CC BY
118
УДК 577.151.42
Ингибирование ДНК-гиразы левофлоксацином и другими производными фторгетероциклов
В. Л. Туницкая1*, А. Р. Хомутов1, С. Н. Кочетков1, С. К. Котовская2,3, В. Н. Чарушин2,3 'Учреждение Российской академии наук Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН, 119991, Москва, ул. Вавилова, 32 2Учреждение Российской академии наук Институт органического синтеза им. И.Я. Постовского УрО РАН, 620041, Екатеринбург, ул. С. Ковалевской/Академическая, 22/20
3Уральский федеральный университет имени первого Президента России Б.Н. Ельцина,
620002, Екатеринбург, ул. Мира, 19
*E-mail: [email protected]
Поступила в редакцию 28.09.2011 г.
РЕФЕРАТ Соединения фторхинолонового ряда составляют основу важнейшего класса современных антибактериальных препаратов, обладающих высокой активностью и широким спектром действия. Наиболее перспективным фторхинолоновым препаратом является левофлоксацин - оптически активная форма офлоксацина, антибактериальная активность которого существенно превышает активность других представителей этого семейства. Ранее нами был разработан оригинальный метод получения левофлоксацина, в настоящее время осуществляется выпуск опытных партий препарата. Мишенью действия фторхиноло-нов является бактериальная ДНК-гираза, и исследование их взаимодействия с последней весьма важно как с теоретической, так и с практической точки зрения. В частности, параметры ингибирования ДНК-гиразы могут служить критерием качества препарата. В статье приводятся результаты исследований взаимодействия ДНК-гиразы с рядом производных фторхинолонов и их аналогов, образцов интермедиа-тов и полупродуктов синтеза левофлоксацина, а также образцов опытных партий препарата, полученных в ИОС УрО РАН. Выявлена важность двух структурных элементов в молекуле для проявления ингибирую-щей активности. Полученные данные следует принимать во внимание при дизайне новых лекарственных препаратов на основе фторсодержащих гетероциклов.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА фторхинолоны, левофлоксацин, производные, бактериальная ДНК-гираза, ферментативная активность, ингибирование.
ВВЕДЕНИЕ
Соединения фторхинолонового ряда составляют основу важнейшего класса современных антибактериальных препаратов, обладающих высокой активностью, широким спектром действия. Они представляют основную конкуренцию цефалоспоринам и другим антибиотикам, широко используемым в клинической практике при инфекционных заболеваниях [1 — 11]. Первые представители фторхиноло-нов (пефлоксацин, ципрофлоксацин, норфлоксацин, офлоксацин) появились на мировом фармацевтическом рынке в начале 90-х годов прошлого века [1 — 6]. Сегодня, когда объем продаж ципрофлоксацина достигает 10 млрд долларов США и разработаны новые перспективные препараты этой группы, такие, как левофлоксацин [12] (один из энантиомеров офлоксацина) и моксифлоксацин, без фторхинолонов
просто немыслимо представить современный арсенал антибактериальных средств.
Фторхинолоны эффективны при широком круге заболеваний: при тяжелых гнойно-септических процессах, инфекциях дыхательных путей, моче-выводящей системы, кожи и мягких тканей, костей и суставов, печени и желчевыводящих путей, желудочно-кишечного тракта, глаз, центральной нервной системы, а также при инфекциях, передающихся половым путем [1—4]. Фторхинолоны обладают высокой антибактериальной активностью и широким спектром действия благодаря их способности влиять на процессы размножения бактерий путем ингибирования бактериальной топоизомеразы II (ДНК-гиразы) - фермента, отвечающего за разрыв и восстановление двойной спирали ДНК. Крайне важно, что механизм действия фторхинолонов отличен
от механизмов действия других групп антибактериальных препаратов - антибиотиков пенициллинового ряда, а также цефалоспоринов и аминогликозидов, что позволяет эффективно использовать их при инфекционных заболеваниях, вызванных антибиоти-коустойчивыми штаммами [1-4].
О
(Ч -М^ А. хоон
Левофлоксацин
Один из самых эффективных препаратов в ряду трициклических фторхинолонов - левофлоксацин -оптически активная форма (б'-изомер) офлоксацина. Антибактериальная активность левофлоксацина в 2 раза выше, чем рацемического офлоксацина, и в 128 раз превышает активность (К)-антипода [13]. Левофлоксацин по праву считают препаратом 21 века, поскольку, будучи энантиомерно чистым аналогом офлоксацина, он в низких концентрациях воздействует на клинически значимые грамположитель-ные и атипичные микроорганизмы при сохранении высокой активности в отношении многих грамотри-цательных бактерий [12].
