CC BY
164
УДК 616.441-006.55+.6
DOI 10.21685/2072-3032-2017-1-3
О. В. Калмин, И. Н. Чаиркин, О. О. Калмин
ИММУНОГИСТОХИМИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ФОЛЛИКУЛЯРНЫХ ОПУХОЛЕЙ ЩИТОВИДНОЙ ЖЕЛЕЗЫ
Аннотация.
Актуальность и цели. Целью исследования явилось выявление иммуноги-стохимических особенностей структуры щитовидной железы при различных видах фолликулярных опухолей.
Материалы и методы. Были взяты шесть случаев фолликулярного рака и фолликулярной аденомы. В качестве универсальных вторичных антител и системы визуализации использован коммерческий набор EnVision производства фирмы Dako. Затем проводилось докрашивание ядер гематоксилином. Оценку результатов иммуногистохимических реакций проводили с учетом локализации, распространенности и интенсивности окрашивания опухолевых клеток. С целью изучения морфологических особенностей фолликулярных опухолей разной степени злокачественности на срезах, окрашенных гематоксилином-эозином, было проведено морфометрическое исследование с определением количественных параметров.
Результаты и выводы. Исследование показало повышенную экспрессию всех исследованных антигенов в клетках при фолликулярном раке, что отличает его от фолликулярной аденомы. Но при этом, поскольку многие антигены могут выявляться также и при фолликулярной аденоме, недостаточная специфичность не позволяет использовать только один изолированный маркер, поскольку в этом случае повышается риск неправильной диагностики фолликулярной опухоли. Различия в размерах опухолевых клеток и их ядер также могут помочь в дифференциальной диагностике фолликулярной аденомы и фолликулярного рака. Однако только комплексное использование иммуногисто-химических и морфометрических методов позволяет в значительной мере повысить точность дифференциальной диагностики опухолей щитовидной железы со сходным морфологическим строением.
Ключевые слова: щитовидная железа, фолликулярная аденома, фолликулярный рак, иммуногистохимия, галектин-3, цитокератин-19, НВМЕ-1.
O. V. Kalmin, I. N. Chairkin, O. O. Kalmin
IMMUNOHISTOCHEMICAL RESEARCH OF FOLLICULAR THYROID TUMORS
Abstract.
Background. The aim of the research was to identify the immunohistochemical features of thyroid structure in different types of follicular tumors.
Matherials and methods. 6 cases of follicular cancer and follicular adenoma were observed. A commercial kit EnVision produced by Dako company was used as universal secondary antibodies and a visualization system. After that, nuclei were counterstained by hematoxylin. The evaluation of results of immunohistochemical reactions was performed taking into account the localization, extent and intensity of tumor cells staining. In order to study morphological features of follicular tumors of different degree of malignancy on sections stained with hematoxylin-eosin, the authors conducted a morphometric study with definition of quantitative parameters.
Results and conclusions. The study showed an increased expression of all the investigated antigens in cells in follicular carcinoma, which distinguished it from follicular adenoma. But thus, as long as many antigens can also be identified in follicu-lar adenoma, the insufficient specificity does not allow using only one insulated marker due to an increased risk of wrong diagnosis of follicular tumor. Differences in the sizes of tumor cells and their nuclei can also help in differential diagnosis of follicular adenoma and follicular cancer. However, only the integrated use of im-munohistochemical and morphometric methods allows to greatly increase the accuracy of the differential diagnosis of thyroid tumors with a similar morphological structure.
Key words: thyroid gland, follicular adenoma, follicular cancer, immunohisto-chemistry, galectin-3, cytokeratin-19, НВМЕ-1.
Введение
Термин «фолликулярная опухоль» применим к опухолям и опухолепо-добным процессам щитовидной железы, в гистоархитектонике которых присутствуют фолликулярные структуры. Z. W. Baloch и V. A. Livolsi рассматривают в этой группе аденоматозный зоб, аденому, фолликулярный вариант папиллярного рака и фолликулярный рак как образование с характерной фолликулярной архитектоникой [1, 2]. В этой группе опухолей наиболее сложной остается диагностика фолликулярного рака, морфологические особенности которого состоят в следующем: отсутствие клеточной и тканевой атипии (привычных признаков злокачественного роста) и инвазия в капсулу и стенку кровеносных сосудов, без чего этот вид карциномы верифицировать невозможно [2-4].
