CC BY
105
© ЦЭРЭНДОЛГОР Б., ЦЭЦЭГМАА С., ХУРЭЛБААТАР Л., ЛХАГВА Л., НАРАНГЭРЭЛ Б., ЧИМГЭЭ Ц., ЧОЙЖАМЦ Г. - 2014 УДК. 615:32
ИММУНОСТИМУЛИРУЮЩИЙ ЭФФЕКТ НЕКОТОРЫХ ЛЕКАРСТВЕННЫХ ПРЕПАРАТОВ РАСТИТЕЛЬНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ НА ИММУННУЮ СИСТЕМУ ПОДОПЫТНЫХ ЖИВОТНЫХ
Батсух Цэрэндолгор, Санжжав Цэцэгмаа, Лувсан Хурэлбаатар, Лувсанням Лхагва, Бадраа Нарангэрэл, Готов Чойжамц (Институт исследования лекарственных препаратов «Монос», директор - д.м.н, академик - Л. Лхагва; Фармацевтический факультет, Монгольского государственного медицинского университета, директор - к.ф.н, проф. Д. Энхжаргал, Улан-Батор, Монголия)
Резюме. Приведено исследование влияния различных лекарственных препаратов растительного происхождения на иммунную систему подопытных животных. Эксперименты проведены на 80 мышах, разделенных на 10 групп. С помощью моноклональных антител методом проточной цитометрии («Exbio-Praha», Czech Republic) у мышей определяли количество и соотношение клеток CD4 и CD8. Установлено, что наиболее благоприятное соотношение CD4/CD8, равное 2,47 отмечено в группах животных, подвергавшихся воздействию смеси настоев Солянки лиственничнолистной и Девясила высокого в отношении 1:1, а также Солянки лиственничнолистной с Родиолой розовой в отношении 1:2. Предполагается, что эти смеси обладают наиболее выраженным иммунностимулирую-щим действием.
Ключевые слова: солянка лиственничнолистная, девясил высокий, родиола розовая, проточная цитометрия, CD4, CD8.
IMMUNOSTIMULATING EFFECT OF SOME MEDICINAL PLANTS ON THE IMMUNE SYSTEM OF EXPERIMENTAL ANIMALS
B. Tserendolgor, S. Tsetsegmaa, L. Khurelbaatar, L. Lkhagva, B. Narangerel, Ts. Chimgee, G. Choijamts (Institute for the Study of drugs «Monos»; Faculty of Pharmacy, Mongolian State Medical University,
Ulaanbaatar, Mongolia)
Summary. The research of influence of various phytogenous medicinal preparations on immune system of experimental animals is presented. The experiments have been conducted using 80 mice divided into 10 groups. By means of monoclonal antibodies by a method of flowing cytometry («Exbio-Praha», Czech Republic) a ratio of cells of CD4/CD8 in mice has been determined. It has been established that the optimum ratio of cells CD4/CD8 peer 2,47 is noted in the groups of the animals who were affected by a mixture of infusions of Salsola laricifolia Turcz. ex Litv and Inula helenium L. in correlation 1:1, and also Salsola laricifolia Turcz. ex Litv and Rhodiola rosеa in correlation 1:2. It is supposed that these compounds have mostly expressed immunostimulating action.
Key words: Salsola laricifolia Turcz. ex Litv, Rhodiola rosea, Inula helenium, flow cytometry, CD4, CD8.
Эпидемиологические исследования последнего времени демонстрируют увеличение числа заболеваний, обусловленных нарушениями регуляции иммунной системы, в том числе связанных с иммуннодефицитными состояниями [1,2].
Несмотря на это, для коррекции иммунного статуса относительно редко используются лекарственные препараты природного происхождения, влияющие на иммунную систему организма. Растительные препараты могут обладать высокоактивным, малотоксичным действием и применяться с профилактической и лечебной целью [3].
В связи с этим возникает необходимость проведения точных исследований лекарственных средств животного, растительного и минерального происхождения, оказывающих иммунномодулирующее действие, с целью получения новых лекарственных препаратов.