В Институте органического синтеза им. И.Я. Постовского УрО РАН и в Уральском федеральном университете имени первого Президента России Б.Н. Ельцина разработаны оригинальные методы получения целого семейства фторхинолонов и предшественников их синтеза, в том числе энантиомер-но чистых полупродуктов синтеза левофлоксацина, путем кинетического разделения оптических антиподов в реакциях с хиральными реагентами [5, 7, 11]. Научный приоритет исследований, направленных на синтез оптически активного левофлоксацина и его аналогов подтверждается серией публикаций [14-20]. Так, в частности, разработан оригинальный и эффективный метод синтеза (£)-7,8-дифтор-2,3-дигидро-3-метил-4Н-[1,4]бензоксазина, ключевого полупродукта в синтезе левофлоксацина [14, 15].
В настоящее время в Институте органического синтеза им. И.Я. Постовского УрО РАН продолжается синтез новых производных фторхинолонов и их аналогов с целью выявления новых препаратов, перспективных для антибактериальной терапии. Важный элемент этой работы представляет оценка способности новых препаратов ингибировать ДНК-гиразу, поскольку контроль качества при серийном производстве левофлоксацина предполагает определение
параметров ингибирования ДНК-гиразы, что может служить одним из критериев чистоты препарата. Настоящее сообщение посвящено изучению взаимодействия ДНК-гиразы с новыми производными фтор-хинолонов и других фторсодержащих гетероциклов, а также с серийными образцами левофлоксацина.
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
Материалы
В качестве источника ДНК-гиразы использовали плазмиды GyrA-pET19 и GyrB-pET19m, содержащие гены субъединиц А и В ДНК-гиразы соответственно, любезно предоставленные К.В. Севериновым и И.С. Шкундиной (Институт молекулярной генетики РАН). Субстраты для гиразной реакции - релаксиро-ванные формы плазмид рВИ322 или pHOT - получены от фирмы «Topogen» (США).
Выделение и очистка ДНК-гиразы
В качестве штамма-хозяина использовали клетки Escherichia coli Rosetta(DE3) {F- ompT hsdSB (rb-mB-) gal dcm lacYl (DE3) pRARE6 (CmR)} («Novagen», США). Субъединицы ДНК-гиразы, кодируемые плазмидами, содержали шесть остатков гистидина на N-конце, что позволило выделять их с помощью аффинной хроматографии на колонке с Ni-NTA-агарозой.
Клетки, трансформированные плазмидами, выращивали как ночную культуру в 5 мл среды LB, содержащей 150 мг/л ампициллина (A150) и 15 мг/л хлорамфеникола (С15) при 37оС. Ночную культуру центрифугировали, осадок ресуспендиро-вали в 250 мл свежей среды, содержавшей A150 и С15. Клетки выращивали при 37оС до оптической плотности (OD550), равной 0.5, затем добавляли изопропилтио^^-галактозид (ИПТГ) до конечной концентрации 1 мМ. Далее клетки растили в течение 18 ч при 17оС, затем собирали центрифугированием при 4000 об/мин в течение 20 мин, промывали буфером ГТЕ (25 мМ Трис-HCl, pH 7.6, 50 мМ глюкоза, 10 мМ ЭДТА) и замораживали на ночь при -85оС. Клетки суспендировали в 15 мл буфера А (20 мМ Трис-HCl, pH 8.0, 500 мМ NaCl, 10% (v/v) глицерин, 1% (v/v) Тритон X-100, 1 мМ 2-меркаптоэтанол) с добавлением ингибиторов протеаз - 1 мМ фенилметил-сульфонилфторида (PMSF) и 10 мкг/мл апротинина. Суспензию клеток лизировали ультразвуком на льду и центрифугировали в течение 15 мин при 10000 g. Надосадочную жидкость наносили на колонку с Ni-NTA-агарозой (2 мл), уравновешенную буфером А. Колонку последовательно промывали буфером А, содержащим 10, 30 и 50 мМ имидазола (по 5 мл каждого), целевые белки элюировали тем же буфером,
ТОМ 3 № 4 (11) 2011 | ACTA NATURAE | 99
содержащим 200 мМ имидазола. Фракции, содержащие гиразу А и гиразу В, диализовали против буфера А без Тритона, затем против того же буфера, содержащего 50% глицерина. Выход и чистоту ферментов анализировали в 12% полиакриламидном геле по Лэммли. Выход гиразы А составил 40 мг/л клеточной культуры, гиразы В - около 60 мг/л. Смешивали эквивалентные количества полученных препаратов ДНК-гираз А и В, фасовали порциями по 30-50 мкл, и аликвоты хранили при -80оС в течение нескольких недель без видимой потери активности. (При -18оС активность фермента сохранялась в течение 2-3 сут).