Невозможность исключить рак щитовидной железы приводит к тому, что выполняется либо расширенный объем операции, что не оправданно при доброкачественном узле щитовидной железы, либо минимальный объем оперативного вмешательства, что в случае подтверждения рака щитовидной железы требует повторной операции, а это сопряжено с повышенным риском осложнений [3, 5, 6]. Поэтому для диагностики фолликулярных опухолей щитовидной железы рядом авторов был рекомендован широкий спектр маркеров: тиреоидная пероксидаза, галектин-3, цитокератин 19, НВМЕ-1, тирео-кальцитонин, тиреоглобулин, TTF-1, RET, CD15, CD44, PAX8-PPAR gamma 1, р27, кератин-сульфат [7-10]. Однако в процессе иммуногистохимического исследования фолликулярного рака чаще всего применяется достаточно узкий спектр маркеров без проведения сравнительного анализа в зависимости опухолевой прогрессии. Что делает актуальным выбор минимального количества маркеров, обеспечивающих максимальную точность диагностики [11, 12]. Поэтому необходимо использование комплексной диагностики с применением цитологического, гистологического и иммуногистохимического методов исследования.
В связи с этим цель исследования - выявление иммуногистохимиче-ских особенностей структуры щитовидной железы при различных видах фолликулярных опухолей
Материалы и методы
Были взяты шесть случаев фолликулярного рака и фолликулярной аденомы. Из удаленных щитовидных желез бралось по три фрагмента 0,5*1x1 см,
которые проводились через батарею спиртов возрастающей концентрации с целью обезвоживания, затем заливались парафином. С полученных блоков делались срезы толщиной 5 мкм.
Для иммуногистохимического исследования парафиновые срезы были депарафинированы в ксилоле и регидратированы в серии растворов этанола понижающейся концентрации и фосфатном буфере. Активность эндогенной пероксидазы блокировали методом погружения стекол с гистологическими срезами в 0,3 % раствор перекиси водорода в дистиллированной воде.
Гистологические срезы инкубировали с первичными антителами (табл. 1) во влажной камере при комнатной температуре 1 ч. В качестве универсальных вторичных антител и системы визуализации использован коммерческий набор БпУ18Юп производства фирмы Бако. Затем проводилось докрашивание ядер гематоксилином.
Таблица 1
Используемые антитела и степень их разведения
Тип антител и фирма-производитель Свойства антител Демаскирующая обработка ткани Разведение антител
Галектин-3, Novocastra Laboratories Мышиные моноклональные Нагревание при 98 °С на водяной бане в растворе для демаскировки антигенов БАКО рН 6,0 20 мин 1:100
НВМЕ-1, Dako Мышиные моноклональные Нагревание при 98 °С на водяной бане в растворе для демаскировки антигенов БАКО рН 6,0 20 мин 1:50
Цитокератин-19, Dako Мышиные моноклональные Нагревание при 98 °С на водяной бане в растворе для демаскировки антигенов БАКО рН 6,0 20 мин 1:50
Оценку результатов иммуногистохимических реакций проводили с учетом локализации, распространенности и интенсивности окрашивания опухолевых клеток. Позитивной распространенной считали умеренную или интенсивную реакцию цитоплазмы и/или ядер (для галектина-3), цитоплазмы и/или цитоплазматических мембран (для НВМЕ-1 и цитокератина-19) более половины (50 %) опухолевых клеток; позитивной очаговой (+) - умеренную или интенсивную реакцию более 10 %, но менее 50 % опухолевых клеток; сомнительной (+/-) - слабую очаговую реакцию менее 10 % опухолевых клеток. Позитивную реакцию со стороны цитоплазмы эндотелиальных клеток и/или макрофагов не учитывали.
С целью изучения морфологических особенностей фолликулярных опухолей разной степени злокачественности на срезах, окрашенных гематоксилином-эозином, было проведено морфометрическое исследование с определением количественных параметров. При этом измеряли высоту и ширину эпителиальных клеток; высоту и ширину ядер; продольный и поперечный диаметр фолликулов и коллоида. На основании этих данных определялись площадь коллоида, площадь фолликулов, объем эпителиальной клетки, объем ядра, объем цитоплазмы и ядерно-цитоплазматическое отношение.
