CC BY
87
УДК663.15+ 57.083.13 582.84
ИСПОЛЬЗОВАНИЕ РАЗЛИЧНЫХ МОДИФИКАЦИЙ ПИТАТЕЛЬНОГО СУБСТРАТА В ИНТЕНСИВНОЙ ТЕХНОЛОГИИ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ GANODERMA LUCIDUM
Г. В. Ильина, доктор биол. наук, профессор; Д. Ю. Ильин, канд. биол. наук, доцент; С. А. Сашенкова, канд. биол. наук, доцент; А. В. Остапчук, канд. биол. наук, доцент
ФГБОУ ВО Пензенский ГАУ, Россия, e-mail: g-ilyina@yandex. ru
Статья содержит информацию о возможностях и приемах интенсификации процесса культивирования базидиомицета трутовика лакированного Ganoderma lucidum (Curtis) P. Karst. Исследования, положенные в основу работы, касались разработки оригинальных рецептур твердофазных субстратов с целью внесения ростовых и корригирующих морфогенез факторов. Изучено влияние на рост и развитие гриба эссенциального для данного вида микроэлемента германия и процесс его биоконверсии мицелием. Рассмотрено влияние янтарной кислоты на обменные процессы, в первую очередь ассимиляцию основных углерод-содержащих компонентов, мицелием Ganoderma lucidum (Curtis) P. Karst. Установлена концентрация янтарной кислоты на уровне 0,1 % от массы сухого питательного субстрата, достоверно стимулирующая интенсивность утилизации сахаров субстрата мицелием и темпы его биоконверсии. Определено влияние микроэлемента германия и янтарной кислоты на морфогенетические процессы, интенсивность обмена веществ, эффективность и динамику накопления наиболее ценных метаболитов в мицелии, а также урожайность плодовых тел грибов Ganoderma lucidum (Curtis) P. Karst. Проведена сравнительная оценка спектра жир-нокислотного состава мицелия и плодовых тел гриба, выращенного на твердофазных субстратах различного трофического состава, а также с варьирующим набором изученных биофакторов.
Ключевые слова: чистые культуры, полиненасыщенные жирные кислоты, биотехнология, германий, янтарная кислота, трутовик лакированный, биоконверсия субстрата.
Введение.
В различных отраслях современного производства все большую актуальность приобретают соответствующие биотехнологии. Это связано с экономией энергоресурсов, возможностью за относительно короткий период времени получать уникальные продукты из дешевого сырья, а также со стремлением снизить антропогенную нагрузку на окружающую среду. Ключевую роль в биотехнологиях играют соответствующие микроорганизмы, а также культуры клеток, выращиваемые в условиях in vitro. Важным условием в создании эффективных биотехнологий является детальное изучение физиолого-биохимических параметров и эколого-трофических потребностей предполагаемых к использованию культур. Это обусловлено тем, что биологическая переработка какого-либо сырья с одновременным биосинтезом метаболитов клетками культуры осуществляется в ходе многоступенчатых обменных процессов, направленных, в первую очередь, на удовлетворение собственных энергетических и материальных потребностей. И только после детального изучения этих процессов можно определить ключевые этапы метаболических путей, вмешательство в кото-
рые позволяют получать целевые продукты без нарушения общего физиолого-биохимического статуса клеток продуцента. Учитывая, что скорость и направленность метаболических превращений может регулироваться многими факторами, в том числе и трофическими, то для достижения максимального практического эффекта нельзя не учитывать как качественные, так и количественные параметры питательных сред.
Одним из видов, используемых как в грибоводстве, так и в биотехнологиях, является Ganoderma lucidum. Повышенный интерес к данному виду обусловлен его уникальными свойствами [1]. Очень часто при разработке регламентов на составление питательных сред возникает вопрос о выборе источника различных биогенных элементов, в частности углерода. Принимая во внимание эколого-биологические особенности, а именно принадлежность к ксилотрофам, можно предполагать важность лигноцеллюлозных компонентов в питании этого гриба. Кроме того, следует учитывать и степень деструкции лигноцел-люлозного материала до соответствующих структурных блоков, способных включаться в метаболические преобразования и на-
прямую определять интенсивность обменных процессов, осуществляемых организмом гриба. Однако при использовании природных, частично деструктурированных лигно-целлюлозных материалов неизбежно могут возникнуть сложности, связанные с невоспроизводимостью получаемых результатов, что, в свою очередь, может быть серьезным препятствием для их внедрения в практическое использование.
