Научная статья на тему 'Характеристика признака аутоагглютинации у различных штаммов возбудителя чумы'

Характеристика признака аутоагглютинации у различных штаммов возбудителя чумы Текст научной статьи по специальности «Биологические науки»

CC BY
157
38
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
Y. PESTIS / АУТОАГГЛЮТИНАЦИЯ / AUTOAGGLUTINATION

Аннотация научной статьи по биологическим наукам, автор научной работы — Подладчикова О. Н., Рыкова В. А., Иванова В. С., Лебедева С. А.

Проведено сравнение различных штаммов Yersinia pestis по признаку аутоагглютинации (АА). Выявлены различия в экспрессии АА у штаммов, различающихся по способности сорбировать пигменты (признак Hms). Показано, что в основе АА Hmsштаммов лежат гидрофобные взаимодействия, поскольку АА этих штаммов, обладающих высокой гидрофобностью, зависит от концентрации соли и чувствительна к неионогенному детергенту твин-80. В основе АА Hms+ штаммов, не обладающих вышеперечисленными свойствами, лежит неизвестный в настоящее время механизм, по-видимому, связанный с рецептором пигментов. Полученные данные позволяют заключить, что за АА Hms+ и Hmsштаммов Y. pestis отвечают разные или различающиеся по структуре компоненты.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Похожие темы научных работ по биологическим наукам , автор научной работы — Подладчикова О. Н., Рыкова В. А., Иванова В. С., Лебедева С. А.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Characterization of the Autoagglutination Property in Different Yersinia pestis Strains

Autoagglutination property (AA) was comparatively studied in various Yersinia pestis strains. Those differing in their pigment sorption ability (Hms property) demonstrated varying AA expression. Hydrophobic interactions were shown to form the basis for AA of highly hydrophobic Hmsstrains because their autoagglutination property depended upon salt concentrations, also being sensitive to a non-ionogenic detergent, Twin 80. AA of Hmsstrains deprived of the abovelisted properties, was based on a yet unknown mechanism that was likely to be connected with the pigment receptor. The data obtained made it possible to conclude that different or structurally distinct components were responsible for AA of Hmsand HmsYersinia pestis strains.

Текст научной работы на тему «Характеристика признака аутоагглютинации у различных штаммов возбудителя чумы»

санитарно-эпидемиол. охране террит. РФ. - Ростов н/Д, 2002. -Вып. 15. - С. 61-63. - 12. Сучков Ю.Г., Худяков И.В., Емельяненко Е.Н. и др. // ЖМЭИ. - 1997. - № 4. - С. 4246. - 13. Четина Е.В., Грижебовский Г.М., Брюханов А.Ф. и др. // Мол. генет., микробиол. и вирусол. - 1993. -№ 6. - C. 18-22. - 14. Четина Е.В. // Мол. генет., микробиол. и вирусол. - 1997. - № 1. - C. 8-14. - 15. Шелохович А.И., Мишанькин Б.Н., Кудрякова Т.А., Харабаджахян Г. Д. // Холера: Матер. VIII Российск. науч.-практич. конф. по проблеме «Холера». - Ростов н/Д, 2003. - С. 183-185. -16. Colwell R.R., Brayton P.R., Grimes D.J. et al. // Bio-technol. - 1985. - Vol. 3. - P. 817-820. - 17. Colwell R.R., Brayton P.R., Herrington D. // Wld. J. Microbiol. Biotech-nol. - 1996. - Vol. 12. - P. 28-31. - 18. Huq A., Colwell R.R. // EMMJ. - 1996. - Vol. 2, N 1. - P. 37-45. - 19. Islam M.S., Drasar B.S., Bradley D.J. // J. Trop. Med. Hyg. -1990. - Vol. 93. - P. 133-139. - 20. Islam M.S., Rahim Z., Alam M.J. et al. // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. - 1999. -Vol. 93. - P. 36-40. - 21. Mizinoe Y., Wai S.N., Takade A., Yoshida S. // Arch. Microbiol. - 1999. - Vol. 172, N 1. -P. 63-67. - 22. Mizunoe Y., Wai S.N., Ishikawa T. et al. // FEMS Microbiol. Lett. - 2000. - Vol. 186, N 1. - P. 115-120. -23. Oliver J.D. Formation of viable but nonculturable cells // Starvation in Bacteria / ed. S.Kjellenberg. - Plenum Press, New York, 1993. - P. 239. - 24. Oliver J.D., Hite F., McDougald D. et al. // Appl. Environ. Microbiol. - 1995. - Vol. 61, N 7. -P. 2622-2624. - 25. Pitonzo B.J., Amy P.S. Rudin M. // Radiat. Res. - 1999. - Vol. 152, N 1. - P. 71-75. - 26. Ravel J.,