Все полученные количественные данные были обработаны вариационно-статистическими методами при помощи программного пакета IBM SPSS Statistics v.21. Для всех изучаемых параметров определяли минимальное и максимальное значения, среднюю арифметическую, ошибку средней, среднее квадратическое отклонение.
Результаты исследования и их обсуждение
Исследование показало, что клетки фолликулярных опухолей достоверно различаются по своим размерным характеристикам. Высота тиреоид-ного эпителия при фолликулярной аденоме (7,47 ± 0,11 мкм) на 13 % меньше, чем при фолликулярном раке (8,61 ± 0,07 мкм) (р < 0,05). Объем клетки при фолликулярном раке на 38 % больше, чем при аденоме (561,16 ± 12,48 и 405,68 ± 15,17 мкм3 соответственно) (р < 0,05), а объем ядра при фолликулярном раке на 44 % превышает этот параметр при фолликулярной аденоме (270,43 ± 8,23 и 188,09 ± 7,53 мкм3 соответственно) (р < 0,05). При этом различия в средних размерах фолликулов и площади коллоида не превышают ошибку средней арифметической для этих параметров, что усложняет задачу дифференциальной диагностики (табл. 2).
Таблица 2
Количественные характеристики фолликулярных опухолей
Группа
Фолликулярная Фолликулярный р
аденома рак
Высота клетки (мкм) 7,47 ± 0,11 8,61 ± 0,07 <0,05
Ширина клетки (мкм) 8,26 ± 0,13 9,09 ± 0,07 >0,05
Объем клетки (мкм3) 405,68 ± 15,17 561,16 ± 12,48 <0,05
Высота ядра (мкм) 6,73 ± 0,12 7,77 ± 0,09 >0,05
Ширина ядра (мкм) 7,25 ± 0,12 8,11 ± 0,10 >0,05
Объем ядра (мкм3) 188,09 ± 7,53 270,43 ± 8,23 <0,05
Объем цитоплазмы (мкм3) 217,58 ± 11,66 290,73 ± 10,53 <0,05
Ядерно-цитоплазматический индекс 0,93 ± 0,05 0,97 ± 0,05 <0,05
Средний продольный размер фолликулов (мкм) 126,0 ± 4,9 128,7 ± 4,7 >0,05
Средний поперечный размер фолликулов (мкм) 110,8 ± 4,1 113,3 ± 4,1 >0,05
Средний продольный размер коллоида (мкм) 118,5 ± 4,9 120,0 ± 4,7 >0,05
Средний поперечный размер коллоида (мкм) 103,3 ± 4,1 104,6 ± 4,1 >0,05
Средняя площадь фолликулов (мкм2) 11419,08 ± 870,52 11879,29 ± 829,66 >0,05
Средняя площадь коллоида (мкм2) 10066,65 ± 824,49 10289,53 ± 771,53 >0,05
Полуколичественные параметры фолликулярных опухолей не имеют ярко выраженных различий, оба типа патологий имеют округлые фолликулы, центрально расположенное ядро, гомогенный коллоид с выраженной краевой
вакуолизацией, фолликулярные раки отличаются большим числом гипер-хромных ядер.
В связи со сложностью диагностики фолликулярного рака и фолликулярной аденомы становится актуальным поиск новых методов дифференцирования этих видов патологии. В настоящее время наиболее перспективно в данном направлении выполнение иммуногистохимического исследования, в ходе которого проводится определение экспрессии потенциальных маркеров.
Для подтверждения значимости иммуногистохимических маркеров в диагностике фолликулярных образований были использованы наиболее популярные маркеры: галектин-3, цитокератин-19, НМББ-1.
Окрашивание антителами к галектину-3 показало высокий уровень экспрессии с его накоплением в цитоплазме опухолевых клеток (до 60 % клеток) и в фолликулярных клетках, прилежащих к опухолевому очагу (15 % клеток). Однако оценка экспрессии галектина-3 при аденоме щитовидной железы показала меньший уровень накопления в клетках (15-25 % клеток) (рис. 1, 2).
Рис. 1. Фолликулярный рак. Интенсивная экспрессия галектина-3 в опухолевых клетках. Иммуногистохимическая реакция с антителами к галектину-3, ><400
Оценка экспрессии НМБЕ-1 в клетках фолликулярного рака показала преимущественное накопление белка в строме и капсуле с незначительным распространением в опухолевых клетках (36 % клеток). В исследовании фолликулярной аденомы только в одном случае отмечалась экспрессия НМБЕ-1 в единичных клетках (2 % клеток) (рис. 3-5).
