CC BY
34
H2SO4, упаривают досуха и сплавляют соли с небольшим количеством Na2S2O7. Плав растворяют и присоединяют к основному раствору. В полученный прозрачный раствор, имеющий объём 50-100 мл добавляют 5 мл 0,2М раствора ЭДТА, 2,5 мл 40%-ного раствора сегнетовой соли и по каплям при перемешивании раствор аммиака до рН 7,58.0 по рН-метру. Раствор пропускают через подготовленную колонку, заполненную 0,5 г силикагеля, предварительно промытую аммиачной водой с рН 8-8,5. Скорость пропускания раствора не должна превышать 2,5 мл/мин. Стакан с анализируемым раствором обмывают 5-10 мл воды с рН 8-8,5 и промывают им колонку.
Для элюирования бериллия колонку промывают 5 мл НС1 (1:1), собирая элюат в стакан ёмкостью 50 мл. Колонку промывают водой до нейтральной реакции по индикаторной бумаге, объединяя элюат и промывные воды,
*Если в подкисленной воде имеется осадок, то пробу отбирают вместе с осадком добавляют 2 мл 0,1 М ЭДТА и раствор КН3 до рН около 3,7, кипятят полученный раствор 1-2 мин. После охлаждения вводят 2,0 мл 5%-ного цитрата аммония, 1,0 мл раствора желатина, по 1,0 мл 0,02%-ного ХАS и 0,02%-ного ЦП, перемешивая после добавления каждого реагента. Устанавливают рН 5,2 добавлением по каплям 2М раствора ацетата натрия. Количественно переносят раствор в мерную колбу ёмкостью 25 мл, разбавляя до метки водой и перемешивая и через 3540 мин измеряют оптическую плотность при 620 нм в кювете 3,0 см относительно воды.
Для определения аналитического сигнала холостого опыта (содержания бериллия в реактивах) проводили через методику анализа серии холостых опытов
(п=8), начиная с упаривания пробы и сжигания органических веществ. По полученным значениям сигнала холостого опыта рассчитывали среднее его значение, которое вносили как поправку к найденному содержанию бериллия.
Построение градуировочного графика. В стаканы, ёмкостью 50 мл отбирают 0;.0,5; 1,0; 2,0; 3,0; 4,0; 5,0 мл стандартного раствора бериллия, содержащего 0,1 мкг/мл, по 10 мл дистиллированной воды, по 2 мл 0,1М ЭДТА, создают рН 3,7-4,5, кипятят 1-2 мин, добавляют по 1,5 мл цитрата аммония и далее все реагенты, как указано в методике определения. Оптическую плотность полученных растворов измеряют в условиях методики и по её значениям строят градуировочный график.
Методика позволяет проводить разбраковку анализируемых проб по содержанию бериллия. Если предполагается высокое его содержание (0.5-1,0 мкг/л и более), то достаточно провести анализ из аликвотной части воды, объёмом 25-50 мл, обрабатывая её аналогично методике, но без операции сорбции бериллия на силикагеле.
Контроль правильности результатов анализа проводили методом добавок. Для этого к растворам анализируемых проб, вытекающим из колонок, после сорбции из них бериллия добавляли различные количества стандартного раствора бериллия и в полученных пробах проводили сорбционно-фотометрическое определение добавки бериллия по описанной методике. Полученные результаты по правильности и воспроизводимости вполне удовлетворяют требованиям ГОСТа. (см.табл.)
Контроль правильности результатов анализа бериллия
Таблица
Введено Ве, мкг/л Найдено Ве, мкг/л Х Число определений, n Относительное. стандарт. откл.,%отн. cX,r оД,г(Л) Факт. Норматив Норма погрешности (Р=0,95; n=2) ±5,% [ 2 ]
1.15 1,16 6 2,4 12,8 25
0,72 0,74 8 4,3 12,8 25
0,108 0,103 6 9,9 25,5 50
0,072 0,052 6 17 25,5 50
Список литературы
1. Гладилович Д.Н., Столяров К.П.// Завод. лаб.,1981, 47, №5, С.3-6.
2. ГОСТ 18294-2004. Вода питьевая. Метод определения бериллия.
3. Новосёлова А.В., Бацанова Л.Р. Аналитическая химия бериллия. М., 1966.
4. Рудомёткина Т.Ф., Иванов В.М. // Вестн. Моск. унта. Сер.2. Химия. 2014. 55. №6, С.321.