Knight I.T., Monahan C.E. et al. // Microbiology. - 1995. -Vol. 141, N 2. - P. 377-383. - 27. Signoretto C., Lleo M.D., Tafi M.C., Canepari P. // Appl. Environ. Microbiol. - 2000. -Vol. 66, N 5. - P. 1953-1959. - 28. Wai S.N., Mizunoe Y., Takade A., Yoshida S. // Arch. Microbiol. - 2000. - Vol. 173, N 4. - P. 307-310. - 29. Wai S.N., Moriya T., Kondo K. et al. // FEMS Micobiol. Lett. - 1996. - Vol. 136, N 2. - P. 187-191.

N.A.Ossina, T.V.Bugorkova, A.N.Kulichenko

On the Problem of Reversion of Non-Culturable Vibrio cholerae Forms

Russian Anti-Plague Research Institute “Microbe ", Saratov

Ten percent non-culturable Vibrio cholerae forms were shown to undergo reversion when the transition was run in 0.9 % sodium chloride solution at 4 to 6 °C for 18-24 days, or in 30 % solution during 18 months’ incubation in the medium containing 50 mg/% amine nitrogen at 20 to 22 °C. For recultivation, fluid nutritional medium was used that contained medium 199, saline, yeast autolysate and inactivated cattle embryonic serum. The rever-tants demonstrated reduced agglutinability with cholera diagnostic sera and decreased sensitivity to cholera CDP-2,4,5 bacteriophages, the loss of ornithine and saccharose fermentation activities in 100 % and 16 % cases, respectively.

Key words: Vibrio cholerae, non-culturable forms, reversion.

Поступила 05.04.06.

УДК 616.981.452

О.Н.Подладчикова, В.А.Рыкова, В.С.Иванова, С.А.Лебедева

ХАРАКТЕРИСТИКА ПРИЗНАКА АУТОАГГЛЮТИНАЦИИ У РАЗЛИЧНЫХ ШТАММОВ ВОЗБУДИТЕЛЯ ЧУМЫ

Ростовский-на-Дону научно-исследовательский противочумный институт

Проведено сравнение различных штаммов Yersinia pestis по признаку аутоагглютинации (АА). Выявлены различия в экспрессии АА у штаммов, различающихся по способности сорбировать пигменты (признак Hms). Показано, что в основе АА Hms- штаммов лежат гидрофобные взаимодействия, поскольку АА этих штаммов, обладающих высокой гидрофобностью, зависит от концентрации соли и чувствительна к неионогенному детергенту твин-80. В основе АА Hms+ штаммов, не обладающих вышеперечисленными свойствами, лежит неизвестный в настоящее время механизм, по-видимому, связанный с рецептором пигментов. Полученные данные позволяют заключить, что за АА Hms+ и Hms- штаммов Y. pestis отвечают разные или различающиеся по структуре компоненты.

Ключевые слова: Y. pestis, аутоагглютинация.

Аутоагглютинация (АА) бактерий - это способность клеток склеиваться и образовывать агрегаты без добавления каких-либо внешних факторов. Известно, что АА грамнегативных бактерий, которая коррелирует с вирулентностью клеток для животных, обычно вызывают гидрофобные поверхностные компоненты. Признак АА характерен и для возбудителя чумы (Yersinia pestis), а также для двух других патогенных для человека видов иерсиний, Y. pseudotuberculosis и Y. enterocolitica [8]. У последних двух видов АА проявляется только при 37 °С и обусловлена экспрессией на поверхности клеток гидрофобного белка YadA, кодируемого общей для трех видов иерсиний плазмидой [14]. Y. pestis не экспрессирует этот белок в силу дефекта гена yadA [13], однако, несмотря на это, возбудитель чумы проявляет АА. В литературе нам не уда-