Накопление цитокератина-19 отмечалось во всех случаях фолликулярного рака и фолликулярной аденомы, различаясь интенсивностью экспрессии. При этом накопление цитокератина преимущественно наблюдалось в цитоплазме фолликулярных тироцитов и у клеток фолликулярного рака
оценивалось как очень интенсивное (до 85 % клеток), в то время как клетки фолликулярной аденомы характеризовались умеренной экспрессией этого белка (32 % клеток) (рис. 6, 7).
Рис. 2. Фолликулярная аденома. Экспрессия галектина-3 средней интенсивности. Иммуногистохимическая реакция с антителами к галектину-3, ><400
Рис. 3. Фолликулярный рак. Экспрессия НМВЕ-1 в капсуле опухолевого узла. Иммуногистохимическая реакция с антителами к НМВЕ-1, ><200
Рис. 4. Фолликулярный рак. Экспрессия НМБЕ-1 в клетках опухолевого узла. Иммуногистохимическая реакция с антителами к НМБЕ-1, ><400
Рис. 5. Фолликулярная аденома. Экспрессия НМБЕ-1 в единичных клетках опухолевого узла. Иммуногистохимическая реакция с антителами к НМБЕ-1, ><200
Использование иммуногистохимических методов диагностики опухолей щитовидной железы разной степени злокачественности довольно часто встречается в отечественной и зарубежной литературе, но большой перечень марке-
ров, используемых для диагностики, привел к необходимости выбрать минимальное количество маркеров, достаточных для точной диагностики [1, 2, 8].
Рис. 6. Фолликулярный рак. Экспрессия цитокератина-19 в клетках опухолевого узла. Иммуногистохимическая реакция с антителами к цитокератину-19, ><400
Рис. 7. Фолликулярная аденома. Экспрессия цитокератина-19 средней интенсивности. Иммуногистохимическая реакция с антителами к цитокератину-19, ><400
Довольно часто исследователи используют только один маркер, что ускоряет процесс диагностики, но повышает вероятность ошибки [9, 11]. Эта проблема затрагивалась в работах О. В. Соколовой (2009) и Н. Ю. Двинских (2010), которые также пришли к выводу о повышении точности диагностики при совместном использовании галектина-3, НВМЕ-1 и цитокератина-19 [2, 12]. В их исследованиях указывается высокая интенсивность экспрессии маркерных белков в опухолях, обладающих высокой пролиферативной активностью (83,9; 77,0 и 89,7 % соответственно), при этом в клетках фолликулярной аденомы экспрессия составляла 9,8; 3,9 и 27,5 % соответственно. Эти данные сходны с результатами, полученными в нашем исследовании, что подтверждает правильность выбора нами иммуногистохимических маркеров. Это позволяет рекомендовать их для проведения дифференциальной диагностики фолликулярных опухолей щитовидной железы в клинической практике.
Заключение
Таким образом, в исследовании выявлена повышенная экспрессия всех исследованных антигенов в клетках при фолликулярном раке, что отличает его от фолликулярной аденомы. Но при этом, поскольку многие антигены могут выявляться также и при фолликулярной аденоме, недостаточная специфичность не позволяет использовать только один изолированный маркер, поскольку в этом случае повышается риск неправильной диагностики фолликулярной опухоли. Различия в размерах опухолевых клеток и их ядер также могут помочь в дифференциальной диагностике фолликулярной аденомы и фолликулярного рака. Однако только комплексное использование иммуноги-стохимических и морфометрических методов позволяет в значительной мере повысить точность дифференциальной диагностики опухолей щитовидной железы со сходным морфологическим строением.
Библиографический список
1. Шкурко, О. А. Иммуногистохимические маркеры (тиреоглобулин, MUC1, Р-катенин и циклин d1) и статус онкогена BRAF в дифференциальной диагностике гистологических вариантов папиллярного рака щитовидной железы : автореф. дис. ... канд. мед. наук / Шкурко О. А. - М., 2009. - 26 с.
2. Двинских, Н. Ю. Морфологическая и иммуногистохимическая оценка злокачественности опухолей щитовидной железы : автореф. дис. ... канд. мед. наук / Двинских Н. Ю. - М., 2010. - 29 с.