В этой связи нами были проведены эксперименты с использованием искусственно модифицированных лигноцеллю-лозных субстратов, направленные на подбор оптимальных трофических параметров для твердофазного культивирования G. lucidum [2].
Следующей актуальной проблемой биотехнологической сферы может быть подбор и оптимизация состава питательных сред по пулу эссенциальных минорных биофакторов, способствующих как эффективной и полномерной утилизации основных компонентов субстрата, так и выработке и накоплению наиболее ценных метаболитов культурой продуцента [3].
Целью настоящей работы была разработка и осуществление приемов оптимизации твердофазных органических субстратов для более полной реализации биотехнологического потенциала G. lucidum. Для достижения поставленной цели решались следующие задачи:
- изучить влияние янтарной кислоты на интенсивность утилизации холоцеллюлозы и глюкозы нативного субстрата культурами G. lucidum;
- определить изменения жирнокислот-ного состава мицелия G. lucidum под влиянием изученных трофических компонентов, как возможного метаболического адаптационного индикатора;
- выяснить роль микроэлемента германия в процессах образования некоторых метаболитов и в процессе биоконверсии питательного субстрата культурой G. lucidum.
Методика исследований.
Исследования были проведены на базе кафедры биологии, биотехнологий и вете-ринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВО Пензенский ГАУ, располагающей коллекцией мицелиальных культур. В ходе экспериментов были изучены пять штаммов вида, имеющих различное происхождение [4]. В экспериментах были изучены композиции твердофазных субстратов с различными дополнительными трофическими факторами в ходе интенсивного культивирования G. lucidum в лабораторных условиях. Базовые субстраты пред-
ставляли собой соломистые смеси на основе опилок древесины дуба и измельченной пшеничной соломы, увлажненные до 70 %. Для нивелирования возможных артефактов, состав питательных сред был сбалансирован по соотношению углерода и азота на уровне величины 80:1.
Культивирование штаммов и изучение особенностей развития мицелиальных культур проводили по общепринятым методикам [5].
Экстракцию липидов проводили по методу Фолча с модификациями [6]. Для экстракции липидов использовали следующие системы растворителей: система А - хлороформ-этанол (1:2); система B - хлороформ-этанол (2:1). Содержание жирных кислот в мицелии определяли хромато-графически на хроматографе «Кристалл-2000 М» с пламенно-ионизационным детектором, оснащённым набивной колонкой с насадкой - 5 % SE-30, нанесенной на носитель «Инертон» [7]. При культивировании мицелия на лигноцеллюлозном субстрате определяли как сумму жирных кислот, так и состав посредством деривати-зации в соответствующие метиловые эфи-ры. Для этого материал (мицелиально-субстратный комплекс) высушивали до постоянной массы, затем заливали 5,0 %-ным раствором хлороводорода в метаноле, после чего проводили экстракцию метиловых эфиров в гексан. В результате упаривания гексанового экстракта в токе азота получали целевой продукт.
Первоначальное содержание и последующую убыль глюкозы проводили глюко-зооксидазным методом [8]. Аналогичную оценку в отношении холоцеллюлозы осуществляли весовым методом. Содержание глюканов определяли фотометрически. Для этого проводили экстракцию 0,4 %-ным раствором HCl с последующей обработкой экстракта ß-глюканазой [9].
Биологическую эффективность выращивания базидиом определяли как отношение сырой массы грибов к сухой массе субстрата. По данному показателю определяют урожайность грибов на различных по составу и влажности субстратах [10, 11]. Коэффициент конверсии рассчитывали как отношение сухой массы грибов к сухой массе субстрата.