лось обнаружить результатов специальных исследований, посвященных изучению феномена АА у У. pestis, но некоторые предположения по этому вопросу имеются в работах разных авторов. Одни из них [10] связывают АА клеток чумного микроба с гидрофобными свойствами его липополисахарида, лишенного О-полисахаридных цепей (Я-ЛПС), другие [7] - со способностью клеток при 26 °С сорбировать нейтральные красители из среды (признак пигментсорбции, Иш8). Однако клетки чумного микроба, не продуцирующие капсульный антиген Са£1, проявляют ярко выраженную способность к АА и при 37 °С, когда Иш8 признак не экспрессируется [6]. Более того, Иш8- клетки чумного микроба при 26 °С также способны к АА. Противоречивость приведенных выше данных свидетельствует о том, что молекулярные механизмы, лежащие в основе

АА клеток возбудителя чумы, пока не ясны. Для выяснения этих механизмов прежде всего необходим анализ экспрессии признака АА у разных штаммов Y. pestis. Целью настоящего исследования было получение данных о механизмах АА у штаммов Y. pestis, различающихся по пигментсорбции.

Материалы и методы

В работе использованы 10 штаммов Y. pestis, различающихся по плазмидному составу и ряду фенотипических признаков (табл. 1). В качестве контроля во всех экспериментах использовали штамм E. сoli K-12, имеющий, как и штаммы Y. pestis, R-форму ЛПС. Штаммы получены из музейной коллекции Ростовского научно-исследовательского противочумного института. Штаммы Y. pestis были охарактеризованы по фенотипическим признакам согласно Руководству по лабораторной диагностике чумы [5]. Бактерии выращивали при 26 и 37 °С в следующих питательных средах: Luria-Bertani (LB,), Brain-Heart Infusion (BHl), Nutrient Broth (NB), среда Хоттингера (рН 7,2). Признак пигментсорбции (Hms+) определяли на среде Surgalla-Beesley [15+]. Продукцию сидерофо-ра иерсиниабактина (Ybt+) оценивали по наличию роста культур при 37 °С на среде NB, содержащей 100 мкМ хелатора железа 2-2’-дипиридила. Генетические детерминанты Hms+ и Ybt+ признаков выявляли методом ПЦР по наличию четырех генов pgm-локуса (hmsR, hmsF, fyuA/psn и irp2), как описано ранее [4]. Изогенные варианты штамма Y. pes-tis EV76 c разным плазмидным составом получены из субкультуры, спонтанно утратившей плазмиду pMT, кодирующую капсульный антиген Сaf1. Для элиминации pCD, определяющей экспрессию каль-цийзависимости (Cad), культуры выращивали при 37 °С на среде для определения Cad [5], а для элиминации pYP, кодирующей экспрессию пестицина I (PstI), - при 4 °С на среде Хоттингера.

Признак АА определяли по характеру роста в жидких питательных средах и по способности клеток образовывать агрегаты на стекле в солевом растворе. В качестве контроля использовали штамм E. coli К-12, не проявляющий АА в этих тестах. Для оценки характера роста клеток 0,1 мл микробной взвеси каждого штамма, содержащей в 1 мл 109 м.к.,

Таблица 1

Характеристика использованных в работе штаммов Y. pestis

Штаммы Плазмидный состав pgm- локус Hms Ybt Caf1 Cad PstI

231(708) pMT, pCD, pYP + + + + + +

923 pMT, pCD, pYP + + + + + +

363 pMT, pCD, pYP + + + + + +

381 pMT, pCD + + + + + -

TS pMT, pYP + + + + - +

EV76 pMT, pCD, pYP - - - + + +

1 pMT, pCD, pYP - - - + + +

17 pMT, pCD, pYP - - - + + +

556/106 pYP - - - - - +

TRU - - - - - - -

засевали в 5 мл жидкой питательной среды и выращивали при 26 и 37 °С без аэрации 48 ч. Рост штаммов, сопровождающийся равномерным помутнением среды, считали характерным для клеток, не проявляющих АА. Придонный рост культур в прозрачной среде культивирования расценивали как проявление АА. Для выявления АА клеток на стекле в 0,1 мл 0,5 М раствора сульфата аммония вносили 0,1 мл суспензии исследуемых штаммов в 0,9 % растворе №С1, содержащей в 1 мл 1010 м.к. Образование в течение 3-5 мин видимых невооруженным глазом агрегатов клеток свидетельствовало об их способности к АА. Участие гидрофобных связей в проявлении АА выявляли, добавляя к суспензиям клеток в растворе соли на стекле неионогенный детергент твин-80 (0,2-1 %), предотвращающий гидрофобные взаимодействия [3]. Присутствие на поверхности клеток бактерий Я-ЛПС выявляли по АА клеток после добавления к суспензиям клеток в 0,9 % растворе №С1 трипафлавина (0,2 %).

