Научная статья на тему 'Использование метода полимерной цепной реакции в режиме реального времени для видовой характеристики микробиоты полости рта и оценки эффективности терапии при пародонтите'

Использование метода полимерной цепной реакции в режиме реального времени для видовой характеристики микробиоты полости рта и оценки эффективности терапии при пародонтите Текст научной статьи по специальности «Клиническая медицина»

CC BY
576
106
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
ПАРОДОНТИТ / ПАРОДОНТОПАТОГЕННАЯ МИКРОФЛОРА / ДИАГНОСТИКА / ПЦР В РЕЖИМЕ РЕАЛЬНОГО ВРЕМЕНИ / ЭФФЕКТИВНОСТЬ ЛЕЧЕНИЯ / PERIODONTITIS / PERIODONTOPATHOGENIC MICROFLORA / DIAGNOSTICS / REAL-TIME PCR / EFFECTIVENESS OF TREATMENT

Аннотация научной статьи по клинической медицине, автор научной работы — Тамарова Э. Р., Швец К. Ю., Мавзютов А. Р., Баймиев Ал Х., Буляков Р. Т.

Обследовано 165 больных пародонтитом (группа наблюдения) и 62 пациента без патологии пародонта (группа сравнения). Методом полимерной цепной реакции (ПЦР) в режиме реального времени проведено исследование образцов слюны и содержимого пародонтальных карманов на предмет выявления видоспецифических фрагментов ДНК Porphyromonas gingivalis, Streptococcus oralis, Streptococcus sanguis, Streptococcus sobrinus, Treponema denticola. Анализ обсемененности биотопов полости рта пародонтопатогенными микроорганизмами до и после лечения позволил оценить эффективность лечения пародонтита. Показана эффективность комбинированного лечения (антибиотикотерапия и ультразвуковое воздействие при помощи прибора «Vector»), сопровождающегося регрессией воспалительных реакций в тканях пародонта, снижением общей относительной обсемененности тканей пародонтопатогенными микроорганизмами P.gingivalis, S.oralis, S.sanguis, S.sobrinus, улучшением клинического течения пародонтита.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Похожие темы научных работ по клинической медицине , автор научной работы — Тамарова Э. Р., Швец К. Ю., Мавзютов А. Р., Баймиев Ал Х., Буляков Р. Т.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

USE OF PCR IN REAL TIME FOR SPECIFIC CHARACTERISTICS OF ORAL CAVITY MICROBIOTA AND ESTIMATION OF THERAPY EFFICIENCY IN PERIODONTITIS

We examined 165 patients with periodontitis (monitoring group) and 62 patients without pathology of the periodontium (the comparison group). Using PCR method we carried out examination of saliva samples and the contents of periodontal pockets to identify species-specific DNA fragments Porphyromonas gingivalis, Streptococcus oralis, Streptococcus sanguis, Streptococcus sobrinus, Treponema denticola. Analysis of contamination of oral habitats with periodontal pathogenic microorganisms before and after treatment has allowed to evaluate the effectiveness of periodontitis treatment. The work proves the effectiveness of the combined treatment (use of antibiotic therapy and ultrasound exposure using the device «Vector»), accompanied by a regression of inflammatory reactions in the periodontal tissues, the overall relative reduction in contamination of tissues to periodontopathogenic microorganisms P.gingivalis, S.oralis, S.sanguis, S.sobrinus, improving the clinical course of periodontitis.

Текст научной работы на тему «Использование метода полимерной цепной реакции в режиме реального времени для видовой характеристики микробиоты полости рта и оценки эффективности терапии при пародонтите»

4. Загородная, Е.Б. Патоморфологический, иммуногистохимический и цитологический анализ красного плоского лишая слизистой оболочки полости рта: автореф. дис.... канд. мед. наук. - Новосибирск, 2010.

5. Чуйкин, С.В. Состояние проницаемости гематосаливарного барьера при красном плоском лишае слизистой оболочки рта / С.В. Чуйкин, Г.М. Акмалова, А.Ж. Гильманов, Е.М. Гареев // Проблемы стоматологии. - 2016. - Т.12, №1. - С.11-18.