Определение активности ДНК-гиразы
Реакцию проводили в течение 60 мин при 25оС. Реакционная смесь (30 мкл) содержала следующие компоненты: 35 мМ Трис-НС1 (рН 7.5), 24 мМ КС1, 4 мМ MgCl2, 1.4 мМ АТР, 5 мМ ДТТ, 1.8 мМ спермидина, 0.1 мг/мл бычьего сывороточного альбумина. К смеси добавляли по 0.4 мкг смеси субъединиц А и В гира-зы и 0.25-0.5 мкг субстрата (релаксированной плаз-миды рВИ322). Реакцию проводили в термостате при 25оС в течение 60 мин (для множественных образцов использовали 96-луночные планшеты). После окончания реакции экстрагировали пробы равным объемом хлороформа (30 мкл), к водной фазе добавляли 7 мкл смеси 50% додецилсульфата натрия, 25% глицерина и 0.25% бромфенолового синего. Смесь наносили на 1.2% агарозный гель в буфере ТАЕ (40 мМ Трис-ацетат, рН 8.0, 2 мМ ЭДТА) и проводили электрофорез (50 В, 2 ч). Продукты визуализировали в УФ-свете. Активность фермента (%) определяли по интенсивности полосы, соответствующей супер-спирализованной форме плазмиды рВИ322, и рассчитывали в программе То1аШаЬ v2.01.
Ингибирование ДНК-гиразы фторхинолонами и другими фторсодержащими гетероциклами
Соединения растворяли в диметилсульфоксиде (ДМСО). Реакцию проводили в течение 60 мин при 25оС в объеме 30 мкл. Реакционная смесь (30 мкл) содержала следующие компоненты: 35 мМ Трис-НС1 (рН 7.5), 24 мМ КС1, 4 мМ MgCl2, 1.4 мМ АТР, 5 мМ дитио-треитол (ДТТ), 1.8 мМ спермидина, 0.1 мг/мл бычьего сывороточного альбумина и несколько концентраций левофлоксацина или производных фторсодержащих гетероциклов (см. ниже). В контрольные пробы добавляли соответствующий объем ДМСО, но не более 10% объема пробы. К пробам добавляли по 0.4 мкг смеси субъединиц ДНК-гиразы А и В и 0.25-0.5 мкг субстрата (релаксированной плазмиды рВИ322). Далее реакцию проводили как описано выше, расчеты проводили в программе То1аП,аЬ v2.01.
Офлоксацин, мкг/мл Левофлоксацин, мкг/мл
К 0 1 3 10 30 0.1 0.3 1 3 10 30
Г-------H^-Nh
Рис. 1. Ингибирование ДНК-гиразы левофлоксацином и офлоксацином. Цифрами указаны концентрации ингибиторов в пробах. К - контроль (плазмида без фермента).
результаты и обсуждение
Клеточная мишень фторхинолонов - бактериальная ДНК-гираза - состоит из двух субъединиц с M 105 и 95 кДа, кодируемых соответственно генами gyrA и gyrB, и имеет тетрамерную структуру типа А2В2 [1-5]. Хотя функция этого фермента в клетке не ограничивается актом единственного типа (она способна как создавать, так и «зашивать» разрывы в ДНК-цепи), при определении активности in vitro обычно оценивают только одну изолированную функцию этого фермента, а именно способность к образованию отрицательных сверхвитков в релаксированных кольцевых ДНК с образованием суперскрученной формы плазмиды. Оценка этого процесса довольно удобна в эксперименте, поскольку субстрат и продукт реакции могут быть разделены и количественно определены с помощью электрофореза в агарозном геле.
