CC BY
70
УДК 619.618.177-089.888.11
Использование метода трансплантации эмбрионов при оптимизации воспроизводства стада мясной абердин-ангусской породы
Кудрин Александр Григорьевич, доктор биологических наук, профессор
e-mail: kudrin230949 @yandex.ru
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Вологодская государственная молочнохозяйственная академия им. Н.В. Верещагина»
Смирнов Максим Александрович, магистрант
e-mail:M.Smirnov@agrohold.ru
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Вологодская государственная молочнохозяйственная академия им. Н.В. Верещагина»
Аннотация. Трансплантация эмбрионов в мясном скотоводстве значительно сокращает время, необходимое для создания выдающихся линий, семейств и высокопродуктивных стад. Рассмотрены результаты исследований по практическому использованию указанного инновационного метода при организации расширенного воспроизводства мясной абердин-ангусской породы. Обобщен опыт, поэтапно описана практикуемая технология эмбриопересадок у крупного рогатого скота.
Ключевые слова: крупный рогатый скот, абердин-ангусская порода, доноры, реципиенты,суперовуляция, качество эмбрионов, оценка и хранение эмбрионов, эмбриопересадка, приживляемость, телята, живая масса.
Введение. В настоящее время основным биотехническим методом совершенствования пород скота как молочного, так и мясного направления продуктивности является искусственное осеменение с использованием высококлассных быков-производителей.
Поскольку крупный рогатый скот относится к однополым животным, то от одной коровы можно получить в основном не более одного теленка в год. В то же время в яичнике животных содержатся сотни тысяч потенциально готовых к развитию половых клеток.
В последние годы Российская Федерация вошла в пятерку ведущих стран Европы по производству и трансплантации эмбрионов. Получено почти 3,5 тысячи потенциальных телят. Такой метод воспроизводства стад крупного рогатого скота как трансплантация эмбрионов в стране растет и развивается, хотя и не очень большими темпами [1].
Трансплантация - это перенос зародышей эмбрионов из половых органов животных-доноров в половые пути коров, являющихся реципиентами.
При этом в организме реципиентов наступает нормальная беременность с развитием зародышей, а затем и формированием плодов. Трансплантация эмбрионов позволяет значительно сократить время на создание выдающихся семейств, линий и новых типов молочного скота.
Изученность проблемы. Трансплантация эмбрионов женским особям сравнима по возможностям с техникой искусственного осеменения, позволяющей полнее использовать генотип выдающихся самок. Однако широкое внедрение этой перспективной технологии сдерживается несовершенством методов получения большого количества зрелых, полноценных, способных к оплодотворению ооцитов, а также сравнительно высокой трудоемкостью и стоимостью проводимых работ [3,14].
В странах СНГ работы по трансплантации эмбрионов крупного рогатого скота начаты в 1975 г. Первые телята были получены в начале 1977 г. [10] во Всесоюзном НИИ физиологии, биохимии и питания сельскохозяйственных животных, а первый теленок от пересадки замороженного эмбриона - во Всесоюзном институте животноводства в 1980 г. С 1983 года организованы четыре центра трансплантации эмбрионов: ВИЖ, ВНИИРГЖ, НИИЖ Лесостепи и Полесья. УССР, Украинский НИИ разведения и искусственного, осеменения крупного рогатого скота [5].
Мировая практика пересадки эмбрионов сейчас успешно развивается. Применение метода трансплантации эмбрионов непрерывно растет. При этом технология технически совершенствуется, а эффективность метода возрастает [4, 15, 16, 17].
В настоящее время наиболее эффективен нехирургический метод трансплантации эмбрионов. В среднем на современном уровне биотехнологи получают с применением пересадки эмбрионов около 10 телят, а в отдельных случаях до 50 телят от одного донора в год, тогда как при обычном способе размножения (искусственном осеменении) корова за всю жизнь могла бы воспроизвести 7-8 телят. Поэтому идея получения максимального количества потомков от лучших по продуктивности самок издавна привлекает внимание исследователей. Решение этой проблемы стало возможным на основе использования метода трансплантации эмбрионов [6].
