CC BY
313УДК: 615.322
ГРИБЫ - ЛЕЧЕБНЫЕ СВОЙСТВА (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
КАРОМАТОВ ИНОМЖОН ДЖУРАЕВИЧ
руководитель медицинского центра «Магия здоровья». Город
Бухара Республики Узбекистан ORCID Ю 0000-0002-2162-9823
ТАКАЕВА ШОИРА КАМАЛОВНА преподаватель Бухарского государственного медицинского колледжа. Город Бухара Республики Узбекистан
О^С1Ю Ю 0000-0001-7263-5484 АННОТАЦИЯ
В статье приводится обзор литературы по лечебному применению съедобных и некоторых несъедобных грибов. Гоибы применяются в пищу и как лечебное средство с древности. Как лечебное средство ценились такие грибы как трутовник, чага. Современные научные исследования показали, что грибы обладают рядом полезных для здоровья свойств. Благодаря своему уникальному составу грибы являются прекрасным низкокалорийным продуктом питания. Противовоспалительные, антиокси-дантные свойства съедобных и несъедобных грибов обусловливают их полезные для здоровья свойства. Характерным для всех грибов являются противоопухолевые свойства. Такие грибы как трутовник, чага широко используются как противоопухолевые свойства. Такие свойства определены также у вешенок, белого грибы и других. Исследования грибов перспективно для разработки новых лекарственных средств для применения при таких заболеваниях как метаболический синдром, онкологические заболевания, нейродегенеративные заболевания.
Ключевые слова: грибы, трутовник, чага, вешенки, белый гриб, лечебные свойства, фитотерапия, Попоив оЬНдииэ, Соргпив оотаив, ЛгтШап'а те!!еа, Е!аттиНпа veluterium, I.уоорегбоп
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №11 - ноябрь (39) 2019
giganteum, Agaricus campestris L., Бетта глюканы, Cantharellus cibarius
MUSHROOMS - THERAPEUTIC PROPERTIES (LITERATURE REVIEW)
KARAMA TOVINOMZHON JURA YEVICH
head of Medical Center"Magic of Health" City of Bukhara of the Republic of Uzbekistan ORCID ID 0000-0002-2162-9823
TAKAEVA SHOIRA KAMALOVNA teacher of Bukhar Medical College. Bukhara City of the Republic of
Uzbekistan. ORCID ID 0000-0002-7287-6437 ABSTRACT
The article provides an overview of literature on the therapeutic use of edible and some inedible fungi. Mushrooms have been used in food and as a treatment since ancient times. As a therapeutic remedy, mushrooms such as a coward, a chaga were valued. Modern scientific research has shown that mushrooms have a number of health benefits. Due to their unique composition, mushrooms are a wonderful low-calorie food product. Anti-inflammatory, antioxidant properties of edible and non-edible fungi make them useful for health. Antitumor properties are characteristic of all fungi. Mushrooms such as pant, chaga are widely used as antitumor properties. Such properties are also determined in hangers, white mushrooms and others. Research on fungi is promising for the development of new drugs for use in diseases such as metabolic syndrome, oncological diseases, neurodegenerative diseases.
Keywords: mushrooms, pant, chaga, hangers, white mushroom, therapeutic properties, phytotherapy, Inonotus obliquus, Coprinus comatus, Armillaria mellea, Flammulina veluterium, Lycoperdon gigantium, Agaricus campestris Canana, Betta- glucans, Cantharellus cibarius.
КУЗИКОРИНЛАРНИНГ ДАВО ХУСУСИЯТЛАРИ (АДАБИЁТ ШАРХИ)
КАРОМАТОВ ИНОМЖОН ДЖУРАЕВИЧ
«Магия здоровья» тиббий марказ бошлиги. Бухоро ш., Узбекистон Республикаси. ORCID ID 0000-0002-2162-9823
ТАКАЕВА ШОИРА КАМАЛОВНА Бухоро тиббий колледж уцитувчиси. Бухоро ш., Узбекистон Республикаси. ORCID ID 0000-0001-7263-5484 АННОТАЦИЯ
Мацолада цузицоринларни ва баъзи замбуругларнинг доривор хусусиятлари цацида адабиёт шарци келтирилган. ¡¡узицоринлар озица сифатида ва доривор воситаси сифатида цадимдан ишлатиб келинган. Агорикун, чага каби замбуруглар даво воситаси сифатида машцур булган. %озирги замон илмий текширишлари курсатишича цузицоринлар купгина фойдали хусусиятларга эга. Узининг кимёвий таркиби буйича замбуруглар кам калорияли озица цисобланадилар. ¡¡узицоринлар ва замбуруглар антиоксидант ва яллигланишга царши хусусиятлари аницланган. Бундан ташцари уларнинг усмаларга царши хусусиятлари хам маълум. Агорикун, чага замбуруглари илмий тиббиётда усмаларга царши восита сифатида ишлатилади. Бундай хусусиятлар замбуругларда хам аницланган. Замбуруглар ва цузицоринлар метаболик синдром, онкологик касалликлар, нейродегенератив касалликларнинг профилактикаси ва даволашида янги дори воситалар ишлаб чицариш учун сабоцлидир.
Калит сузлар: цузицоринлар, агорикун, чага, вешенка, ок цузицорин, даво хусусиятлари, фитотерапия, Inonotus obliquus, Coprinus comatus, Armillaria mellea, Flammulina veluterium, Lycoperdon giganteum, Agaricus campestris L., бетта глюканлар, Cantharellus cibarius
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №11 - ноябрь (39) 2019
ТРУТОВНИК, АГАРИК Polyporus officinalis Fries. Fomitopsis officinalis L. Это
лиственная губка, которая растет на стволах лиственниц, хвойных деревьев, тутовника. Встречаются повсюду. Это средство было очень популярно в древней медицине. В современной научной медицине используется редко и находится в фазе изучения.
Химический состав: Изучен недостаточно. В агарике определено до 16% агарицина - [2; 3]; лимонная, рициновая, фумаровая, эбуриколовая, яблочная кислоты; глюкозамин; маниит; фитостерины, смолы, хлоридные кумарины - [140]. Кроме них определены фомефическая кислота тритерпеновый лактон фомеффицинин, фомитопсин C, дегидросульфуреническая, дегидроэбуриконическая, дегидроэбурицоическая, 3-кето-дегидро-сульфуреническая и лари-цинолическая кислоты - [114].
Древняя медицина определяла мужские и женские разновидности агарика. Мужская особь твёрже и круглая. В лечении используют женскую особь, которая отличается хрупкостью и белым цветом. По утверждению древних авторов агарик красного и чёрного цвета ядовит. Для употребления белый агарик проти-рают через сито. То, что остается - считается ядовитым, а то, что прошло через сито, используют.
Натура агарика определялась как горячая в I степени и сухая во II. Если его съесть выводит желчь, черную желчь и флегму, разжижает густую материю, растворяет вредные ветра, отторгает липкую материю. Он растворяет твердые опухоли, лечит опухоли. Он лечит колиты, доводит лекарственные вещества до глубины тела, гонит мочу и месячные. Агарик выводит из организма все яды, сильно укрепляет нервы, сердце и мозг, веселит и лечит слизистые лихорадки. При приеме во внутрь лечит холодные головные боли, мигрень.
Если агарик съесть с корнем ревеня остановит истечение из носа. Если отварить его в уваренном вине и этим полоскать рот растворит опухоль языка, укрепит десна.
Если выпить 1,75 гр. агарика с водой остановит кровавую рвоту и кровотечение их органов груди. Если же выпить 3,5 гр. трутовника с анисом вылечит одышку, удушье. Если такое же количество выпить с сиропом солодкового корня вылечит боли в органах груди, застарелый холодный кашель, астму. Если же выпить с вином вылечит язву лёгких.
Прием во внутрь 3,5 - 4,5 гр. агарика, с корнем ревеня лечит заболевания печени, желудка и закисание пищи в желудке. Если такое же количество агарика употребить с мёдом и травой горькой полыни вылечит мясную лихорадку, успокоит боли внутренних органов, раздробит камни почек и мочевого пузыря. Клизмы его отваром очень полезны при колите, язвах кишечника. Если его жевать и при этом глотать образовавшую слюну, это одно из лучших средств, для желудка, при не переваривании пищи. Если выпить 3,5 гр. агарика с мёдом снизит жар, выведет посредством кала желчь, флегму, прогонит мочу и месячные, вылечит удушение матки (истерию). Если его употребить с медовой водой и сабуром поможет при язве матки. Если трутовник выпить с травой горечавки желтой растворит все виды опухолей.
3,5 гр. трутовника растереть с уксусомёдом. Если это средство применить местно лечит болезни суставов, радикулит, подагру, заболевания нервов и постоянные лихорадки. Если его держать при себе, не ужалит скорпион. Если съесть 0,8 гр. трутовника улучшит цвет лица. Агарик помогает при падучей. Все виды агарика, при чрезмерном применении приводят к депрессиям, заболеваниям легких. При таких состояниях нужно применить молоко. Доза агарика на прием до 4,5 гр.
В современной народной медицине таджиков тутовый трутовник - ашки тут используют при лечении ангин. Для этого 5-10 гр. пыльцы трутовника настаивают в течение часа, в 1 стакане кипяченой воды. По утверждению табибов, даже при самом тяжелом заболевании, достаточно 2-3 разового полоскания этим настоем.
Липидная фракция тела трутовника обладает выраженными антиоксидантными свойствами - [6]. Трутовник, благодаря своим полисахаридам оказывает иммуномодулирующее антиоксидантное, противоопухолевое, противовоспалительное воздействие - [275; 5; 4; 308]. Известно, что агарицин, в дозе до 5 мг. действует успокаивающе и как легкое снотворное. При более высоких дозах он вызывает рвоту, понос. Определены его потогонные, мочегонные, понижающие сахар, противоопухолевые свойства агарицина. Выявлена противовирусная активность эктрактов лиственной губки - [48]. Отмечены положительные результаты применения отвара трутовника при базедовой болезни. Определены антибактериальные свойства трутовника - [57; 44; 45]. Липидная фракция агарика обладает антимикробной и противоожоговой активностью - [7]. Агарик не токсичен, научные исследования не выявили никаких токсических свойств - [21].
ЧАГА, БЕРЕЗОВЫЙ ГРИБ
Inonotus obliquus (Pers.) Pil., Fungus betulinus L. Это
многолетний гриб из семейства трутовых, паразитирующий на стволах взрослых берез. Плодовое тело состоит из крупных, твердых желвакообразных наростов, внутри коричневых, твердых, ближе к древесине - более мягких и светлых. Гифы гриба разрушают древесину и вызывают загнивание дерева. Встречается в лесной зоне России, Украины, Белоруссии, преимущественно в районах с влажным климатом. Чагу можно приобрести в аптечной сети.
Химический состав. Плодовое тело гриба содержит хромогенный полифенол-карбоновый комплекс, гуминоподобную чаговую и агарициновую кислоты, красящие и смолистые вещества, тритерпиноид, инотодиол, полисахариды, стерины, органические кислоты, небольшое количество алкалоидов, натрий, калий и значительное количество марганца - [54]. В водных экстрактах чаги определяются разные комплексы меланина - [220]. В наростах чаги содержится зола (до 12,3%), в состав которой входят окиси А1, Fe, Si, К Mg, Ои, Mn, Zn и Na - [32; 12]. Обнаружены органические кислоты: щавелевая, муравьиая, уксусная, масляная, ванилиновая, параокси-бензойная, две тритерпеновые кислоты из группы тетрациклических тритерпенов, обликвиновая, инонотовая, а также свободные фенолы, полисахариды - [16].
Отмечено присутствие птеринов, лигнина, клетчатки, стеринов - эртостерола, ланестерола, инотодиола - [22]. Основными биологически активными веществами чаги считаются водорастворимые окрашенные хромогены, образовавшиеся из комплекса химически активных фенольных альдегидов, полифенолов, окси-фенол-карбоновых кислот и их хининов. Определены тритерпены - иноно-тусолы A, B, О, D, E, Р, G, дитерпены, инонотусическая кислота, ланостановые тритерпены - инонотусаны А, В, О, сесквитерпены дриманового типа, инотолактон О, терпеноиды - 6^-гидрокси-транс-дигидроконфертифолин, инотодиол, 3в,22-дигидроксианоста-7,9(11), 24-триен, 3^-гидроксициннамолид, и 17-гидрокси-энт-атисан-19-оическая кислота, 3в-гидрокси-25,26,27-тринорланоста-8,22Е-диен-24-оическая кислота - [203; 332; 337; 46]. В составе меланина чаги определены насыщенные углеводороды нормального и изостроения, а также пристан, фитан, стераны и терпаны; моно-, ди- и тригли-цериды, О-диалкиловые эфиры глицерина, высших жирных кислот и алифатических спиртов, углеводороды и воски, стерины и их эфиры
- [16; 37; 38]. В чаге открыты новый класс соединений - пигменты стирилпироны, играющие такую же роль как флавоноиды в растениях
- [188, р.359].
Из хромогенного комплекса выделяются также гуминоподобные вещества, продуктами разложения которых являются глюкоза, галактоза и ксилоза.
Данных применения чаги в древней медицине нет. Возможно, ему можно приписать те свойства, которые определены древней медициной у агарика.
В народной медицине березовый гриб известен еще с XVI в. Его применяют при заболеваниях желудочно-кишечного тракта, раке, как общеукрепляющее, тонизирующее средство. Иногда настой заменяет чай.
Благодаря полисахаридам и полифенолам чага оказывает антиоксидантное воздействие - [98; 235; 280; 201; 230; 213; 139; 12; 100; 108].
Меланин чаги обладает выраженными антиоксидантными и генопротективными свойствами - [11].
Полисахариды чаги, благодаря антиоксидантным свойствам, положительно действуют при терапии экспериментального хронического панкреатита - [137].
Выявлены гепатопротективные свойства экстракта чаги - [24; 119; 132].
Благодаря антиоксидантным свойствам экстракты чаги улучшают познавательные функции, память - [118].
Эргостерол, эргостерола пероксид и траметенолическая кислота основные компоненты чаги с противовоспалительными свойствами - [12; 212]. Препараты чаги оказывают противовоспалительное воздействие - [135; 297; 92; 226]. На основе чаги готовятся мази, крема, которые используют при лечении артритов, артрозов, в
стоматологии - [49; 12; 43]. Получены хорошие эффекты при лечении препаратами чаги глоссалгий, эрозии твердых тканей зуба - [18; 10]. Выявлена эффективность крема «Чага»» для обезболивания болевого синдрома при остеоартрозах - [49].
Экстракты чаги могут служить функциональным средством с противоаллергическим действием - [131; 334].
Водный настой и полугустой экстракт (бефунгин) плодового тела применяют в качестве симптоматического средства при различных злокачественных новообразованиях в тех случаях, когда исключены хирургическое вмешательство и лучевая терапия, при хронических гастритах с пониженной кислотностью, язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки, полипозе желудка и кишечника - [51; 58]. Установлено, что в начальных стадиях развития рака препараты чаги могут задержать рост опухоли, уменьшают боли, улучшают общее самочувствие больных, но не являются радикальным средством лечения злокачественных образований.
Спиртовые экстракты чаги оказывают хемопревентивное воздействие при раке толстого кишечника - [187].