Использованный в работе препарат ДНК-гиразы E. coli отличался высокой удельной активностью, что позволило использовать его для тестирования фторхи-нолонов. На первом этапе тестированию подвергался образец левофлоксацина чистотой около 99%. В качестве контроля использовали офлоксацин (рацемическая смесь, левофлоксацин-левовращающий изомер офлоксацина). Офлоксацин, хорошо известный клиницистам, является фторхинолоном первого поколения и применяется более 15 лет [1-4].
На рис. 1 показаны результаты определения инги-бирующей активности. Величины I50, рассчитанные по результатам трех независимых опытов, составили 2.50 + 0.14 мкг/мл и 6.20 + 0.17 мкг/мл для левофлок-сацина и офлоксацина соответственно. Полученные величины соответствуют опубликованным данным [7-10]; более того, соотношения I для этих соединений указывают на стереоспецифичность ДНК-гиразы. Величина I для рацемата (офлоксацин) примерно вдвое больше, чем у индивидуального сте-реоизомера (левофлоксацин), что грубо соответствует его содержанию в рацемической смеси.
Таблица 1. Структурные формулы субстанции левофлоксацина, интермедиатов и полупродуктов синтеза
Структурная формула Название Тип соединения Шифр
Левофлоксацин (35)-9-Фтор-3-метил-10-(4-метилпиперазин-1-ил)-7-оксо-2,3-дигидро-7Н-пиридо[1,2,3-<Л,е][1,4]-бензоксазин-6-карбоновая кислота, гемигидрат Субстанция IOS-001 -IOS-019
(К,5)-7,8-Дифтор-3-метил-2,3-дигидро-4Н-бензо[Ь][1,4]-оксазин Интермедиат ЮS-RS-01, ЮS-RS-02
(35)-2,3-Дигидро-3-метил-7,8-дифтор-1,4-бензоксазин Интермедиат ЮS-S-01, IOS-S-02
Этиловый эфир (35)-(-)-9,10-дифтор-3-метил-7-оксо-2,3-дигидро-7Н-пиридо[1,2,3-<Л,е][1,4]-бензоксазин-6-карбоновой кислоты Полупродукт ЮS-Э-01, IOS-Э-02
(35)-(-)-9,10-Дифтор-3-метил-7-оксо-2,3-дигидро-7Н-пиридо[1,2,3-<Л,е][1,4]-бензоксазин-6-карбоновая кислота Полупродукт ЮS-К-001, IOS-К-002
Поскольку величина I для ферментативной реакции является константой, этот показатель может использоваться для контроля качества левофлокса-цина. Учитывая, что только один, а именно левовра-щающий изомер офлоксацина является ингибитором фермента, величина I может служить критерием чистоты препарата. Наряду с химической и оптической чистотой препарата его биологическая эффективность считается важной характеристикой качества препаратов левофлоксацина.
В табл. 1 приведены структурные формулы левофлоксацина (использовано 19 образцов из опытных партий субстанции), а также ключевых интермедиа-тов (четыре образца) и полупродуктов (четыре образца) его полупромышленного синтеза, осуществленного в ИОС УрО РАН.
Все 19 образцов субстанции левофлоксацина, соответствующие опытным партиям препарата, имели близкие значения I (2.4-2.8 мкг/мл), которые при точности используемого метода определения активности (погрешность определения до 20%) можно считать совпадающими. Эти значения соответствуют опубликованным данным для препарата левофлокса-цина чистотой 99%, что подтверждают также результаты физико-химического анализа. Из ключевых интермедиатов и полупродуктов синтеза левофлок-сацина три образца (рацемический бензоксазин IOS-RS, энантиомерно чистый бензоксазин IOS-S и эфир
ЮS-Э) не обладали сколько-нибудь значимой активностью, а активность полупродукта IOS-К оказалась примерно на порядок ниже, чем у левофлоксацина (рис. 2).
В то же время при сравнении структурных формул полупродуктов ЮS-Э и IOS-К можно видеть, что они различаются лишь наличием этилированной карбоксильной группы у IOS-Э. Важно отме-
ЮS-K-001, мкг/мл ЮS-Э-01, мкг/мл
0 1 3 10 0 1 10 30 К
Рис. 2. Ингибирование ДНК-гиразы соединениями Ю5-К-001 и ЮS-Э-01. Цифрами указаны концентрации ингибиторов в пробах. К - контроль (плазмида без фермента). Условия реакции см. в «Экспериментальной части».