Для количественного определения поверхностной гидрофобности клеток использовали два метода: высаливание [9] и разделение фаз [12]. Первый метод основан на способности бактерий агглютинировать на стекле в солевых растворах разной концентрации. Чем менее концентрированный раствор необходим для агглютинации культуры, тем выше степень гидрофобности клеток. Для определения гидрофобности методом высаливания в 0,1 мл раствора сульфата аммония различной концентрации (0,1-4 М) вносили 0,1 мл суспензии исследуемых штаммов в 0,9 % растворе №С1, содержащей в 1 мл 1010 м.к. Минимальная концентрация соли, способствующая агрегации клеток, использовалась как критерий количественной оценки гидрофобности. Метод разделения фаз основан на свойстве органических растворителей экстрагировать из взвеси бактерий часть клеток. Чем выше гидрофобность клеточной поверхности, тем большая часть клеток переходит из водной фазы в органическую. Для определения гидрофобности этим методом к 5 мл взвеси микроорганизмов, содержащей в 1 мл 109 м.к., добавляли 1 мл ксилола, встряхивали 30 с и оставляли для разделения фаз на 30 мин. О степени гидрофобности клеток судили по проценту уменьшения оптической плотности микробной взвеси в водной фазе после экстракции ее ксилолом. Для соблюдения режима безопасности работы с возбудителем чумы измерения проводили в стандартизованных по оптической плотности стеклянных пробирках в фотоэлектроколориметре, оборудованном специальными адаптерами.

Результаты и обсуждение

Сравнительный анализ 10 различающихся по пигментсорбции и другим фенотипическим признакам штаммов У. pestis (табл.1) показал, что все они обладали признаком АА, имели агглютинативный характер роста во всех использованных в работе жидких питательных средах и агглютинировали на стекле в 0,5 М растворе сульфата аммония. При этом контрольный штамм Е. свИ К-12, судя по этим

двум тестам, не обладал признаком АА.

Анализ результатов исследования штаммов чумного микроба позволял предположить отсутствие связи между экспрессией АА и присутствием автономных плазмидных репликонов (табл. 1). Это предположение подтверждено и при анализе специально полученных изогенных вариантов штамма Y. pestis EV76, утративших одну, две или все три резидентные плазмиды и не экспрессирующих кодируемые ими признаки (СА, Cad, Pst). Сравнение этих вариантов по признаку АА показало, что его экспрессия не зависела от присутствия всех трех плазмид, что свидетельствовало о хромосомной локализации генетических детерминантов этого признака.

Хотя все штаммы Y. pestis обладали агглютинативным ростом в жидких питательных средах при разных температурах выращивания (26 или 37 °С), степень выраженности этого признака при 37 °С у некоторых штаммов была более слабой, чем при 26 °С. Таким свойством характеризовались штаммы, экспрессирующие капсульный антиген Caf1. Эти данные позволяли предположить, что капсульный антиген, индуцибельно синтезирующийся у возбудителя чумы при 37 °С, может экранировать клеточный компонент(ы), вызывающий АА клеток. Ингибирующее влияние Caf1 на экспрессию АА клетками возбудителя чумы отмечено и в работе Crumpton и Davies [6]. В этой связи для анализа признака АА у разных штаммов возбудителя чумы в дальнейших экспериментах мы использовали выращивание клеток при 26 °С.

Сравнительный анализ использованных в работе культур выявил различия в экспрессии признака АА у штаммов Y. pestis, различающихся по пигментсорбции. Во всех использованных в работе тестах Hms+ штаммы давали сходные результаты и отличались от штаммов Hms- и контрольного E. шИ К-12. Поэтому в табл. 2 приведены средние значения, полученные в трех независимых экспериментах для 5 Hms+ и 5 Hms- штаммов Y. pestis и одного контрольного.