Считают, что противоопухолевые свойства чаги связаны с его иммуностимулирующими свойствами, в первую очередь благодаря полисахаридам - [80; 172; 173; 160; 95; 307; 113; 196; 280; 12; 350; 317; 90]. Полисахариды чаги оказывают хемопровентивное воздействие при раке легких - [191]. Ланостаны - тетрациклические тритерпеноиды, производные ланостеролов чаги обладают выраженными противоопухолевыми свойствами - [266; 55]. Низкомолекулярные полифенолы чаги обладают выраженной противоопухолевой активностью - [182]. Некоторые исследователи связывают противоопухолевые свойства чаги с наличием бензальдегидов, фенолов, эргостерола пероксидом, траметенолической кислотой -[160; 234; 221; 212]. Противоопухолевые и иммуностимулирующие
свойства чаги связывают также с лигнин-углеводными комплексами - [302; 238]. Определены антимутагенные свойства компонентов чаги - [157]. Подтверждены противоопухолевые свойства чаги при опухолях дыхательной, пищеварительных систем - [193]. Среди веществ чаги наиболее сильным хемопревентивным, в отношении рака кишечника является эргостерола пероксид - [164]. Выявлены свойства экстрактов чаги ингибировать рост меланомы - [160; 335; 191], нейроглиоцитомы - [237].
Интересно, что внешнее у-облучение улучшает лечебные, противоопухолевые свойства чаги - [169].
Экспериментальные исследования на животных показали, что водные и спиртовые экстракты чаги оказывают гипогликемическое, антилипидпероксидативное воздействие при искуственно вызванном сахарном диабете - [284; 315]. Полисахариды чаги оказывают гипогликемическое воздействие - [102]. Водорастворимый меланин чаги проявляет антидиабетическую активность - [189]. Терпеноиды чаги обладают анти а-гликозидазной активностью - [332]. Препарат «Чаговит» эффективен при терапии сахарного диабета II типа - [8]. Определены также гипохолестеринемические свойства экстрактов чаги - [208].
Экспериментальные исследования показали, что полисахариды чаги предупреждают развитие физической усталости при наличии большой нагрузке - [338].
100 гр. чаги заливают теплой кипяченой водой на 4 часа для размягчения; после чего гриб измельчают на терке и заливают 500 мл кипяченой воды при температуре +50° С, настаивают 2 суток, принимают по 1 стакану 3 раза в день за 30 минут до еды при язвенной болезни желудка, гастрите. При опухолях малого таза делают клизмы по 50-100 мл. настоя. При заболеваниях, сопровождающихся задержкой жидкости в организме, принимают
настой двойной крепости (200 гр. на 500 мл. воды), но в два раза меньше (по 100 мл. 3 раза в день). Настой чаги не токсичен, может храниться до 4 суток.
Экспериментальные исследования на собаках показали, что препарат «Дягиль - Чага» оказывает профилактическое и терапевтическое воздействие при гинекологических заболеваниях, в частности эндометритах, пиометрах и гиперплазии эндометрия - [28].
Трипептиды чаги ингибировали агрегацию тромбоцитов - [141].
Чага противопоказана больным с хроническим колитом и хронической дизентерией. При лечении чагой исключено применение пенициллина и внутривенное введение глюкозы. При приеме препаратов чаги необходимо соблюдать молочно-раститель-ную диету, ограничивая употребление мяса, животных жиров, острых блюд. иномжон
Открыты противовирусные (против вируса гепатита С, вируса герпеса, гриппа ^N1, ВИЧ и др.) свойства экстрактов чаги - [278, р.614; 250, р.39; 52, с.413; 53, с.475; 39, с.48; 47, с.38].
Выявлены антибактериальные свойства экстрактов чаги - [56, с.168]. Экспериментальные исследования показали эффективность препаратов чаги при лечении бронхиальной астмы - [319, р.1070].
Экспериментальные исследования показали, что 3,4-дигид-роксибензалокетон чаги предупреждает поражение нервной ткани 6-гидроксидопамином - [126, р.160]. Тритерпеноиды чаги предупреждают поражение тканей организма тетрахлорметаном -[348, р.694].
Бетулин и траметенолическая кислота чаги ингибируют фермент тирозиназу, в то время как инотодиол и ланостерол повышают активность этого фермента - [321].
Экспериментальные исследования показали, что прием экстрактов чаги предупреждает поражение тестикулярно аппарата под воздействием микроволн - [349, р.868].
Открываются большие перспективы применения препаратов чаги при лечении таких заболеваний как сахарный диабет, СПИД и др. - [351, р. 160].
Из чаги изготавливают густой экстракт «Бефунгин» и сухой экстракт в виде таблеток.
СЪЕДОБНЫЕ ГРИБЫ
Человек употребляет в пищу множество грибов. Некоторые из них являются лекарственными средствами. Такие грибы как чага, агарик рассмотрены нами отдельно.
Химический состав: В плодах гриба дождевика содержится аминокислоты, эргостерин, липоиды и ферменты. В теле всех видов съедобных грибов в большом количестве определяют полисахариды - [217, р.372]. В теле большинства съедобных грибов идентифицированы жирные кислоты - пальмитиновая, олеиновая, стеариновая и линолеиновая кислоты. Грибы содержат биоактивные компоненты ловастатин, у-аминобутирическую кислоту ^АВА) и эрготионеин -[207, р.363; 202, р.323; 97, р.291]. В теле вешенок определены 48,452,7% общих углеводов, 4,3% зольных элементов, 7,3% общего и 4,0% истинного белка, 1,8% липидов, 1,18% кальция, 0,06% фосфора, 2 мг/кг каротина, 17,8 мг/кг витамина Е - [25, р.308].
Запах грибов обусловлен сложной смесью метионаля и производных фурана, пиразина и пиррола, которые определяются в большем количестве в белых грибах, а намного меньше в вешенках. Содержание ароматических альдегидов и алифатических с числом атомов углерода 6, 9 и 10 было больше в вешенках - [35, с.611]. Съедобные грибы очень широко используются в пищевой промыш-
ленности в виде добавок, солений, маринадов и др., относятся к функциональным продуктам - [85, p.93; 27, c.44; 36, c.336; 50, c.89].
В древней медицине натуру съедобных грибов определяли как холодную в III степени и влажную. При употреблении во внутрь образуют вонючую материю, плохо перевариваются. Если употребить много послабляют, приводят к колиту.
Если их употребить в большом количестве приводят к заторможенности, параличам, потере сознания, затруднению мочеиспускания. Чрезмерное употребление приводит также к бесплодию. Лучшим противоядием от вреда грибов является горчица. Лучше их употребить вместе с укропом, солью, оливковым маслом, одуванчиком, черным перцем. Нельзя употреблять грибы с яйцами или мясом. Нельзя также запивать грибы холодной водой. Если человек употребил грибы и его ужалит насекомое, то ничто ему не поможет.
Сушеные грибы с рыбьим жиром, при наружном применении лечат грыжи. Если ввести в глаза сок грибов лечит язвы глаз, укрепляет зрение.
Употребление сушеных грибов останавливает любое кровотечение, кроме кровавого поноса.
Широко грибы используют в русской народной медицине. Экстракт белого гриба (Boletus edulis) используется при обморожении. Гриб навозник (Coprinus comatus, c. atramentarius) применяли для лечения алкоголизма. Настойка из лисичек (Cantharellus cibarius) с древних времен применялась как средство от гельминтов, при ангине, фурункулезеи при некоторых заболеваниях нервной системы и глазных болезнях. Считают, что подосиновики (Leccinum quercinum) способствуют улучшению состава крови, снижают содержание холестерина. Осенние опята (Armillaria mellea) используют как слабительное, а зимние (Flammulina veluterium) - как средство против онкологических заболеваний - [17, с.22].
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №11 - ноябрь (39) 2019
Гриб дождевик (Lycoperdon giganteum Batsch.) в монгольской народной медицине используется для лечения ран, ожогов огнем, заболеваний кровеносных сосудов. Золу этого вида применяют наружно при лечении ран.
Шампиньоны (Agaricus campestris L.) применяют для лечения ран и опухолей.
В народной медицине Ханты грибы применяют как раноза-живляющее и противоопухолевое средство - [271, р. 179].
В современной научной медицине определены гипогликеми-ческие свойства грибов - [288, р.73; 287, р.464]. Кроме того, у большинства съедобных грибов определены антиоксидантные, противоопухолевые свойства - [110, р.479]. Большинство съедобных грибов обладают антибактериальными свойствами - [66, р.3862].
Большие перспективы применения грибов при лечении злокачественных новообразований. Большинство съедобных грибов обладают противоопухолевыми свойствами - [303, р.96].
Вешенки
В плодовых телах вешенки обыкновенной - Pleurotus ostreatus ^г.) Kumm. содержится молокосвертывающий фермент - [30, с.692; 31, с.115]. Водяные экстракты грибов содержат гемолитический фермент - [68, р.461].
Экстракты вешенок, ее мицелл оказывают бактерицидное и антигрибковое воздействие - [294, р.3671; 59, р.834; 180, р.238; 96, р.186; 336, р.589]. Также выявлены противовирусные свойства вешенок - [41, с.12; 42, с. 18].
Экстракты гриба оказывают гиполипидемическое, антиатероге-ническое воздействие, посредством уменьшения поглощения липи-дов и усилением катаболизма холестерина - [71, р.195; 93, р.179; 76, р.291; 73, р.252; 75, р.190; 72, р.329; 242, р.243; 74, р.286; 69, р.342; 133, р.475]. Кризин, выделенный из тела вешенок оказывает
гиполипидемическое воздействие, уменьшает оксидативное напряжение, вызванное повышением холестерина крови - [62, р.323].
В составе белков вешенок выделены протеиды с антигипер-тензивным действием - [185, р.12348].
Из тела вешенок выделен фермент - фибринолитическая протеаза - [277, р.1283; 205, р.253].
Из тела разновидности вешенок Р!еиго1ив пеЬг^е^в выделен полисахарид (PNPA), с молекулярным весом 105кЭа. Экспериментальные исследования показали, что прием этого полисахарида уменьшает поражение миокардиоцитов при искусственно вызванной ишемии - [318, р.7].
Эти грибы богаты полисахаридами, благодаря чему оказывают выраженное антиоксидантное воздействие - [330, р.291; 344, р.265; 263, р.1206; 294, р.3671; 249, р.77; 184, р.128]. Антиоксидантные свойства мицелия вешенок связывают с экзополисахаридами и межклеточными полисахаридами - [295, р.166]. Гетероглюкан(РБ), выделенный из мицелия вешенок оказывает выраженное антиоксидантное воздействие - [252, р.21]. Экспериментальные исследования на животных показали, что экстракты вешенок приостанавливают окислительные и хронические воспалительные процессы, сопровождающие процесс старения, активируя антиокислительные ферменты - глюкоза 6 фосфатдегидрогеназу, аскор-батпероксидазу, ксантинадегидрогеназу - [150, р.191; 289, р.654; 124, р.96]. Большое фармакологическое значение, наряду с хитином имеют полисахариды бетта глюканы, которые составляют основу оболочки грибов.
Бетта глюканы активируют лимфоциты ТМ, тем самым оказывая противоаллергическое, иммуномодулирующее воздействие - [274, р.3634; 104, р. 106; 216, р.21; 101, р.865]. Плейран -в глюкан предупреждает развитие острых инфекционных заболева-
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №11 - ноябрь (39) 2019
ний верхних дыхательных путей - [218, р.61]. Рандомизированные, плацебо контролируемые исследования показали, что прием плейрана р-глюкана, выделенного из вешенок, благодаря иммуномо-дулирующим свойствам, оказывает терапевтическое воздействие при реккурентных инфекциях дыхательных путей у детей с аллергией - [155, р.399; 154, р.474]. Экстракты вешенок также оказывают иммуностимулирующее воздействие - [34, с.77; 219, р.3162; 290, р.317]. Мазь на основе глюканов вешенок успешно применена при лечении атипического дерматита - [156, р.4].
Глюкан вешенок плейран оказывает противоопухолевое воздействие -[267, р.631].
Употребление вешенок предупреждают развитие онкологических заболеваний, рака молочной железы и кишечника - [70, р.730; 19, с.266; 186, р.70; 306, р.411; 153, р.1312; 310; 215, р.440; 316; 20, с.68; 63, р.314; 111, р.77; 219, р.3162; 64, р.294]. Экстракты вешенок губительно действуют на клетки опухоли кишечника - [152, р.650]. Вешенки губительно действуют на клетки карциномы мочевого пузыря - [181, р.183]. Эти свойства вешенок связывают с полисахаридами - [279, р.1832; 176, р.565; 264, р.133]. Полисахарид РОМР2, выделенный из тела вешенок губительно действует на клетки опухоли желудка - [82, р.2389]. Из тела вешенок выделены пептиды, оказывающие губительное воздействие на клетки рака простаты - [123, р.204]. Метаболиты грибов вешенок оказывают выраженное антилейкемическое воздействие - [241, р.73]. Протеин-глюканы вешенок обладают иммуномодулирующими и противоопухолевыми свойствами - [273, р.1297]. Противоопухолевые свойства вешенок связывают также со свойством экстракта грибов ингибировать телемеразу - [314, р.28]. Рибонуклеаза, выделенная из экстрактов тела вешенок, оказывает противоопухолевое воздействие, усиливает апоптоз опухолевых клеток - [175, р. 1491].
Экспериментальные исследования показали, что сочетанное применение циклофосфамида с вешенками (50мг/кг веса, в течение 10 дней) повышает химиотерапевтическую активность последнего, уменьшает токсическое воздействие его на организм - [33, с. 100; 34, р.77].
Открыты радиопротективные свойства экстракта вешенок -[206, р. 1561].
Экспериментальные исследования показали, что экстракты вешенок оказывают противовоспалительное воздействие при искусственно вызванных артритах - [270, р.510]. У экстрактов вешенок выражены антиподагрические, ингибирующие ксантин окси-дазу свойства - [146, р.300].
Вешенки предупреждают развитие катаракты - [144, р.273].
Вешенки - извлечения из базидиокарпов и мицелл уменьшают нейротоксическое воздействие в амилоида, также обладают анти-ацетилхолинэстеразной активностью - [253, р.368]. Это открывает перспективы для лечения нейродегенеративных заболеваний.
Полисахариды вешенки оказывают гастропротективное воздействие -[327, р.1228].
Определены также гепатопротективные свойства экстрактов вешенок - [149, р.1996]. Экспериментальные исследования показали, что целлюлоза вешенок оказывает терапевтическое воздействие при жировом гепатозе - [138].
Благодаря полисахаридам экстракты вешенок оказывают антидиабетическое воздействие - [345, р.132]. Спиртовые экстракты вешенки обладают выраженными гипогликемическими свойствами -[262, р. 109]. Гипогликемические свойства грибов проявляются за счет увеличения синтеза гликогена в организме, повышения активности глюкокиназы, ингибирования гликоген синтазы киназы и увеличения использования глюкозы периферийными тканями - [151, р.309].
Полисахарид плейран, благодаря иммуномодулирующим свойствам оказывает терапевтическое воздействие при язвенном колите - [239, р.581].
Экспериментальные исследования показали, что водно-этанольный экстракт мицелия вешенок оказывает выраженное гепатопротективное воздействие - [40, с.273].
Вешенки оказывают антитрипанасомальное, антипротозоаль-ное воздействие - [260, р.943; 290, р.317]. Эргостерола пероксид, выделенный из тела вешенок обладает выраженной цитолитической и амебоцидальной активностью против возбудителя амебной дизентерии - [223, р.1986].
Благодаря иммуномодулирующим свойствам, экстракт вешенок повышает эффективность антибиотикотерапии риносинуситов - [13, с.14].
Нужно отметить, что все съедобные грибы аккумулируют соли тяжелых металлов, особенно свинца, поэтому при росте грибов в почве, где находятся соли этих металлов, они становятся ядовитыми для человека - [79, р.89]. Свойство вешенок аккумулировать железо можно использовать как источник геминного железа - [333]. Также можно использовать свойства вешенок аккумулировать соли селена - [225; 224, р.455].