В восточной медицине известны лекарственные растения, обладающие иммуностимулирующим действием, к которым относятся: Солянка лиственничнолистная (Salsola laricifolia Turcz.ex Litv), Астрагал монгольский (Astragalus mongolicus Bge), Родиола розовая (Rhodiola rosеa), Остролодочник лож-ножелезистый (Oxytropis pseudoglandulosa (Gontsch), Девясил высокий (Inula helenium L.) и др.
Цель исследования: изучить к эксперименте на мышах иммуномодулирующее действие некоторых лекарственных растений, выбрать из них обладающие наиболее выраженным эффектом, а также определить оптимальное качественное и количественное соотношение сырья для получения иммунностимулирующего средства.
Материалы и методы
В качестве основного материала исследования были выбраны надземные части лекарственных растений: Солянка лиственничнолистная (Salsola laricifolia Turcz.ex Litv), Астрагал монгольский (Astragalus mongolicus Bge), Родиола розовая (Rhodiola rosеa), Остролодочник ложножелезистый (Oxytropis pseudoglandulosa (Gontsch), Девясил высокий (Inula helenium).
Для исследования иммуномодулирующего действия выбранных лекарственных растений использовали 80 мышей породы Balb/C, массой 20-22 г. При работе с мышами соблюдались принципы гуманного обращения с ними, регламентированные международными нормативными документами, в частности Европейской конвенцией по защите лабораторных животных. Различные отвары перечисленных лекарственных растений и их сочетания в разных соотношениях давали мышам через рот. В качестве стандарта использовали широко применяемый препарат лекарственного происхождения «Салимон» (Фармацевтическая производственная компания «Монос»), а также иммуномодулирующий препарат «Иммунал» [8].
Все подопытные животные были разделены на 10 групп. Исследование проводили в следующих группах животных: контрольная - «Здоровые», группа «Стандарт-1» (Салимон), группа «Стандарт-2» (Иммунал); подопытные - «Группа-1» (Солянка лиственничнолистная + Астрагал монгольский, в соотношении 2:1), «Группа-2» (Солянка лиственничнолистная + Родиола розовая, в соотношении 1:2), «Группа-3» (Солянка лиственничнолистная + Девясил высокий, в соотношении 1:1), «Группа-4» (Солянка лиственничнолистная + Остролодочник ложножелезистый, в соотношении 2:1), «Группа-5» (Родиола розовая + Астрагал монгольский, в соотношении 1:1), «Группа-6» (Родиола розовая + Остролодочник ложножелезистый, в соотношении 2:1), «Группа 7» (Астрагал монгольский + Остролодочник ложножелезистый, в соотношении 2:1).
Для оценки действия на иммунную систему подопытных животных исследовали содержание СЭ4+Т, CD8+T клеток в периферической крови с помощью «Monoclonal antibody to СD4, CD8 mouse» («Exbio-Praha», Œech Republic), раствора, лизирующего эритроциты периферической крови -«Excellyse-I» («Exbio-Praha», СгеЛ Republic), раствора буфера - PBS (Phosphate buffered saline) («Bioneer Corb», Корейская Республика) с помощью автоанализатор проточной цитоме-трии «FACS-Apogee Universal-50» (США) [7,9-12].
Данные представлялись в виде средних (М) и их стандартных ошибок (т). Статистическую разработку результатов исследования выполняли с помощью программы «8Р8816». Использовался критерий Манна-Уитни. Значимыми считались различия при р<0,05.
Результаты и обсуждение
Ранее, нами была определена токсичность ^П50) исследуемых сборов лекарственных растений. LD50 в изучаемых группах составила: «Группа-1» - 14,1 г/кг, «Группа-2» - 10,8 г/кг, «Группа-3» - 7,5 г/кг, «Группа-4» - 10,2 г/кг, «Группа-5» -11,5 г/кг, «Группа-6» - 8,1 г/кг, «Группа-7» - 8,3 г/кг.
Результаты изучения числа лимфоцитов и их фракций, а также отношения СD4/CD8 в исследуемых группах белых мышей представлены в таблице 1.