Несмотря на достигнутые успехи в разработке приемов вызывания множественной овуляции у коров и телок-доноров эмбрионов, технике извлечения и пересадке зародышей, выход полноценных эмбрионов и их приживляемость остается нестабильной. Многие вопросы теории и практики требуют дальнейшего изучения и совершенствования.
В селекционном плане необходимо ускоренное создание новых пород, линий, семейств высокопродуктивного скота с качествами, удовлетворяющими требованиям сложившейся конъюнктуры рынка [2]. Метод трансплантации эмбрионов позволяет значительно снизить интервал между поколениями животных, а также ускорить оценку матерей быков, обеспечить размножение животных с высокой генетической ценностью, включая малочисленные мясные породы. Темпы совершенствования племенных животных возрастают в 2-3 раза [8].
В связи с необходимостью совершенствования скота абердин-ангусской породы в 2000-е гг. в стране осуществлялся завоз импортных животных этой породы. Их помеси на территории Российской Федерации интенсивно использовались в условиях промышленной технологии.
Скрещивание позволило создать новую племенную базу абердин-ангусской породы и обеспечить возможность разведения скота при ограниченном импорте племенного материала из-за рубежа. В настоящее время эти типы сформировали современную структуру отечественной репродукции данной породы.
При этом обеспечивается выведение высокоценных племенных быков, которые поддерживают сформированную генетическую структуру породы.
Одной из первейших задач в нашей стране должна стать разработка системы воспроизводства ценного и высопродуктивного племенного материала с помощью трансплантации эмбрионов.
В настоящее время в мировой практике около 80% быков, находящихся на племенных предприятиях и используемые в системе искусственного осеменения, получены путем трансплантации эмбрионов [9].
Современная технология трансплантации эмбрионов позволяет получить от коровы vip (корова с отличными воспроизводительными качествами) за ее жизнь несколько десятков телят. В США от 1 коровы голштинской породы с выдающейся молочной продуктивностью получили 131 теленка. В одном из фермерских хозяйств США за 6 сборов от 5 коров заморозили 201 эмбрион и получили 113 телят [12].
Традиционно в мясном животноводстве используется 2 метода искусственного осеменения - "in vitro" и "in v^". Классический метод искусственного осеменения позволяет получить 1 теленка от коровы в год. Использование техники in vitro дает возможность воспроизводить по 1 теленку от донора в неделю.
Традиционные подходы при проведении эмбриопересадок
При методе in v^ эмбрион формируется и развивается в организме матери. Перед получением эмбриона корову-донора гормонально стимулируют для вызывания суперовуляции. Как правило, за обычный половой цикл у животного созревает одна яйцеклетка. Соответственно, за год, если корова продуктивно оплодотворяется, она приносит одного теленка. Но в яичниках предварительно гормонально простимулированного животного-донора образуется множество фолликулов, после созревания и овуляции которых в полость яйцеводов выходит несколько яйцеклеток, которые после искусственного осеменения донора оплодотворяются и на 4-ый день выходят в полость рогов матки. Оттуда путем аспирации они извлекаются на 7...8 день. Эти эмбрионы пересаживаются реципиентам (в основном телкам) или замораживаются [11].
В среднем за 1 вымывание получают 5.8 пригодных эмбрионов. Из общего количества полученных эмбрионов выход пригодных для трансплантации состав-
ляет 60...80%. Таким образом, от одной коровы в год можно методом in vivo получить 25...40 эмбрионов и в среднем, взависимости от приживляемости, иметь от 10 до 25 телят.
Гормональная стимуляция и извлечение эмбрионов являются довольно сильным стресс-фактором для коровы. Поэтому повторение данной процедуры необходимо проводить не ранее, чем через 2 месяца после предыдущей, т.е. около 4-х раз в год [13].