Определение содержания германия в базидиомах проводили фотометрически [12].
Все эксперименты проводились в трехкратной повторности. Статистическая обработка проводилась с помощью программы для обработки и анализа данных «Sta-tistica 6.0». Оценка достоверности влияния на продуктивные параметры со стороны
Нива Поволжья № 4 (45) ноябрь 2017 77
Таблица 1
Влияние янтарной кислоты на эффективность утилизации холоцеллюлозы субстрата штаммами G. lucidum на 14-е сутки культивирования, % от исходного содержания
Штамм Содержание янтарной кислоты, % от массы сухого субстрата
Контроль 0,05 0,1 0,2
Gl-6 96,3±0,1 93,2±0,7 90,5±0,1 98,4±0,1
U-12 85,0±0,4 82,5±0,1 80,3±0,4 89,1±0,4
T-14 90,6±0,4 89,8±0,3 63,1±0,4 91,2±0,4
GD-I-1 87,3±0,5 76,9±0,3 62,3±0,5 81,7±0,5
GD-I-2 90,4±0,2 72,5±0,2 65,1±0,2 92,1±0,2
различных факторов осуществлялась с помощью дисперсионного анализа полученного массива данных (ANOVA). Для оценки значимости полученных данных использовался ^критерий Стьюдента при уровне значимости 0,95 [13].
Результаты и их анализ.
Янтарная кислота является важнейшим промежуточным звеном центрального узлового каскада метаболических реакций -цикла Кребса (цикл трикарбоновых кислот). Продукты, образующиеся в ходе этих биохимических превращений, могут в дальнейшем участвовать как в энергетических, так и в пластических реакциях. Поэтому изменение интенсивности реакций цикла Кребса может напрямую влиять на эффективность вовлечения в обменные процессы различных метаболически утилизируемых веществ. Изменения процессов, слагающих цикл трикарбоновых кислот, могут осуществляться многими факторами, в том числе накоплением и израсходованием промежуточных метаболитов. В этой связи нами
изучалось влияние янтарной кислоты как возможного биохимического регулятора.
Янтарная кислота вносилась в питательную среду до стерилизации в количестве 0,05 % и 0,2 % от массы. Основными отслеживаемыми характеристиками были скорость роста, культурально-морфологичес-кие изменения, интенсивность потребления компонентов субстрата.
Нами было отмечено, что под влиянием янтарной кислоты изменение культу-рально-морфологических параметров было незначительным. Наибольшие изменения проявились в скоростях роста, изменении ферментативной активности, а также интенсивности утилизации полимеризован-ных источников углерода углеводной природы из нативного субстрата (табл. 1).
Таким образом, скорость потребления основного доступного источника углерода под влиянием различных концентраций янтарной кислоты в субстрате возрастает неодинаково. Максимальная эффективность утилизации холоцеллюлозы уста-
Рис. 1. Влияние янтарной кислоты на процесс расщепления целлюлозы и утилизацию свободной глюкозы в субстрате в течение 15 суток культивирования: опыт 1 - содержание вещества 0,05 %, опыт 2 - 0,1 %, опыт 3 - 0,2 % от массы сухого субстрата (р>0,05, планки погрешностей - ошибка средней)
новлена при концентрации янтарной кислоты в субстрате на уровне 0,1 % от массы. При более высоких концентрациях стимулирующий эффект нивелировался, вероятно за счет включения динамических ограничений со стороны ферментативных систем цикла Кребса.
В ходе дальнейших исследований установлена выраженная стимуляция янтарной кислотой процесса потребления глюкозы. Оценивая динамику ее содержания в субстрате, следует отметить, что после резкого ступенчатого подъема скорости ее потребления процесс также резко переходит на плато (рис. 1). Данное явление, по-видимому, обусловлено так называемым «эффектом Пастера», который предполагает уменьшение потребления глюкозы при увеличении эффективности ее деградации в процессах энергетического обмена [14].