5. Саввин С.Б., Данилин Е.С., Малютина Т.М. // Ж. аналит. химии, 1980. 35. С.457.
6. Саввин С.Б., Чернова Р.К., Кудрявцева Л.М. // Ж.аналит.химии.1976. 31.С.269.
7. Sulcek Z., Michal J., Dolezal J. // Coll. Czechosl. Chem. Comm. 1961, 26, P.246.
ИССЛЕДОВАНИЕ АНТИОКСИДАНТНЫХ СВОЙСТВ И СТЕХИОМЕТРИИ НЕКОТОРЫХ БИОАНТИОКСИДАНТОВ ДВУМЯ ХЕМИЛЮМИНЕСЦЕНТНЫМИ МЕТОДАМИ
Сажина Наталья Николаевна
Канд. физ.-мат. наук, с.н.с. Ин-та биохимической физики им. Н.М.Эмануэля РАН, г.Москва
Попов Игорь Николаевич
Докт. мед. наук, директор по науке НИИ Антиокислительной терапии, г. Берлин, Германия
Волков Владимир Анатольевич Канд. хим. наук, н.с. Ин-та биохимической физики им. Н.М.Эмануэля РАН, г.Москва
АННОТАЦИЯ
Определены антиоксидантная активность (АОА) и стехиометрические коэффициенты некоторых биоантиок-сидантов двумя хемилюминесцентными (ХЛ) методами с разными моделями генерации свободных радикалов: «гемо-
глобин - перекись водорода - люминол» и «АБАП - люминол» с целью выяснения зависимости этих параметров от способа генерации радикалов. Обнаружены различия кинетики ХЛ в этих моделях и значений АОА для глутатиона и фе-нозана, что объясняется строением их молекул и особенностями систем генерации радикалов. ABSTRACT
Antioxidant activity (AOA) and stoichiometric coefficients for some bioantioxidants by two chemiluminescent (CL) methods with different models of free radical generation: «hemoglobin -H2O2-luminol" and "ABAP-luminol" are determined for the purpose of clarification of these parameters dependence on a manner of radical generation. Distinctions of CL kinetics and AOA values in these models for glutathione and phenozan are found out. This is explained by a structure of their molecules and features of radical generation systems.
Ключевые слова: хемилюминесценция, антиоксидант, свободные радикалы
Keywords: chemiluminescence, antioxidant, free radicals
В настоящее время широко используются хемилю-минесцентные (ХЛ) методы определения антиоксидант-ной активности (АОА) различных биологических субстратов: плазмы крови, всевозможных напитков, экстрактов растений и пр. [1, 5, 11-12]. Они достаточно чувствительны, оперативны и позволяют непосредственно контролировать кинетику ингибирования окисления антиок-сидантами. Основными компонентами любой ХЛ модели являются: система генерации свободных радикалов и субстрат или молекула-мишень, при окислении которой возникает хемилюминесценция. Выбор модельной системы оказывает существенное влияние на получаемые результаты исследований АОА различных объектов. Большое количество ХЛ методов, широко используемых в органической химии, основано на инициированном окислении различных углеводородов, в результате рекомбинации пе-рекисных радикалов, которых образуются возбужденные молекулы соединений, испускающие свет. В таких системах для усиления свечения используются разные активаторы-люминофоры, а эффективное окисление протекает при температурах 50-800С [2, 4, 13]. В других методах, применяемых, главным образом, для медико-биологических исследований, в качестве хемилюминогенного субстрата окисления используется, в основном, люминол [3, 6-7, 9-10, 14-15]. Способ генерации радикалов в таких, относительно простых тест-системах, осуществляется по разным принципам: химическому (например, при взаимодействии гем-содержащих производных с перекисью водорода) или физико-химическому (при термоиницииро-ванном распаде азо-соединений). Чтобы выбрать наиболее адекватную и удобную модель окисления люминола для определения АОА сложных биологических субстанций, таких как сыворотка крови и другие биологические жидкости, экстракты растений, лекарственные препараты и пр., целесообразно сравнить антиоксидантные свойства и стехиометрию индивидуальных соединений, содержащихся в этих субстанциях, используя разные системы генерации свободных радикалов.