Грибы из рода базидомицетов обладают противовирусными, противоопухолевыми, иммуномодуляторными, гипогликемическими, гиполипидемическими, противовоспалительными свойствами - [353, р.310; 251, р.15; 229, р.245].
Белый гриб
Boletus edulis. На теле белого гриба на 100 гр. сухого веса определены полифенолов 64,601 мг, флавоноидов 19-87 мг, L-аскорбиновой кислоты 22,1-27,4 мг, ß - каротинов 0,531-1,031 мг, ликомена 0,325-0,456 мг и токоферолов 38,64-44,49 мг - [148, р.7953].
Полисахариды белого гриба обладают выраженными антиоксидант-ными свойствами - [342, p.1094; 210, p.8090; 285, p.3386]. Эти свойства грибов уменьшаются при длительной кулинарной обработке - [248, р.331]. По антиоксидантным свойствам белые грибы превосходят все другие съедобные грибы - [247, р.84].
Экспериментальные исследования показали, что прием полисахаридов белого гриба оказывает иммуномодуляторное воздействие, предупреждает возникновение рака почек - [299, р.134].
Благодаря полисахаридам, полисахаропептидам, гликопро-теидам, экстракты белого гриба оказывают хемопревентивное, противоопухолевое воздействие - [195, р.585]. Противоопухолевыми свойствами обладает также выделенный из тела гриба лектин - [77, р.1009; 78, р.592].
Шампиньоны
Agaricus campestris L. Благодаря содержанию большого количества биологически активных веществ - токоферолов, феноль-ных соединений шампиньоны обладают антиоксидантными, бактерицидными свойствами - [177, р.1102; 120, р.1910]. Основным компонентом фенольных веществ белого гриба является розмариновая кислота 7 ± 0,23 до 56 ± 0,15 мг/100 гр. экстракта - [296]. У шампиньонов открыты гипогликемические, инсулиноподобные свойства - [121, р.266].
Шампиньоны оказывают антиоксидантное и противовоспалительное воздействие на организм человека - [120, р.1910].
Шампиньоны оказывают противовоспалительное, антиокси-дантное, гепатопротективное и противоопухолевое воздействие -[261, р.609].
Зимние опята
Flammulina veluterium
Из тела зимних опят выделены Э-арабинитол, маннитол, рибитол, 9 олеическая кислота, 9 12 линоленовая кислота,, 22-тетраен-3-он, стерпуческая кислота, эргоста-5,7,22-триен-3^-ол, 5а, 8а -эпидиокси-эргоста-6,22-диен-3р-ол, 3в, 5а, 9а-тригидрокси-эргоста-7,22-диен-6-он, 5-гидроксиметил-2-(1 -метил-этенил)-1 -цик-логексанол, 1,3-дилинолеин и хемискерамин, фенилаланин, аланин, лейцин, гуанозин, аденозин - [163, р.1040; 162, р.195; 81, р.2879]. Также определены курапен типа сесквитерпены - энокиподинсы -[145, р.934]. Жирные кислоты представлены в основном ненасыщенными жирными кислотами - [125].
Полисахариды зимних опят могут служить как пребиотическое средство - [94, р.1048].
Флавоноиды зимних опят арбутин, эпикатехин, филлурин, апигенин, кепферол, формононетин обладают нейропротективными свойствами - [136, р.282].
Как и все съедобные грибы, зимние опята оказывают выраженное противовоспалительное воздействие при хронических воспалительных процессах - [124, р.96].
Экспериментально выявлены гиполипидемические свойства экстракта зимних опят - [115, р.765; 328]. Полифенолы зимних опят протокатехическая, р-кумарическая и эллагическая кислоты оказывают антиатеросклеротическое воздействие - [258].
Выявлены противовирусные, против вируса гриппа Н^и герпеса свойства зимних опят - [179, р.290]. Эти грибы, благодаря антивирусным свойствам могут служить профилактическим и терапевтическим средством при заболеваниях, вызванных респираторным синктиальным вирусом (RSV) у детей - [86, р.131].
Экстракты грибов обладают антихеликобактерной активностью -[276, р. 174].
Экстракты зимних опят, благодаря 1',3'-дилинеленоилу-2'-линолейил глицеролу обладают анти тирозиназной активностью -[147, р.684; 171, р.457].
Замечено, что среди работников, которые занимаются выращиванием зимних опят, смертность от раковых заболеваний встречается намного реже, чем работников других отраслей - [228, р.537]. Из растущего гриба выделен норсесквитерпеновый алкалоид, обладающий противоопухолевыми свойствами - [166, р.4103]. Олиго и полисахариды зимних опят обладают иммуномодулирующими и противоопухолевыми свойствами - [197, р.263; 158, р.407; 346, р.1530; 313, р.43; 312, р.740]. Определено, что полисахариды зимних опят активируют функции Т-лимфоцитов - [320]. Экспериментальные исследования показали, что прием зимних опят активирует выработку фактора некроза опухоли - а, интерферона у и интерлейкина 2 - [84, р.563]. Обнаружены антиоксидантные, хемопревентивные, противоопухолевые против рака молочной железы и других опухолей свойства зимних опят - [245, р.305; 122, р.423; 165, р.1481; 65, р.6255; 190, р.1526; 329, р.50; 89, р.295].
Полисахариды зимних опят оказывают иммуномодулирующее воздействие - [331, р.204]. Белок Р^-^е, выделенный из тела зимних опят обладает иммуномодулирующими, противовоспалительными и противоопухолевыми свойствами - [174, р.249; 301, р.2724; 236, р.171; 83, р.246; 194, р.244; 87, р.12052]. У этого белка определены и противоаллергические свойства - [134, р.1602]. Из тела зимних опят выделен гликопротеид профламин обладающий выраженной противоопухолевой активностью - [142, р.581; 243, р.104; 143, р.148].
Белок Р^-^е обладает свойствами ингибировать ангитензин превращающий фермент - [170, р.295].
Описаны явления анафилаксии, после употребления зимних опят - [244, р.67].
Осенние опята
Armillaria mellea
В теле осенних опят определены протоиллудановые сескви-терпенарил эстер - 5 '-метокси-армиллазин, 5-гидроксил-армилла-ривин, армилларидин, армиллартин, армилларин, армилларигин, аромилларикин, меллеолид B, армилларилин, армиллазин, армилларидин и меллеолид обладающие цитотоксическими свойствами -[105, р. 16; 323, р.481; 322, р.565; 325, р.28; 326, р.356; 88, р.10002; 200, р.127]. Также определены 2-гидрокси-4-метокси-6-метилбензой-ная и орселиническая кислоты, эргостерол, генистеин, даидзеин, даукостерол, генистин, урацил, D-маннитол, D-эритинол, азелаичес-кая кислота, глицерин-а-моноолеат, стеролы, сфинголипиды, жирные кислоты, не галлюциногенные индольные вещества - триптамин, L-триптофан и серотонин, пептиды, ферменты, аденозин - [324, р.122; 116, р.864; 231, р.97; 233, р.175; 337, р.2674].
В китайской народной медицине осенние опята применяют при лечении различных заболеваний пожилых - [183, р.8].
В теле осенних опят в большом количестве моно и полисахариды, среди которых лидирующее место занимают глюкоза, галактоза, полисахариды SP, CMP, CFBP и CFMP - [343, р.5697].
Экстракты грибов, благодаря фенольным веществам оказывают антиоксидантное и гипогликемическое воздействие - [161, р.419; 209, р.6384; 341, р.280].
Выделенная из осенних опят армилларическая кислота обладает выраженными антибиотическими свойствами - [240, р.201].
Экстракты осенних опят обладают выраженной антиоксидант-ной и антиэдематозной активностью - [183, р.8; 255, р.941].
Экстракты осенних опят обладают выраженной противовоспалительной активностью - [117, р.325].
Выделенное из тела осенних опят вещество - 6- (5-гидрокси-2-пуридил-метиламино)-9-в-рибофураносулпирин - AMG-1 обладает нейропротективными свойствами - [304, р.52].
Ароматический эстер армилларидин осенних опят оказывает противоопухолевое воздействие - [204, р.168]. Это вещество оказывает противоопухолевое воздействие и повышает радиочувствительность клеток рака пищевода - [91]. Противоопухолевыми и иммуномодуляторными свойствами обладает и полисахарид AMP, выделенный из мицелия осенних опят - [286, р.1863; 309, р.667] и пептидоглюкан тела гриба - [61, р.271].
Полисахариды осенних опят (Armillaria mellea) предупреждают поражение костного мозга циклофосфамидом - [199, р.286].
Гриб навозник
Coprinus comatus, c. atramentarius.
Аромат гриба навозника представлен 3-октаноом, 3-октанолом, 1-октен-3-олом, 1-октанолом, 2-метил-2-пентен-4-олидом, 1-додека-нолом и каприлической кислотой, также выявлены и n-битурческая и изобутирическая кислоты - [103, р.269].
Экстракты гриба, благодаря наличию микроэлементов, полифенолов, щелочных белков обладают антиоксидантными свойствами -[311, р.798; 198, р.1486; 292; 182, р.3178]. Благодаря этим свойствам, прием гриба навозника предупреждает развитие оксидативного напряжения в гепатоцитах, под воздействием углерода тетрахлорида - [254, р.4571].
Гриб навозник обладает выраженными антибактериальными свойствами - [293, р.1118].
Ферментированные триглицериды навозника оказывают противовоспалительное и обезболивающее воздействие - [265, р.52].
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №11 - ноябрь (39) 2019
Этил ацетатный экстракт гриба навозника оказывает губительное воздействие на клетки рака яичника - [268, р.470; 269, р.1136].
Полисахариды гриба навозника оказывают иммуномодули-рующими свойствами - [157, р.1133].
Растворимый полисахарид ССРа-1, выделенный из тела гриба навозника обладает иммуномодуляторными и противоопухолевыми свойствами - [122, р.423; 67, р.465; 159, р.353].
Экспериментальные исследования показали, что ежедневный прием грибов в дозе 50мг/кг веса предупреждает поражение печеночных клеток алкоголем - [246, р.1002].
Гриб навозник выращенный искусственно и природный не обладают токсическими свойствами и могут служить как продукт питания богатый биологически активными веществами - [283, р.296]. Концентрация цинка и меди в теле гриба навозника в пределах допустимого и не является токсическим фактором - [60, р.188].
Обогащенный ванадием гриб навозник оказывает гипогликеми-ческие, гиполипидемическое воздействие и для этих целей менее токсичен четырех валентный ванадий - [130, р.196; 129, р.39; 352, р.27; 128, р.283; 211, р.185; 214, р.284]. Экспериментальные исследования показали, что обогащенный ванадием гриб навозник увеличивает скорость сращения костей при переломе у животных с экспериментальных сахарным диабетом - [300, р.433].
Гексановые экстракты гриба являются антиандрогеническим модулятором и перспективны при лечении заболеваний предстательной железы - [339, р.117; 106, р. 117].
Экстракты навозника предупреждают поражение тканей организма аалоксаном - [272, р.1537].
Грибы лисички
Cantharellus cibarius, а luscibarius
В теле и мицелии грибов лисичек определены индольные вещества - 1_-триптофан, 5-гидрокситриптофан, серотонин, мелато-нин, индол, кюнуренинасульфат, 5-метилтриптофан, индолацео-нитрил, триптамин - [232, р.1237]. В теле лисичек определены также гидрокситиросол, тиросол, лютеолин, апигенин - [291, р.4931]. Также определены глицерол 1,2- и 1,3-дилинолеатиглицерол тридегидро-крепениат - [99, р.918].
Благодаря содержащимся в теле лисичек эргостеролу, эргостеролу пероксиду и церевистеролу экстракты гриба оказывают противовоспалительное воздействие - [168, р.1106].
Грибы лисички кумулируют соли цинка, железа, кальция, марганца, калия, магния, благодаря которым оказывают лечебное воздействие при многих заболеваниях - [298, р.226; 227, р.317; 340, р.769]. Лисички богаты биологически активными фенольными веществами, оказывают антиоксидантное, антибактериальное, противоопухолевое воздействие - [66, р.3861; 256, р.172; 259, р.112; 305, р.341; 257, р.75; 178, р.1886; 109, р.565].
У этой разновидности грибов определены антигенотоксические свойства - [222, р.332].
Как и все грибы, лисички кумулируют тяжелые металлы - С< Сг, Си, Нд, Мд, Мп, Ы1, РЬ, Р, РЬ, Бг. Но их содержание в теле грибов не токсично для организма - [107, р.17; 112, р.387]. В связи с тем, что лисички являются хелатом железа, они оказывают антигипоксантное воздействие - [167, р.344].
Список литературы:
1. Абу Али ибн Сино Канон врачебной науки III том Ташкент,
1996.
2. Айрапетова А.Ю. Получение агарициновой кислоты из плодового тела трутовика лекарственного - Вест. Российского ун-та дружбы народов. Сер.: Медицина 2009, 4, 605-606.
3. Айрапетова А.Ю., Громовых Т.И. Выделение и идентификация агарициновой кислоты из мицелия Fomitopsis officinalis (Vill. Fr.:) Bond. et Sing. - Химия растительного сырья 2013, 2, 103-106.
4. Айрапетова А.Ю., Гутенева Г.С. Изучение влияния фракции полисахаридов из трутовика лекарственного на гуморальный иммунитет у животных - Известия Самарского Научного Центра Российской Академии Наук 2014, 16, 5-2, 970-972.
5. Айрапетова А.Ю., Гутенова Г.С., Коновалов Д.А. Выделение полисахаридов из трутовика лекарственного (Fomitopsis officinalis (Vill.) Bond. Et Sing.) и изучение их иммунотропного действия -Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической 2013, 11, 3, 67-69.
6. Айрапетова А.Ю., Сергеева Е.О., Ушакова Л.С., Тираспольская С. Г. Изучение антиоксидантной активности липидной фракции трутовика лекарственного (Fomitopsis officinalis (Vill.) Bond. et Sing.) - Известия Самарского Научного Центра Российской Академии Наук 2013, 15, 3-2, 692-694.
7. Айрапетова А.Ю., Шаталова Т.А., Огурцов Ю.А., Ушакова Л.С. Антимикробная и противоожоговая активность липидной фракции трутовика лекарственного Fomitopsis officinalis (Vill.) Bond.et Sing. -Известия Самарского Научного Центра Российской Академии Наук 2011, 13, 1-4, 755-757.
8. Аляутдин Р.Н., Кабацкая Г.И., Романов Б.К., Сергеев А.В., Шашкина М.Я. «Чаговит» при сахарном диабете II типа - Вестник новых медицинских технологий 2009, 16, 4, 169-170.
9. Амасиацы Амирдовлат Ненужное для неучей М., Наука 1990.
10. Артемьева И.А., Галченко М.В., Аксенова Г.И., Зюбр Т.П., Леонченко Е.Б. Лечение глоссалгии магнитным иммобилизованным препаратом чаги на фоне заболеваний желудочно-кишечного тракта - Бюллетень Восточно-Сибирского Научного Центра Сибирского Отделения Российской Академии Медицинских Наук 2006, 5, 25-26.
11. Бабицкая В.Г., Щерба В.В., Иконникова Н.В. Меланиновые комплексы гриба Inonotus obliquus - Прикл. биохим. микробиол. 2000 июль-август, 439-444.
12. Баландайкин М.Э. Химическая структура и лечебные свойства чаги Фармация 2013, 5, 52-55.
13. Безрукова Е.В., Конусова В.Г., Воробейчиков Е.В Повышение эффективности антибактериальной терапии острого гнойного риносинусита - Российская оториноларингология 2013, 3 (64), 10-14.
14. Беруни А.Р. Фармакогнозия в медицине Ташкент, Фан 1973.