Таким образом, установлено достоверное влияние янтарной кислоты на динамику высвобождения и утилизацию глюкозы, что говорит о возрастании темпов биоконверсии субстрата. Оптимальной концентрацией, повышающей интенсивность обменных процессов, является 0,1 % вещества от массы сухого питательного субстрата.
Важным биохимическим индикатором, отражающим фазовые переходы в онтогенезе культуры продуцента, сопровождающиеся структурно-молекулярными изменениями клеток, может быть пул липидов и, в частности, жирных кислот. В свою очередь, возрастные этапы определяются проявлением онтогенетической изменчивости, одновременно обусловленной как наследственной, так и модификационной изменчивостью. В роли модифицирующих воздействий могут выступать разнообразные факторы внешней среды, в том числе трофические. В этой связи особый интерес представляло изучение влияния янтарной кислоты на жирнокислотный состав мицелия
на стадии телеоморфы. Для этой цели отбирался материал, представляющий собой мицелиальные узелки, детерминированные к последующему их преобразованию в плодовые тела. Необходимо отметить, что сроки формирования мицелиальных узелков существенно отличались в образцах культур, выросших на субстратах, содержащих и исключавших содержание янтарной кислоты. Анализ пула жирных кислот показал, что под влиянием янтарной кислоты меняется соотношение в сторону преобладания ненасыщенных форм. При этом достоверного изменения общей массы липидов не обнаруживается (табл. 2).
Также отмечается увеличение стери-новых компонентов. Указанные явления могут быть следствием общей интенсификации процессов, слагающих цикл Кребса, в котором образующиеся промежуточные продукты могут служить отправной точкой как в путях дальнейшей их деградации (с целью извлечения из них энергии), так и в реакциях синтеза ряда соединений, в том числе жиров и стеринов. В ранее проведенных исследованиях нами отмечалось, что вещества стериновой природы непосредственно могут влиять на эффективность плодообразования G. lucidum. В этой связи представляется целесообразным внесение янтарной кислоты в количестве 0,1 % от массы субстрата для выращивания указанного гриба.
Ранее нами установлено позитивное влияние соединений германия на рост и развитие культур трутовика лакированного [15, 16]. Исследование влияния данного трофического компонента субстрата - соли германия (тиогерманат натрия) позволило установить достоверное стимулирующее влияние изученного вещества на урожайность и эффективность биоконверсии субстрата. Субстрат обогащали германием путем добавления к нему 50 мг/кг тиогер-маната натрия (из расчета, чтобы микро-
Таблица2
Влияние янтарной кислоты (0,1 % от массы среды) на содержание жирных кислот и общих липидов в зачатках базидиом штаммов G. lucidum (повторность трехкратная, р<0,05), мг/г воздушно-сухой массы базидиом
Штамм Контроль Опыт
Содержание общих липидов Суммарное содержание жирных кислот Содержание общих липидов Суммарное содержание жирных кислот
предельных непредельных предельных непредельных
Gl-6 37,3±0,1 9,4±0,3 19, 5±0,5 40,1 ±1,6 4,2±4,0 23,5±1,6
U-12 52,4±0,1 9,5±0,4 25,2±0,3 35,8±3,4 12,8±8,5 27,7±2,5
T-14 76,3±0,2 27,7±0,3 35,3±0,4 92,1±2,4 19,3±9,9 45,2±3,4
GD-I-1 45,7±0,7 2,1 ±0,1 18,1 ±0,1 59,3±2,3 13,3±2,3 30,5±3,1
GD-I-2 75,4±0,5 27,5±0,4 37,9±0,2 84,1±2,7 31,6±4,4 40,8±2,4
Нива Поволжья № 4 (45) ноябрь 2017 79
Рис. 2. Влияние тиогерманата натрия на интенсивность конверсии веществ питательного субстрата штаммом Gl-6 G. lucidum
элемент был внесен в количестве 20 мг/кг, поскольку в составе соли его содержится 40 %). Оценка урожайности и эффективности биоконверсии проводилась в ходе реализации полного цикла интенсивного культивирования гриба, предполагающего получение развитых базидиом
Урожайность грибов рассчитывали как отношение сырой массы грибов к сырой массе субстрата (табл. 3).