Таблица 1
Показатели лимфоцитов, CD4, CD8 клеток подопытных животных
ложножелезистый) - 2810/мкл (увеличение в 1,83 раза), в «Группе-7» (Астрагал монгольский + Остролодочник ложно-железистый) - 2646/мкл (увеличение в 1,73 раза), в «Группе-5» (Родиола розовая + Астрагал монгольский) - 2460/мкл (увеличение в 1,6 раза), в «Группе-1» (Солянка лиственнично-листная + Астрагал монгольский) - 2019/мкл (увеличение в 1,32 раза), (p<0,05). Все исследуемые сборы лекарственных растений вызывали увеличение общего количества лимфоцитов в крови мышей в 1,32-2,77 раза, по сравнению с группой животных, получавших дистиллированную воду.
Далее, методом проточной цитометрии определяли гистограмму CD4+T клеток опытных групп и сравнили с CD4+T клетками (146 кл/мкл) группы «Здоровые». В группе «Стандарт-1» (Салимон) количество CD4+T клеток достигло 264 кл/мкл, что в 1,8 раза больше, чем в контрольной группе (p=0,22).
Результаты изучения количества CD4+T клеток в крови лабораторных животных, определенного методом проточной цитометрии, в некоторых исследуемых группах представлены на рисунке 1. Так, в группе «Стандарт-2» (Иммунал) количество CD4+T клеток достигло 468 кл/мкл, что в 3,2 раза больше, по сравнению с группой «Здоровые» (146 кл/мкл), p<0,001.
Количество CD4+T клеток в крови лабораторных животных в «Группе-3» (солянка лиственничнолистная + девясил высокий) достигло 616 кл/мкл, (увеличение в 4,2 раза, по сравнению с группой «Здоровые», p<0,001), в «Группе-2» (солянка лиственничнолистная + родиола розовая) - 561 кл/мкл (увеличение в 3,8 раза, p<0,001), в «Группе-4» (солянка ли-ственничнолистная + остролодочник лож-ножелезистый) - 453 кл/мкл (увеличение в 3,1 раза, p<0,001), в «Группе-1» (солянка лиственничнолистная + астрагал монгольский) - 409 кл/мкл (увеличение в 2,8 раза, p<0,001), в «Группе-7» (астрагал монгольский + остролодочник ложножелезистый) - 274 кл/мкл (увеличение в 1,87 раза, p>0,05), в «Группе-5» (родиола розовая + астрагал монгольский) - 167 кл/мкл (увеличение в 1,1 раза, p>0,05), в «Группе-6» (родиола розовая + остролодочник ложножелезистый) - 151 кл/мкл (увеличение в 1,03 раза, p>0,05). По сравнению с группой «Здоровые», в некоторых исследуемых группах (группы 1, 4, 2, 3) количество CD4+T клеток, то есть Th (T helper), увеличилось в 2,84,2 раза (p<0,001).
Результаты изучения количества CD8+T клеток в крови лабораторных животных, определенного методом проточной цитометрии, в некоторых исследуемых группах представлены на рисунке 2.