УДК 616.31-022 © Коллектив авторов, 2016

Э.Р. Тамарова, К.Ю. Швец, А.Р. Мавзютов, Ал.Х. Баймиев, Р.Т. Буляков ИСПОЛЬЗОВАНИЕ МЕТОДА ПОЛИМЕРНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ В РЕЖИМЕ РЕАЛЬНОГО ВРЕМЕНИ ДЛЯ ВИДОВОЙ ХАРАКТЕРИСТИКИ

МИКРОБИОТЫ ПОЛОСТИ РТА И ОЦЕНКИ ЭФФЕКТИВНОСТИ ТЕРАПИИ

ПРИ ПАРОДОНТИТЕ ГБОУ ВПО «Башкирский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Уфа

Обследовано 165 больных пародонтитом (группа наблюдения) и 62 пациента без патологии пародонта (группа сравнения). Методом полимерной цепной реакции (ПЦР) в режиме реального времени проведено исследование образцов слюны и содержимого пародонтальных карманов на предмет выявления видоспецифических фрагментов ДНК Porphyromonas gingivalis, Streptococcus oralis, Streptococcus sanguis, Streptococcus sobrinus, Treponema denticola. Анализ обсемененности биотопов полости рта пародонтопатогенными микроорганизмами до и после лечения позволил оценить эффективность лечения пародонтита. Показана эффективность комбинированного лечения (антибиотикотерапия и ультразвуковое воздействие при помощи прибора «Vector»), сопровождающегося регрессией воспалительных реакций в тканях пародонта, снижением общей относительной обсемененности тканей пародонтопатогенными микроорганизмами P.gingivalis, S.oralis, S.sanguis, S.sobrinus, улучшением клинического течения пародонтита.

Ключевые слова: пародонтит, пародонтопатогенная микрофлора, диагностика, ПЦР в режиме реального времени, эффективность лечения.

E.R. Tamarova, K.Yu. Shvets, A.R. Mavzyutov, Al.Kh. Baimiev, R.T. Bulyakov USE OF PCR IN REAL TIME FOR SPECIFIC CHARACTERISTICS OF ORAL CAVITY MICROBIOTA AND ESTIMATION OF THERAPY EFFICIENCY IN PERIODONTITIS

We examined 165 patients with periodontitis (monitoring group) and 62 patients without pathology of the periodontium (the comparison group). Using PCR method we carried out examination of saliva samples and the contents of periodontal pockets to identify species-specific DNA fragments Porphyromonas gingivalis, Streptococcus oralis, Streptococcus sanguis, Streptococcus so-brinus, Treponema denticola. Analysis of contamination of oral habitats with periodontal pathogenic microorganisms before and after treatment has allowed to evaluate the effectiveness of periodontitis treatment. The work proves the effectiveness of the combined treatment (use of antibiotic therapy and ultrasound exposure using the device «Vector»), accompanied by a regression of inflammatory reactions in the periodontal tissues, the overall relative reduction in contamination of tissues to periodontopathogenic microorganisms P.gingivalis, S.oralis, S.sanguis, S.sobrinus, improving the clinical course of periodontitis.

Key words: periodontitis, periodontopathogenic microflora, diagnostics, real-time PCR, effectiveness of treatment.

Одной из достаточно сложных по видовому составу экосистем организма человека является полость рта, в которой широко представлены как условно-патогенные, так и патогенные микроорганизмы [9,13]. Жизнедеятельность представителей микробиоты в па-родонтальном кармане нередко способствует разрушению зубодесневого аппарата, вплоть до резорбции альвеолярной кости, способствует сенсибилизации макроорганизма, изменяя иммунореактивность, и часто ассоциируется с соматической патологией [1,7,11]. Согласно современным представлениям резидентная флора полости рта преимущественно представлена факультативными и облигатно-анаэробными Streptococcus salivarius, Streptococcus oralis, Streptococcus mutans, Streptococcus mitis, Streptococcus sanguis и пептостреп-тококками. Высока частота встречаемости вейлонелл и дифтероидов [4,12,15]. При этом

показана высокая информативность в качестве вспомогательного биомаркера инфекци-онно-воспалительных заболеваний пародонта еще одного вида - Streptococcus sobrinus, относительное количество которого изменяется на разных стадиях течения заболевания [8]. Помимо условно-патогенных микроорганизмов в местах наибольшей деструкции пародонта также чаще остальных встречаются Porphyromonas gingivalis и Treponema denticola, выявляемые преимущественно при хронизации воспалительного процесса [14]. Последние, однако, обнаруживаются и у здоровых людей в интактном пародонте.