В настоящей работе на двух ХЛ моделях свободно-радикального окисления люминола проведены исследования антиоксидантной активности (АОА) и стехиометрии некоторых биологически значимых АО и влияния на эти параметры способа инициирования свободных радикалов. В качестве объектов исследования были выбраны водорастворимые соединения: мочевая кислота (МК), глута-тион, аскорбиновая кислота (АК), мексидол (м), фенозан калия (ф), а также тролокс (водорастворимый аналог витамина Е), как часто используемый в различных методах в качестве стандарта.
Измерения АОА этих соединений были выполнены на двух ХЛ приборах: в первом окисление люминола инициировалось смесью «гемоглобин (Hb)-H2O2», во втором - водорастворимым азоинициатором (АБАП).
Первая модель окисления (Hb - H2O2 - люминол), хотя и не до конца изучена, привлекает внимание «физио-логичностью» процесса, поскольку кровь содержит Hb и H2O2, и их взаимодействие может происходить in vivo [14]. Взаимодействие H2O2 с MetHb (в лабораторной практике используется окисленная форма гемоглобина -
метгемоглобин (Ме1НЬ) - Ш^е3+), с одной стороны, сопровождается разрушением гема и выходом из него ионов железа, которые участвуют в образовании ОН», а с другой стороны, приводит к возникновению радикалов феррилНЬ (ЕЪ*+-Ре4+=0). Указанные радикалы-инициаторы вызывают одноэлектронное окисление люминола. В процессе его окисления образуется L•—радикал, О2»-, эндоперок-сид люминола LO22- и 3-аминофталат дианион в возбужденном состоянии (АР2-)*, при переходе которого в основное состояние высвечивается квант света Ьм с длиной волны 425 нм. Преимущество модели: все реагенты доступны и не токсичны. Ограничения: нестабильность Н202 и необходимость контроля ее концентрации. ХЛ для этой модельной системы регистрировали на приборе <^ит-5773» [www.chemilum.ru] при температуре Т=37,0±0,5°С согласно методике [14]. В ячейку прибора добавляли 50мкл Ме£НЪ (15мкМ), 150мкл люминола (1мМ), 10мкл Н202 (12мМ), 2,4мл фосфатного буфера (рН=7,4) и разные дозы исследуемых АО (от 0,1 до 60 мкл) с концентрацией 1мМ, растворенные в буфере или дистиллированной воде. Это: тролокс (6-гидрокси-2,5,7,8-тетра-метилхроман-2-карбоновая кислота), АК, МК, глутатион восстановленный, фенозан калия (3-3,5-ди-трет-бутил-4-гидроксифенил пропионата калия, синтезирован в ИБХФ РАН) и мексидол сукцинат (2-Этил-6-метил-3-гидрокси-пиридина сукцинат, ИБХФ РАН).
Во второй модели (термо-ХЛ) инициирование свободных радикалов происходило при термическом распаде водорастворимого азо-соединения 2.2'-азо-бис (2-амиди-нопропан) дигидрохлорида (АБАП). Количество перок-сидных радикалов, образующихся при термическом распаде АБАП равно: N = к[АБАП] 1, где к - константа скорости генерации радикалов, 1 - продолжительность реакции. В водной среде при рН=7,4 и Т=370С, к=1,36-10-6 ^1. Для антиоксиданта с концентрацией [АО] время ингибирования генерации пероксидных радикалов = п[АО]/к[АБАП], где п - соответствующий стехиометриче-ский коэффициент [9, 15]. Возникшие радикалы детектировались в реакции окисления люминола, сопровождающейся ХЛ. Преимуществом модели термо-ХЛ (ТХЛ) является постоянство скорости инициирования радикалов при стабильной температуре [10]. Регистрация ТХЛ осуществлялась на приборе тт1ит® [www.minilum.de] при Т=37±0,01°С с применением соответствующих наборов реактивов с общим объемом в ХЛ ячейке 1,5 мл. Для измерений использовались те же индивидуальные АО, как и для первой модели. В обеих ХЛ системах основным измеряемым параметром, характеризующим АОА изучаемых соединений, являлся период индукции 1. Он определялся как время от момента инициирования окисления до точки пересечения с временной осью касательной, приложенной к ХЛ кривой в точке её перегиба, соответствующей максимуму первой производной. Для соединений, снижающих интенсивность ХЛ без выраженного периода индукции, параметром АОА являлась степень угнетения интенсивности ХЛ по сравнению с холостой пробой в
точке ее максимума (10/1). Ошибка измерений этих параметров для первого прибора с учетом повторяемости результатов составила не более 15%, для второго - 5%.
