS
Yu.M. Tokhov, L.I. Shaposhnikova, Yu.V. Dyachenko
Natural focal infections of viral, bacterial and protozoal etiology, the causative agents of which transmit gulf coast ticks (family Ixodidae), are currently an urgent problem for medicine and veterinary medicine throughout the world.
Nosoareal of tick-borne infections occupy most of the territory in our country, stretching from the Far Eastern regions to the western borders, and coinciding with the area of ticks - the main carriers of pathogens. The situation of these diseases in the country remains difficult. Since 1989, there is a persistent upward trend in the incidence of tick-borne encephalitis (CE). The leading pathway for the transmission of pathogens is the suction of an infected tick to a person or animal. Ticks of the Ixodes genus have the greatest medical significance for Russia: taiga (Ixodes persulcatus Schulze, 1930) and forest (Ixodes ricinus Linnaeus, 1758) ticks, which can simultaneously contain several types of pathogens. At the same time, there is a high probability that as a result of sucking the tick, a mixed infection of a person or an animal will occur. The part of ticks of the Hyalomma genus, in particular, Hyalomma marginatum Koch, 1844, which are the main vectors of the Crimean-Congo hemorrhagic fever (CCHF) virus in Russia, is of great importance. In the transfer of pathogens of a number of other infections (Omsk hemorrhagic fever, tick-borne rickettsiosis, Marseilles fever, spotted fever of rocky mountains, etc.), the ticks of the Dermacentor Rhipicephalus, Haemaphysalis genus, have a significant epidemiological and epizootic significance.
The unfavorable development of the epidemic and epizootic situation in natural focal diseases, which are carried by blood-sucking arthropods, determines the importance of studying the structural and functional organization of the natural foci of these infections and improving the epizootological monitoring of vectors, for timely prophilactic measures.
Key words: gulf coast ticks, natural focus diseases, Crimean-Congo haemorrhagic fever, tick-borne encephalitis, epizootological monitoring
Введение. Клещевые природно-очаговые инфекции являются примерами новых и возвращающихся инфекций, требующих всестороннего изучения с использованием комплекса экологических, энтомологических, лабораторных подходов [2, 9].
За последние 30 лет эпидемическая и эпизоотическая ситуация по клещевым инфекциям изменилась, что выразилось, в частности, в расширении ареалов переносчиков, увеличении их численности, а также в преобразовании структуры заболеваемости и групп риска заражения [1, 3, 4].
Одной из главных причин неблагополучной эпидемической и эпизоотической обстановки, по нашему мнению, является высокая численность иксодовых клещей, преобразование человеком естественной среды обитания членистоногих и их прокормителей, недостаточные объемы полевой дезинсекции и др. [9]. В связи с этим перед нами была поставлена задача провести исследования иксодовых клещей на зараженность возбудителями особо опасных инфекций. Получить данные о зараженности иксодовых клещей вирусами Крымской-Конго геморрагической лихорадки, клещевого энцефалита, Западного Нила, которые имеют практическое и научное значение при разработке и проведении противоэпидемических и
противоэпизоотических мероприятий в природных очагах клещевых инфекций на территории Северного Кавказа.
Полученные результаты дополняют имеющиеся сведения о зараженности иксо-дид возбудителями природно-очаговых инфекционных болезней.
Материалы и методы исследований. В основу работы положены материалы, полученные при эпизоотологическом обследовании территории Северного Кавказа в период 2010-2016 гг. Сбор иксодовых клещей в природных биотопах, на млекопитающих, птицах осуществляли по общепринятой методике согласно методическим указаниям «Сбор, учет и подготовка к лабораторному исследованию кровососущих членистоногих - переносчиков возбудителей природно-очаговых инфекций» [7].
Нами было исследовано на наличие возбудителей вирусных инфекций более 30000 экземпляров иксодовых клещей.
Исследование полевого материала на наличие антигена вируса Крымской-Конго геморрагической лихорадки осуществляли методом иммуноферментного анализа (ИФА) с использованием тест-систем производства ЗАО «ВекторБест» (Кольцово, Новосибирская обл.), ГУ НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского РАМН, ЗАО «ЭКОлаб» (Электрогорск Московской обл.), ЗАО «Биосервис» (Боровск, Калужская обл.), Ам-плиСенс (ЦНИЭ, Москва).
Для выявления РНК вируса ККГЛ в полевом материале методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) использовали набор реагентов с гибридизационно-флуоресцентной детекцией «АмплиСенс® CCHFV-FL».
Для выявления РНК вируса КЭ в иксодовых клещах методом ПЦР использовали набор реагентов «TBEV».