Основную часть микроорганизмов, инициирующих инфекционно-воспалительные заболевания пародонта, составляют анаэробы и, соответственно, их культивирование и идентификация довольно сложная задача. В связи с этим в последние годы все более перспектив-

ными становятся разработки, связанные с конструированием диагностических систем, основанных на методах амплификации нуклеиновых кислот, в частности методе полимеразной цепной реакции (ПЦР). ПЦР не предполагает выделения чистой культуры и отличается высокими чувствительностью и специфичностью [2, 3]. Вместе с тем наиболее широко используемые в настоящее время качественные варианты этого метода, предполагающие электро-форетическую детекцию продуктов амплификации, отличает трудоемкость, относительно невысокая воспроизводимость и риски контаминации. Указанное существенно ограничивает диагностические возможности ПЦР, в частности, на этапе контроля эффективности лечения. В этой связи высок интерес к ПЦР в режиме реального времени, которую наряду с высокими специфичностью и чувствительностью отличает высокая производительность, скорость получения результатов и отсутствие рисков контаминации на лабораторном этапе, что является преимуществом при оценке эффективности метода лечения [5,6,10]. Метод ПЦР в режиме реального времени позволяет автоматизировать трудоемкие процессы амплификации, детекции и анализа флуоресцентных данных.

Цель исследования - оценка информативности и диагностических возможностей ПЦР в режиме реального времени при паро-донтите.

Материал и методы

В исследование были включены 165 пациентов (59 мужчин и 106 женщин) в возрасте от 29 до 74 лет (51,6±9,82 года), которые составили группу наблюдения. Из них 91 (55,2%) пациент обратился за помощью впервые, 74 (44,8%) человека ранее лечились и посещали стоматологический кабинет не менее 1 раза в год. Анамнестически продолжительность заболевания составляла от нескольких месяцев до 15 (7,5±4,41 года) лет. По степени тяжести у 129 (78,2%) пациентов диагностирован пародонтит средней степени тяжести (I группа), у 36 (21,8%) пациентов -пародонтит тяжелой степени (II группа).

Пациентам был проведен стандартный стоматологический осмотр с определением формы и степени поражения, обусловленного воспалением и деструкцией тканей пародонта, экссудацией из пародонтального кармана, кровоточивостью десен при чистке зубов. Для объективной оценки клинического состояния пародонта учитывались гигиенические индексы: индекс Грина-Вермиллиона (OHI-S, Green-Vermillion, 1964), индекс РМА (Schour

J., Massler M., 1948; Massler M., 1967), индекс CPITN (ВООЗ, 1989).

Лечение начинали после инструктажа по уходу за зубами, подбору индивидуальных средств гигиены полости рта, а также после мотивирования и информирования о предстоящем лечении. Убедившись в правильности всех манипуляций, приступали к лечению. Лечение проводилось по трем схемам: 1) ежедневное однократное введение инъекционного раствора антибиотика и анестетика (1 мл 30% раствора линкомицина гидрохлорида в смеси с 0,2 мл 2% раствора лидокаина гидрохлорида, ex tempore); 2) однократное терапевтическое воздействие ультразвуком при помощи прибора «Vector» («Durr Dental», Германия) на поверхность зубодесневых карманов и корня; 3) комплексная терапия, включающая ультразвуковое воздействие при помощи прибора «Vector» и антибиотикотерапию. Лечение проводилось в течение 10 дней (табл. 1).

Таблица 1

Распределение пациентов в зависимости

от диагноза и тактики лечения_

I группа - с ХГП II группа - с ХГП

Тактика лечения средней степени тяжелой степени

тяжести, n=129 тяжести, n=36

Системная антибиоти-

котерапия 43 11

Использование прибо-

ра «Vector» 36 9

Применение комбини-

рованного лечения «Vector» + антибиоти-

котерапия 50 16

Группу сравнения составили 62 практически здоровых пациента - 24 мужчины и 38 женщин, средний возраст 45,3±7,62 года, без сопутствующей патологии, после профилактической санации полости рта.