На рис. 1 приведены кинетические ХЛ кривые, полученные на обеих моделях окисления для тролокса, АК,
МК, и глутатиона, а на рис. 2 - для фенозана калия (ф) и мексидола (м). Видно, что первые 4 АО не подавляют максимальную амплитуду ХЛ и имеют значительный период индукции для обеих моделей (рис. 1а,б). Мексидол и фено-зан демонстрируют уменьшение амплитуды (рис. 2)
Рисунок 1. Характерные кинетические кривые развития ХЛ (зависимость интенсивности I от времени для двух моделей окисления люминола с различными инициаторами: «НЬ- Н202» (а) и «АБАП» (б). Здесь: кривая 0 - холостая проба, 1 - МК, 2 - тролокс, 3 - АК, 4 - глутатион. Концентрация всех веществ, вводимых в ХЛ-ячейку, 1мМ, объем
1мкл.
I. т.е.
Рисунок 2. Кинетические кривые ХЛ для двух моделей окисления люминола с инициатором «НЬ- Н202» (а) и «АБАП» (б). Здесь: кривая 0 - холостая проба, ф - фенозан, м - мексидол, рядом с буквами - вводимый в ячейку
объем АО в мкл. Концентрация обоих АО 1мМ.
Период индукции ХЛ в присутствии АО можно рассматривать как время, необходимое для их инактивации в процессе взаимодействия с образующимися в системах радикалами-инициаторами. Тролокс, АК и МК ведут себя как сильные АО, а их ХЛ кривые похожи для обеих систем, глутатион же, являясь слабым АО, не подавляет свечение полностью и не имеет выраженного периода индукции. В случае мексидола и фенозана у двух ХЛ моделей имеются отличия: ингибирование фенозаном окисления
люминола, инициированное в системе с АБАП, значительно сильнее, а для мексидола тушение ХЛ примерно одинаково для обеих систем.
На рис. 3 представлены зависимости периода индукции t от концентрации АО для обеих ХЛ моделей. В исследуемом диапазоне концентраций эта зависимость линейна t=k[AO], и к определяет антирадикальную активность АО.
Рисунок 3. Зависимость периода индукции (1) от концентрации АО в ХЛ-ячейке для двух ХЛ окислительных систем с «НЬ-Н202» (а) и «АБАП» (б). Прямые 1 - МК, 2 - тролокс, 3 - АК, 4 - глутатион.
Для мексидола и фенозана были построены концентрационные зависимости степени угнетения максимальной интенсивности ХЛ (10/1) по сравнению с холостой пробой 10 и вычислен коэффициент уменьшения ампли-
туды ХЛ К=(Ю/1-1)/[АО]. В таблице представлены значения к и К для всех исследованных АО, а также их стехио-метрические коэффициенты ингибирования п (число радикалов, перехваченных АО) для двух ХЛ моделей. Для тролокса был принят п=2 для обеих моделей [3, 7, 15].
Таблица
Антирадикальная активность (к), коэффициент ингибирования амплитуды ХЛ (К) и стехиометрические
АО к, с-М-1 К, М-1 п
Hb-H2O2 АБАП Hb-H2O2 АБАП Hb-H2O2 АБАП
Тролокс 2,23-108 1,13108 - - 2,0 2,0
МК 2,65-108 1,25-108 - - 2,37±0,16 2,22±0,11
АК 1,55108 0,87-108 - - 1,39±0,14 1,54±0,08
Глутатион 4,21-107 1,82-107 - - 0,38±0,06 0,33±0,04
Мексидол - - 8,5-104 3,4-104 - -
Фенозан - - 5,2-104 7,7-105 - -
Самая высокая степень ингибирования окисления люминола (К) оказалась у фенозана в модели с АБАП, значительно (~ в 20 раз) превышая К для мексидола. Для первой модели разница К для этих двух АО не такая значительная (~1,5). Что касается стехиометрического коэффициента п, для МК, АК и глутатиона в пределах ошибки эксперимента он практически одинаков для обеих окислительных систем. Стехиометрические коэффициенты для тролокса, МК, АК, определялась многими авторами [3, 7, 15]. Наиболее близкие к нашим значениям величины п получены в работе [15] для модели с АБАП-инициатором. В этой же работе было измерено также п=0,44 для соединений SH-групп, однако кинетика ХЛ исследована не была. Как уже было отмечено ранее, кинетические ХЛ кривые для глутатиона в обоих методах (рис. 1) резко отличаются от ХЛ кривых для других АО, не имея хорошо выраженного периода индукции. Это свидетельствует о том, что глутатион взаимодействует с образующимися в процессе окисления промежуточными интерме-диатами, меняя скорость и кинетику окисления. Как показано в работе [8], некоторые тиильные соединения, включая глутатион, могут восстанавливать образующиеся при окислении гидропероксиды (ЬООН), и это восстановление может проходить через радикальные стадии RSH+LOOH ^ RS•+RO•+H2O, образуя дополнительный источник радикалов и меняя процесс ингибирования. Для первой нашей модели этим гидропероксидом, вероятно, служит Н202, а для второй - генерируемые азоинициато-ром пероксидные радикалы. Поэтому период индукции и, соответственно, п для глутатиона имеют относительно низкие значения для обеих ХЛ систем.