Исследование полевого материала на наличие антигена вируса клещевого энцефалита осуществляли методом ИФА с использованием тест-систем производства «Век-тоВКЭ-антиген» № ФСР 2007/00611 и набора реагентов для иммуноферментного выявления антигена вируса Западного Нила (ЗН) ЗАО «Биосервис» (Боровск Калужской обл.).
Для выявления РНК вируса ЗН в полевом материале методом ПЦР использовали набор реагентов с гибридизационно-флуоресцентной детекцией «АмплиСенс® WNV-FL».
Антигены вирусов Инко, Тягиня определяли при помощи экспериментальных наборов ИФА ГУ НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского РАМН.
Полученные результаты. В целях изучения зараженности иксодовых клещей вирусом ККГЛ было исследовано 17 видов иксодовых клещей, собранных на территории Ставропольского края: Boophilus annulatus, Dermacentor marginatus, Dermacentor niveus, Dermacentor reticulatus, Haemaphysalis inermis, Haemaphysalis parva, Haemaphysalis punctata, Haemaphysalis sp., Hyalomma marginatum, Hyalomma scupense, Ixodes redikorzevi, Ixodes ricinus, Rhipicephalus bursa, Rhipicephalus rossicus, Rhipicephalus sanguineus, Rhipicephalus turanicus, Rhiphicephalus sp. Наличие антигена вируса ККГЛ лабораторными методами подтверждено у 11 видов: Hyalomma marginatum, Hyalomma scupense, Rhiphicephalus sp., Rhipicephalus rossicus, Rhipicephalus sanguineus, Rhipicephalus turanicus, Boophilus annulatus, Dermacentor marginatus, Dermacentor reticulatus, Haemaphysalis punctata, Ixodes ricinus. Из 2559 исследованных проб положительными оказались 209, что составило 8,2%.
По видовому составу клещей, вирусофорность их выглядит следующим образом: Rhiphicephalus sp. - 0,04%; Rhipicephalus sanguineus - 0,04%; Rhipicephalus turanicus - 0,04%; Ixodes ricinus - 0,2%; Rhipicephalus rossicus - 0,3%; Hyalomma
scupense - 0,4%; Haemaphysalis punctata - 0,5%; Dermacentor reticulatus - 0,7%; Boophilus annulatus - 1,5%; Dermacentor marginatus - 1,6%; Hyalomma marginatum - 3%. Наибольшие показатели вирусофорности отмечены у клещей H. marginatum (34% от положительных проб) и D. marginatus (20%).
Методом ПЦР исследовано 13 видов иксодид: Boophilus annulatus, Dermacentor marginatus, Dermacentor reticulatus, Haemaphysalis punctata, Haemaphysalis sp., Hyalomma marginatum, Hyalomma scupense, Ixodes ricinus, Rhiphicephalus sp., Rhipicephalus bursa, Rhipicephalus rossicus, Rhipicephalus sanguineus, Rhipicephalus turanicus. Получено 106 положительных проб, что составило 8%. Специфическая РНК вируса ККГЛ обнаружена в клещах четырех видов: Hyalomma marginatum - 7%; Hyalomma scupense -1%; Rhipicephalus rossicus - 0,4%; Boophilus annulatus - 0,1%.
При проведении лабораторных исследований иксодовых клещей, собранных на территории Карачаево-Черкесской Республики методом ПЦР, был исследован 561 экземпляр (90 проб) иксодовых клещей, представленных 9 видами: Boophilus annulatus, Dermacentor marginatus, Dermacentor reticulatus, Haemaphysalis punctata, Hyalomma marginatum, Hyalomma scupense, Ixodes ricinus, Rhipicephalus rossicus, Rhipicephalus sanguineus. Получены две положительные пробы от клещей Hyalomma marginatum и Boophilus annulatus - по 1,1% соответственно. Общий процент зараженности иксодид по республике составил 2,2%.
При исследовании иксодовых клещей, доставленных из Республики Дагестан, методом ПЦР не выявлено специфической РНК вируса ККГЛ. Всего было исследовано 228 экземпляров (90 проб) иксодид 10 видов: Boophilus annulatus, Dermacentor niveus, Dermacentor marginatus, Dermacentor reticulatus, Haemaphysalis parva, Haemaphysalis punctata, Hyalomma marginatum, Hyalomma scupense, Ixodes ricinus, Rhipicephalus bursa.
Таким образом, учитывая показатели вирусофорности, следует считать, что основным переносчиком и резервуаром вируса ККГЛ являются клещи H. marginatum, что подтверждает результаты, полученные нами и другими исследователями [5, 6, 8].