Материалом для молекулярно-генети-ческого исследования служили содержимое пародонтального кармана зубов и ротовая жидкость. Содержимое пародонтального кармана отбирали стерильным бумажным эндо-донтическим штифтом (размер №25), который вводили пинцетом в пародонтальный карман в наиболее глубокие участки на 10 секунд и затем помещали в стерильную пластиковую пробирку типа Eppendorf (1,5 мл), содержащую 1 мл физиологического раствора. Забор проводили в двух повторностях для каждого пациента. Хранили и транспортировали образцы при +4°С в течение 2 часов. Транспортировку партий проб в лабораторию осуществляли в термоконтейнерах с хладагентом.

Для выделения тотальной ДНК из клинических образцов использовали ионообменную смолу Chelex100. Для постановки ПЦР в

режиме реального времени использовали подобранные нами пары видоспецифичных праймеров к фрагментам ДНК Porphyromonas gingivalis, Streptococcus oralis, Streptococcus sanguis, Streptococcus sobrinus, Treponema denticola и реакционную смесь в присутствии SYBR Green I (ООО «СИНТОЛ» согласно инструкции производителя). ПЦР проводили с помощью детектирующего амплификатора CFX96 Touch «REAL TIME» (Bio-Rad, США). Учет результатов проводили с помощью программного обеспечения Bio-Rad CFX Manager.

Молекулярно-генетическое исследование у пациентов проводилось дважды - до и через 10 дней лечения по описанной схеме.

Статистический анализ полученных результатов проводили с использованием программного пакета Statistica 6.0. Рассчитывали процентное содержание и критерий хи-квадрат (%2) с поправкой Йетса. Значения считались достоверными при p<0,001.

Результаты и обсуждение

Молекулярно-генетическое исследование содержимого пародонтальных карманов выявило все виды основных пародонтопато-генных бактерий: P. gingivalis, S. oralis, S. sanguis, S. sobrinus, T. denticola - и у больных пародонтитом, и в группе сравнения (табл. 2).

В группе наблюдения чаще обнаруживались S.sobrinus (67,9%), S. oralis (64,8%) и P.gingivalis (50,7%). В сравнении со здоровыми частота встречаемости указанных бактерий в содержимом пародонтальных карманов у больных была достоверно выше: S. sobrinus (на 29,0%, х2 = 20,05, р = 0,001), S. oralis (на 17,0%, х2 = 7,01, р = 0,001), P.gingivalis (на 25,9%, х2 = 16,08, р = 0,001).

При молекулярно-генетическом исследовании образцов слюны (табл. 3) у больных

пародонтитом наиболее часто обнаруживались S. sanguis (63,03%), S. oralis (58,8%) и S. sobrinus (58,2%). Однако достоверно чаще (на 30,4%, х2 = 21,59, р = 0,001) в слюне пациентов с пародонтитом встречались только S. sobrinus.

Сравнительный анализ данных, полученных при исследовании содержимого паро-донтальных карманов и слюны в группе больных показал, что в содержимом пародонталь-ного кармана частота выявления большинства исследованных микроорганизмов несколько превышала таковые в слюне, однако эти различия были недостоверны. В группе сравнения (практически здоровые) данные, полученные при исследовании содержимого паро-донтальных карманов и слюны, также достоверно не отличались между собой.

У больных, проходивших курс антибио-тикотерапии, молекулярно-генетическое исследование выявило снижение частоты встречаемости пародонтопатогеных микроорганизмов, а также изменение видового состава микробиоты. Отмечено статистически значимое снижение частоты встречаемсоти P.gingivalis в пародонтальном кармане (29,6%, X2 = 9,82, р = 0,001) и в слюне (27,3%, х2 = 6,96, р = 0,001), S. oralis - только в пародон-тальном кармане (20,6%, х2 = 9,07, р = 0,001) (табл. 4).

Исследование методом ПЦР клинического материала в группе больных, пролеченных ультразвуком при использовании прибора «Vector» («Durr Dental», Германия), показало снижение частоты обнаружения P.gingivalis в пародонтальном кармане (27,3%, х2 = 8,16, р = 0,001), S. oralis в слюне (26,9%, х2 = 9,36, р = 0,001). S.sanguis - и в пародонтальном кармане (23,8%, х2 = 7,69, р = 0,001), и в слюне (17,9%, х2 = 9,48, р = 0,001) (табл. 5).