Изучение характера роста культур, выращенных без аэрации при 26 °С в жидкой среде LB, по-

Таблица 2

Сравнение экспрессии признака АА Hms+ и Hms- клетками Y. pestis

Характеристика Y. pestis Е. евИ

ИШ8+ ИШБ (контроль)

Морфология колоний Кружевная зона слабо выражена Кружевная зона хорошо выражена Гладкая форма колоний

Характер роста в жидких питательных средах «Хлопья снега» на дне, пленки нет «Комок ваты» на дне, пленка на поверхности Равномерный рост

Гидрофобность, % 30±5 55±8 12±5

Минимальная концентрация сульфата аммония для АА на стекле (М) 0 0,25 3,0

Чувствительность АА к твин-80 + +

казало, что все культуры Y. pestis, в отличие от контрольного штамма, росли агглютинативно. Тем не менее характер роста был неодинаковым у штаммов, различающихся по пигментсорбции. Так, все штаммы, имеющие Hms+ фенотип, в жидкой питательной среде росли в виде «хлопьев снега» на дне, которые практически не поддавались дезагрегации при встряхивании. В то же время Hms- штаммы Y. pestis росли в виде «комка ваты» на дне и образовывали пленку на поверхности среды. При встряхивании пробирок такие штаммы давали равномерную мутную суспензию. Аналогичные результаты получены и при анализе изогенных Hms- мутантов, отобранных из популяции Hms+ штаммов на индикаторной среде для определения пигментсорбции. По характеру роста мутанты были сходны с Hms-штаммами Y. pestis. Выявленные различия в характере роста Hms+ и Hms- клеток Y. pestis в жидкой питательной среде позволяли предположить, что оба типа клеток могут различаться по структуре поверхностных компонентов.

О разной структуре клеточной поверхности Hms+ и Hms- клеток свидетельствовало и их различие по морфологии колоний, образуемых на различных плотных питательных средах. Если Hms-клетки образовывали колонии с мощной «кружев -ной» зоной по краям, Hms+ клетки давали колонии с менее выраженной периферической зоной. Наличие корреляции между АА, морфологией колоний и Hms+ фенотипом клеток отмечено и в работе Hare и McDonough [7]. Эти авторы обнаружили, что рекомбинантные штаммы Escherichia coli и Y. pseudotuberculosis, получившие гены hmsHFRS и hmsT, приобретали способность к сорбции пигментов наряду с признаком АА, а также отличались от родительских штаммов по морфологии колоний. Высказано предположение, что Hms+ клетки характеризуются более высокой поверхностной гидрофобно-стью, которая и обусловливает сорбцию клетками нейтральных молекул (гемина, Конго красного).

И в наших экспериментах при определении поверхностной гидрофобности клеток методом высаливания мы обнаружили, что АА Hms+ клеток имела место при очень низких концентрациях соли, в т.ч. при добавлении суспензии клеток в 0,9 % растворе NaCl к дистиллированной воде. В то же время для АА Hms- клеток необходима была концентрация соли не менее 0,25М. При этом контрольный штамм агглютинировал на стекле только в концентрированных растворах соли (3-4М) или при добавлении к суспензии клеток в 0,9 % растворе NaCl трипафлавина, способствующего АА клеток с R-формой ЛПС [1]. Эти данные могли свидетельствовать о более высокой гидрофобности Hms+ клеток, которая и определяет их ярко выраженную АА. Тем не менее при исследовании влияния неионогенного детергента твин-80, предотвращающего гидрофобные взаимодействия [3], обнаружено, что детергент, даже при 1 % концентрации, не влиял на АА Hms+ клеток на стекле. В то же время и при концентрации 0,2 % он препятствовал АА Hms- клеток Y. pestis и клеток E. ^li в солевых растворах. Торможение детергентом АА

5Q

Иш8- клеток и клеток контрольного штамма указывало на то, что в основе их АА, в отличие от АА Иш8+ клеток, лежат гидрофобные взаимодействия. Более высокая гидрофобность Нш8- клеток выявлялась и при ее определении методом разделения фаз. Во всех экспериментах Нш8- клетки У. pestis имели достоверно более высокие показатели гид-рофобности, чем Иш8+ клетки, а контрольный штамм обладал самой низкой гидрофобностью.

АА Иш8+ и Иш8- клеток У. pestis на стекле не проявлялась в щелочных условиях (pH 9), что позволяло предположить либо увеличение заряда клеточной поверхности в этих условиях, либо отделение от клеток компонентов, обусловливающих АА. Для проверки последнего предположения проведено сравнение способности Нш8+ и Нш8- клеток к АА после их инкубации в слабой щелочи. Из соображений безопасности в этих экспериментах использованы авирулентные штаммы У. pestis Т8 (Нш8+) и ЕУ76 (Нш8-). При этом установлено, что после инкубации в течение 30 мин в растворе 10 мМ КаОН отмытые 0,9 % раствором КаС1 клетки обоих типов не проявляли АА на стекле в растворе 0,5 М сульфата аммония, а агрегировали только в концентрированных растворах соли (3-4 М) или в присутствии трипафлавина, по-видимому, за счет Я-формы ЛПС. Эти результаты свидетельствовали о том, что в щелочных условиях с поверхности Нш8+ и Нш8-клеток У. pestis удаляются компоненты, вызывающие АА. Известно, что при обработке Нш8+ бактерий раствором 10мМ КаОН с их поверхности удаляется рецептор пигментов, охарактеризованный нами ранее [11]. Что удаляется с поверхности Нш8-клеток при обработке слабой щелочью (Я-ЛПС, белок 8-слоя [2] или пока неизвестный фактор У. pes-tis), покажут дальнейшие исследования, предметом которых будет идентификация, выделение и биохимическая характеристика бактериальных компонентов, обусловливающих АА Нш8+ и Нш8- клеток чумного микроба.