У постоянных доноров можно получать эмбрионы каждые 2 месяца на протяжении ряда лет. Выход пригодных эмбрионов in vitro составляет 15.30%, или 1,5.3 эмбриона на донора, in vivo - 60.80%, 6.8 пригодных эмбрионов от донора в среднем.
Использование метода in vitro можно применять каждую неделю, а in vivo только 1 раз в 2 месяца. Несмотря на низкий КПД стоимость эмбриона, полученного in vitro, на 30% дешевле, чем in vivo, из-за массовости. При этом яйцеклетку можно взять даже у погибшей коровы [7].
Приживляемость эмбрионов при использовании in vitro на 10.15% ниже и составляет 35.50% против 55-65% и выше in vivo. Технология in vitro позволяет получать эмбрионы заданного пола с помощью использования сексированной спермы, обеспечивающей высокий выход телочек по сравнению с бычками.
Матeриалы и мeтoдика исслeдoваний
Объектом исслeдoваний являлись кoрoвы и телки абердин-ангусс^й пoрoды и пoлучeнныe oт них эмбриoны.
Цель - изучить технологические приемы проведения эмбриопересадок у крупного рогатого скота абердин-ангусской породы.
Задачи исследований:
1. Проанализировать результаты пересадки эмбрионов.
2. Исследовать влияние качества эмбрионов на уровень их приживляемости.
3. Дать анализ результатов стельности телок-реципиентов.
4. Провести сравнение показателей живой массы телят, полученных при разных методах осеменения.
Экспериментально-технологические методы получения эмбрионов.
Используемые живoтныe рeгулярнo пoдвeргались вeтeринарнo-прoфилактичeским и санитарным oбрабoткам, клиникo-гинeкoлoгичeским oбслeдoваниям, пoстoяннo нахoдились пoд вeтeринарнo-зooтeхничeским наблюдением.
Для аспирации и сбoра ooцитoв испoльзoвались сканер, ультразвукoвoй зoнд, oбoрудoванный пункциoннoй иглoй-насадкoй для прoникнoвeния через стенку влагалища и аспирации сoдeржимoгo каждoгo фoлликула в яичнике живoтнoгo. Фoлликулярная жид^сть, шдержащая ooциты, аспирировалась через прeдваритeльнo пoдoгрeтую вакуумную систему.
Опытная группа ^стояла из кoрoв в вoзрастe 2.8 лет, с живoй мас^й 500.600 кг и тeлoк в вoзрастe 16.18 месяцев, с живoй мас^й 350.380 кг.
Сoкральнo-эпидуральную анестезию прoвoдили с применением 4 мл лидoкаина. Инъeкциoнную иглу ввoдили в междуж^вый прoмeжутoк между 1 и 2-м хвoстoвыми пoзвoнками, который обычно заметен при oсмoтрe и лег^ oпрeдeляeтся пальпацией.
Ультазвукoвoй зoнд с пункциoннoй иглoй для аспирации ввoдили в преддверие
влагалища, и под ректальным контролем располагали перед шейкой матки. После этого фолликулы можно визуализировать на экране ультразвукового устройства. Другой рукой в вагину продвигается держатель зонда, и по мере выдвижения иглы вперед она проводится через стенку влагалища и направляется в фолликулы, заполненные фолликулярной жидкостью. Аспирация ооцитов выполнялась при помощи вакуумного насоса.
Подготовка реципиентов: животное фиксировали в станке, наружные гениталии и перениальную область тщательно мыли теплой водой с мылом, дезинфицировали 0,^ раствором этанола, делали эпидуральную анестезию 2% раствором лидокаина (4 мл). В отдельных случаях сильно возбудимым животным вводили миорелаксант в дозе 0,5 мл.
Стерильный инструмент очень мягко и осторожно вводили в канал шейки матки и через нее в один из маточных рогов. При этом положение округлой головной части катетера постоянно контролировалось ректально.
В качестве реципиентов использовали в основном телок абердин-ангусской породы и небольшое количество коров, преимущественно первого и реже второго отелов.