Таблица 2

Частота выявления патогенных и условно-патогенных бактерий в содержимом пародонтального кармана методом ПЦР в режиме реального времени

Виды бактерий Группа наблюдения (n = 165) Группа сравнения (n = 62)

абс. % абс. %

Porphyromonas gingivalis 83 50,3 а 22 24,4

Streptococcus oralis 107 64,8 а 25 27,8

Streptococcus sanguis 79 11,5 64 71,1

Streptococcus sobrinus 112 67,9 а 35 38,9

Treponema denticola 44 26,7 21 23,3

а Различие со значениями в группе сравнения достоверно (р < 0,001).

Таблица 3

Частота выявления пародонтопатогенных бактерий в слюне методом ПЦР в режиме реального времени_

Виды бактерий Группа наблюдения (n = 165) Группа сравнения (n = 62 )

абс. % абс. %

Porphyromonas gingivalis 68 41,2 57 63,3

Streptococcus oralis 97 58,8 75 83,3

Streptococcus sanguis 104 63,03 78 86,7

Streptococcus sobrinus 96 58,2 а 25 27,8

Treponema denticola 36 21,8 19 21,1

а Различие со значениями в группе сравнения достоверно (р < 0,001).

Таблица 4

Частота выделения патогенных и условно-патогенных бактерий у больных хроническим пародонтитом после системной антибиотикотерапии (%), n=54_

Бактерии Содержимое па родонтального кармана Слюна

исходно через 10 дней исходно через 10 дней

Porphyromonas gingivalis 27 29,6 а 22 27,3 а

Streptococcus oralis 34 20,6 а 31 80,6

Streptococcus sanguis 26 80,8 33 78,8

Streptococcus sobrinus 36 77,8 31 64,5

Treponema denticola 14 78,6 12 58,3

1 Различие со значениями в группе сравнения достоверно (р < 0,001).

Таблица 5

Частота выделения патогенных и условно-патогенных бактерий у больных хроническим пародонтитом после лечения с применением прибора «Vector» (%), n=45

Бактерии Содержимое па родонтального кармана Слюна

исходно через 10 дней исходно через 10 дней

Porphyromonas gingivalis 22 27,3 а 19 63,2

Streptococcus oralis 29 41,4 26 26,9 а

Streptococcus sanguis 21 23,8 а 28 17,9 а

Streptococcus sobrinus 30 50,0 26 73,1

Treponema denticola 12 66,7 10 89,6

! Различие со значениями в группе сравнения достоверно (р < 0,001).

В группе больных, получавших комбинированное лечение (воздействие ультразвуком при помощи прибора «Vector» и антибио-тикотерапия), наблюдалось уменьшение относительного количества P.gingivalis и в паро-донтальном кармане (30,3%, %2 = 10,89, р = 0,001), и в слюне (33,3%, х2 = 13,63, р = 0,001),

S. oralis - и в пародонтальном кармане (31,2%, х2 = 21,63, р = 0,001), и в слюне (30,8%, х2 = 11,37, р = 0,001), S.sanguis - только в слюне (38,1%, х2 = 11,38, р = 0,001),

S.sobrinus -

и в пародонтальном кармане

(31,1%, х2 = 13,08, р = 0,001), и в слюне (21,1%, х2 = 14,04, р = 0,001) (табл. 6).

Таблица 6

Частота выделения патогенных и условно-патогенных бактерий у больных хроническим пародонтитом после применения комбинированного лечения «Vector» + антибиотикотерапия (%), n = 66

Бактерии Содержимое пародонтального кармана Слюна

исходно через 10 дней исходно через 10 дней

Porphyromonas gingivalis 33 30,3 а 27 33,3 а

Streptococcus oralis 43 31,2 а 39 30,8 а

Streptococcus sanguis 32 28,1 42 38,1 а

Streptococcus sobrinus 45 31,1 а 38 21,1 а

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Treponema denticola 18 66,7 14 64,3

а Различие со значениями в группе сравнения достоверно (р < 0,001).

Полученные нами клинико-лабораторные данные свидетельствуют о большей эффективности применения комплексного лечения ввиду уменьшения пародонтопатогенных микроорганизмов в содержимом пародонтального кармана и слюне, снижения интенсивности воспалительного процесса и болевого синдрома, связанного с пережевыванием пищи, а также кровоточивости десен и выделения гнойных масс. К тому же по результатам комплексного лечения было показано сокращение сроков реабилитации пациентов и снижение рисков травмати-зации. Использование метода ПЦР в режиме реального времени позволяет сравнительно оценивать эффективность применяемых методов терапии, обеспечивает индивидуальный подход при выборе тактики лечения, а также позволяет оценивать эффективность непосредственно в ходе терапии.

