CC BY
9
VII ВСЕРОССИЙСКАЯ НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКАЯ КОНФЕРЕНЦИЯ С МЕЖДУНАРОДНЫМ УЧАСТИЕМ «ИНФЕКЦИИ И ИНФЕКЦИОННАЯ БЕЗОПАСНОСТЬ В ГЕМАТОЛОГИИ И СЛУЖБЕ КРОВИ»
Таблица 1
Распространенность гемотрансмиссивных инфекций у первичных доноров крови
Маркеры Первичных доноры РНЦК (n=85 662) Первичные доноры ОПК (n=11 850)
инфекций Абсолют. Распространенность Абсолют. Встречаемость
HCV 1344 1568,9 29 244,7
HBV 2364 2759,6 11 92,8
Anti-pallidium 1461 1705,5 25 211,0
HIV 215 250,9 11 92,8
Всего 5 384 6285,2 76 641,3
Как видно из приведенных в таблице 2 результатов, встречаемость инфекций среди доноров РНЦК оказалась меньше по сравнению с донорами ОПК, по гепатиту С соответственно 19,4 и 181,7,
меньше в 9,36 раза, по гепатиту В 16,8 и 50,4, меньше в 3 раза, по ВИЧ 0 и 10,0, по сифилису 28,5 и 141,3 или меньше в 4,95 раза.
Встречаемость гемотрансмиссивных инфекций у регулярных доноров крови
Таблица 2
Маркеры Повторные доноры РНЦК (n=77 114) Регулярные доноры ОПК (n=9 905)
инфекций Абсолют. Встречаемость Абсолют. Встречаемость
HCV 15 19,4 18 181,7
HBV 13 16,8 5 50,5
Anti-pallidium 22 28,5 14 141,3
HIV 0 0 1 10,0
Всего 50 64,8 38 383,6
Заключение. Высокие показатели распространенности гемотрансмиссивных инфекций у первичных доноров РНЦК связано с их высокой распространенностью среди населения Таджикистана. Низкие показатели встречаемости инфекций у регулярных доноров являются результатом укомплектования регулярными донорами из группы населения с более низким риском по инфекциям, возможно меньшим рискованным поведением в результате просве-
тительской работы сотрудников учреждений службы крови. Низким показателям встречаемости инфекций способствовала также практика ПЦР тестирования крови доноров в отдельных пробах без пулирования. Считаем возможным обсуждение проблемы внедрения ПЦР тестирования крови доноров в индивидуальных пробах с прекращением практики иммуноферментного тестирования.
Бойченко Э.Г.
инфекционные осложнения химиотерапии гемобластозов у детей
СПбГБУЗ «Детский городской многопрофильный клинический специализированный центр высоких медицинских технологий», Санкт-Петербург
Введение. Проблема дальнейшего улучшения выживаемости при острых лейкозах у детей остается актуальной, и одной из возможностей является снижение летальности от токсических осложнений химиотерапии. Вторичная иммуносупрессия является причиной высокого риска развития инфекционных осложнений, особенно у детей, получающих протоколы высокого риска (Kaul S, van Tiburg CM). Инфекциям принадлежит основная роль в структуре летальных осложнений (Lex C, Rahiala J).
Цель. Изучить особенности и распределение летальных осложнений на разных этапах программной терапии острого лимфобластного лейкоза (ОЛЛ) у детей.
Материалы и методы: Проведен анализ летальности на протоколе ОЛЛ-Москва-Берлин с использованием клинических, микробиологических, статистических методов исследования для изучения клинических исходов инфекционных осложнений химиотерапии. Проведен анализ литературы.
Результаты. Анализ летальности в исследовании ОЛЛ-Москва-Берлин 2015, в которое за период с 2015 по 2020 было включено 4031 пациентов, продемонстрировал, что показатель «смерть в индукции» составил 2,76% (80% - инфекции), «смерть в ремиссии» - 2,1% (90% - инфекции).
Существует отчетливая зависимость частоты и тяжести осложнений от глубины и продолжительности нейтропении. Поскольку
больные в состоянии нейтропении не способны сформировать очаг гнойной инфекции как таковой, на первый план выступает такое состояние как фебрильная нейтропения (ФН). Вероятность трансформации ФН в сепсис нарастает по мере возрастания кратности ци-топенических состояний, осложнившихся формированием воспалительного очага. Ведущее значение в развитии сепсиса принадлежит иммуносупрессии, особенно неспособности иммунной системы локализовать возбудителя в месте первичного очага инфекции.
Особенности инфекций у больных с нейтропениями:
- слабый локальный воспалительный ответ;
- небольшое число локализаций (пневмонии, целлюлиты, периодонтиты, синуситы);
- склонность к фульминантному течению;
- самое частое проявление - лихорадка неясной этиологии.
Сепсис представляет собой генерализованную форму гнойно-воспалительной инфекции, вызванную условно-патогенной бактериальной микрофлорой, основой патогенеза которой является бурное развитие системной воспалительной реакции организма в ответ на первичный септический очаг [Goldstein B., et al., 2005].
Анализ индукционной летальности: ведущими причинами летальных исходов были инфекционные (86%) и геморрагические (14%) осложнения в состоянии депрессии кроветворения (92%). Анализ летальных исходов в ремиссии: основная причина - тяжелая ге-
ВЕСТНИК ГЕМАТОЛОГИИ, том XVIII, № 1, 2022
нерализованная инфекция, вызванная устойчивой к антимикробной терапии госпитальной флорой. Терапия сепсиса проводится одновременно в двух основных направлениях:
I . Воздействие на инфекционное начало заболевания: - санацию первичного и метастатических очагов, - антибактериальная терапия и коррекция измененного биоценоза локусов тела ребенка, контактирующих с внешней средой.