Количество CD8+T клеток в крови лабораторных животных, по сравнению с группой «Здоровые» (105 кл/мкл), в исследуемой группе «Стандарт-1» (Салимон) достигло 166 кл/мкл (увеличение в 1,58 раза, p>0,05), в группе «Стандарт-2» (иммунал) - 148 кл/мкл (увеличение в 1,4 раза), в «Группе-1» (солянка лиственничнолистная + астрагал монгольский) - 337 кл/мкл (увеличение возросло в 3,2 раза, р<0,001, в «Группе-3» (солянка лиственнич-нолистная + девясил высокий) -271 кл/мкл (увеличение в 2,58 раза, p<0.001), в «Группе-4» (солянка лиственничнолистная + остролодочник ложножелезистый) - 236 кл/мкл (увеличение в 2,24 раза, p<0,001, в «Группе-2» (солянка ли-ственничнолистная + родиола ро-
Примечание: А - CD4+T клетки мышей группы «Здоровые», В - CD4+T клетки мышей группы зовая) - 227 1«1/мкл (увеличение «Стандарт-1» (Салимон), С - CD4+T клетки мышей «Группы-3» (солянка лиственничнолистная + в 2,16 раза, p<°,°01), в «Группе-5» девясил высокий). (родиола розовая + астрагал мон-
Рис. 1. Гистограмма CD4+T клеток периферической крови подопытных групп. гольский) - 171 кл/мкл (увеличе-
Исследуемые группы Доза средства Лимфоциты, клетка/мкл СD4+Т/мкл СD8+T/мкл Отношение СD4/CD8
«Здоровая» (n=8) Вода дист. 10 мл/кг 1529±191 146±29 105±17 1,42±0,33
«Стандарт-1» (n=8) 5 мл/кг 2398±340 264±37 166±51 1,69±0,42
«Стандарт-2» (n=8) 10 мл/кг 2282±534 468±59 148±22 3,18±0,62
«Группа-1» (n=8) 470 мг/кг 2019±229 409±66 337±46 1,24±0,29
«Группа-2» (n=8) 360 мг/кг 3670±672 561±71 227±23 2,47±0,27
«Группа-3» (n=8) 250 мг/кг 4244±484 616±144 271±85 2,47±0,92
«Группа-4» (n=8) 340 мг/кг 3499±480 453±206 236±60 2,19±1,49
«Группа-5» (n=8) 385 мг/кг 2460±420 167±23 171±36 1,03±0,30
«Группа-6» (n=8) 270 мг/кг 2810±464 151±26 129±20 1,2±0,37
«Группа-7» (n=8) 277 мг/кг 2646±270 274±25 158±29 1,78±0,39
Общее количество лимфоцитов в крови белых мышей, по сравнению с группой «Здоровые», в группе «Стандарт-1» достигло 2398/мкл (увеличение в 1,56 раза, р<0,05); в группе «Стандарт-2» - 2282/мкл (увеличение в 1,49 раза, р<0,05).
Общее количество лимфоцитов в крови белых мышей, по сравнению с группой «Здоровые», в «Группе-3» (Солянка лиственничнолистная + Девясил высокий) достигло 4244/ мкл (увеличение в 2,77 раза), в «Группе-2» (Солянка листвен-ничнолистная + Родиола розовая) - 3670/мкл (увеличение в 2,4 раза), в «Группе-4» (Солянка лиственничнолистная + Остролодочник ложножелезистый) - 3499/мкл (увеличение в 2,28 раза), в «Группе-6» (Родиола розовая + Остролодочник
Ttlll
LyBpbfctlf
Г
f
А
к —
Ж.
1ыЛ
Ь
л
1*ч|
l-4-pirf-.V
Примечания: А - CD8+T клетки мышей группы «Здоровые», В - CD8+T клетки мышей группы «Стандарт-1» (Салимон), С - CD8+T клетки мышей «Группы-3» (солянка лиственничнолистная + девясил высокий).
Рис. 2. Гистограмма CD8+T клеток периферической крови подопытных животных.
ние в 1,6 раз, p>0,05), в «Группе-7» (астрагал монгольский + остролодочник ложножелезистый) - 158 кл/мкл (увеличение в 1,5 раза, p>0,05), в «Группе-6» (родиола розовая + остролодочник ложножелезистый) - 129 кл/мкл (увеличение в 1,22 раза, p>0,05).
При сравнении группы «Здоровые» с подопытными животными некоторых групп (группы 2, 4, 3, 1), количество CD8+T клеток, то есть CTL (Cytotoxic T lymphocyte) клеток, повысилось в 2,16-3,2 раза (p<0,001), что может свидетельствовать о том, что комплексные средства из растений, использованные в перечисленных группах животных, оказывают выраженное цитотоксическое действие (CTL) на инфицированные и опухолевые клетки.
Соотношение CD4/CD8 Т клеток является главным показателем, определяющим состояние иммунной системы. Поэтому мы провели сравнение этого соотношения в исследуемых группах. Результаты представлены на рисунке 3.
3,5 3 2.5 2 1.5 1
0.5 О
3:18
■ 2.47 2.47
в I Icll
-2.19
I
У
<<Г
>
У
<9
/
✓
ч<г
Рис. 3. Соотношение CD4/CD8 Т клеток в исследуемых группах животных.