15. Ботанико-фармагностический словарь под ред. Блиновой К.Ф., Яковлева Г.П. М., «Высшая школа» 1990.
16. Бурмасова М.А., Сысоева М.А. Состав веществ бутаноль-ного экстракта из меланина чаги - Химия растительного сырья 2012, 1, 149-152.
17. Власова Л.М., Чумак А.М. Целебные свойства грибов - II Лужские научные чтения. Современное научное знание: теория и практика 2014, 19-22.
18. Галченко В.М., Артемьева И.А., Аксенова Г.И., Зюбр Т.П., Васильев И.Б. Результаты лечения активной формы эрозии твердых тканей зуба сухим экстрактом чаги и иммобилизованным магнитным гелем - Бюллетень Восточно-Сибирского Научного Центра Сибирского Отделения Российской Академии Медицинских Наук 2006, 5, 50-51.
19. Герасименя В.П., Камзолкина О.В., Ефременкова О.В., Богуш Т.А., Милевич Т.И., Орлов А.Е. Антимикробные, антитоксические, радиопротекторные и радиосорбционные свойства новой биологически активной добавки к пище «Экстракт мицелия вешенки «ОВО-Д» - Успехи медицинской микологии 2003, 1, 1, 265-266.
20. Герасименя В.П.,Милевич Т.И., Наумов А.Д., Захаров С.В., Поляков В.Ю., Кирьянов Г.И., Гумаргалиева К.З., Путырский Л.А., Путырский Ю.Л., Сачек М.М. Противоопухолевая активность экстракта мицелия гриба «вешенка обыкновенная» - Здравоохранение (Минск) 2012, 10, 64-68.
21. Жилинская Н.В., Громовых Т.И., Кузнецова Е.А. Изучение антимикробной и фунгицидной активности штаммов Fomitopsis officinalis (Fr.) Bondartsev & Singer, Piptoporus betulinus (Bull.) P. Karst. и Trametes versicolor (L.) C.G. Lloyd - Успехи медицинской микологии. 2014, Т. 12, 448-449.
22. Жукович Е.Н., Семенова М.Ю., Шарикова Л.А., Прибыткова Т.Ф. Тет-рациклические тритерпены чаги, Inonotus obliquus (pers.) Pil.,
произрастающей в России - Химико-фармацевтический журнал 2010, 44, 9, 28-29.
23. Зох,идов Х. Канзи шифо - Душанбе Ирфон 1991.
24. Иванова Г.А., Сысоева М.А., Зобов В.В. Гепатопротекторные свойства меланинов чаги - Бутлеровские сообщения 2013, 35, 9, 8489.
25. Капич А.Н., Пучкова Т.А., Целеш О.О., Осадчая О.В., Козинец А.И. Химический состав и антиоксидантная активность твердофазной культуры вешенки обыкновенной - Успехи медицинской микологии 2014, т XII, Глава 5, 306-308.
26. Кароматов И.Дж. Простые лекарственные средства Бухара
2012.
27. Кострова И.Е.,Федорова Р.А.Использование мицелия гриба вешенки для повышения пищевой ценности хлеба - Вестник международной академии холода 2004, 4, 42-44.
28. Кузьмич Р.Г., Мирончик С.В., Ятусевич Д.С., Касьянова Е.С. Профилактическая эффективность фитопрепарата «дягиль-чага» при гиперплазии эндометрия у собак - Ученые записки учреждения образования "Витебская Ордена "Знак Почета" Государственная Академия Ветеринарной Медицины» - 2010, 46, 2, 35-38.
29. Кьосев П.А. Полный справочник лекарственных растений М., Экмо-пресс 2000.
30. Лебедева Г.В., Проскуряков М.Т. Очистка и характеристика молокосвертывающих ферментов Вешенки обыкновенной (Р^игоШв Ов^еаШв (РР.) Китт.) - Прикл. биохим. и микробиол. 2009, 45, 6, 690-692.
31. Лебедева Г.В., Проскуряков М.Т., Кожухова М.А. Выделение и характеристика фермента сычужного действия из плодовых тел вешенки обыкновенной - Известия Высших Учебных Заведений. Пищевая Технология 2008, 1, 114-115.
32. Ловкова М.Я., Рабинович А.М. и др. Почему растения лечат М., Наука 1990.
33. Меерович Ир.Г., Янг М., Джианг П., Хоффман Р.М., Герасименя В.П., Орлов А.Е., Савицкий А.П., Попов В.О. Изучение комбинированного действия циклофосфана и экстракта мицелия вешенки на меланому Ь16-ГО мышей, экспрессирующей зеленый флюоресцирующий белок - Российский Биотерапевтический Журнал 2005, 4, 3, 95-100.
34. Милевич Т.И., Конопля Е.Ф., Путырский Л.А., Герасименя В.П., Орлов А.Е. Влияние экстракта вешенки на резистентность организма при опухолевом росте и химиотерапии -Онкологический журнал 2008, 2, 3(7), 74-77.
35. Мишарина Т.А., Мухутдинова С.М., Жарикова Г.Г., Теренина М.Б., Крикунова Н.И., Медведева И.Б. Состав летучих компонентов сушеных белых грибов и вешенки - Прикладная биохимия и микробиология 2009, 45, 5, 606-611.
36. Мухутдинова С.М., Жарикова Г.Г. Использование грибных порошков различного состава в общественном питании - Успехи современного естествознания 2012, 12, 336.
37. Никитина С.А., Хабибрахманова В.Р., Сысоева М.А., Носова Ф.Ф. Исследование меланина чаги. II. Состав фракции углеводородов - Химико-фармацевтический журнал 2015, 49, 8, 29-31.
38. Никитина С.А., Хабибрахманова В.Р., Сысоева М.А. Исследование меланина чаги. I. Липофильные вещества меланина чаги - Химия растительного сырья 2014, 3, 185-191.
39. Полковникова М.В., Носик Н.Н., Гараев Т.М., Кондрашина Н.Г., Финогенова М.П., Шибнев В.А. Изучение антигерпетической активности гриба чага (Inonotus obliquus) выявленных в клетках Vero, инфицированных вирусом herpes simplex - Вопросы вирусологии 2014, 59, 2, 45-48.
40. Поляков В.Ю., Голышев С.А., Кирьянов Г.И., Арифулин Е.А., Герасименя В.П., Захаров С.В., Гумаргалиева К.З., Путырский Ю.Л. Гепатопротекторное действие препарата на основе экстракта мицелия вешенки при развитии экспериментального стеатоза печени - Биологические Мембраны: журнал мембранной и клеточной биологии 2011, 28, 4, 267-273.
41. Разумов И.А., Казачинская Е.И., Пучкова Л.И., Косогова Т.А., Горбунова И.А., Локтев В.Б., Теплякова Т.В. Протективная активность
водных экстрактов из высших грибов при экспериментальной
герпесвирусной инфекции белых мышей - Антибиотики и химиотерапия 2013, 58, 9-10, 8-12.
42. Разумов И.А., Косогова Т.А., Казачинская Е.И., Пучкова Л.И., Щербакова Н.С., Горбунова И.А., Михайловская И.Н., Локтев В.Б., Теплякова Т.В. Противовирусная активность водных экстрактов и полисахаридных фракций, полученных из мицелия и плодовых тел высших грибов - Антибиотики и химиотерапия 2010, 55, 9-10, 14-18.
43. Сатбаева Э.М., Досжанова Б.А., Сейталиева А.М., Амиркулова М.К., Пичхадзе Г.М. Фармакологическое обоснование перспективности изучения нового стоматологического геля на основе со 2-экстракта эвкалипта и настойки чаги - Химико-фармацевтический журнал 2015, 49, 6, 43-46.
44. Сидоренко М.Л. Антибактериальные свойства лиственничной губки - Вестник Красноярского государственного аграрного университета 2009, 12, 80-85.
45. Сидоренко М.Л., Бузолева Л.С. Поиск новых сырьевых материалов для производства антибактериальных лекарств -Антибиотики и химиотерапия 2012, 57(5-6), 7-10.
46. Слижов Ю.Г., Хасанов В.В., Чумаков А.А. Химический состав компонентов водно-парового дистиллята и экстрактов, полученных с применением органических растворителей из сырья гриба чаги -Химия растительного сырья 2015, 2, 149-153.
47. Стибнев В.А., Гараев Т.М., Финогенова М.П., Калнина Л.Б., Носик Д.Н. Противовирусная активность водного экстракта березового гриба 1попо1ив оЬ^иив против вируса иммунодефицита человека - Вопросы вирусологии 2015, 60 (2), 35-38.
48. Теплякова Т.В., Булычев Л.Е., Косогова Т.А., Ибрагимова Ж.Б., Юрганова И.А., Кабанов А.С., Пучкова Л.И., Бормотов Н.И., Бардашева А.В. Противовирусная активность экстрактов из базидиальных грибов в отношении ортопоксвирусов - Проблемы особо опасных инфекций 2012, 3(113), 99-101.
49. Федина Т.П., Балабанова Р.М., Сороцкая В.И., Сальникова Т.С. Эффективен ли крем «чага» для купирования боли при остеоартрозе периферических суставов? - Научно-практическая ревматология 2007, 1, 87-90.
50. Фёдорова Р.А. Повышение биологической ценности хлеба с примене-нием мицелия гриба вешенки - Известия Санкт-Петербургского Государственного Аграрного Университета 2015. 39, 87-89.
51. Федосеева Г.М. О применении чаги в медицинской практике - Сибирский медицинский журнал (г. Иркутск) 2004, 49, 8, 66-69.
52. Филиппова Е.И., Мазуркова Н.А., Кабанов А.С., Теплякова Т.В., Ибрагимова Ж.Б., Макаревич Е.В., Мазурков О.Ю., Шишкина Л.Н. Противовирусные свойства водных экстрактов, выделенных из высших базидиомицетов, в отношении пандемического вируса
гриппа a(HiNi)2009 - Современные проблемы науки и образования 2013, 2, 413.
53. Филиппова Е.И., Кабанов А.С., Скарнович М.О., Мазурков О.Ю., Теплякова Т.В., Косогова Т.А., Макаревич Е.В., Ибрагимова Ж.Б., Трошкова Г.П., Шишкина Л.Н., Мазуркова Н.А. Экстракты базидиальных грибов подавляют репродукцию вируса гриппа птиц a(H5Ni) в экспериментах in vitro и in vivo - Современные проблемы науки и образования 2013, 5, 475.
54. Хабибрахманова В.Р., Никитина С.А., Сысоева М.А. Исследование золя водных извлечений чаги. XIV. Количественный и качественный состав липидных веществ водного извлечения чаги -Вестник Казанского Технологического Университета 2012, 15, 18, 217-219.
55. Хасанов В.В., Слижов Ю.Г., Чумаков А.А., Бажина С.В. Анализ состава и свойств сырья березового гриба чаги, Inonotus obliquus (pers.) Pilat, собранного в Томской области - Химия растительного сырья 2015, 2, 43-48.
56. Шариков А.М. Гриб чага Inonotus obliquus: антибиотическая активность метаболитов - Современные наукоемкие технологии, 2010, 8, 167-168.
57. Шариков А.М., Ушанова В.М. Антибиотическая активность углекислотных экстрактов гриба трутовика лекарственного - Вестник Алтайского государственного аграрного университета 2009, 4, 42-45.
58. Шашкина М.Я., Шашкин П.Н., Сергеев А.В. Чага в онкологии - Российский биотерапевтический журнал 2005, 4, 4, 59-72.
59. Ahmad N., Mahmood F., Khalil S.A., Zamir R., Fazal H., Abbasi B.H. Antioxidant activity via DPPH, gram-positive and gram-negative antimicrobial potential in edible mushrooms - Toxicol. Ind. Health 2014, Oct., 30(9), 826-834.
60. Alonso J., Garcia M.A., Pérez-Lopez M., Melgar M.J. The concentrations and bioconcentration factors of copper and zinc in edible mushrooms - Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2003, Feb., 44(2), 180-188.
61. Amar C., Delaumèny J.M., Vilkas E. Chemical and biological properties of a peptido-glucan fraction from Armillaria mellea (Basidio-mycetes) - Biochim. Biophys. Acta. 1976, Feb 24, 421(2), 263-271.
62. Anandhi R., Annadurai T., Anitha T.S., Muralidharan A.R., Najmunnisha K., Nachiappan V., Thomas P.A., Geraldine P. Antihyper-cholesterolemic and antioxidative effects of an extract of the oyster
mushroom, Pleurotus ostreatus, and its major constituent, chrysin, in Triton WR-1339-induced hypercholesterolemic rats - J. Physiol. Biochem. 2013, Jun., 69(2), 313-323.
63. Arora S., Goyal S., Balani J., Tandon S. Enhanced antiproliferative effects of aqueous extracts of some medicinal mushrooms on colon cancer cells - Int. J. Med. Mushrooms 2013, 15(3), 301-314.
64. Arora S., Tandon S. Mushroom Extracts Induce Human Colon Cancer Cell (COLO-205) Death by Triggering the Mitochondrial Apoptosis Pathway and Go/G1-Phase Cell Cycle Arrest - Arch. Iran. Med. 2015, May, 18(5), 284-295.
65. Bao H.N., Ochiai Y., Ohshima T. Antioxidative activities of hydrophilic extracts prepared from the fruiting body and spent culture medium of Flammulina velutipes - Bioresour. Technol. 2010, Aug., 101(15), 6248-6255.
66. Barros L., Venturini B.A., Baptista P., Estevinho L.M., Ferreira I.C. Chemical composition and biological properties of portuguese wild mushrooms: a comprehensive study - J. Agric. Food Chem. 2008, May 28, 56(10), 3856-3862.
67. Beattie K.D., Ulrich R., Grice I.D., Uddin S.J., Blake T.B., Wood K.A., Steele J., Iu F., May T.W., Tiralongo E. Ethanolic and aqueous extracts derived from Australian fungi inhibit cancer cell growth in vitro -Mycologia 2011, May-Jun., 103(3), 458-465.
68. Bernheimer A.W., Avigad L.S. A cytolytic protein from the edible mushroom, Pleurotus ostreatus - Biochim. Biophys. Acta. 1979, Jul 4, 585(3), 451-461.
69. Bobek P., Galbavy S. Hypocholesterolemic and antiatherogenic effect of oyster mushroom (Pleurotus ostreatus) in rabbits -Nahrung. 1999, Oct., 43(5), 339-342.
70. Bobek P., Galbavy S., Ozdin L. Effect of oyster mushroom (Pleurotus ostreatus) on pathological changes in dimethylhydrazine-induced rat colon cancer - Oncol. Rep. 1998, 5(3), 727-730.
71. Bobek P., Ginter E., Jurcovicova M., Kuniak L. Cholesterol-lowering effect of the mushroom Pleurotus ostreatus in hereditary hypercholesterolemic rats - Ann. Nutr. Metab. 1991, 35(4), 191-195.
72. Bobek P., Ozdin L., Kajaba I. Dose-dependent hypocholeste-rolaemic effect of oyster mushroom (Pleurotus ostreatus) in rats - Physiol. Res. 1997, 46(4), 327-329.
73. Bobek P., Ozdin L. Oyster mushroom (Pleurotus ostreatus) reduces the production and secretion of very low density lipoproteins in hypercholesterolemic rats - Z. Ernahrungswiss. 1996, Sep., 35 (3), 249252.
74. Bobek P., Ozdin L., Galbavy S. Dose- and time-dependent hypocholesterolemic effect of oyster mushroom (Pleurotus ostreatus) in rats - Nutrition 1998, Mar., 14(3), 282-286.