С целью изучения циркуляции возбудителя клещевого вирусного энцефалита методом ИФА исследованы иксодовые клещи 12 видов, собранные на территории Ставрополья, при этом антиген вируса КЭ обнаружен в пробах семи видов: Dermacentor marginatus (7,3%), Haemaphysalis punctata (2,5%), Ixodes ricinus (2,5%), Dermacentor reticulates (2,2%), Hyalomma scupense (1,7%), Haemaphysalis inermis (0,5 %), Dermacentor niveus (0,1%). Из 864 исследованных проб положительными оказались 146, что составило 16,9%. В клещах Hyalomma marginatum, Boophilus annulatus, Rhipicephalus rossicus, Rhipicephalus turanicus, Haemaphysalis parva антиген не обнаружен.
Методом ПЦР исследовано 4878 экземпляров (700 проб) иксодид 15 видов: Boophilus annulatus, Dermacentor marginatus, Dermacentor reticulates, Haemaphysalis inermis, Haemaphysalis punctata, Haemaphysalis sulcata, Haemaphysalis sp., Hyalomma marginatum, Hyalomma scupense, Ixodes ricinus, Rhiphicephalus sp., Rhipicephalus bursa, Rhipicephalus rossicus, Rhipicephalus sanguineus, Rhipicephalus turanicus. РНК вируса КЭ не обнаружена.
При исследовании 10 видов иксодид, собранных на территории Республики Дагестан в количестве 228 экземпляров (36 проб) методом ПЦР: Boophilus annulatus, Dermacentor niveus, Dermacentor marginatus, Dermacentor reticulatus, Haemaphysalis parva, Haemaphysalis punctata, Hyalomma marginatum, Hyalomma scupense, Ixodes ricinus, Rhipicephalus bursa - положительных находок специфической РНК вируса КЭ не выявлено.
На наличие антигена вируса ЗН методом ИФА проведено исследование 308 экземпляров (53 пробы) иксодовых клещей, собранных на территории Ставропольского
края, представленных 5 видами: Dermacentor marginatus, Dermacentor reticulatus, Haemaphysalis punctata, Hyalomma marginatum, Ixodes ricinus. Антиген вируса ЗН не обнаружен.
При исследовании методом ПЦР 7575 экземпляров (384 пробы) иксодид: Haemaphysalis punctata, Hyalomma scupense, Rhipicephalus sanguineus, Rhipicephalus rossicus, Hyalomma marginatum - выделена одна положительная проба (0,3%) из суспензии клещей Hyalomma marginatum.
При изучении циркуляции вируса Инко на территории Ставропольского края были исследованы методом ИФА 353 экземпляра Hyalomma marginatum и вируса Тяги-ня, 337 экземпляров Dermacentor marginatus. Антигены вирусов не обнаружены.
Находки в клещах антигена вируса КЭ требуют дополнительных исследований. Участие иксодид в сохранении и передаче вируса ЗН не является первостепенным.
Заключение. Проведенные нами исследования доказывают, что иксодовые клещи в природных очагах КГЛ являются переносчиками и резервуарами вируса. Учитывая показатели вирусофорности, следует считать, что основными переносчиком и резервуаром вируса ККГЛ являются клещи H. marginatum.
Находки в клещах антигена вируса КЭ требуют дополнительных исследований. Участие иксодид в сохранении и передаче вируса ЗН не является первостепенным.
Полученные данные имеют большой практический и научный интерес в разработке и проведении противоэпидемических и противоэпизоотических мероприятий в природных очагах клещевых инфекций на территории Северного Кавказа.
Литература
1. Алексеев А.Н. Современное состояние изучения клещевых инфекций //Проблемы современной паразитологии. - СПб., 2003. T.I. С. 20-22.
2. Беклемишев В.Н. Круг естественных переносчиков трансмиссивных болезней, поражающих человека // Зоол. журн. 1955. Т.34. Вып.1. С. 3-16.
3. Львов Д.Н. и др. Динамика популяционных взаимодействий вируса Западного Нила (ВЗН) -птиц - комаров - клещей - людей — в среднем и нижнем поясах дельты Волги //Материалы IX съезда всероссийского научно-практического общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов. - М., 2007. T.3. С. 199-200.
4. Крымская геморрагическая лихорадка / В.В. Малеев [и др.]. - М.: Астрахань. 2003. 118 с.
5. Луцук С.Н., Тохов Ю.М., Дьяченко Ю.В. Иксодовые клещи Ставрополья. - Ставрополь: Альфа-Принт, 2012. 111 с.
6. Онищенко Г.Г., Ефременко В.И. Крымская-Конго геморрагическая лихорадка на Юге России //Журн. микробиол. 2004. №4. С. 86-90.