Таблица 3
Влияние тиогерманата натрия при его внесении в количестве 50 мг/кг субстрата на урожайность штаммов G. lucidum (р<0,05)
Штамм Урожайность, г/кг субстрата % к контролю
Контроль Опыт
Gl-6 123,0±3,1 176,1 ±3,9 +43,2
U-12 156,0±3,0 163,0±5,2 +4,5
T-14 116,2±1,3 138,1±2,4 +18,9
GD-I-1 133,6±5,2 155,2±2,9 +16,2
GD-I-2 118,9±5,0 148,1 ±3,1 +24,6
Коэффициент конверсии рассчитывали как отношение сухой массы грибов к сухой массе субстрата (рис. 2).
Установлено, что достоверное позитивное влияние соли германия отмечается для всех изученных штаммов. Механизм воздействия ионов германия на процессы
развития мицелия требует специального исследования.
Таким образом, можно рекомендовать использование соединения германия для интенсификации процесса биоконверсии питательных компонентов субстрата. Использование такого трофического фактора перспективно при интенсивной технологии культивирования G. lucidum.
Вывод.
В результате проведенных исследований была установлена целесообразность использования таких трофических факторов, как янтарная кислота и тиогерманат натрия, в процессе интенсивного культивирования G. lucidum. Применение 0,1 % янтарной кислоты интенсифицирует процесс деструкции холоцеллюлозы на растительном субстрате, динамику высвобождения и утилизации глюкозы, что способствует оптимизации конверсии веществ субстрата на этапе его освоения мицелием. Применение же тиогерманата натрия в концентрации 20 мг/кг субстрата в пересчете на элемент позитивно влияет на морфогене-тические процессы, урожайность и интенсивность конверсии питательных веществ субстрата в биомассу базидиом.
Литература
1. Smith, J. E. Medicinal mushrooms: their therapeutic properties and current medical usage with special emphasis on cancer treatments / J. E. Smith, N. J. Rowan, R. Sullivan - Glasgow: University of Strathclyde, - 2002. - 256 p.
2. Ильина, Г. В. Роль специфики лигнинсодержащих субстратов при культивировании ксило-трофных грибов in vitro / Г. В. Ильина, Д. Ю. Ильин, Ю. С. Лыков // Микология и фитопатология. -2009. - Т.43, № 2. 2009. - С. 123-131.
3. Ильина, Г. В. Роль низкомолекулярных факторов как модуляторов онтогенеза культур ба-зидиальных макромицетов / Г. В. Ильина, Д. Ю. Ильин, С. А. Сашенкова. - Нива Поволжья. -2014. - № 4 (33). - С. 33-41.
4. Ильина, Г. В. Эколого-физиологический потенциал природных изолятов ксилотрофных ба-зидиомицетов: дис... докт. биол. наук / Г. В. Ильина. -Саратов: СГУ, 2011. - 432 с.
5. Бухало, А. С. Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре / А. С. Бухало. - Киев: Наукова думка, 1988. - 144 с.
6. Folch, I. Asimple method for the isolation and purification of total lipids from animal tisshes / I. Folch, M. Lace, G. N. S. Stomley // J. Biol. diem. - 1957. - Vol. 246, № 3. - Р. 479-509.
7. Гёрёг, Ш. Количественный анализ стероидов / Ш. Гёрёг; пер. с англ. - М.: Мир, 1985. - 504 с.
8. Колб, В. Г. Справочник по клинической химии / В. Г. Колб, В. С. Камышников. - Минск: Беларусь, 1982. - 443 с.
9. Патент № 2017819: Способ количественного определения 1,3-глюканов / Н. А. Тиунова, И. В. Зайкина, Н. Я. Кобзева. - 1994. - 12 с.
10. Тишенков А. Д. Как повысить урожайность субстрата вешенки / А. Д. Тишенков // Школа грибоводства. - 2011. - № 3. - С. 36-39.