75. Bobek P., Ozdin L., Kuniak L., Hromadova M. [Regulation of cholesterol metabolism with dietary addition of oyster mushrooms (Pleurotus ostreatus) in rats with hypercholesterolemia] - Cas. Lek. Cesk. 1997, Mar 19, 136(6), 186-190.
76. Bobek P., Ozdin O., Mikus M. Dietary oyster mushroom (Pleurotus ostreatus) accelerates plasma cholesterol turnover in hypercholesterolaemic rat - Physiol. Res. 1995, 44(5), 287-291.
77. Bovi M., Carrizo M.E., Capaldi S., Perduca M., Chiarelli L.R., Galliano M., Monaco H.L. Structure of a lectin with antitumoral properties in king bolete (Boletus edulis) mushrooms - Glycobiology 2011, Aug., 21(8), 1000-1009.
78. Bovi M., Cenci L., Perduca M., Capaldi S., Carrizo M.E., Civiero L., Chiarelli L.R., Galliano M., Monaco H.L. BEL (3-trefoil: a novel lectin with antineoplastic properties in king bolete (Boletus edulis) mushrooms -Glycobiology 2013, May, 23(5), 578-592.
79. Bressa G., Cima L., Costa P. Bioaccumulation of Hg in the mushroom Pleurotus ostreatus - Ecotoxicol. Environ. Saf. 1988, Oct., 16(2), 85-89.
80. Burczyk J., Gawron A., Slotwinska M., Smietana B., Terminska K. Antimitotic activity of aqueous extracts of Inonotus obliquus - Boll. Chim. Farm. 1996, May, 135(5), 306-309.
81. Cai H., Liu X., Chen Z., Liao S., Zou Y. Isolation, purification and identification of nine chemical compounds from Flammulina velutipes fruiting bodies - Food Chem. 2013, Dec 1, 141(3), 2873-2879.
82. Cao X.Y., Liu J.L., Yang W., Hou X., Li Q.J. Antitumor activity of polysaccharide extracted from Pleurotus ostreatus mycelia against gastric cancer in vitro and in vivo - Mol. Med. Rep. 2015, Aug.,12(2), 2383-2389.
83. Chang H.H., Hsieh K.Y., Yeh C.H., Tu Y.P., Sheu F. Oral administration of an Enoki mushroom protein FVE activates innate and adaptive immunity and induces anti-tumor activity against murine
hepatocellular carcinoma - Int. Immunopharmacol. 2010, Feb., 10(2), 239246.
84. Chang H.L., Lei L.S., Yu C.L., Zhu Z.G., Chen N.N., Wu S.G. [Effect of Flammulina velutipes polysaccharides on production of cytokines by murine immunocytes and serum levels of cytokines in tumor-bearing mice] - Zhong Yao Cai. 2009, Apr., 32(4), 561-563.
85. Chang R. Functional properties of edible mushrooms - Nutr. Rev. 1996, Nov., 54(11 Pt. 2), 91-93.
86. Chang Y.C., Chow Y.H., Sun H.L., Liu Y.F., Lee Y.T., Lue K.H., Ko J.L. Alleviation of respiratory syncytial virus replication and inflammation by fungal immunomodulatory protein FIP-fve from Flammulina velutipes - Antiviral. Res. 2014, Oct., 110, 124-131.
87. Chang Y.C., Hsiao Y.M., Wu M.F., Ou C.C., Lin Y.W., Lue K.H., Ko J.L. Interruption of lung cancer cell migration and proliferation by fungal immunomodulatory protein FIP-fve from Flammulina velutipes - J. Agric. Food Chem. 2013, Dec 11, 61(49), 12044-12052.
88. Chen C.C., Kuo Y.H., Cheng J.J., Sung P.J., Ni C.L., Chen C.C., Shen C.C. Three New Sesquiterpene Aryl Esters from the Mycelium of Armillaria mellea - Molecules 2015, May 29, 20(6), 9994-10003.
89. Chen P., Yong Y., Gu Y., Wang Z., Zhang S., Lu L. Comparison of antioxidant and antiproliferation activities of polysaccharides from eight species of medicinal mushrooms - Int. J. Med. Mushrooms 2015, 17(3), 287-295.
90. Chen Y., Huang Y., Cui Z., Liu J. Purification, characterization and biological activity of a novel polysaccharide from Inonotus obliquus -Int. J. Biol. Macromol. 2015, Aug., 79, 587-594.
91. Chi C.W., Chen C.C., Chen Y.J. Therapeutic and radiosensitizing effects of armillaridin on human esophageal cancer cells - Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2013, 2013, 459271.
92. Choi S.Y., Hur S.J., An C.S., Jeon Y.H., Jeoung Y.J., Bak J.P., Lim B.O. Anti-inflammatory effects of Inonotus obliquus in colitis induced by dextran sodium sulfate - J. Biomed. Biotechnol. 2010, 2010, 943516.
93. Chorvathova V., Bobek P., Ginter E., Klvanova J. Effect of the oyster fungus on glycaemia and cholesterolaemia in rats with insulin-dependent diabetes - Physiol. Res. 1993, 42(6), 175-179.
94. Chou W.T., Sheih I.C., Fang T.J. The applications of polysaccharides from various mushroom wastes as prebiotics in different systems - J. Food Sci. 2013, Jul., 78(7), M1041-1048.
95. Chung M.J., Chung C.K., Jeong Y., Ham S.S. Anticancer activity of subtractions containing pure compounds of Chaga mushroom (Inonotus obliquus) extract in human cancer cells and in Balbc/c mice bearing Sarcoma-180 cells - Nutr. Res. Pract. 2010, Jun., 4(3), 177-182.
96. Cilerdzic J., Stajic M., Vukojevic J., Milovanovic I., Muzgonja N. Antioxidant and antifungal potential ofPleurotus ostreatus and Agrocybe cylindracea basidiocarps and mycelia - Curr. Pharm. Biotechnol. 2015, 16(2), 179-186.
97. Cohen N., Cohen J., Asatiani M.D., Varshney V.K., Yu H.T., Yang Y.C., Li Y.H., Mau J.L., Wasser S.P. Chemical composition and nutritional and medicinal value of fruit bodies and submerged cultured mycelia of culinary-medicinal higher Basidiomycetes mushrooms - Int. J. Med. Mushrooms 2014, 16(3), 273-291.
98. Cui Y., Kim D.S., Park K.C. Antioxidant effect of Inonotus obliquus - J. Ethnopharmacol. 2005, Jan., 4, 96(1-2), 79-85.
99. Daniewski W.M., Danikiewicz W., Gotebiewski W.M., Gucma M., Lysik A., Grodner J., Przybysz E. Search for bioactive compounds from Cantharellus cibarius - Nat. Prod. Commun. 2012, Jul., 7(7), 917-918.
100. Debnath T., Park S.R., Kim da H., Jo J.E., Lim B.O. Anti-oxidant and anti-inflammatory activities of Inonotus obliquus and germinated brown rice extracts - Molecules 2013, Aug 2, 18(8), 9293-9304.
101. Devi K.S., Roy B., Patra P., Sahoo B., Islam S.S., Maiti T.K. Characterization and lectin microarray of an immunomodulatory hetero-glucan from Pleurotus ostreatus mycelia - Carbohydr. Polym. 2013, May 15, 94(2), 857-865.
102. Diao B.Z., Jin W.R., Yu X.J. Protective Effect of Polysaccharides from Inonotus obliquus on Streptozotocin-Induced Diabetic Symptoms and Their Potential Mechanisms in Rats - Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2014, 2014, 841496.
103. Dijkstra F.Y., Wiken T.O. Studies on mushroom flavours 2. Flavour compounds in coprinus comatus - Z. Lebensm. Unters. Forsch. 1976, 160(3), 263-269.
104. Dobsikova R., Blahova J., Franc A., Jakubik J., Mikulikova I., Modra H., Novotna K., Svobodova Z. Effect of ß-1.3/1.6-D-glucan derived from oyster mushroom Pleurotus ostreatus on biometrical, haemato-logical, biochemical, and immunological indices in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) - Neuro. Endocrinol. Lett. 2012, 33 Suppl 3, 96106.
105. Donnelly D.M., Abe F., Coveney D., Fukuda N., O'Reilly J., Polonsky J., Prange T. Antibacterial sesquiterpene aryl esters from Armillaria mellea - J. Nat. Prod. 1985, Jan-Feb., 48(1), 10-16.
106. Dotan N., Wasser S.P., Mahajna J. Inhibition of the androgen receptor activity by Coprinus comatus substances - Nutr. Cancer. 2011, Nov., 63(8), 1316-1327.
107. Drewnowska M., Falandysz J. Investigation on mineral composition and accumulation by popular edible mushroom common chanterelle (Cantharellus cibarius) - Ecotoxicol. Environ. Saf. 2015, Mar., 113, 9-17.
108. Du X., Mu H., Zhou S., Zhang Y., Zhu X. Chemical analysis and antioxidant activity of polysaccharides extracted from Inonotus obliquus sclerotia - Int. J. Biol. Macromol. 2013, Nov., 62, 691-696.
109. Ebrahimzadeh M.A., Safdari Y., Khalili M. Antioxidant Activity of Different Fractions of Methanolic Extract of the Golden Chanterelle Mushroom Cantharellus cibarius (Higher Basidiomycetes) from Iran - Int. J. Med. Mushrooms 2015, 17(6), 557-565.
110. Elbatrawy E.N., Ghonimy E.A., Alassar M.M., Wu F.S. Medicinal Mushroom Extracts Possess Differential Antioxidant Activity and Cytotoxicity to Cancer Cells - Int. J. Med. Mushrooms 2015, 17(5), 471479.
111. Facchini J.M., Alves E.P., Aguilera C., Gern R.M., Silveira M.L., Wisbeck E., Furlan S.A. Antitumor activity of Pleurotus ostreatus polysaccharide fractions on Ehrlich tumor and Sarcoma 180 - Int. J. Biol. Macromol. 2014, Jul., 68, 72-77.
112. Falandysz J., Drewnowska M. Macro and trace elements in Common Chanterelle (Cantharellus cibarius) mushroom from the European background areas in Poland: Composition, accumulation, dietary exposure and data review for species - J. Environ. Sci. Health. B. 2015, 50(5), 374-387.
113. Fan L., Ding S., Ai L., Deng K. Antitumor and immunomodulatory activity of water-soluble poly-saccharide from Inonotus obliquus - Carbohydr. Polym. 2012, Oct 1, 90(2), 870-874.
114. Feng W., Yang J.S. A new drimane sesquiterpenoid and a new triterpene lactone from fungus of Fomes officinalis - J. Asian. Nat. Prod. Res. 2015, 17(11), 1065-1072.
115. Fukushima M., Ohashi T., Fujiwara Y., Sonoyama K., Nakano M. Cholesterol-lowering effects of maitake (Grifola frondosa) fiber, shiitake
(Lentinus edodes) fiber, and enokitake (Flammulina velutipes) fiber in rats - Exp. Biol. Med. (Maywood) 2001, Sep., 226(8), 758-765.
116. Gao J.M., Yang X., Wang C.Y., Liu J.K. Armillaramide, a new sphingolipid from the fungus Armillaria mellea - Fitoterapia 2001, Dec., 72(8), 858-864.
117. Geng Y., Zhu S., Lu Z., Xu H., Shi J.S., Xu Z.H. Antiinflammatory activity of mycelial extracts from medicinal mushrooms - Int. J. Med. Mushrooms 2014, 16(4), 319-325.
118. Giridharan V.V., Thandavarayan R.A., Konishi T. Amelioration of scopolamine induced cognitive dysfunction and oxidative stress by Inonotus obliquus - a medicinal mushroom - Food. Funct. 2011, Jun., 2(6), 320-327.
119. Glamoclija J., Cine A., Nikolic M., Fernandes Ä., Barros L., Calhelha R.C., Ferreira I.C., Sokovie M., van Griensven L.J. Chemical characterization and biological activity of Chaga (Inonotus obliquus), a medicinal "mushroom" - J. Ethnopharmacol. 2015, Mar 13, 162, 323-332.
120. Glamoclija J., Stojkovie D., Nikolic M., Cine A., Reis F.S., Barros L., Ferreira I.C., Sokovie M.A comparative study on edible Agaricus mushrooms as functional foods - Food Funct. 2015, Jun., 6(6), 1900-1910.
121. Gray A.M., Flatt P.R. Insulin-releasing and insulin-like activity of Agaricus campestris (mushroom) - J. Endocrinol. 1998, May, 157(2), 259266.
122. Gu Y.H., Leonard J. In vitro effects on proliferation, apoptosis and colony inhibition in ER-dependent and ER-independent human breast cancer cells by selected mushroom species - Oncol. Rep. 2006, Feb., 15(2), 417-423.
123. Gu Y.H., Sivam G. Cytotoxic effect of oyster mushroom Pleurotus ostreatus on human androgen-independent prostate cancer PC-3 cells - J. Med. Food. 2006, Summer, 9(2), 196-204.
124. Gunawardena D., Bennett L., Shanmugam K., King K., Williams R., Zabaras D., Head R., Ooi L., Gyengesi E., Münch G. Anti-inflammatory effects of five commercially available mushroom species determined in lipopolysaccharide and interferon-y activated murine macrophages - Food Chem. 2014, Apr 1, 148, 92-96.
125. Güng Ergönül P., Akata I., Kalyoncu F., Ergönül B. Fatty acid compositions of six wild edible mushroom species - Scientific World Journal 2013, Jun 6, 2013, 163964.
126. Gunjima K., Tomiyama R., Takakura K., Yamada T., Hashida K., Nakamura Y., Konishi T., Matsugo S., Hori O. 3,4-dihydroxybenzala-cetone protects against Parkinson's disease-related neurotoxin 6-OHDA through Akt/Nrf2/glutathione pathway - J. Cell. Biochem. 2014, Jan., 115(1), 151-160.
127. Ham S.S., Kim S.H., Moon S.Y., Chung M.J., Cui C.B., Han E.K., Chung C.K., Choe M. Antimuta-genic effects of subfractions of Chaga mushroom (Inonotus obliquus) extract - Mutat. Res. 2009, Jan 10, 672(1), 55-59.
128. Han C., Cui B., Qu J. Comparison of vanadium-rich activity of three species fungi of basidiomycetes - Biol. Trace. Elem. Res. 2009, Mar., 127(3), 278-283.
129. Han C., Cui B., Wang Y. Vanadium uptake by biomass of Coprinus comatus and their effect on hyperglycemic mice - Biol. Trace. Elem. Res. 2008, Jul., 124(1), 35-39.
130. Han C., Yuan J., Wang Y., Li L. Hypoglycemic activity of fermented mushroom of Coprinus comatus rich in vanadium - J. Trace. Elem. Med. Biol. 2006, 20(3), 191-196.
131. Harikrishnan R., Balasundaram C., Heo M.S. Inonotus obliquus containing diet enhances the innate immune mechanism and disease resistance in olive flounder Paralichythys olivaceus against Uronema marinum - Fish. Shellfish. Immunol. 2012, Jun., 32(6), 11481154.
132. Hong K.B., Noh D.O., Park Y., Suh H.J. Hepatoprotective Activity of Water Extracts from Chaga Medicinal Mushroom, Inonotus obliquus (Higher Basidiomycetes) Against Tert-Butyl Hydroperoxide-Induced Oxidative Liver Injury in Primary Cultured Rat Hepatocytes - Int. J. Med. Mushrooms. 2015, 17(11), 1069-1076.
133. Hossain S., Hashimoto M., Choudhury E.K., Alam N., Hussain S., Hasan M., Choudhury S.K., Mahmud I. Dietary mushroom (Pleurotus ostreatus) ameliorates atherogenic lipid in hypercholesterolaemic rats -Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 2003, Jul., 30(7), 470-475.