7. Сбор, учет и подготовка к лабораторному исследованию кровососущих членистоногих в природных очагах опасных инфекционных болезней: методические указания : МУ 3.1.3012-12. - М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2011. 55 с.
8. Тифлова Л.А., Резник П.А., Попова Е.В. Иксодовые клещи Ставропольского края и их медицинское значение //Переносчики особо опасных инфекций и борьба с ними. - Ставрополь, 1970. С. 459-471.
9. Тохов, Ю.М. Иксодовые клещи Ставропольского края и их эпидемиологическое значение. -Ставрополь. 2008. 196 с.
Тохов Юрий Мухамедович, доктор биологических наук, ведущий научный сотрудник ФКУЗ Ставропольский противочумный институт Роспотребнадзора, 355035, г. Ставрополь, ул. Советская,13-15. тел. (8652) 26-18-19, E-mail: tochov@mail.ru.
Шапошникова Людмила Ивановна, кандидат биологических наук, заведующий лабораторией медицинской паразитологии ФКУЗ Ставропольский противочумный институт Рос-потребнадзора, 355035, г. Ставрополь, ул. Советская,13-15. тел. (8652) 26-18-19.
Дьяченко Юлия Васильевна, кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры паразитологии, ветсанэкспертизы, анатомии и патанатомии ФГБОУ ВО «Ставропольский ГАУ».
Tokhov Yuri Mukhamedovich, Doctor of Biological Sciences, Leading Researcher of Federal State Healthcare Institution of Stavropol Anti-plague Institute of Rospotrebnadzor, 355035, Stavropol, Sovetskaya St., 13-15, tel. (8652) 26-18-19, E-mail: tochov@mail.ru.
Shaposhnikova Lyudmila Ivanovna, Candidate of Biological Sciences, Head of laboratory of medical parasitology of the Federal State Healthcare Institution of Stavropol Anti-plague Institute of Rospotrebnadzor, 355035, Stavropol, Sovetskaya St., 13-15, tel. (8652) 26-18-19.
Dyachenko Yulia Vasilyevna, Candidate of Veterinary Science, Ass. Prof. of the Department of parasitology, vet. sanitary examination, anatomy and pathological anatomy of Stavropol State Agrarian University.
РЕДАКЦИОННАЯ ПОЛИТИКА
Тематика журнала «Сельскохозяйственный журнал».
Научно-теоретический журнал имеет своей целью донесение до научной общественности и практических работников результатов оригинальных научно-исследовательских работ в различных областях аграрной науки, оказание помощи аспирантам и молодым ученым в публикации результатов исследования при подготовке ими диссертационных работ.
Этика научных публикаций. Редакция журнала «Сельскохозяйственный журнал» придерживается принятых международным сообществом принципов публикационной этики, отраженных, в частности, в рекомендациях Комитета по этике научных публикаций (Committee on Publication Ethics (COPE), Руководстве по этике научных публикаций (Publishing Ethics Resource Kit) издательства Elsevier, Кодексе этики научных публикаций.
Принципы профессиональной этики в деятельности редактора и издателя. В своей деятельности редактор несет ответственность за обнародование авторских произведений, что накладывает необходимость следования следующим основополагающим принципам:
При принятии решения о публикации редактор научного журнала руководствуется достоверностью представления данных и научной значимостью рассматриваемой работы.
Редактор должен оценивать интеллектуальное содержание рукописей вне зависимости от расы, пола, сексуальной ориентации, религиозных взглядов, происхождения, гражданства, социального положения или политических предпочтений авторов.
Неопубликованные данные, полученные из представленных к рассмотрению рукописей, не должны использоваться для личных целей или передаваться третьим лицам без письменного согласия автора. Информация или идеи, полученные в ходе редактирования и связанные с возможными преимуществами, должны сохраняться конфиденциальными и не использоваться с целью получения личной выгоды.
Редактор не должен допускать к публикации информацию, если имеется достаточно оснований полагать, что она является плагиатом.
Редактор совместно с издателем не должны оставлять без ответа претензии, касающиеся рассмотренных рукописей или опубликованных материалов, а также при выявлении конфликтной ситуации принимать все необходимые меры для восстановления нарушенных прав.
Этические принципы в деятельности рецензента. Рецензент осуществляет научную экспертизу авторских материалов, вследствие чего его действия должны носить непредвзятый характер, заключающийся в выполнении следующих принципов:
Рукопись, полученная для рецензирования, должна рассматриваться как конфиденциальный документ, который нельзя передавать для ознакомления или обсуждения третьим лицам, не имеющим на то полномочий от редакции.