Соотношение СП4/СЭ8 Т клеток крови лабораторных животных, по сравнению с данным показателем группы «Здоровые», в исследуемых группах составило: в группе «Стандарт-2» (иммунал) 3,18±0,62 (увеличение в 2,2 раза, р<0,05), в группе «Стандарт-1» (салимон) - 1,69±0,42 (увеличение 1,2 раза, р<0,05), в «Группе-2» - 2,47±0,27; в «Группе-3» - 2,47±0,92. Соотношение СП4/СЭ8 Т клеток в «Группе-4» (2,19±1,49) повысилось в 1,74 раза; в «Группе-7» (1,78±0,39) повысилось в 1,54 раза (р>0,05). У подопытных животных «Группы-1», «Группы-5», «Группы-6» соотношение СП4/СЭ8 Т клеток, по сравнению с группой «Здоровые», не изменилось или даже понизилось (р>0.05), что, вероятно, свидетельствует о том, что лекарственные сборы из растительного сырья, использованные в этих группах, не обладают иммун-
ностимулирущим действием на подопытных животных.
Известно, что главным показателем состояния иммунной системы является соотношение CD4/CD8 Т-клеток. Было установлено, что соотношение CD4/ CD8 Т-клеток у мышей породы C57BL/6J, C57BR/cdJ, B6D2F1 и CbyB6F1 составляет 1-2 [6].
В исследованиях монгольских исследователей Б. Хонгорзул и С. Чимэдцэрэн (2013), соотношение CD4/CD8 Т клеток у мышей здоровой группы было равно 1,52±0,05 [6].
В наших исследованиях показано, что соотношение CD4/ CD8 Т клеток у мышей группы «Здоровые» равно 1,42±0,33, это соответствует показателям, полученным в вышеуказанной работе.
Монгольские ученые П. Болормаа и М. Амбага (1996) в своих исследованиях давали подопытным белым мышам через рот 3%-й водный настой Солянки листвен-ничнолистной по 0,1 мл и сравнивали его действие с контрольной группой животных. Количество спленоцитов выросло с 33,6±2,94х106 кл/мл до 49,7±3,53х106 кл/мл (увеличение в 1,47 раза). Введение подопытным белым мышам через рот 1,5%-го водного настоя Остролодочника ложножелезистого по 0,1 мл, по сравнению с контрольной группой, привело к возрастанию количества спленоцитов с 33,6±2,94х106 кл/мкл до 47,0±2,58х106 кл/мл (увеличение в 1,39 раза). У животных, которым давали смесь настоев Солянки лиственничнолист-ной и Остролодочника ложножелезистого, по сравнению с контрольной группой животных, количество спленоцитов выросло с 33,6±2,94х106 кл/мл до 62,8±4,9х106 кл/мл (увеличение в 1,87 раз). На основании чего был сделан вывод о том, что смеси настоев различных лекарственных растений оказывают большее иммунностимулирующее действие, чем эти растения в отдельности [3].
В наших исследованиях, у лабораторных животных, входивших в «Группу-4», получавших комбинацию настоев Солянки лиственничнолистной и Остролодочника ложножелези-
_. стый (2:1), отношение CD4/CD8
Т клеток достигло 2,19±1,49, что в 1,54 раза больше чем у животных контрольной группы. Несмотря на использование других методов исследования, нами выявлено им-мунностимулирующее действие данного лекарственного средства, что сопоставимо с результатами, полученными вышеуказанными авторами.
Нами показано, что соотношение CD4/CD8 Т клеток в крови животных группы «Стандарт-2» (иммунал) достигает 3,18±0,62. Соотношение CD4/CD8 Т клеток в крови животных в «Группе-3» (солянка лиственничнолистная + девясил высокий) составило 2,47±0,92, а в «Группе-2» (солянка листвен-ничнолистная + родиола розовая) это соотношение равно 2,47±0,27. На основании этих данных можно предположить, что указанные лекарственные составы оказывают иммунно-стимулирующее действие, сопоставимое с известным имму-номодулятором «Иммунал».