Реципиенты были подобраны со спонтанным астральным циклом, и его синхронность с эструсом у доноров составляла день в день или не более 12 часов. Пересадку эмбрионов проводили на 7...8-й день с обязательным наличием у реципиентов хорошо выраженного активного желтого тела в одном из яичников.
Эмбрионы перед пересадкой оценивали по морфологическим признакам их жизнеспособности под световым инвертированным микроскопом. Пересадку эмбрионов осуществляли нехирургическим способом с использованием катетера модель "Нойштадт" [Германия].
Реципиентами в основном были телки живой массой 330.350 кг, а также коровы преимущественно первого отела. Трансплантацию эмбрионов проводили на 7.8-й день эстрального цикла с обязательным наличием у реципиентов хорошего активного желтого тела в одном из яичников.
Результаты исследований и их обсуждение
Благодаря совершенствованию техники нехирургической пересадки эмбрионов, улучшению конструкции приборов для этих целей результаты эмбриопересадок из года в год улучшаются (см. табл. 2).
Качество эмбрионов оценивали в основном по их морфологии.
Существует множество критериев для оценки:
■ Количество клеток в эмбрионе. В норме оно не должно быть больше или меньше количества, соответствующего дню развития эмбриона.
■ Степень фрагментации (безъядерные фрагменты цитоплазмы, количество и локализация которых могут влиять на дальнейшее развитие эмбриона)
■ Равномерность и синхронность дробления.
После слияния яйцеклетки и сперматозоида образуется зигота (оплодотворенная яйцеклетка), которая в последующем начинает активно делиться. Данный процесс называется ее дроблением, а клетки эмбриона - бластомерами. Они должны быть одинаковой формы и размеров.
При морфологической оценке качества 223 пересаженных эмбриона классифицировались как очень хорошие, хорошие и посредственные.
Реципиентам были пересажены все эмбрионы, которые давали хоть какую-
то надежду на их приживляeмoсть. Это следует учитывать при рассмoтрeнии результатов нехирургичес^й пересадки.
При пересадке свежих эмбриoнoв oбщий прoцeнт стeльнoсти за 4 года был дoстигнут на уровне 53,2% и хлебался пo годам исслeдoваний oт 48% (2015 г.) дo 52,3% (2016 г.), 63,8 (2017 г.) и 51,3% (2018 г.).
Устанoвлeнo, чтo результаты приживляeмoсти эмбриoнoв, а, слeдoватeльнo, и стeльнoсть рeципиeнтoв вo мнoгoм зависит oт качества эмбриoнoв. В таблице 1 представлены результаты пересадки телкам-реципиентам 29 зарoдышeй с мoрфoлoгичeскoй oцeнкoй их как «пличные» и «хoрoшиe».
Таблица 1 - Результаты пересадки эмбриснсв
^д Пeрeсажeнo эмбриoнoв Кoличeствo рeциnиeнтoв Сильных рeципиeнтoв % стeльнoсти
2015 21 21 10 48,0
2016 47 44 23 52,3
2017 36 36 23 63,8
2018 119 119 61 51,3
Всего 223 220 117 53,2
Каждой телке-реципиенту апплицировали по 1 эмбриону в рог матки на стороне желтого тела в яичнике. Анализ данных таблицы 2 показывает, что из 25 пересаженных свежеполученных эмбрионов прижилось 14 (56%). Лучшие результаты были получены по показателю стельности при пересадке культивированных эмбрионов в среде в течение 24 часов - 3 из 4-х (75%). Общий процент стельности от пересадки свежих и культивированных зародышей разного качества составил 58,6%.
Если учесть, что большинство эмбриопересадок сделано непосредственно в условиях фермы, то приведенные показатели стельности реципиентов следует считать вполне удовлетворительными.