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ СТАТЬИ Таблица 2. Ингибирующая активность ряда новых фторхинолонов и фторгетероциклов в отношении ДНК-гиразы
ШИФР/ I , мкг/мл
Структурная формула
ШИФР/ I , мкг/мл
Структурная формула
EV-465 >30
EV-X149 неактивен
EV-591 неактивен
EV-T150-C неактивен
EV-452-D неактивен
EV-T156 неактивен
EV-313-D неактивен
EV-T143-B неактивен
EV-572 неактивен
EV-N51-B неактивен
EV-X58-A неактивен
EV-N119-2 неактивен
IOS-NORFL_01 >11
coon
о
Ml
IOS-PEFL_02
2.8
J.
'HCI
c,H(
H,c
Ю5^0т_01,мкг/мл^ ЮS-PEFL_02, мкг/мл К 0 1 3 10 30 0 3 10 30
Рис. 3. Ингибирование ДНК-гиразы норфлоксацином ЮS-NORFL_01 и пефлоксацином ЮS-PEFL_02. Цифрами указаны концентрации ингибиторов в пробах. К -контроль (плазмида без фермента). Условия реакции см. в «Экспериментальной части».
100-
ь,
т с о н
к
<
60
40 30
N01^1.
- \ ^^^^^ 1= > 11 мкг/мл
*
PEFL
1 1 150= 2.8 мкг/мл 1 1 ■ 1 ■ 1 1 1
2 4 6 8
[Ингибитор], мкг/мл
10
0
0
тить, что это единственное различие в структурах обусловливает достаточно заметную ингибирующую активность при наличии свободной карбоксильной группы, и практически полное исчезновение активности при ее этилировании. Этот результат позволяет предполагать функциональную важность заряженной карбоксильной группы в указанном положении для проявления ингибирующей активности и соответствует представлениям о механизме взаимодействия фторхинолонов с ДНК-гиразой, что, безусловно, должно учитываться при дизайне новых, более эффективных ингибиторов фермента.
В работе проведено также тестирование ингибиру-ющей активности в отношении ДНК-гиразы ряда новых производных фторхинолонов и фторсодержащих гетероциклов, синтезированных в ИОС им. И.Я. По-стовского УрО РАН. Результаты экспериментов приведены в табл. 2.
Как видно из табл. 2, подавляющая часть соединений оказалась неактивной. Исключение составляли фторхинолон EV-465, активность которого была примерно на два порядка ниже, чем у левоф-локсацина, а также известные соединения фторхи-нолонового ряда - IOS-NORFL_01 (норфлоксацин) и IOS-PEFL_02 (пефлоксацин) (рис. 3, 4).
Соединение IOS-NORFL_01 показало незначительное ингибирующее действие, в то время как IOS-PEFL_02 обладало умеренной активностью, значительно, впрочем, уступавшей активности ле-вофлоксацина. Интересно, что эти соединения отличаются лишь дополнительной метильной группой у IOS-PEFL_02, введение которой приводит к увеличению ингибирующей активности примерно на порядок. Это важное обстоятельство, которое должно учитываться в дальнейшей работе по созданию новых производных фторхинолонов.
Таким образом, проведенные эксперименты показали важность оценки ингибирующей активности
Рис. 4. Определение I для соединений ЮS-NORFL_01 и ЮS-PEFL_02 по данным рис. 3. Величине 150 соответствует пересечение пунктирных линий с осью абсцисс.
левофлоксацина в отношении бактериальной ДНК-гиразы как одного из методов контроля качества препарата, наряду с использованием обычных физико-химических методов. С помощью разработанного метода оценено качество 19 образцов опытных партий левофлоксацина, восьми образцов интермедиа-тов и полупродуктов синтеза, а также 14 новых производных фторхинолонов и их аналогов.
В результате корреляционного анализа «структура-ингибирующее действие» отмечена важность двух структурных элементов молекул для проявления ингибирующей активности: это карбоксильная группа в соединении ЮS-K, этерификация которой приводит к потере ингибирующих свойств, и П-метильная группа в соединении ЮS-PEFL, элиминация которой также приводит к потере активности соединения. Полученные данные следует принять во внимание при дизайне новых лекарственных препаратов на основе фторсодержащих гетероциклов. •
Авторы выражают благодарность К.В. Северинову и И.С. Шкундиной (Институт молекулярной генетики РАН) за предоставленные плазмиды GyrA-pET19 и GyrB-pET19m.