II. Воздействие на организм больного: терапия, направленная на восстановление расстройств гомеостаза, включая нарушения иммунного гомеостаза (иммунокорригирующая терапия) и органные расстройства.
Рациональная антибактериальная терапия предусматривала: максимально раннее начало (в первые 2-3 часа); максимальные дозы
и кратность введения; внутривенный путь введения; использование бактерицидных антибиотиков; комбинированную антибактериальную терапию.
Выводы:
1. Постцитостатическая нейтропения является частым и серьезным последствием цитостатической терапии.
2. ФН ассоциируется с высокой заболеваемостью, летальностью и стоимостью терапии, приводит к потенциальному компромитирова-нию результатов терапии.
3. Совершенствование стандартов сопроводительного лечения в отношении профилактики и лечения инфекционных осложнений на всех этапах программной терапии является резервом улучшения выживаемости и исхода у больных с острыми лейкозами.
Вяткина О.И.
стратегия минимизации риска микробнои контаминации компонентов
крови в условиях одного центра
Государственное учреждение «Республиканский научно-практический центр трансфузиологии и медицинских биотехнологий», Минск, Республика Беларусь
Введение. Проблема микробиологической безопасности сохраняет свою актуальность для организаций, заготавливающих донорскую кровь. Оптимизация скрининга, антисептическая обработка кожи локтевого сгиба донора в месте венепункции, отвод первой порции донорской крови, внедрение патогенредуцирующих технологий привело к снижению частоты бактериальной контаминации компонентов крови, но не устраняет риск полностью. Поэтому разработка актуальной стратегии по многоэтапному мониторингу рисков микробной контаминации в процессе заготовки и хранения компонентов крови до их реализации и её совершенствование являются актуальной задачей службы крови.
Цель. Оценить эффективность используемой стратегии по оценке риска микробной контаминации компонентов крови в государственном учреждении «Республиканский научно-практический центр трансфузиологии и медицинских биотехнологий» (далее -РНПЦ ТМБ) Министерства здравоохранения Республики Беларусь (далее МЗ рб) с учётом существующих в настоящее время рекомендаций FDA и EDQM.
Материалы и методы. Материалом исследования служили результаты оценки риска микробной контаминации тромбоцитных, эритроцитных компонентов крови и компонентов плазмы, отобранных для проведения испытания через 24 часа от момента заготовки и в конце срока хранения в отделении заготовки крови и её компонентов в стационарных условиях РНПЦ ТМБ. Проанализированы результаты испытаний компонентов крови в период с 2011 по 2021 год. Всего исследовано 4614 доз эритроцитных, 4333 дозы тромбо-цитных компонентов крови и 4595 доз компонентов плазмы. В течение анализируемого периода стратегия по оценке риска микробной контаминации компонентов крови была следующая:
2011 - 2018 - одноэтапная стратегия (отбор образцов через 24 часа от момента заготовки, объём образца - не менее 15 мл, метод испытания - автоматический анализатор гемокультур BacT/ALERT 3D с использованием двух культуральных флаконов: флаконы SA Culture Bottles (для выделения аэробных гемокультур) и флаконы SN Culture Bottles (для выделения анаэробных гемокультур), длительность инкубации - 7 суток;
2019 - 2021 - двухэтапная стратегия (отбор образцов через 24 часа от момента заготовки и в конце срока хранения, объём образца на каждом этапе контроля - не менее 15 мл, метод испытания - автоматический анализатор гемокультур BacT/ALERT 3D с использованием двух культуральных флаконов: флаконы SA Culture Bottles (для выделения аэробных гемокультур) и SN Culture Bottles (для выделения анаэробных гемокультур), длительность инкубации - 7 суток.
Результаты. Была проанализирована частота положительных результатов микробиологического анализа компонентов крови, отобранных в процессе их заготовки и в конце срока хранения в РНПЦ ТМБ.
В период с 2011 по 2015 год ежегодно регистрировалось от 3 до 5 случаев бактериальной контаминации компонентов крови (в основном за счёт эритроцитных компонентов, в меньшей степени тром-боцитных компонентов и компонентов плазмы), в 2016-2017 году регистрировались единичные случаи, а с 2018 года случаев бактериальной контаминации компонентов крови не фиксировалось, что явилось причиной пересмотра стратегии по оценке риска микробной контаминации компонентов крови в связи с возможным снижением её эффективности. После внедрения в 2019 году двухэтапной стратегии оценки риска микробной контаминации компонентов крови случаев бактериальной контаминации компонентов также не фиксировалось, однако было отмечено увеличение количества лож-ноположительных результатов при проведении испытаний тромбо-цитных и эритроцитных компонентов крови в конце срока хранения с использованием флаконов SN Culture Bottles (для выделения анаэробных гемокультур) на 11,3 % в сравнении с количеством лож-положительных результатов испытаний при проведении оценки риска микробной контаминации компонентов крови, отобранных через 24 часа от момента заготовки.
Выводы. Использование двухэтапного подхода, включающего отбор и анализ образцов для исследования через 24 часа от момента заготовки и в конце срока хранения, является эффективной стратегией микробиологического мониторинга компонентов крови в процессе заготовки.
Голованова И.С., Касьянов А.Д.
к вопросу о бактериальной безопасности концентрата тромбоцитов
ФГБУ «Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии федерального медико-биологического агентства»
Введение. Трансфузии концентрата тромбоцитов являются в настоящее время общепринятым методом профилактики и коррек-
ции геморрагического синдрома при тромбоцитопении у гематологических, онкологических, кардиохирургических пациентов, а так-