Таблица 2 - Влияние качества эмбриснсв на урсвень их приживляемссти
Пoказатeль Эмбриoны
«свeжиe» культиви-рoванныe итого
Пересажено эмбрионов 25 4 29
Число реципиентов 25 4 29
Количество стельных реципиентов 14 3 17
% от числа реципиентов 56,0 75,0 58,6
Получено телят 13 3 16
При нехирургической пересадке также прослеживается зависимость индекса стельности от стадии развития эмбрионов. Наиболее подходящими для пересадки были поздние морулы на стадии развития 7-го дня, ранние, а также поздние бластоцисты на стадии 7.8 дня.
Таблица 3 - Приживляемость эмбрионов
Стадия развития Oцeнка эмбриoнoв (баллов)
эмбриoнoв 5 4 3
Морулы:
Ранние 10 5 1
Поздние 12 18 1
Балстоцисты:
Ранние 10 13 -
Поздние 14 30 -
Как свидетельствуют данные таблицы 3, наивысший процент приживляемости был при пересадке ранних и поздних бластоцист с морфологической оценкой «отлично» и «хорошо» (60,8 и 64,7% соответственно). Несколько ниже была приживляемость поздних морул (54,8%). Стельность от пересадки эмбрионов на стадии ранней морулы составляет только 17,6%.
Результаты эмбриопересадок нехирургическим методом показывают, что место расположения эмбрионов в просвете рога матки оказывает существенное влияние на индекс их приживляемости.
Эмбрионы, которые апплицированы у основания рога матки, дают значительно меньшую стельность (16,6%), чем те, которые были пересажены в верхушку рога матки (55,4%), что, вероятно, связано с адекватным эмбриональным и маточным взаимодействием до и в имплантационный период.
В исследованиях проведено сравнение результатов стельности при искусственном осеменении и приживляемость эмбрионов при нехирургической пересадке (табл. 4). Контрольных животных осеменяли оттаянной спермой дважды: утром и вечером, с интервалом 10.12 часов.
Таблица 4 - Результаты стельности телок
Пoказатeль Искусствeннoe oсeмeнeниe Пeрeсадка эмбриoнoв
Количество животных 22 21
Количество стельных телок 14 12
% стельности 63,3 57,1
Не отмечается различий в уровне стельности между группой осемененных телок и группой животных с пересадкой 8-дневных эмбрионов в верхушку рога матки. Стельность составляет: в 1-ой группе - 63,3 и во 2-ой - 57,1%.
Таблица - 5 Показатели живой массы телят, полученных от разных методов осеменения
Возраст телят Искусственное осеменение Пересадка эмбриона
При рождении 20-25 25-30
В 3 мес. 80-100 95-120
В 6 мес. 150-170 170-200
Возраст телят Искусственное осеменение Пересадка эмбриона
1 В 12 мес. 220-250 250-300
В таблице 5 представлены средние данные живой массы теплят, полученных от групп животных с разным способом осеменения. Установлено, что при подсадке эмбриона средняя живая масса телят, полученных с использованием трансплантации, больше, чем при обычном искусственном осеменении. Это связано с тем, что эмбрион обладает более качественным набором нужных генов для получения последующих наибольших приростов живой массы.
Выводы
1. Эмбрионы, пересаженные от доноров к реципиентам оцениваются как очень хорошего, хорошего и посредственного качества. Количество стельных реципиентов составляет 53,2%.
2. Приживляемсость эмбрионов, пересаженных от доноров к реципиентам напрямую зависит от их качества.
3. Повышенная приживляемость эмбрионов отмечается при их пересадке на стадии ранней и поздней бластоцисты, пониженная на стадии морулы.
4. Живая масса телят, полученных из пересаженных эмбрионов, в основные периоды их роста и развития значительно выше, чем при использовании искусственного осеменения животных.
Заключение. Трансплантация эмбрионов является эффективным средством оптимизации воспроизводства стада. На ферме в условиях племрепродуктора по разведению абердин-ангусской породы 58,6% пересаженных от коровы-донора свежих и культивированных эмбрионов завершились стельностью животных-реципиентов. Полученные таким образом телята имеют высокие показатели роста и развития.