Работа выполнена при финансовой поддержке государственного контракта № 02.522.12.2011 ФЦНТП «Исследования и разработки по приоритетным направлениям развития научно-технологического комплекса России на 2007-2013 годы».
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. The New Generation of Quinolones / Eds Siporin C., Heifetz C.L., Domagala J.M. New York, London, 1990. 422 p.
2. Shen L.L. Quinolone Antibacterial Agents. Washington: American Soc. Microbiol., 1993. 344 p.
3. Quinolone Antimicrobial Agents, 2nd ed. / Eds Hooper D.S., Wolfson J.S. Washington, 1993.
4. Падейская Е.Н., Яковлев В.П. Фторхинолоны. М.: Биоин-форм, 1995. 208 c.
5. Мокрушина Г.А., Чарушин В.Н., Чупахин О.Н. // Химико-фармацевтический журн. 1995. № 1. C. 5-19.
6. Ball P. The Quinolones / Ed. Andriole T.V. San Francisco: Acad. Press, 1998. P. 1-28.
7. Мокрушина Г.А., Носова Э.В., Липунова Г.Н., Чарушин В.Н. // Журн. орг. химии. 1999. T. 35. № 10. C. 1447.
8. Граник В.Г. Основы медицинской химии. М.: Вузовская книга, 2001.
9. Фурин Г.Г. Фторсодержащие гетероциклические соединения: синтез и применение. Новосибирск: Наука, 2001.
10. Мокрушин В.С., Вавилов Г.А. Основы химии и технологии биоорганических и синтетических медицинских препаратов. Екатеринбург: УГТУ-УПИ, 2004.
11. Nosova E.V., Mochulskaya N.N., Kotovskaya S.K., Lipunova G.N., Charushin V.N. // Heteroatom Chemistry. 2006. V. 17. № 6. Р. 579.
12. Яковлев В.П., Яковлев С.В. // Инфекции и антимикробная терапия. 2004. T. 6. № 4. (http://old.consilium-medicum. com/media/infektion/04_04/108.shtml)
13. Hayakawa I., Atarashi S., Yokohama S., Imamura M., Sa-kano K., Furukawa M. // Antimicrob. Agents Chemother. 1986. V. 29. № 1. Р. 163-164.
14. Charushin V.N., Krasnov V.P., Levit G.L., Korolyova M.A., Kodess M.I., Chupakhin O.N., Kim M.H., Lee H.S., Park Y.J., Kim K.-C. // Tetrahedron: Asymmetry. 1999. V. 10. P. 2691.
15. Production of (>S)-benzoxazine derivative and racemization of (R)-benzoxazine derivative // Chupakhin O.N., Krasnov V.P., Levit G.L., Charushin V.N., Korolyova M.A., Tzoi E.V., Lee H.S., Park Y.J., Kim M.H., Kim K.Ch. / Патент Японии JP 2000178265. publication date 27.06.2000 (Chem. Abstr., 2000.
V. 133. P. 43530).
16. Krasnov V.P., Levit G.L., Bukrina I.M., Andreeva I.N., Sadretdinova L.Sh., Korolyova M.A., Kodess M.I., Charushin V.N., Chupakhin O.N. // Tetrahedron: Asymmetry. 2003. V. 14. P. 1985.
17. Potemkin V.A., Krasnov V.P., Levit G.L., Bartashevich E.V., Andreeva I.N., Kuzminsky M.B., Anikin N.A., Charushin V.N., Chupakhin O.N. // Mendeleev Comm. 2004. P. 69.
18. Krasnov V.P., Levit G.L., Kodess M.I., Charushin V.N., Chupakhin O.N. // Tetrahedron: Asymmetry. 2004. V. 15. № 5.
P. 859.
19. Gruzdev D.A., Levit G.L., Krasnov V.P., Chulakov E.N., Sadretdinova L.Sh., Grishakov A.N., Ezhikova M.A., Kodess M.I., Charushin V.N. // Tetrahedron: Asymmetry. 2010. V. 21. P. 936.
20. Levit G.L., Gruzdev D.A., Krasnov V.P., Chulakov E.N., Sadretdinova L.Sh., Ezhikova M.A., Kodess M.I., Charushin V.N. // Tetrahedron: Asymmetry. 2011. V. 22. P. 185.