Выводы

1. ПЦР в режиме реального времени при диагностике инфекционно-воспалительных заболеваний пародонта, ассоциированных с условно-патогенной микрофлорой полости рта, может использоваться для оценки эффективности терапии.

2. Комбинированное лечение паро-донтита, включающее антибиотикотерапию и ультразвуковое воздействие, эффективно снижает остроту воспалительного процесса в тканях пародонта и частоту встречаемости в тканях пародонта P.gingivalis, S. oralis, S.sanguis, S.sobrinus.

Работа выполнена при финансовой поддержке Фонда содействия развитию малых форм предприятий в научно-технической сфере по программе «УМНИК» на 2015-2016 гг.

Сведения об авторах статьи: Тамарова Эльмира Рифовна - аспирант кафедры фундаментальной и прикладной микробиологии ГБОУ ВПО БГМУ Минздрава России. Адрес: 450000, г. Уфа, ул. Ленина, 3. E-mail: [email protected].

Швец Ксения Юрьевна - студентка 4 курса медико-профилактического факультета с отделением микробиологии ГБОУ ВПО БГМУ Минздрава России. Адрес: 450000, г. Уфа, ул. Ленина, 3. E-mail: [email protected].

Мавзютов Айрат Радикович - д.м.н., профессор, зав. кафедрой фундаментальной и прикладной микробиологии ГБОУ ВПО БГМУ Минздрава. Адрес: 450000, г. Уфа, ул. Ленина, 3. E-mail: [email protected].

Баймиев Алексей Ханифович - д.б.н, профессор кафедры фундаментальной и прикладной микробиологии ГБОУ ВПО БГМУ Минздрава России, зав. лабораторией ФБУН Институт биохимии и генетики УНЦ РАН. Адрес: 450054, г. Уфа, Проспект Октября, 71. E-mail: [email protected].

Буляков Раис Тимергалеевич| - д.м.н., зав. кафедрой стоматологии общей практики ИПО ГБОУ ВПО БГМУ Минздрава России, главный врач ГБОУ РСП. Адрес: 450097, г. Уфа, ул. Заводская, 15.

ЛИТЕРАТУРА

1. Агаева, Н.А. микробиологическая и иммунологическая характеристика пародонтитов и гингивитов с актиномикотической этиологией / Н.А. Агаева // Фундаментальные исследования. - 2010. - № 3. - С. 7-12.

2. Зорина, О.А. Количественная оценка соотношения патогенных представителей микробиоценоза полости рта в норме и при пародонтите / О.А. Зорина, А.А. Кулаков, Д.В. Ребриков // Стоматология. - 2011. - N° 3. - С. 40-42.

3. Зырянова, Н.В. Видовой состав анаэробной микрофлоры пародонтального кармана в зависимости от стадии пародонтита / Н.В. Зырянова, А.С. Григорьян, А.И. Грудянов // Стоматология. - 2009. - № 4. - С. 43-47.

4. Иванюшко, Т.П. Исследование условно-патогенных микроорганизмов методом ПЦР в реальном времени у больных пародон-титом / Т.П. Иванюшко, Л.В. Тумбинская, А.Е. Донников // Стоматология. - 2011. - № 5. - С. 22-26.

5. Патрушев, Л.И. Искусственные генетические системы. - М.: Наука, 2004. - 530 с.

6. Ребриков, Д.В. ПЦР в реальном времени. 3-е изд. - М.: БИНОМ. Лаборатория знаний, 2011. - 223 с.

7. Тамарова, Э.Р. Клинико-лабораторные параллели между видовым составом микробиоты полости рта и общесоматической патологией у больных пародонтитом / Э.Р. Тамарова, А.Р. Мавзютов // Пермский медицинский журнал. - 2014. - Т. 31, № 6. - С. 68-73.

8. Тамарова, Э.Р. Молекулярно-генетическая характеристика видового состава микробиоты слюны и десневых карманов при пародонтите/ Клиническая лабораторная диагностика. - 2015. - Т. 60, № 12. - С. 56-59.

9. Царев, В.Н. Микробиология, вирусология и иммунология полости рта / В.Н. Царев. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2013. - 576 с.