Для тролокса, МК и АК небольшой разброс стехио-метрических коэффициентов связан, вероятно, со сходством структуры молекул и мало различающейся энергией связи атома водорода в ОН-группах.
Мексидол и фенозан калия являются, как и большинство монофенолов, слабыми ингибиторами. Как и в моделях цепного окисления углеводородов, при генерации свободных радикалов в системе с АБАП экранирование ОН-группы (фенозан) приводит к существенному повышению эффективности АО по сравнению с неэкра-нированным фенолом. Трет-бутильные заместители в орто-положении, с одной стороны, препятствуют участию образующегося феноксильного радикала в дальнейшем инициировании свободнорадикальных реакций, а с другой стороны, повышают электронную плотность на ОН-группе, снижая энергию ее диссоциации. При инициировании окисления люминола системой «НЬ-Н2О2» отсутствие такого эффекта, возможно, свидетельствует о том, что с радикалами, образующимися в этой системе (О2»-, ОН», феррилрадикал), неэкранированный фенол реагирует с больше скоростью, нежели экранированный.
Таким образом, для ряда сильных АО (тролокс, аскорбиновая и мочевая кислоты) значения АОА и стехио-метрических коэффициентов ингибирования оказались не зависящими от способа генерации радикалов в модельных системах, основанных на ХЛ люминола, и близкими по значению к данным, полученным с помощью других методов. Синтетические АО-монофенолы (мексидол, фено-зан), как и большинство подобных соединений, не подавляют свечение полностью, а только снижают его интенсивность; при этом соотношение ингибирующей активности этих соединений находится в сильной зависимости от выбранной системы генерации радикалов. Данные по
кинетике хемилюминесценции и коэффициентах ингиби-рования, исследованных АО, полученные в настоящей работе на двух ХЛ моделях с разными моделями инициирования окисления, помогут в интерпретации результатов измерения АОА различных биологических субстанций в медико-биологических исследованиях.
Список литературы
1. Bartosz G. Non-enzymatic antioxidant capacity: limitations of use in biomedicine. //Free Radical Research. 2010. V. 44. pp. 711-720.
2. Бурлакова Е.Б., Сторожок Н.М., Храпова Н.Г. Изучение суммарной активности природных антиокси-дантов хемилюминесцентным методом // Биофизика. - 1988. - Т. 33, № 4. - c. 584-588.
3. Bastos E.L., Romoff P., Eckert C.R., Baader W.J. Evaluation of Antiradical Capacity by H2O2-Hemin-Induced Luminol Chemiluminescence // J. Agric. Food Chem. 2003. V. 57. pp. 7481-7488.
4. Беляков В.А., Васильев Р.Ф., Федорова Г.Ф. Кинетика окси-хемилюминесценции и ее использование для анализа антиоксидантов. // Кинетика и катализ. 2004. Т.45. №3. с. 355-362.
5. Karadag A., Ozxelik B., Saner S. Review of Methods to Antioxidant Capacities. // Food Anal. Methods. 2009. N.2. pp. 41-60.
6. Клебанов Г.И., Теселкин Ю.О., Бабенкова И.В., Любицкий О.Б., Владимиров Ю.А. Антиоксидант-ная активность сыворотки крови. // Вестник РАМН. 1999. №2. с.15-22.