В результате нашего исследования показано, что следующие составы растений: солянка лиственничнолистная и девясил высокий (в соотношении 1:1), солянка лиственничнолистная и родиола розовая (1:2), солянка лиственничнолистная и остролодочник ложножелезистый (2:1) обладают иммунностимулирующим действием на лабораторных жи-
JL7J_
1.03
1.2
<<Г
У
вотных, которое может быть связано с повышением активности перехода клеток иммунной системы (CD4+T, CD8+T) из костного мозга в периферическую кровь. Относительно слабым иммунностимулирующим действием на подопытных животных обладают комбинации настоев растений: солянка
лиственничнолистная и астрагал монгольский (в соотношении 2:1), родиола розовая и астрагал монгольский (1:1), родиола розовая и остролодочник ложножелезистый (2:1), астрагал монгольский и остролодочник ложножелезистый (2:1).
ЛИТЕРАТУРА
1. Батбаатар Г. Иммунитет и контроль лечения остеомиелита: Диссертация кандидатская. - Улан-Батор, 2000.
2. Батбаатар Г., Цогтсайхан С., Чимэдцэрэн С. Иммунология. - Улан-Батор, 2011.
3. Болормаа П. Изучение иммунотропного действия Солянки лиственничнолистной (Salsola laricifolia Turcz. ex.Litu), и Остролодочника ложножелезистого (Oxytropis pseudoglandulosa Gontsch). Диссертация на соискание ученой степени доктора ветеринарных наук. - Улан-Батор, 1996.
4. Левента А.И., Одинец А.Д., Охремчук Л.В., Усов Л.А. Влияние извлечениий из горноколосника и рододендрона адамса на поведенческие реакции лабораторных животных // Сибирский медицинский журнал (Иркутск). - 2010. - Т. 95. №4. - С.103-105.
5. Лигаа У., Даваасурэн Б., Нинжил Н. Применение Монгольских лекарственных растений в восточной и северной народной медицине. - Улан-Батор, 2005.
6. Хайдав Ц., Алтанчимэг Б., Варламова Т.С. Лекарственные растения в Монгольской медицине. - Улан-Батор: Академия наук МНР, 1985. - 390 с.
7. Хонгорзул Б. Результат изучения влияния Сапожниковой
растопыренной (Saposhnikovia divaricata) на модели воспаления суставов у подопытных мышей. Диссертация на соискание ученой степени магистра медицинских наук. - Улан-Батор, 2013.
8. Benson J.M., PokornyA.J., RhuleA., etal. Echinacea purpurea extracts modulate murine dendritic cell fate and function // Food Chem Toxicol. - 2010. - Vol. 48. №5. - P.1170-1177.
9. Evans H. G., Suddason T., Jackson I., et al. Optimal induction of T helper 17 cells in humаns requires T cell receptor ligation in the context of Toll-like receptor-activated monocytes // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. - 2007. - Vol. 104. - P.17034-17039.
10. Mice O., Men N. Differences between Mouse and Human Immunology // J. Immunol. - 2004. - Vol. 172. - P.2731-2738.
11. Prinsen M., de Vries I.J., Torensma R., et al. Humoral and cellular immune responses after influenza vaccination in patients with chronic fatigue syndrome // BMC Immunology. - 2012. -Vol. 13. - Р.71.
12. Yan R., Zhong W., Zhu Y., Zhang X. Trichosanthin-Stimulated dendritic cells Induce a type 2 helper T Lymphocyte response through the 0X40 ligand // J. Investig. Allergol. Clin. Immunol. - 2012. - Vol. 22. №7. - P.491-500.