11. Дулов, М. И. Совершенствование технологии культивирования грибов вешенка на основе приготовления субстрата методом пастеризации-ферментации в термической камере / М. И. Дулов, Е. В. Вялая // Нива Поволжья. - 2011. - № 2. - С. 17-21.
12. Назаренко, В. А. Аналитическая химия германия / В. А. Назаренко. - М.: Наука, 1973. -260 с.
13. Халафян, А. А. Statistica 6. Статистический анализ данных / А. А. Халафян. - М.: Изд-во ООО «Бином-Пресс», 2007. - 512 с.
14. Шлегель, Г. Общая микробиология / Г. Шлегель. - М.: Мир, 1987. - 567 с.
15. Влияние тиогерманата натрия на процессы морфогенеза и базидиальное спороношение Ganoderma lucidum в культуре / Д. Ю. Ильин, Г. В. Ильина, Л. В. Гарибова и др. // Микология и фитопатология. - 2015.- Т. 49, № 3. - С. 182-187.
16. Ильин, Д. Ю. Возможности обогащения грибной продукции микроэлементом германием / Д. Ю. Ильин, Г. В. Ильина // Экологические проблемы и здоровье населения: сборник статей Всероссийской научно-практической конференции. - Пенза, 2016. - С. 31-34.
UDК 663.15+ 57.083.13 582.84
USING VARIOUS MODIFICATIONS OF NUTRITION SUBSTRATE IN GANODERMA LUCIDUM
INTENSIVE CULTIVATION TECHNOLOGY
G. V. Ilyina, doctor of biological sciences, professor; D. Yu. Ilyin, candidate of biological sciences, associate professor; S. A. Sashenkova, candidate of biological sciences, associate professor, Ostap-chuk A. V, candidate of biological sciences, associate professor
FSBEE HE Penza SAU, Russia, e-mail: g-ilyina@yandex.ru
The article contains information on the possibilities and methods of intensification of the process of cultivation of the Ganoderma lucidum (Curtis) P. Karst. The basic research are concerned with the development of original compositions of solid-phase substrates for the purpose of introducing growth and corrective morphogenetic factors. The authors have examined the influence of germanium microelement on growth and development of the fungus essential and the process of its bioconversion by mycelium. The influence of succinic acid on metabolic processes, primarily the assimilation of the main carbonaceous components by the mycelium Ganoderma lucidum (Curtis) P. Karst has been considered. The concentration of succinic acid at the level of 0.1 % of the weight of the dry nutrient substrate is stated, it significantly stimulates the intensity of the utilization of the sugar of the substrate by the mycelium and the rate of its bioconversion. The influence of germanium microelement and succinic acid on morphogenetic processes, metabolic rate, efficiency and dynamics of accumulation of the most valuable metabolites in mycelium, as well as productivity of fruit bodies of fungi Ganoderma lucidum (Curtis) P. Karst. A comparative evaluation of the spectrum of the fatty acid composition of the mycelium and fruiting bodies of the fungus, grown on solid-phase substrates of various trophic composition, as well as with a varied set of studied biofactors has been conducted.
Нива Поволжья № 4 (45) ноябрь 2017 81
Key words: pure cultures, polyunsaturated fatty acids, biotechnology, germanium, succinic acid, lacquered tinder, bioconversion of the substrate.
References:
1. Smith, J. E. Medicinal mushrooms: their therapeutic properties and current medical usage with special emphasis on cancer treatments / J. E. Smith, N. J. Rowan, R. Sullivan - Glasgow: University of Strathclyde, - 2002. - 256 p.
2. Ilyina, G. V. The role of the specificity of lignin-containing substrates in the cultivation of xylotro-phic fungi in vitro / G. V. Ilyina, D. Yu. Ilyin, Yu. S. Lykov // Mycology and phytopathology. - 2009. - Vol. 43. № 2. - P. 123-131.
3. Ilyina, G. V. Role of low-molecular factors as modulators of ontogeny of cultures of basidiomy-cetes / G. V. Ilyina, D. Yu. Ilyin, S. A. Sashenkova. - Niva Povolzhya. - 2014. - № 4 (33). - P. 33-41.