3. Рожкова, Е. Б. Онкомаркеры папиллярного рака щитовидной железы : автореф. дис. ... канд. мед. наук / Рожкова Е. Б. - М., 2007. - 24 с.
4. Radu, T. G. Histological and immunohistochemical aspects of papillary thyroid cancer / T. G. Radu, L. Mogoanta, C. J. Busuioc, C. StAnescu, F. Grosu // Rom J Morphol Embryol. - 2015. - Vol. 56. - P. 789-795.
5. Identification of thyroid tumor cell vulnerabilities through a siRNA-based functional screening / M. C. Anania, F. Gasparri, E. Cetti, I. Fraietta, K. Todoerti, C. Miranda, M. Mazzoni, C. Re, R. Colombo, G. Ukmar, S. Camisasca, S. Pagliardini, M. Pierotti, A. Neri, A. Galvani, A. Greco // Oncotarget. - 2015. - Vol. 6. - P. 34629-34648.
6. Bongiovanni, M. High-yield thyroid fine-needle aspiration cytology: an update focused on ancillary techniques improving its accuracy / M. Bongiovanni, P. Trimboli, E. D. Rossi // European Journal of Endocrinology. - 2016. - Vol. 174. - P. 53-63.
7. Effect of 3'UTR RET Variants on RET mRNA Secondary Structure and Disease Presentation in Medullary Thyroid Carcinoma / Lucieli Ceolin, Mirian Romitti, Debora
Rodrigues Siqueira, Carla Vaz Ferreira, Jessica Oliboni Scapineli, Beatriz Assis-Brazil, Rodolfo Vieira Maximiano, Tauanne Dias Amarante, Miriam Celi de Souza Nunes, Gerald Weber, Ana Luiza Maia// PLOS ONE. - 2016. - P. 1-15.
8. Role of GPER1, EGFR and CXCR1 in differentiating between malignant follicular thyroid carcinoma and benign follicular thyroid adenoma / Le Zhao, Xiao-Yun Zhu, Rong Jiang, Man Xu, Ni Wang, George G Chen, Zhi-Min Liu // Int J Clin Exp Pathol. -
2015. - Vol. 8 (9). - Р. 11236-11247.
9. Васильева, О. А. Возможности использования галектина-3 в лабораторной диагностике / О. А. Васильева, В. Д. Якушина, Н. В. Рязанцева, В. В. Новицкий // Клинико-лабораторный консилиум. - 2011. - № 2. - С. 12-16.
10. Cyniak-Magierska, A. Patterns of cyclin A and B1 immunostaining in papillary thyroid carcinoma / A. Cyniak-Magierska, M. Stasiak, A. Lewinski // Annals of Agricultural and Environmental Medicine. - 2015. - Vol. 22. - P. 741-746.
11. Коган, Е. А. Определение экспрессии галектина-3 в ткани фолликулярных опухолей щитовидной железы / Е. А. Коган, Н. А. Петунина, Т. В. Чернышова, Д. В. Лукьянченко // Клиническая и экспериментальная тиреоидология. - 2011. -Т. 7, № 1. - С. 45-49.
12. Соколова, О. В. Дифференциально-диагностические критерии фолликулярных опухолей щитовидной железы разной степени злокачественности : автореф. дисс. ... канд. мед. наук / Соколова О. В. - СПб., 2009. - 22 с.
References
1. Shkurko O. A. Immunogistokhimicheskie markery (tireoglobulin, MUC1, fi-katenin i tsiklin d1) i status onkogena BRAF v differentsial'noy diagnostike gistologicheskikh variantov papillyarnogo raka shchitovidnoy zhelezy: avtoref. diss. kand. med. nauk [Immunohistochemical markers (thyreoglobulin, MUC1, p-catenin and cyclin D1) and oncogene BRAF status in differential diagnostics of histological variants of papillary thyroid cancer: author's abstract of dissertation to apply for the degree of the candidate of medical sciences]. Moscow, 2009, 26 p.
2. Dvinskikh N. Yu. Morfologicheskaya i immunogistokhimicheskaya otsenka zloka-chestvennosti opukholey shchitovidnoy zhelezy: avtoref. dis. kand. med. nauk [Morphological and immunohistochemical evaluation of thyroid tumpor malignancy: author's abstract of dissertation to apply for the degree of the candidate of medical sciences]. Moscow, 2010, 29 p.