REFERENCES
1. Batbaatar G. Immunitet and control of treatment of an osteomyelitis: Thesis candidate. - Ulan Bator, 2000. (in Mongolian)
2. Batbaatar G., Tsogtsaykhan S., Chimedtseren S. Immunologiya. - Ulan-Bator, 2011. (in Mongolian)
3. Bolormaa P. Studying of immunotropny action of Solyanka of listvennichnolistny (Salsola laricifolia Turcz.ex.Litu), and Ostrolodochnik oflozhnozhelezisty (Oxytropis pseudoglandulosa Gontsch). The thesis on competition of a scientific degree of the doctor veterinary sciences. - Ulan Bator, 1996. (in Mongolian)
4. Leventa A.I., Odinets A.D., Ohremchuk L.V., Usov L.A. Influence of extractions from orostachys spinosa (pallas) fich. and rhododendron Adams on behavioural reactions in laboratorial animals // Sibirskij Medicinskij Zurnal (Irkutsk). - 2010. - Vol. 95. №). - P. 103-105. (In Russian)
5. Ligaa U., Davaasuren B., Ninzhil N. Application of the Mongolian herbs in east and northern traditional medicine. -Ulan Bator, 2005. (in Mongolian)
6. Haydav C.B., Altanchimeg B., Varlamova T.S. Herbs in the Mongolian medicine. - Ulan Bator: MNR Academy of Sciences, 1985. - 390 p. (in Mongolian)
7. Hongorzul B. Rezultat of studying of influence of Sapozhnikova of spread wide (Saposhnikovia divaricata) on model of an inflammation of joints at experimental mice. The thesis on competition of a scientific degree of the master of medical sciences. - Ulan Bator, 2013. (in Mongolian)
8. Benson J.M., Pokorny A.J., Rhule A., et al. Echinacea purpurea extracts modulate murine dendritic cell fate and function // Food Chem Toxicol. - 2010. - Vol. 48. №5. - P.1170-1177.
9. Evans H. G., Suddason T., Jackson I., et al. Optimal induction of T helper 17 cells in humans requires T cell receptor ligation in the context of Toll-like receptor-activated monocytes // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. - 2007. - Vol. 104. - P.17034-17039.
10. Mice O., Men N. Differences between Mouse and Human Immunology // J. Immunol. - 2004. - Vol. 172. - P.2731-2738.
11. Prinsen M., de Vries I.J., Torensma R., et al. Humoral and cellular immune responses after influenza vaccination in patients with chronic fatigue syndrome // BMC Immunology. - 2012. -Vol. 13. - P.71.
12. Yan R., Zhong W., Zhu Y., Zhang X. Trichosanthin-Stimulated dendritic cells Induce a type 2 helper T Lymphocyte response through the 0X40 ligand // J. Investig. Allergol. Clin. Immunol. - 2012. - Vol. 22. №7. - P.491-500.
Информация об авторах:
Батсух Цэрэндолгор - аспирант Фармацевтического Института Монгольского Государственного Медицинского Университета, преподаватель Института «Монос», Монголия, 211137, Улан-Батор, район Сонгинохайрхан - 20, кольцо
Сонсголона - 4/А. Тел. +976-11-634640, +976-88823311, e-mail: [email protected]; Санжжав Цэцэгмаа - проф., к.фарм.н.; Готов Чойжамц - проф., к.м.н.; Лувсан Хурэлбаатар - проф., к.фарм.н.; Лувсанням Лхагва - академик АНМ, проф., д.м.н.; Бадраа Нарангэрэл - к.вет.н.; Цэрэндаш Чимгээ - к.вет.н.
Information About the Authors:
Batsuh Tserendolgor - graduate Pharmaceutical Institute of the Mongolian State Medical University, lecturer at the Institute "monos", Mongolia, 211137, Ulaanbaatar, district Songinohayrhan - 20 ring Sonsgolona - 4/A. Tel. +976-11-634640, +976-88823311, е-mail: [email protected]; Sanzhzhav Tsetsegmaa - Professor, Candidate of Pharmaceutical Sciences (Ph.D); Ready Choyzhamts - Professor, PhD. (Ph.D); Luvsan Hurelbaatar - Professor, Candidate of Pharmaceutical Sciences (Ph.D); Luvsannyam Lhagva -ASM Academician, Professor, Doctor of Medical Sciences. (Sc.D); Badran Narangerel - Candidate of Veterinary Sciences (Ph.D);
Tserendash Chimgee - Candidate of Veterinary Sciences (Ph.D).