7. Lissi E.A., Salim-Hanna M., Pascual C., Castillo M. D. Evaluation of total antioxidant potencial (TRAP) and total antioxidant reactivity from luminol-enchanced chemiluminescence measurement. Free Radic. Biol. Med. 1995. V. 18. N. 2. pp. 153-158.
8. Менгеле Е.А., Круговов Д.А., Касаикина О.Т. «Влияние меркаптоэтанола на окисление углеводородов
и цис—транс-изомеризацию ненасыщенных липи-дов» // Известия Академии наук. Серия химическая. 2015. №4. с. 1-6.
9. Niki E.: Free Radical Initiators as Source of Water- or Lipid-Soluble Peroxyl Radicals. METHODS IN ENZYMOLOGY. Eds. L. Packer & A.N. Glazer. Academic Press. NY, 1990. V. 186. pp. 100-108.
10. Popov I., Lewin G.: Antioxidative homeostasis, its evaluation by means of chemiluminescent methods. In: Handbook of chemiluminescent methods in oxidative stress assessment. (Eds. I. Popov and G. Lewin), Transworld Research Network, Kerala, 2008, pp. 361391.
11. Pinchuk I., Shoval H., Dotan Y., Lichtenberg D. Evaluation of antioxidants: Scope, limitations and relevance od assays. // Chemistry and Physics of Lipids. 2012. V. 165. pp. 638-647.
12. Roginsky V., Lissy E. Review of methods to determine chain-breaking antioxidant activity in food // Food Chemistry. 2005. V. 92. pp. 235-254.
13. Русина И.Ф., Карпухин О.Н., Касаикина О.Т. Хеми-люминесцентные методы в исследовании ингиби-рованного окисления. // Химическая физика. 2013. Т. 32. №8. с. 1-15.
14. Теселкин Ю.О., Бабенкова И.В., Любицкий О.Б., Клебанов Г.И., Владимиров Ю.А.: Ингибирование сывороточными антиоксидантами окисления люминола в присутствии гемоглобина и пероксида водорода. // Вопросы медицинской химии. 1997. Т. 43. №2. с. 87-93.
15. Uotila J.T., Kirkkola A.L., Rorarius M. et al. The total peroxyl radical-trapping ability of plasma and cerebrospinal fluid in normal and preeclamptic parturients // Free Radic. Biol. Med. 1994. V. 16, N. 5. pp. 581-590.
ГИДРОГЕНИЗАЦИИ ТЯЖЕЛЫХ НЕФТЯНЫХ ОСТАТКОВ В СМЕСИ С ПЕРВИЧНОЙ
КАМЕННОУГОЛЬНОЙ СМОЛОЙ
Торайгыр Балнур Болатхан
Магистрант Байкенов Мурзабек Исполович
Зав.кафедрой химической технологии и нефтехимии г.Караганды Абсат Зауре Бакиевна, Халикова Зухра Салаватовна
Канд.хим. наук, доценты кафедры химической технологии и нефтехимии г.Караганды
АННОТАЦИЯ
В работе представлены результаты проведения процесса гидрогенизации тяжелых нефтяных остатков в смеси с широкой фракцией каменноугольной смолы с целью получения в дальнейшем компонентов моторных топлив. В результате проведенных исследований были определены оптимальные параметры процесса гидрогенизации тяжелых нефтяных остатков и каменноугольной смолы, а также увеличен выход светлых нефтепродуктов. ABSTRACT
In this paper represented the results of the hydrogénation process of heavy oil residues in a mixture with a wide variety of coal tar fraction in order to obtain further components of motor fuels. The studies were to determine the optimum parameters of the process of hydrogenation of heavy oil residues and coal tar, as well as to increase the yield of light oil products.
Ключевые слова: гидрогенизация, тяжелые нефтяные остатки, каменноугольная смола.
Keywords: hydrogenation, heavy oil residues, coal tar.
В настоящее время уменьшение разведанных запасов лёгкой нефти - общая тенденция нефтяной отрасли, практически весь прирост запасов происходит за счет тяжелой сернистой нефти [1]. Рациональная переработка нефти, нефтепродуктов и их экономное использование является важнейшей задачей науки и производства. В связи
с этим перспективное практическое значение приобретает переработка тяжелых нефтяных остатков (ТНО).
Сегодня процессы гидрогенизации в нефтеперерабатывающей промышленности применяются в большом количестве. Можно выделить несколько основных видов