134. Hsieh K.Y., Hsu C.I., Lin J.Y., Tsai C.C., Lin R.H. Oral administration of an edible-mushroom-derived protein inhibits the development of food-allergic reactions in mice - Clin. Exp. Allergy. 2003, Nov., 33(11), 1595-1602.
135. Hu H., Zhang Z., Lei Z., Yang Y., Sugiura N. Comparative study of antioxidant activity and anti-proliferative effect of hot water and ethanol
extracts from the mushroom Inonotus obliquus - J. Biosci. Bioeng. 2009, Jan., 107(1), 42-48.
136. Hu Q., Yu J., Yang W., Kimatu B.M., Fang Y., Ma N., Pei F. Identification of flavonoids from Flammulina velutipes and its neuroprotective effect on pheochromocytoma-12 cells - Food Chem. 2016, Aug 1, 204, 274-282.
137. Hu Y., Sheng Y., Yu M., Li K., Ren G., Xu X., Qu J. Antioxidant activity of Inonotus obliquus polysaccharide and its amelioration for chronic pancreatitis in mice - Int. J. Biol. Macromol. 2016, Jun., 87, 348356.
138. Huang J.F., Zhan T., Yu X.L., He Q.A., Huang W.J., Lin L.Z., Du Y.T., Pan Y.T Therapeutic effect ofPleurotus eryngii cellulose on experimental fatty liver in rats - Genet. Mol. Res. 2016, Feb 26, 15(1).
139. Huang S.Q., Ding S., Fan L. Antioxidant activities of five polysaccharides from Inonotus obliquus - Int. J. Biol. Macromol. 2012, Jun 1, 50(5), 1183-1187.
140. Hwang C.H., Jaki B.U., Klein L.L., Lankin D.C., McAlpine J.B., Napolitano J.G., Fryling N.A., Franzblau S.G., Cho S.H., Stamets P.E., Wang Y., Pauli G.F. Chlorinated coumarins from the polypore mushroom Fomitopsis officinalis and their activity against Mycobacterium tuberculosis - J. Nat. Prod. 2013, Oct 25, 76(10), 1916-1922.
141. Hyun K.W., Jeong S.C., Lee D.H., Park J.S., Lee J.S. Isolation and characterization of a novel platelet aggregation inhibitory peptide from the medicinal mushroom, Inonotus obliquus - Peptides 2006, Jun., 27(6), 1173-1178.
142. Ikekawa T., Ikeda Y., Yoshioka Y., Nakanishi K., Yokoyama E., Yamazaki E. Studies on antitumor polysaccharides of Flammulina velutipes (Curt. ex Fr.) Sing.II. The structure of EA3 and further purification of EA5 - J. Pharmacobiodyn. 1982, Aug., 5(8), 576-581.
143. Ikekawa T., Maruyama H., Miyano T, Okura A., Sawasaki Y., Naito K., Kawamura K., Shiratori K. Proflamin, a new antitumor agent: preparation, physicochemical properties and antitumor activity - Jpn. J. Cancer. Res. 1985, Feb., 76(2), 142-148.
144. Isai M., Elanchezhian R., Sakthivel M., Chinnakkaruppan A., Rajamohan M., Jesudasan C.N., Thomas P.A.,Geraldine P. Anticataracto-genic effect of an extract of the oyster mushroom, Pleurotus ostreatus, in an experimental animal model - Curr. Eye Res. 2009, Apr., 34(4), 264273.
145. Ishikawa N.K., Fukushi Y., Yamaji K., Tahara S., Takahashi K. Antimicrobial cuparene-type sesquiterpenes, enokipodins C and D, from a mycelial culture of Flammulina velutipes - J. Nat. Prod. 2001, Jul., 64(7), 932-934.
146. Jang I.T., Hyun S.H., Shin J.W., Lee Y.H., Ji J.H., Lee J.S. Characterization of an Anti-gout Xanthine Oxidase Inhibitor from Pleurotus ostreatus - Mycobiology 2014, Sep., 42(3), 296-300.
147. Jang S.G., Jeon K.S., Lee E.H., Kong W.S., Cho J.Y. Isolation of 1,,3'-dilinolenoyl,-2'-linoleoylglycerol with tyrosinase inhibitory activity from Flammulina velutipes - J. Microbiol. Biotechnol. 2009, Jul., 19(7), 681-684.
148. Jaworska G., Pogon K., Skrzypczak A., Bernas E. Composition and antioxidant properties of wild mushrooms Boletus edulis and Xerocomus badius prepared for consumption - J. Food Sci. Technol. 2015, Dec., 52(12), 7944-7953.
149. Jayakumar T., Ramesh E., Geraldine P. Antioxidant activity of the oyster mushroom, Pleurotus ostreatus, on CCl(4)-induced liver injury in rats - Food Chem. Toxicol. 2006, Dec., 44(12), 1989-1996.
150. Jayakumar T., Thomas P.A., Geraldine P. Protective effect of an extract of the oyster mushroom, Pleurotus ostreatus, on antioxidants of major organs of aged rats - Exp. Gerontol. 2007, Mar., 42(3), 183-191.
151. Jayasuriya W.J., Wanigatunge C.A., Fernando G.H., Abeytunga D.T., Suresh T.S. Hypoglycaemic activity of culinary Pleurotus ostreatus and P. cystidiosus mushrooms in healthy volunteers and type 2 diabetic patients on diet control and the possible mechanisms of action -Phytother. Res. 2015, Feb., 29(2), 303-309.
152. Jedinak A., Dudhgaonkar S., Jiang J., Sandusky G., Sliva D. Pleurotus ostreatus inhibits colitis-related colon carcinogenesis in mice -Int. J. Mol. Med. 2010, Nov., 26(5), 643-650.
153. Jedinak A., Sliva D. Pleurotus ostreatus inhibits proliferation of human breast and colon cancer cells through p53-dependent as well as p53-independent pathway - Int. J. Oncol. 2008, Dec., 33(6), 1307-1313.
154. Jesenak M., Hrubisko M., Majtan J., Rennerova Z., Banovcin P. Anti-allergic effect of Pleuran (в-glucan from Pleurotus ostreatus) in children with recurrent respiratory tract infections - Phytother. Res. 2014, Mar., 28(3), 471-474.
155. Jesenak M., Majtan J., Rennerova Z., Kyselovic J., Banovcin P., Hrubisko M. Immunomodulatory effect of pleuran (в-glucan from
Pleurotus ostreatus) in children with recurrent respiratory tract infections -Int. Immunopharmacol. 2013, Feb., 15(2), 395-399.
156. Jesenak M., Urbancek S., Majtan J., Banovcin P., Hercogova J. в-Glucan-based cream (containing pleuran isolated from pleurotus ostreatus) in supportive treatment of mild-to-moderate atopic dermatitis -J. Dermatolog. Treat. 2015, Dec 10, 1-4.
157. Jeurink P.V., Noguera C.L., Savelkoul H.F., Wichers H.J. Immunomodulatory capacity of fungal proteins on the cytokine production of human peripheral blood mononuclear cells - Int. Immunopharmacol. 2008, Aug., 8(8), 1124-1133.
158. Jiang S.M., Xiao Z.M., Xu Z.H. Inhibitory activity of polysaccharide extracts from three kinds of edible fungi on proliferation of human hepatoma SMMC-7721 cell and mouse implanted S180 tumor -World J. Gastroenterol. 1999, Oct., 5(5), 404-407.
159. Jiang X.G., Lian M.X., Han Y., Lv S.M. Antitumor and immune-modulatory activity of a polysaccharide from fungus Coprinus comatus (Mull.:Fr.) Gray. - Int. J. Biol. Macromol. 2013, Jul., 58, 349-353.
160. Jiang О.Р., Don Y., Feng Y.J., Bondartseva M.A., Gao T.H., Chen F.M. The anti-tumor activity and MDR reversal properties of constituents from Inoxotus obliquus - Микология и фитопатология -2007, 41, 5, 455-460.
161. Kalyoncu F., Oskay M., Saglam H., Erdogan T.F., Tamer A.U. Antimicrobial and antioxidant activities of mycelia of 10 wild mushroom species - J. Med. Food. 2010, Apr., 13(2), 415-419.
162. Kang J., Chen R.Y. [Studies on chemical constituents in the mycelia from fermented culture of Flammulina velutipes] - Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2005, Feb., 30(3), 193-195.
163. Kang J., Chen R.Y. [Studies on chemical constituents of the mycelia from fermented culture of Flammulina velutipes] - Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2003, Nov., 28(11), 1038-1040.
164. Kang J.H., Jang J.E., Mishra S.K., Lee H.J., Nho C.W., Shin D., Jin M., Kim M.K., Choi C., Oh S.H. Ergosterol peroxide from Chaga mushroom (Inonotus obliquus) exhibits anti-cancer activity by down-regulation of the p-catenin pathway in colorectal cancer - J. Ethnopharmacol. 2015, Sep 15, 173, 303-312.
165. Karaman M., Jovin E., Malbasa R., Matavuly M., Popovic M. Medicinal and edible lignicolous fungi as natural sources of antioxidative and antibacterial agents - Phytother. Res. 2010, Oct., 24(10), 1473-1481.
166. Kashinath K., Jadhav P.D., Reddy D.S. Total synthesis of an anticancer norsesquiterpene alkaloid isolated from the fungus Flammulina velutipes - Org. Biomol. Chem. 2014, Jun 28, 12(24), 4098-4103.
167. Khalili M., Ebrahimzadeh M.A., Omrani F., Karami M. Antihypoxic activities of the golden Chanterelle Mushroom, Cantharellus cibarius (higher Basidiomycetes) - Int. J. Med. Mushrooms 2014, 16(4), 339-344.
168. Kim J.A., Tay D., de Blanco E.C. NF-kappaB inhibitory activity of compounds isolated from Cantharellus cibarius - Phytother. Res. 2008, Aug., 22(8), 1104-1106.
169. Kim J.H., Sung N.Y., Kwon S.K., Srinivasan P., Song B.S., Choi J.I., Yoon Y., Kim J.K., Byun M.W., Kim M.R., Lee J.W. Gamma-irradiation improves the color and antioxidant properties of Chaga mushroom (Inonotus obliquus) extract - J. Med. Food. 2009, Dec., 12(6), 1343-1347.
170. Kim J.M., Ra K.S., Noh D.O., Suh H.J. Optimization of submerged culture conditions for the production of angiotensin converting enzyme inhibitor from Flammulina velutipes - J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2002, Nov., 29(5), 292-295.
171. Kim S.Y., Kong W.S., Cho J.Y. Identification of differentially expressed genes in Flammulina velutipes with anti-tyrosinase activity -Curr. Microbiol. 2011, Feb., 62(2), 452-457.
172. Kim Y.O., Han S.B., Lee H.W., Ahn H.J., Yoon Y.D., Jung J.K., Kim H.M., Shin C.S. Immuno-sti-mulating effect of the endo-polysaccharide produced by submerged culture of Inonotus obliquus - Life Sci. 2005 Sep., 23, 77(19), 2438-2456.
173. Kim Y.O., Park H.W., Kim J.H., Lee J.Y., Moon S.H., Shin C.S. Anti-cancer effect and structural characterization of endo-polysaccharide from cultivated mycelia of Inonotus obliquus - Life Sci. 2006, May, 30, 79(1), 72-80.
174. Ko J.L., Hsu C.I., Lin R.H., Kao C.L., Lin J.Y. A new fungal immunomodulatory protein, FIP-fve isolated from the edible mushroom, Flammulina velutipes and its complete amino acid sequence - Eur. J. Biochem. 1995, Mar 1, 228(2), 244-249.
175. Kobayashi H., Motoyoshi N., Itagaki T., Tabata K., Suzuki T., Inokuchi N. The inhibition of human tumor cell proliferation by RNase Pol, a member of the RNase T1 family, from Pleurotus ostreatus - Biosci. Biotechnol. Biochem. 2013, 77(7), 1486-1491.
176. Kong F., Li F.E., He Z., Jiang Y., Hao R., Sun X., Tong H. Antitumor and macrophage activation induced by alkali-extracted polysaccharide from Pleurotus ostreatus - Int. J. Biol. Macromol. 2014, Aug., 69, 561-566.
177. Kosanic M., Rankovic B., Dasic M. Mushrooms as possible antioxidant and antimicrobial agents - Iran. J. Pharm. Res. 2012, Fall,11(4), 1095-1102.
178. Kozarski M., Klaus A., Vunduk J., Zizak Z., Niksic M., Jakovljevic D., Vrvic M.M., Van Griensven L.J. Nutraceutical properties of the methanolic extract of edible mushroom Cantharellus cibarius (Fries): primary mechanisms - Food Funct. 2015, Jun., 6(6), 1875-1886.
179. Krupodorova T., Rybalko S., Barshteyn V. Antiviral activity of Basidiomycete mycelia against influenza type A (serotype H1N1) and herpes simplex virus type 2 in cell culture - Virol. Sin. 2014, Oct., 29(5), 284-290.
180. Kunjadia P.D., Nagee A., Pandya P.Y., Mukhopadhyaya P.N., Sanghvi G.V., Dave G.S. Medicinal and antimicrobial role of the oyster culinary-medicinal mushroom Pleurotus ostreatus (higher Basidiomycetes) cultivated on banana agrowastes in India - Int. J. Med. Mushrooms 2014, 16(3), 227-238.
181. Kurashige S., Akuzawa Y., Endo F. Effects of Lentinus edodes, Grifola frondosa and Pleurotus os-treatus administration on cancer outbreak, and activities of macrophages and lymphocytes in mice treated with a carcinogen, N-butyl-N-butanolnitrosoamine - Immunopharmacol. Immunotoxicol. 1997, May, 19(2), 175-183.
182. Kuriyama I., Nakajima Y., Nishida H., Konishi T., Takeuchi T., Sugawara F., Yoshida H., Mizushina Y. Inhibitory effects of low molecular weight polyphenolics from Inonotus obliquus on human DNA topoisomerase activity and cancer cell proliferation - Mol. Med. Rep. 2013, Aug., 8(2), 535-542.
183. Lai M.N., Ng L.T. Antioxidant and antiedema properties of solidstate cultured honey mushroom, Armillaria mellea (higher Basidiomycetes), extracts and their polysaccharide and polyphenol contents - Int. J. Med. Mushrooms 2013, 15(1), 1-8.
184. Lam Y.S., Okello E.J. Determination of Lovastatin, ß-glucan, Total Polyphenols, and Antioxidant Activity in Raw and Processed Oyster Culinary-Medicinal Mushroom, Pleurotus ostreatus (Higher Basidiomycetes) - Int. J. Med. Mushrooms 2015, 17(2), 117-128.
185. Lau C.C., Abdullah N., Shuib A.S., Aminudin N. Proteomic analysis of antihypertensive proteins in edible mushrooms - J. Agric. Food Chem. 2012, Dec 19, 60(50), 12341-12348.
186. Lavi I., Friesem D., Geresh S., Hadar Y., Schwartz B. An aqueous polysaccharide extract from the edible mushroom Pleurotus ostreatus induces anti-proliferative and pro-apoptotic effects on HT-29 colon cancer cells - Cancer. Lett. 2006, Nov 28, 244(1), 61-70.
187. Lee H.S., Kim E.J., Kim S.H. Ethanol extract of Innotus obliquus (Chaga mushroom) induces G1 cell cycle arrest in HT-29 human colon cancer cells - Nutr. Res. Pract. 2015, Apr., 9(2), 111-116.
188. Lee I.K., Yun B.S. Styrylpyrone-class compounds from medicinal fungi Phellinus and Inonotus spp., and their medicinal importance - J. Antibiot. (Tokyo). 2011, May, 64(5), 349-359.