Таким образом, проведенное исследование позволило заключить, что за проявление признака АА у Нш8+ и Нш8- клеток У. pestis могут отвечать разные клеточные компоненты. АА Нш8+ клеток не связана с гидрофобными взаимодействиями и может быть обусловлена рецептором пигментов, а у

Hms- клеток она вызвана гидрофобным клеточным компонентом.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Васюхина Л.В. // Изв. Иркут. противочумн. ин-та Сибири и Дальн. Вост. - 1954. - Т. 12. - С. 23-30. - 2. Волох О. А. Дятлов И. А. // Пробл. особо опасных инф. - Саратов, 2003. - Вып. 85. - С. 55-62. - 3. Лобашевский А.Л. // ЖМЭИ. - 1992. - № 9-10. - С. 24-26. - 4. Подладчикова О.Н., Рыкова В.А., Иванова В.С. и др. // Мол. генет., микробиол. и вирусол. - 2002. - № 2. - С. 14-19. - 5. Самойлова Л.В., Донская Т.Н., Вейнблат В.И. и др. // Лаб. диагн. возбудит. опасных инф. бол. - Саратов, 1998. - Т. 1. -С. 3-49. - 6. Crumpton M.Y., Davies D.A.L. // Proc. R. Soc. Lond. - 1956. - Vol. Ser. B 145. - P. 109-134. - 7. Hare J.M., McDonough K.M. // J. Bacteriol. - 1999. - Vol. 181, N 16. -P. 4896-4904. - 8. Laird W.J., Cavanaugh D.C. // J. Clinical Microbiol. - 1980. - Vol. 11, N 4. - P. 430-432. - 9. Lindahl M., Farris A., Wadstrom T., Hjerten S. // Biochim. Biophys. Acta. - 1981. - Vol. 677. - P. 471-476. - 10. Perry R.D., Feth-erston J.D. // Clin. Microbiol. Rev. - 1997. - Vol. 10, N 1. -P. 35-66. - 11. Podladchikova O.N., Dikhanov G.G. // Adv. Exp. Med. Biol. - 2003. - Vol. 529. - P. 121-124. -12. Rosenberg M., Gutnic D., Rosenberg E. // FEMS Microbiol. Lett. - 1980. - Vol. 9. - P. 29-33. - 13. Rosqvist R., Skurnik M., Wolf-Watz. H. // Nature. - 1988. - Vol. 334. - P. 522525. - 14. Skurnik M., Bolin I., Heikkinen H. et al. // J. Bacteriol. - 1984. - Vol. 158. - P. 1033-1036. - 15. Surgalla M.J., Beesley E.D. // Appl. Microbiol. - 1969. - Vol. 11. -P. 834-838.

O.N.Podladchikova, V.A.Rykova, V.S.Ivanova,

S.A.Lebedeva

Characterization of the Autoagglutination Property in Different Yersinia pestis Strains

Rostov-on-Don Anti-Plague Research Institute

Autoagglutination property (AA) was comparatively studied in various Yersinia pestis strains. Those differing in their pigment sorption ability (Hms property) demonstrated varying AA expression. Hydrophobic interactions were shown to form the basis for AA of highly hydrophobic Hms- strains because their autoagglutination property depended upon salt concentrations, also being sensitive to a non-ionogenic detergent, Twin 80. AA of Hms+ strains deprived of the abovelisted properties, was based on a yet unknown mechanism that was likely to be connected with the pigment receptor. The data obtained made it possible to conclude that different or structurally distinct components were responsible for AA of Hms- and Hms+ Yersinia pestis strains.

Key words: Y. pestis, autoagglutination.

nocTynu^a 05.07.05.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.