Список литературы:
1. Завертяев, Б.П. Биoтeхнoлoгия в вoспрoизвoдствe и селекции крупнoгo рoгатoгo с^та / Б.П. Завертяев. - Л.: Агрoпрoмиздат, 1999. - 230с.
2. Совершенствование молочного скота Вологодской области / А.Г. Кудрин, Г.В. Хабарова, А.И. Абрамов, А.С. Литонина. - Вологда-Молочное, 2015. - 147 с.
3. Мадисон В.В. Коровы из пробирки: прошлое и будущее / В.В. Мадисон, Л.В. Мадисон //Химия и жизнь - XXI век. - 2008. - №10. - С. 28-35.
4. Мадисон, В. Коровы и прорывы / В. Мадисон, Л. Мадисон // Химия и жизнь. XXI век. - 2018. - №8.
5. Мадисон, В. Селекция отечественного скота: мифы и реальность. Не возите скот живьем, не губите. / В. Мадисон // Животноводство России. - 2009. - №1011.
6. Мадисон, В. Трансплантация эмбрионов: выход на новый уровень / В. Мадисон // Животноводство России. - 2018. - №11. - С. 39-42.
7. Мадисон, В. Трансплантация эмбрионов: хорошо забытое старое / В. Мадисон, Л. Мадисон // Животноводство России. - 2018. - №4-5.
8.Никитина, З. Трансплантация эмбриoнoв - перспективный путь селекции
скота / З. Никитина, А. Никитин, К. Никитин // Молочное и мясное скотоводство. -2006. - №2. - С. 11-13.
9. Подберезный, В.В. Ветеринарное акушерство и биотехника репродукции животных / В.В. Подберезный, Н.И. Полянцев. - Ростов н/Д.: Феникс, 2001. - 480 с.
10. Прокофьев, М.И. Регуляция размножения сельскохозяйственных животных. - Л.: Наука, 1983.
11. Инструкция по технологии работы по искусственному осеменению и трансплантации сельскохозяйственных животных / А.А. Романов, С.В. Советкин, В.Т.Смирнов и др. - М., 2003. - С. 60-91.
12.Чернева, И.Р. Лекции по биотехнологии и пересадке эмбрионов / Московская ветеринарная академия им. Скрябина. - М., 1997.
13. Шипилов, В.С. Ветеринарное акушерство, гинекология и биотехника размножения / В.С. Шипилов, А.П. Студенцова. - 7-е изд.,перераб. и доп. - М.: Колос, 1999. - 495 с.
14. КеппеШ, L.W.. ЕтЬгуо Си1^а^опВ^е^по1оду Magaz^ /L.W. КеппеШ.-tol.1.- №2, 1994.
15. Schaeffer, L.R. Effects of етЬгуо transfer in beef саШе оп депеше evaluation
Methodology / L,R.Schaeffer// ^umal of ammal science. Oct 1989/- V. 67 (10).
16. Sertich, P.L. Transcervical етЬгуо transfer in performance maœs / P.L. Sertich //Journal of theAmerican Veterinary Medical Association. Oct 1, 1989.- V. 195 (7).
17. Shelton, J.N. ЕтЬгуо ma^pu^^ m research and animal products / J.N. Shelton //Australian journal of biological sciences. 1988.- V. 41 (1).
References:
1. Zavertyaev B.P. Biotekhnologiya v vosproizvodstve i selektsii кгирподо rogatogo skota [В^е^по!оду in reproduction and breeding of cattle]. Leningrad, Agropromizdat Publ., 1989. 230p.
2. Kudrin A.G., Khabarova G.V., Abramov A.I., Litonina A.S. Sovershenstvovanie molochnogo skota Vologodskoy оЬ^й [Improvement of dairy cattle of the Vologda region]. Vologda-Molochnoe, 2015.147p.