189. Lee J.H., Hyun C.K. Insulin-sensitizing and beneficial lipid-metabolic effects of the water-soluble melanin complex extracted from Inonotus obliquus - Phytother. Res. 2014, Sep., 28(9), 1320-1328.
190. Lee J.S., Oka K., Watanabe O., Hara H., Ishizuka S. Immunomodulatory effect of mushrooms on cytotoxic activity and cytokine production of intestinal lamina propria leukocytes does not necessarily depend on p-glucan contents - Food. Chem. 2011, Jun 15, 126(4), 15211526.
191. Lee K.R., Lee J.S., Kim Y.R., Song I.G., Hong E.K. Polysaccharide from Inonotus obliquus inhibits migration and invasion in B16-F10 cells by suppressing MMP-2 and MMP-9 via downregulation of NF-kB signaling pathway - Oncol. Rep. 2014, May, 31(5), 2447-2453.
192. Lee K.R., Lee J.S., Song J.E., Ha S.J., Hong E.K. Inonotus obliquus-derived polysaccharide inhibits the migration and invasion of human non-small cell lung carcinoma cells via suppression of MMP-2 and MMP-9 - Int. J. Oncol. 2014, Dec., 45(6), 2533-2540.
193. Lee S.H., Hwang H.S., Yun J.W. Antitumor activity of water extract of a mushroom, Inonotus obliquus, against HT-29 human colon cancer cells - Phytother. Res. 2009, Dec., 23(12), 1784-1789.
194. Lee Y.T., Lee S.S., Sun H.L., Lu K.H., Ku M.S., Sheu J.N., Ko J.L., Lue K.H. Effect of the fungal immunomodulatory protein FIP-fve on airway inflammation and cytokine production in mouse asthma model -Cytokine. 2013, Jan., 61(1), 237-244.
195. Lemieszek M.K., Cardoso C., Ferreira Milheiro Nunes F.H., Ramos Novo Amorim de Barros A.I., Marques G., Pozarowski P., Rzeski
W. Boletus edulis biologically active biopolymers induce cell cycle arrest in human colon adenocarcinoma cells - Food Funct. 2013, Apr 25, 4(4), 575-585.
196. Lemieszek M.K., Langner E., Kaczor J., Kandefer-Szerszen M., Sanecka B., Mazurkiewicz W., Rzeski W. Anticancer effects of fraction isolated from fruiting bodies of Chaga medicinal mushroom, Inonotus obliquus(Pers.:Fr.) Pilat (Aphyllophoromycetideae): in vitro studies - Int. J. Med. Mushrooms. 2011, 13(2), 131-143.
197. Leung M.Y., Fung K.P., Choy Y.M. The isolation and characterization of an immunomodulatory and anti-tumor polysaccharide preparation from Flammulina velutipes - Immunopharmacology 1997, Jan., 35(3), 255-263.
198. Li B., Lu F., Suo X., Nan H., Li B. Antioxidant properties of cap and stipe from Coprinus comatus - Molecules 2010, Mar 9, 15(3), 14731486.
199. Li Y.P., Wu K.F., Liu Y. [Protective effect of Armillaria mellea polysaccharide on mice bone marrow cell damage caused by cyclophosphamide] - Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2005, Feb., 30(4), 283286.
200. Li Z., Wang Y., Jiang B., Li W., Zheng L., Yang X., Bao Y., Sun L., Huang Y., Li Y. Structure, cytotoxic activity and mechanism of protoilludane sesquiterpene aryl esters from the mycelium of Armillaria mellea - J. Ethnopharmacol. 2016, May 26, 184, 119-127.
201. Liang L., Zhang Z., Wang H. Antioxidant activities of extracts and subfractions from Inonotus Obliquus - Int. J. Food Sci. Nutr. 2009, 60 Suppl 2, 175-184.
202. Lin S.Y., Chen Y.K., Yu H.T., Barseghyan G.S., Asatiani M.D., Wasser S.P., Mau J.L. Comparative study of contents of several bioactive components in fruiting bodies and mycelia of culinary-medicinal mushrooms - Int. J. Med. Mushrooms 2013, 15(3), 315-323.
203. Liu C., Zhao C., Pan H.H., Kang J., Yu X.T., Wang H.Q., Li B.M., Xie Y.Z., Chen R.Y. Chemical constituents from Inonotus obliquus and their biological activities - J. Nat. Prod. 2014, Jan 24, 77(1), 35-41.
204. Liu T.P., Chen C.C., Shiao P.Y., Shieh H.R., Chen Y.Y., Chen Y.J. Armillaridin, a Honey Medicinal Mushroom, Armillaria mellea (Higher Basidiomycetes) Component, Inhibits Differentiation and Activation of Human Macrophages - Int. J. Med. Mushrooms 2015, 17(2), 161-168.
205. Liu X.L., Zheng X.Q., Qian P.Z., Kopparapu N.K., Deng Y.P., Nonaka M., Harada N. Purification and characterization of a novel fibrinolytic enzyme from culture supernatant of Pleurotus ostreatus - J. Microbiol. Biotechnol. 2014, Feb 28, 24(2), 245-253.
206. Llaurado G., Morris H.J., Tamayo V., Lebeque Y., Beltran Y., Marcos J., Moukha S., Creppy E.E., Bermudez R.C. Haematopoiesis radioprotection in Balb/c mice by an aqueous mycelium extract from the Basidiomycete Pleurotus ostreatus mushroom - Nat. Prod. Res. 2015, 29(16), 1557-1561.
207. Lo Y.C., Lin S.Y., Ulziijargal E., Chen S.Y., Chien R.C., Tzou Y.J., Mau J.L. Comparative study of contents of several bioactive components in fruiting bodies and mycelia of culinary-medicinal mushrooms - Int. J. Med. Mushrooms 2012, 14(4), 357-363.
208. Lu X., Chen H., Dong P., Fu L., Zhang X. Phytochemical characteristics and hypoglycaemic activity of fraction from mushroom Inonotus obliquus - J. Sci. Food Agric. 2010, Jan 30, 90(2), 276-280.
209. Lung M.Y., Chang Y.C. Antioxidant properties of the edible Basidiomycete Armillaria mellea in submerged cultures - Int. J. Mol. Sci. 2011, 12(10), 6367-6384.
210. Luo A., Luo A., Huang J., Fan Y. Purification, characterization and antioxidant activities in vitro and in vivo of the polysaccharides from Boletus edulis bull - Molecules 2012, Jul 5, 17(7), 8079-8090.
211. Lv Y., Han L., Yuan C., Guo J. Comparison of hypoglycemic activity of trace elements absorbed in fermented mushroom of Coprinus comatus - Biol. Trace. Elem. Res. 2009, Nov., 131(2), 177185.
212. Ma L., Chen H., Dong P., Lu X. Anti-inflammatory and anticancer activities of extracts and compounds from the mushroom Inonotus obliquus - Food Chem. 2013, Aug 15, 139(1-4), 503-508.
213. Ma L., Chen H., Zhang Y., Zhang N., Fu L. Chemical modification and antioxidant activities of polysaccharide from mushroom Inonotus obliquus - Carbohydr. Polym. 2012, Jun 20, 89(2), 371-378.
214. Ma Z., Fu Q. Comparison of hypoglycemic activity and toxicity of vanadium (IV) and vanadium (V) absorbed in fermented mushroom of Coprinus comatus - Biol. Trace. Elem. Res. 2009, Dec., 132(1-3), 278284.
215. Maiti S., Mallick S.K., Bhutia S.K., Behera B., Mandal M., Maiti T.K. Antitumor effect of culinary-medicinal oyster mushroom, Pleurotus
ostreatus (Jacq.: Fr.) P. Kumm., derived protein fraction on tumor-bearing mice models - Int. J. Med. Mushrooms 2011, 13(5), 427-440.
216. Maity K., Samanta S., Bhanja S.K. , Maity S., Sen I.K., Maiti S., Behera B., Maiti T.K., Sikdar S.R., Islam S.S. An immunostimulating water insoluble ß-glucan of an edible hybrid mushroom: isolation and characterization - Fitoterapia 2013, Jan., 84, 15-21.
217. Maity K.K., Patra S., Dey B., Bhunia S.K., Mandal S., Das D., Majumdar D.K., Maiti S., Maiti T.K., Islam S.S. A heteropolysaccharide from aqueous extract of an edible mushroom, Pleurotus ostreatus cultivar: structural and biological studies - Carbohydr. Res. 2011, Feb 1, 346(2), 366-372.
218. Majtan J. Pleuran (ß-glucan from Pleurotus ostreatus ): an effective nutritional supplement against upper respiratory tract infections? - Med. Sport. Sci. 2012, 59, 57-61.
219. Mariga A.M., Yang W.J., Mugambi D.K., Pei F., Zhao L.Y., Shao Y.N., Hu Q. Antiproliferative and immunostimulatory activity of a protein from Pleurotus eryngii - J. Sci. Food Agric. 2014, Dec., 94(15), 3152-3162.
220. Mazurkiewicz W. Analysis of aqueous extract of Inonotus obliquus - Acta Pol. Pharm. 2006, Nov-Dec., 63(6), 497-501.
221. Mazurkiewicz W., Rydel K., Pogocki D., Lemieszek M.K., Langner E., Rzeski W. Separation of an aqueous extract Inonotus obliquus (Chaga). A novel look at the efficiency of its influence on proliferation of A549 human lung carcinoma cells - Acta. Pol. Pharm. 2010, Jul-Aug., 67(4), 397-406.
222. Mendez-Espinoza C., Garcia-Nieto E., Esquivel A.M., Gonzalez M.M., Bautista E.V., Ezquerro C.C., Santacruz L.J. Antigenotoxic potential of aqueous extracts from the chanterelle mushroom, Cantharellus cibarius (higher Basidiomycetes), on human mononuclear cell cultures - Int. J. Med. Mushrooms 2013, 15(3), 325-332.
223. Meza-Menchaca T., Suarez-Medellin J., Del Àngel-Pina C., Trigos À. The Amoebicidal Effect of Ergosterol Peroxide Isolated from Pleurotus ostreatus - Phytother. Res. 2015, Dec., 29(12), 1982-1986.
224. Milovanovic I., Brceski I., Stajic M., Knezevic A., Vukojevic J. Potential enrichment of medicinal mushrooms with selenium to obtain new dietary supplements - Int. J. Med. Mushrooms 2013, 15(5), 449-455.
225. Milovanovic I., Brceski I., Stajic M., Korac A., Vukojevic J., Knezevic A. Potential of Pleurotus ostreatus mycelium for selenium absorption - Scientific World Journal 2014, 2014, 681834.
226. Mishra S.K., Kang J.H., Kim D.K., Oh S.H., Kim M.K. Orally administered aqueous extract of Inonotus obliquus ameliorates acute inflammation in dextran sulfate sodium (DSS)-induced colitis in mice - J. Ethnopharmacol. 2012, Sep 28, 143(2), 524-532.
227. Mleczek M., Siwulski M., Stuper-Szablewska K., Sobieralski K., Magdziak Z., Golinski P. Accumulation of elements by edible mushroom species II. A comparison of aluminium, barium and nutritional element contents - J. Environ. Sci. Health. B. 2013, 48(4), 308-317.
228. Monro J.A. Treatment of cancer with mushroom products - Arch. Environ. Health. 2003, Aug., 58(8), 533-537.
229. Morris H.J., Hernández E., Llauradó G., Tejedor M.C., Sancho P., Herraez Á., Boyano-Adánez M.del C., García-Pérez A.I., Diez J.C. In vitro anti-proliferative effects on NB4 human leukemia cells and physicochemical screening of Pleurotus sp. (higher Basidiomycetes) mycelia from Cuba - Int. J. Med. Mushrooms 2014, 16(3), 239-245.
230. Mu H., Zhang A., Zhang W., Cui G., Wang S., Duan J. Antioxidative Properties of Crude Polysaccharides from Inonotus obliquus - Int. J. Mol. Sci. 2012, 13(7), 9194-9206.
231. Muszynska B., Maslanka A., Ekiert H., Sutkowska-Ziaja K. Analysis of indole compounds in Armillaria mellea fruiting bodies - Acta. Pol. Pharm. 2011, Jan-Feb., 68(1), 93-97.
232. Muszynska B., Sutkowska-Ziaja K., Ekiert H. Analysis of indole compounds in methanolic extracts from the fruiting bodies of Cantharellus cibarius (the Chanterelle) and from the mycelium of this species cultured in vitro - J. Food Sci. Technol. 2013, Dec., 50(6), 12331237.
233. Muszynska B., Sutkowska-Ziaja K., Wotkowska M., Ekiert H. Chemical, pharmacological, and biological characterization of the culinary-medicinal honey mushroom, Armillaria mellea (Vahl) P. Kumm. (Agaricomycetideae): a review - Int. J. Med. Mushrooms 2011, 13(2), 167175.
234. Nakajima Y., Nishida H., Matsugo S., Konishi T. Cancer cell cytotoxicity of extracts and small phenolic compounds from Chaga [Inonotus obliquus (persoon) Pilat] - J. Med. Food. 2009, Jun., 12(3), 501507.
235. Nakajima Y., Sato Y., Konishi T. Antioxidant small phenolic ingredients in Inonotus obliquus (persoon) Pilat (Chaga) - Chem. Pharm. Bull (Tokyo). 2007, Aug., 55(8), 1222-1226.
236. Ng T.B., Ngai P.H., Xia L. An agglutinin with mitogenic and antiproliferative activities from the mushroom Flammulina velutipes -Mycologia 2006, Mar-Apr., 98(2), 167-171.
237. Ning X., Luo Q., Li C., Ding Z., Pang J., Zhao C. Inhibitory effects of a polysaccharide extract from the Chaga medicinal mushroom, Inonotus obliquus (higher Basidiomycetes), on the proliferation of human neurogliocytoma cells - Int. J. Med. Mushrooms 2014,16(1), 29-36.
238. Niu H., Song D., Mu H., Zhang W., Sun F., Duan J. Investigation of three lignin complexes with antioxidant and immunological capacities from Inonotus obliquus - Int. J. Biol. Macromol. 2016, May, 86, 587-593.
239. Nosal'ova V., Bobek P., Cerna S., Galbavy S., Stvrtina S. Effects of pleuran (beta-glucan isolated from Pleurotus ostreatus) on experimental colitis in rats - Physiol. Res. 2001, 50(6), 575-581.
240. Obuchi T., Kondoh H., Watanabe N., Tamai M., Omura S., Yang J.S., Liang X.T. Armillaric acid, a new antibiotic produced by Armillaria mellea - Planta Med. 1990, Apr., 56(2), 198-201.
241. Olufemi A.E., Terry A.O., Kola O.J. Anti-leukemic and immunomodulatory effects of fungal metabolites of Pleurotus pulmonarius and Pleurotus ostreatus on benzene-induced leukemia in Wister rats -Korean. J. Hematol. 2012, Mar., 47(1), 67-73.
242. Opletal L., Jahodar L., Chobot V., Zdansky P., Lukes J., Bratova M., Solichova D., Blunden G., Dacke C.G., Patel A.V. Evidence for the anti-hyperlipidaemic activity of the edible fungus Pleurotus ostreatus - Br. J. Biomed. Sci. 1997, Dec., 54(4), 240-243.
243. Otagiri K., Ohkuma T., Ikekawa T., Tanaka S. Intensification of antitumor-immunity by protein-bound polysaccharide, EA6, derived from Flammulina velutipes (Curt. ex Fr.) Sing. combined with murine leukemia L1210 vaccine in animal experiments - J. Pharma-cobiodyn. 1983, Feb., 6(2), 96-104.
244. Otsuji K., Ohara K., Nakamura M., Amazumi R., Higa C., Kakazu K., Kondo Y. [A case of anaphylaxis caused by enokitake (Flammulina velutipes) ingestion] - Arerugi. 2015, Feb., 64(1), 63-67.