10. Щелкунов, С. Н. Генетическая инженерия. - Новосибирск: Изд-во Сиб. унив., 2008. - 496 с.

11. Periodontal disease immunology: 'double indemnity' in protecting the host / J.L. Ebersole [et al.] // Periodontal. - 2013. - Vol. 62, № 1. -P. 163-202.

12. Haffajee A.D. Microbial etiological agents of destructive periodontal diseases / A.D. Haffajee, S.S. Socransky // Periodontol. - 2000. -Vol. 5. - P. 78-111.

13. Identification of candidate periodontal pathogens and beneficial species by quantitative 16S donal аnalysis / P.S. Kumar [et al.] // J Clin Microbiol. -2005. - Vol. 43, № 8. - P. 3944-3955.

14. Taba M., Kinney J., Kim A.S. et al. Diagnostic Biomarkers for Oral and Periodontal Diseases. Dent Clin North Am. - 2005. - Vol. 49, № 3. - Р. 551-571.

15. Rasmussen L., Hanstrom L., Lerner U.H. Characterization of bone resorbing activity in gingival crevicular fluid from patients with periodontitis. J Clin Periodontol. - 2000. - Vol. 27, № 1. - P. 41-52.

УДК 616.314.2 © Коллектив авторов, 2016

И.Р. Шафеев1,2, А.И. Булгакова1, ИВ. Валеев1, ГШ. Зубаирова2 ИССЛЕДОВАНИЯ МЕСТНОГО ИММУНИТЕТА ПОЛОСТИ РТА У ПАЦИЕНТОВ С НЕСЪЕМНЫМИ ЭСТЕТИЧЕСКИМИ ОРТОПЕДИЧЕСКИМИ КОНСТРУКЦИЯМИ И ВОСПАЛИТЕЛЬНЫМИ ЗАБОЛЕВАНИЯМИ ПАРОДОНТА

1ГБОУ ВПО «Башкирский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Уфа 2ГБУЗ РБ «Стоматологическая поликлиника №4», г. Уфа

Изучено состояние местного иммунитета полости рта у пациентов с несъемными эстетическими ортопедическими конструкциями и воспалительными заболеваниями пародонта. В исследовании участвовали 90 пациентов с несъемными эстетическими ортопедическими конструкциями и воспалительными заболеваниями пародонта (основная группа) и 21 пациент без ортопедических конструкций и заболеваний пародонта (контрольная группа). Методом иммуноферментного анализа в ротовой жидкости определено содержание IgA, sIgA, IgG, IgM, IgE, интерлейкинов ИЛ-4, ИЛ-6, ИЛ-1Р, ИФ-а. В результате наших исследований в ротовой жидкости у пациентов основной и контрольной групп выявлены увеличение концентрации IgA и тенденция к повышению sIgA. Определялось увеличение IgE, маркера аллергизации, у пациентов основной группы. При исследовании содержания интерлейкинов в ротовой жидкости у пациентов основной группы определены статистически значимое снижение концентрации ИЛ-4 и увеличение содержания ИЛ-6, ИЛ-1р. Таким образом, нами установлен дисбаланс гуморального иммунитета в полости рта у пациентов с несъемными эстетическими ортопедическими конструкциями и воспалительными заболеваниями пародонта.

Ключееые слова: воспалительные заболевания пародонта, дефекты зубных рядов, гуморальные факторы иммунитета полости рта, несъемные эстетические ортопедические конструкции.

I.R. Shafeev, A.I. Bulgakova, I.V. Valeev, G.Sh. Zubairova STUDY OF LOCAL IMMUNITY OF THE ORAL CAVITY OF PATIENTS WITH FIXED PROSTHETIC AESTHETIC DESIGNS AND INFLAMMATORY PERIODONTAL DISEASES

The work studied the local immunity of the oral cavity of patients with fixed prosthetic aesthetic designs and inflammatory periodontal diseases. The study included 90 patients with fixed prosthetic aesthetic designs and inflammatory periodontal diseases and 21 people (control group) with no orthopedic constructions and periodontal diseases. Oral immunoglobulins IgA, sIgA, IgG, IgM, IgE, interleukins IL-4, IL-6, IL-1 p, IF-а levels were identified by the method of enzyme immunoassay analysis. As a result of our

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.