3. Rozhkova E. B. Onkomarkery papillyarnogo raka shchitovidnoy zhelezy: avtoref. dis. kand. med. nauk [Oncomarkers of papillary thyroid cancer: author's abstract of dissertation to apply for the degree of the candidate of medical sciences]. Moscow, 2007, 24 p.
4. Radu T. G., Mogoanta L., Busuioc C. J., StAnescu C., Grosu F. Rom JMorphol Em-bryol. 2015, vol. 56, pp. 789-795.
5. Anania M. C., Gasparri F., Cetti E., Fraietta I., Todoerti K., Miranda C., Mazzoni M., Re C., Colombo R., Ukmar G., Camisasca S., Pagliardini S., Pierotti M., Neri A., Gal-vani A., Greco A. Oncotarget. 2015, vol. 6, pp. 34629-34648.
6. Bongiovanni M., Trimboli P., Rossi E. D. European Journal of Endocrinology. 2016, vol. 174, pp. 53-63.
7. Lucieli Ceolin, Mirian Romitti, Debora Rodrigues Siqueira, Carla Vaz Ferreira, Jessica Oliboni Scapineli, Beatriz Assis-Brazil, Rodolfo Vieira Maximiano, Tauanne Dias Amarante, Miriam Celi de Souza Nunes, Gerald Weber, Ana Luiza Maia PLOS ONE.
2016, pp. 1-15.
8. Le Zhao, Xiao-Yun Zhu, Rong Jiang, Man Xu, Ni Wang, George G Chen, Zhi-Min Liu Int J Clin Exp Pathol. 2015, vol. 8 (9), pp. 11236-11247.
9. Vasil'eva O. A., Yakushina V. D., Ryazantseva N. V., Novitskiy V. V. Kliniko-laboratornyy konsilium [Clinical laboratory consultation]. 2011, no. 2, pp. 12-16.
10. Cyniak-Magierska A., Stasiak M., Lewinski A. Annals of Agricultural and Environmental Medicine. 2015, vol. 22, pp. 741-746.
11. Kogan E. A., Petunina N. A., Chernyshova T. V., Luk'yanchenko D. V. Klinicheskaya i eksperimental'naya tireoidologiya [Clinical and experimental thyroidology]. 2011, vol. 7, no. 1, pp. 45-49.
12. Sokolova O. V. Differentsial'no-diagnosticheskie kriterii follikulyarnykh opukholey shchitovidnoy zhelezy raznoy stepeni zlokachestvennosti: avtoref. diss. kand. med. nauk [Differential diagnostic criteria of follicular thyroid tumors of different degrees of malignancy: author's abstract of dissertation to apply for the degree of the candidate of medical sciences]. Saint-Petersburg, 2009, 22 p.
Калмин Олег Витальевич
доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой анатомии человека, Медицинский институт, Пензенский государственный университет (Россия, г. Пенза, ул. Красная, 40)
E-mail: ovkalmin@gmail.com
Kalmin Oleg Vital'evich Doctor of medical sciences, professor, head of sub-department of human anatomy, Medical Institute, Penza State University (40 Krasnaya street, Penza, Russia)
Чаиркин Иван Николаевич
доктор медицинских наук, профессор, кафедра анатомии человека, Первый Московский государственный медицинский университет имени И. М. Сеченова (Россия, г. Москва, ул. Трубецкая, 8)
E-mail: chairkin@rambler.ru
Chairkin Ivan Nikolaevich Doctor of medical sciences, professor, sub-department of human anatomy, I. M. Sechenov First Moscow State Medical University (8 Trubetskaya street, Moscow, Russia)
Калмин Олег Олегович ассистент, кафедра анатомии человека, Медицинский институт, Пензенский государственный университет (Россия, г. Пенза, ул. Красная, 40)
E-mail: kalmin.o.o@gmail.com
Kalmin Oleg Olegovich Assistant, sub-department of human anatomy, Medical Institute, Penza State University (40 Krasnaya street, Penza, Russia)
УДК 616.441-006.55+.6 Калмин, О. В.
Иммуногистохимическое исследование фолликулярных опухолей щитовидной железы / О. В. Калмин, И. Н. Чаиркин, О. О. Калмин // Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. Медицинские науки. -2017. - № 1 (41). - С. 28-38. БОТ 10.21685/2072-3032-2017-1-3