3. Madison V.V., Madison L.V. ^ws from a test ШЬе: past and future. Khimiya i zhiz^ - XXI vek [^mistry and life-XXI century], 2008, по. 10, pp. 28-35. (1п Russia^
4. Madison V.V., Madison L.V. ^ws and breakthroughs. Khimiya i zhiz^ - XXI vek [Chemistry and life-XXI century], 2018, по. 8. (1п Russian)
5. Madison V. Breeding domestic cattle: myths and reality. Do not carry cattte alive, do not kill .... Zhivotnovodstvo Rossii [Animal Husbandry of Russia], 2009, по. 10-11. (1п Russian)
6. Madison V. Emb^ transplantation: reaching a new level. Zhivotnovodstvo Rossii [Animal Husbandry of Russia], 2018, по. 11, pp. 39-42. (1п Russian)
7. Madison V., Madison L. Emb^ transplantation: the well-forgotten old Zhivotnovodstvo Rossii [Animal Husbandry of Russia], 2018, по. 4-5. (1п Russia^
8. Nikitina Z., Nikitin A., Nikitm K. Embryo transplantation - a promismg way of cattte breeding. Molochnoe i myasnoe skotovodstvo [Dairy and meat cattle breeding], 2006, по. 2, pp. 11-13. (1п Russian)
9. Podbereznyy V.V., Polyantsev N.I. Veterinarnoe akusherstvo i biotekhnika reproduktsii zhivotnykh [Veterinary obstetrics and biotechnics of animal reproduction].
Rostov-na-Donu, Feniks Publ., 2001. 480 p.
10. Prokof'ev M.I Regulyatsiya razmnozheniya sel'skokhozyaystvennykh zhivotnykh [Regulation of farm animal reproduction]. Leningrad, Nauka Publ., 1983.
11. Romanov A.A., Sovetkin S.V., Smirnov V.T. Instruktsiya po tekhnologii raboty po iskusstvennomu osemeneniyu i transplantatsii sel'skokhozyaystvennykh zhivotnykh [Instructions on the technology of artificial insemination and transplantation of farm animals]. Moscow, 2003, pp. 60-91.
12. Cherneva I.R. Lektsii po biotekhnologii i peresadke embrionov [Lectures on biotechnology and embryo transplantation]. Moscow, Moscow Veterinarian Academy named after K.I. Skryabin Publ., 1997.
13. Shipilov V.S., Studentsova A.P. Veterinarnoe akusherstvo, ginekologiya i biotekhnika razmnozheniya [Veterinary obstetrics, gynecology and biotechnics of reproduction]. Moscow, Kolos Publ., 1999. 495 p.
14. Kenneth L.W. Embryo Cultivation Biotechnology Magazine. Vol.1., no. 2, 1994.
15. Schaeffer L.R. Effects of embryo transfer in beef cattle on genetic evaluation
methodology. Journal of animal science. Oct 1989, V. 67 (10).
16. Sertich P.L. Transcervical embryo transfer in performance mares. Journal of theAmerican Veterinary Medical Association. Oct 1, 1989. V. 195 (7).
17. Shelton J.N. Embryo manipulation in research and animal production. Australian journal of biological sciences. 1988, V. 41 (1).
Embryo transfer method in optimization of Aberdeen Angus beef herd reproduction
Kudrin Aleksandr Grigor'evich, Doctor of Science (Biology), Professor
e-mail: kudrin230949 @yandex.ru
Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education the Vereshchagin State Dairy Farming Academy of Vologda
Smirnov Maksim Aleksandrovich, Master's Degree Student
e-mail:M.Smirnov@agrohold.ru
Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education the Vereshchagin State Dairy Farming Academy of Vologda
Abstract: Embryo transfer in beef cattle significantly reduces the time period necessary for developing outstanding lines, families and highly productive herds. The work presents the research results on the practical use of this innovative method in organizing the extended reproduction of Aberdeen-Angus beef breed. The authors summarize the experience and describe the practiced technology of embryo transfer in cattle step by step.
Keywords: cattle, Aberdeen Angus breed, donors, recipients, superovulation, embryo quality, embryo evaluation and storage, embryo transfer, acceptance, calves, live weight.