4. Ilyina, G. V. Ecological and physiological potential of natural isolates of xylotrophic basidiomy-cetes: dis... doc. biol. sciences / G. V. Ilyina. - Saratov: SSU, 2011. - 432 p.
5. Bukhalo, A. S. Higher edible basidiomycetes in pure culture / A. S. Bukhalo. - Kiev: Naukova Dumka, 1988. - 144 p.
6. Folch, I. Asimple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues / I. Folch, M. Lace, G. N. S. Stomley // J. Biol. chem. - Vol. 246, No. 3. - 1957. - P. 479-509.
7. Gyorog, Sh. Quantitative analysis of steroids / Sh. Gyorog; trans. with English. - Moscow: Mir, 1985. - 504 p.
8. Kolb, V. G. Handbook of Clinical Chemistry / V. G. Kolb, V. S. Kamyshnikov. - Minsk: Belarus, 1982. - 443 p.
9. Patent № 207819: Method for the quantitative determination of 1,3-glucans / N. A. Tiunova, I. V. Zaikina, N. Ya. Kobzeva. - 1994. - 12 p.
10. Tishenkov, A. D. How to increase the productivity of the oyster substrate / A. D. Tishenkov // Shkola gribivodstva. - 2011. - № 3. - P. 36-39.
11. Dulov, M. I. Improvement of the technology of cultivation of oyster mushrooms on the basis of substrate preparation by the method of pasteurization-fermentation in a thermal chamber / M. I. Dulov, Ye. V. Vyalaya // Niva Povolzhya. - 2011. - № 2. - P. 17-21.
12. Nazarenko, V. A. Analytical chemistry of germanium / V. A. Nazarenko. - M.: Nauka, 1973. -260 p.
13. Khalafyan, A. A. Statistica 6. Statistical analysis of data / A. A. Khalafyan. - Moscow: Publishing house of «Binom-Press» Ltd., 2007. - 512 p.
14. Schlegel, G. General Microbiology / G. Schlegel. - Moscow: Mir, 1987. - 567 p.
15. Effect of sodium thiogermanate on the processes of morphogenesis and basidial sporulation of Ganoderma lucidum in culture / D. Yu. Ilyin, G. V. Ilyina, L. V. Garibova et al. - 2015. - Vol. 49. № 3. -P. 182-187.
16. Ilyin, D. Yu. Possibilities of enrichment of mushroom products with microelement germanium / D. Yu. Ilyin, G. V. Ilyina // Ecological problems and public health: collection of articles of the All-Russian scientific and practical conference. - Penza, 2016. - P. 31-34.
УДК 635.64
СОВРЕМЕННЫЕ АДАПТИВНЫЕ ТЕХНОЛОГИИ ВОЗДЕЛЫВАНИЯ ОВОЩНЫХ КУЛЬТУР
В УСЛОВИЯХ НИЖНЕГО ПОВОЛЖЬЯ
Е. В. Калмыкова, канд. с.-х. наук; Н. Ю. Петров, доктор с.-х. наук, профессор;
В. Н. Павленко, доктор с.-х. наук, профессор
ФГБОУ ВО Волгоградский ГАУ, Россия, т. 8 (8442)411079, e-mail: kalmykova.elena-1111 @yandex.ru
Цель проведенных исследований - выявить эффективность применения водорастворимых удобрений в посевах овощных культур на подтипе светло-каштановых почв Волгоградской области. Овощные культуры - томат, перец сладкий и лук репчатый - выращивались в открытом грунте безрассадным способом. В наших исследованиях использовали Растворин для проведения корневых и некорневых подкормок растений (15-25 г/м2). Растворин - комплексное водорастворимое удобрение с полным набором элементов питания в оптимальном для растений соотношении. Применение водорастворимого удобрения Растворин позволило получить максимальную урожайность на сорте томата Геркулес, она составила 129,0 т/га. Применение водорастворимого удобрения способствовало также получению максимального урожая и других исследуемых овощных культур. Так, препарат Растворин повышал урожайность изучаемых перспективных гибридов перца сладкого и лука репчатого.