245. Ou H.T., Shieh C.J., Chen J.Y., Chang H.M. The antiproliferative and differentiating effects of human leukemic U937 cells are mediated by cytokines from activated mononuclear cells by dietary mushrooms - J. Agric. Food. Chem. 2005, Jan 26, 53(2), 300-305.
246. Ozalp F.O., Canbek M., Yamac M., Kanbak G., Van Griensven L.J., Uyanoglu M., Senturk H., Kartkaya K., Oglakci A. Consumption of Coprinus comatus polysaccharide extract causes recovery of alcoholic liver damage in rats - Pharm. Biol. 2014, Aug., 52(8), 994-1002.
247. Ozen T., Darcan C., Aktop O., Turkekul I. Screening of antioxidant, antimicrobial activities and chemical contents of edible mushrooms wildly grown in the black sea region of Turkey - Comb. Chem. High. Throughput. Screen 2011, Feb., 14(2), 72-84.
248. Özyürek M., Bener M., Güglü K., Apak R. Antioxidant/antiradical properties of microwave-assisted extracts of three wild edible mushrooms - Food Chem. 2014, Aug 15, 157, 323-331.
249. Palacios I., García-Lafuente A., Guillamón E., Villares A. Novel isolation of water-soluble polysaccharides from the fruiting bodies of Pleurotus ostreatus mushrooms - Carbohydr. Res. 2012, Sep 1, 358, 72-77.
250. Pan H.H., Yu X.T., Li T., Wu H.L., Jiao C.W., Cai M.H., Li X.M., Xie Y.Z., Wang Y., Peng T. Aqueous extract from a Chaga medicinal mushroom, Inonotus obliquus (higher Basidiomycetes), prevents herpes simplex virus entry through inhibition of viral-induced membrane fusion -Int. J. Med. Mushrooms 2013, 15(1), 29-38.
251. Patel S., Goyal A. Recent developments in mushrooms as anticancer therapeutics: a review -3 Biotech. 2012, Mar., 2(1), 1-15.
252. Patra S., Patra P., Maity K.K., Mandal S., Bhunia S.K., Dey B., Devi K.S., Khatua S., Acharya K., Maiti T.K., Islam S.S. A heteroglycan from the mycelia of Pleurotus ostreatus: structure determination and study of antioxidant properties - Carbohydr. Res. 2013, Mar 7, 368, 16-21.
253. Phan C.W., David P., Naidu M., Wong K.H., Sabaratnam V. Therapeutic potential of culinary-medicinal mushrooms for the management of neurodegenerative diseases: diversity, metabolite, and mechanism - Crit. Rev. Biotechnol. 2015, 35(3), 355-368.
254. Popovic M., Vukmirovic S., Stilinovic N., Capo I., Jakovljevic V. Anti-oxidative activity of an aqueous suspension of commercial preparation of the mushroom Coprinus comatus - Molecules 2010, Jun 24, 15(7), 4564-4571.
255. Prasad R., Varshney V.K., Harsh N.S., Kumar M. Antioxidant Capacity and Total Phenolics Content of the Fruiting Bodies and Submerged Cultured Mycelia of Sixteen Higher Basidiomycetes Mushrooms from India - Int. J. Med. Mushrooms 2015,17(10), 933-941.
256. Queiros B., Barreira J.C., Sarmento A.C., Ferreira I.C. In search of synergistic effects in antioxidant capacity of combined edible mushrooms - Int. J. Food Sci. Nutr. 2009, 60 Suppl 6, 160-172.
257. Radzki W., Slawinska A., Jablonska-Rys E., Gustaw W. Antioxidant capacity and polyphenolic content of dried wild edible mushrooms from Poland - Int. J. Med. Mushrooms 2014,16(1), 65-75.
258. Rahman M.A., Abdullah N., Aminudin N. Antioxidative Effects and Inhibition of Human Low Density Lipoprotein Oxidation In Vitro of Polyphenolic Compounds in Flammulina velutipes (Golden Needle Mushroom) - Oxid. Med. Cell. Longev. 2015, 2015, 403023.
259. Ramesh Ch., Pattar M.G. Antimicrobial properties, antioxidant activity and bioactive compounds from six wild edible mushrooms of western ghats of Karnataka, India - Pharmacognosy Res. 2010, Mar., 2(2), 107-112.
260. Ramos-Ligonio A., Lopez-Monteon A., Trigos A. Trypanocidal activity of ergosterol peroxide from Pleurotus ostreatus - Phytother. Res. 2012, Jun., 26(6), 938-943.
261. Ramsaha S., Neergheen-Bhujun V.S., Verma S., Kumar A., Bharty R.K., Chaudhary A.K., Sharma P., Singh R.K., Huzar Futty Beejan P., Kyung-Sun K., Bahorun T. Modulation of hepatocarcinogenesis in N-methyl-N-nitrosourea treated Balb/c mice by mushroom extracts -Food Funct. 2016, Jan 20, 7(1), 594-609.
262. Ravi B., Renitta R.E., Prabha M.L., Issac R., Naidu S. Evaluation of antidiabetic potential of oyster mushroom (Pleurotus ostreatus) in alloxan-induced diabetic mice - Immunopharmacol. Immunotoxicol. 2013, Feb., 35(1), 101-109.
263. Reis F.S., Martins A., Barros L., Ferreira I.C. Antioxidant properties and phenolic profile of the most widely appreciated cultivated mushrooms: a comparative study between in vivo and in vitro samples -Food Chem. Toxicol. 2012, May, 50(5), 1201-1207.
264. Ren D., Wang N., Guo J., Yuan L., Yang X. Chemical characterization of Pleurotus eryngii polysaccharide and its tumor-inhibitory effects against human hepatoblastoma HepG-2 cells -Carbohydr. Polym. 2016, Mar 15, 138, 123-133.
265. Ren J., Shi J.L., Han C.C., Liu Z.Q., Guo J.Y. Isolation and biological activity of triglycerides of the fermented mushroom of Coprinus Comatus - BMC Complement. Altern. Med. 2012, Apr 24, 12, 52.
266. Ríos J.L., Andújar I., Recio M.C., Giner R.M. Lanostanoids from fungi: a group of potential anticancer compounds - J. Nat. Prod. 2012, Nov 26, 75(11), 2016-2044.
267. Rop O., Mlcek J., Jurikova T. Beta-glucans in higher fungi and their health effects - Nutr. Rev. 2009, Nov., 67(11), 624-631.
268. Rouhana-Toubi A., Wasser S.P., Agbarya A., Fares F. Inhibitory effect of ethyl acetate extract of the shaggy inc cap medicinal mushroom, Coprinus comatus (Higher Basidiomycetes) fruit bodies on cell growth of human ovarian cancer - Int. J. Med. Mushrooms 2013, 15(5), 457-470.
269. Rouhana-Toubi A., Wasser S.P., Fares F. The Shaggy Ink Cap Medicinal Mushroom, Coprinus comatus (Higher Basidiomycetes) Extract Induces Apoptosis in Ovarian Cancer Cells via Extrinsic and Intrinsic Apoptotic Pathways - Int. J. Med. Mushrooms 2015, 17(12), 1127-1136.
270. Rovensky J., Stancíkova M., Svík K., Bauerová K., Jurcovicová J. The effects of p-glucan isolated from Pleurotus ostreatus on methotrexate treatment in rats with adjuvant arthritis - Rheumatol. Int. 2011, Apr., 31(4), 507-511.
271. Saar M. Fungi in Khanty folk medicine - J. Ethnopharmacol. 1991, Feb., 31(2), 175-179.
272. Sabo A., Stilinovic N., Vukmirovic S., Bukumiric Z., Capo I., Jakovljevic V. Pharmacodynamic action of a commercial preparation of the mushroom Coprinus comatus in rats - Phytother. Res. 2010, Oct., 24(10), 1532-1537.
273. Sarangi I., Ghosh D., Bhutia S.K., Mallick S.K., Maiti T.K. Antitumor and immunomodulating effects of Pleurotus ostreatus mycelia-derived proteoglycans - Int. Immunopharmacol. 2006, Aug., 6(8), 12871297.
274. Selegean M., Putz M.V., Rugea T. Effect of the polysaccharide extract from the edible mush-room Pleurotus ostreatus against infectious bursal disease virus - Int. J. Mol. Sci. 2009, Aug 18, 10(8), 3616-3634.
275. Shamtsyan M., Konusova V., Maksimova Y., Goloshchev A., Panchenko A., Simbirtsev A., Pet-rishchev N., Denisova N. Immunomodulating and anti-tumor action of extracts of several mush-rooms - J. of Biotechnology 2004, 113, 1-3, 77-83.
276. Shang X., Tan Q., Liu R., Yu K., Li P., Zhao G.P. In vitro anti-Helicobacter pylori effects of medicinal mushroom extracts, with special
emphasis on the Lion's Mane mushroom, Hericium erinaceus (higher Basidiomycetes) - Int. J. Med. Mushrooms 2013, 15(2), 165-174.
277. Shen M.H., Kim J.S., Sapkota K., Park S.E., Choi B.S., Kim S., Lee H.H., Kim C.S., Chun H.S., Ryoo C.I., Kim S.J. Purification, characterization, and cloning of fibrinolytic metalloprotease from Pleurotus ostreatus mycelia - J. Microbiol. Biotechnol. 2007, Aug., 17(8), 1271-1283.
278. Shibnev V.A., Mishin D.V., Garaev T.M., Finogenova N.P., Botikov A.G., Deryabin P.G. Antiviral activity of Inonotus obliquus fungus extract towards infection caused by hepatitis C virus in cell cultures - Bull. Exp. Biol. Med. 2011, Sep., 151(5), 612-614.
279. Silva S., Martins S., Karmali A., Rosa E. Production, purification and characterisation of polysac-charides from Pleurotus ostreatus with antitumour activity - J. Sci. Food Agric. 2012, Jul., 92(9), 1826-1832.
280. Song F.Q., Liu Y., Kong X.S., Chang W., Song G. Progress on understanding the anticancer mechanisms of medicinal mushroom: inonotus obliquus - Asian. Pac. J. Cancer. Prev. 2013, 14(3), 1571-1578.
281. Song Y., Hui J., Kou W., Xin R., Jia F., Wang N., Hu F., Zhang H., Liu H. Identification of Inonotus obliquus and analysis of antioxidation and antitumor activities of polysaccharides - Curr. Microbiol. 2008, Nov., 57(5), 454-462.
282. Stilinovic N., Skrbic B., Zivancev J., Mrmos N., Pavlovic N., Vukmirovic S. The level of elements and antioxidant activity of commercial dietary supplement formulations based on edible mushrooms - Food Funct. 2014, Dec., 5(12), 3170-3178.
283. Stojkovic D., Reis F.S., Barros L., Glamoclija J., Ciric A., van Griensven L.J., Sokovic M., Ferreira I.C. Nutrients and non-nutrients composition and bioactivity of wild and cultivated Coprinus comatus (O.F.Müll.) Pers.- Food Chem. Toxicol. 2013, Sep., 59, 289-296.
284. Sun J.E., Ao Z.H., Lu Z.M., Xu H.Y., Zhang X.M., Dou W.F., Xu Z.H. Antihyperglycemic and antili-pidperoxidative effects of dry matter of culture broth of Inonotus obliquus in submerged culture on normal and alloxan-diabetes mice - J. Ethnopharmacol. 2008, Jun 19, 118(1), 7-13.
285. Sun L., Bai X., Zhuang Y. Effect of different cooking methods on total phenolic contents and antioxidant activities of four Boletus mushrooms - J. Food Sci. Technol. 2014, Nov., 51(11), 3362-3368.
286. Sun Y., Liang H., Zhang X., Tong H., Liu J. Structural elucidation and immunological activity of a polysaccharide from the fruiting body of Armillaria mellea - Bioresour. Technol. 2009, Mar., 100(5), 1860-1863.
287. Swanston-Flatt S.K., Day C., Bailey C.J., Flatt P.R. Traditional plant treatments for diabetes. Studies in normal and streptozotocin diabetic mice - Diabetologia 1990, Aug., 33(8), 462-464.
288. Swanston-Flatt S.K., Day C., Flatt P.R., Gould B.J., Bailey C.J. Glycaemic effects of traditional European plant treatments for diabetes. Studies in normal and streptozotocin diabetic mice - Diabetes Res. 1989, Feb., 10(2), 69-73.
289. Thomas P.A., Geraldine P., Jayakumar T. Pleurotus ostreatus, an edible mushroom, enhances glucose 6-phosphate dehydrogenase, ascorbate peroxidase and reduces xanthine dehydrogenase in major organs of aged rats - Pharm. Biol. 2014, May, 52(5), 646-654.
290. Ullah M.I., Akhtar M., Iqbal Z., Shahid M., Awais M.M. Immunomodulating and Antiprotozoal Effects of Different Extracts of the Oyster Culinary-Medicinal Mushroom Pleurotus ostreatus (Higher Basidiomycetes) Against Coccidiosis in Broiler - Int. J. Med. Mushrooms 2015,17(3), 309-317.
291.Valentao P., Andrade P.B., Rangel J., Ribeiro B., Silva B.M., Baptista P., Seabra R.M. Effect of the conservation procedure on the contents of phenolic compounds and organic acids in chanterelle (Cantharellus cibarius) mushroom - J. Agric. Food Chem. 2005, Jun 15, 53(12), 4925-4931.
292.Vamanu E. Antioxidant properties of mushroom mycelia obtained by batch cultivation and tocopherol content affected by extraction procedures - Biomed. Res. Int. 2014, 2014, 974804.
293.Vamanu E. Antioxidant properties of polysaccharides obtained by batch cultivation of Pleurotus ostreatus mycelium - Nat. Prod. Res. 2013, 27(12), 1115-1118.
294.Vamanu E. In vitro antimicrobial and antioxidant activities of ethanolic extract of lyophilized mycelium of Pleurotus ostreatus PQMZ91109 - Molecules 2012, Mar 26, 17(4), 3653-3671.
295. Vamanu E. In vitro antioxidant and antimicrobial activities of two edible mushroom mycelia obtained in the presence of different nitrogen sources - J. Med. Food. 2013, Feb., 16(2), 155-166.
296. Vamanu E., Nita S. Antioxidant capacity and the correlation with major phenolic compounds, anthocyanin, and tocopherol content in
various extracts from the wild edible Boletus edulis mushroom - Biomed. Res. Int. 2013, 2013, 313905.
297.Van Q., Nayak B.N., Reimer M., Jones P.J., Fulcher R.G., Rempel C.B. Anti-inflammatory effect of Inonotus obliquus, Polygala senega L., and Viburnum trilobum in a cell screening assay - J. Ethnopharmacol. 2009, Sep 25, 125(3), 487-493.
298. Vetter J. [Chemical composition of eight edible mushrooms] - Z. Lebensm. Unters. Forsch. 1993, Mar., 196(3), 224-227.
299. Wang D., Sun S.Q., Wu W.Z., Yang S.L., Tan J.M. Characterization of a water-soluble polysaccharide from Boletus edulis and its antitumor and immunomodulatory activities on renal cancer in mice
- Carbohydr. Polym. 2014, May 25, 105, 127-134.
300. Wang G., Wang J., Fu Y., Bai L., He M., Li B., Fu Q. Systemic treatment with vanadium absorbed by Coprinus comatus promotes femoral fracture healing in streptozotocin-diabetic rats - Biol. Trace. Elem. Res. 2013, Mar., 151(3), 424-433.
301. Wang P.H., Hsu C.I., Tang S.C., Huang Y.L., Lin J.Y., Ko J.L. Fungal immunomodulatory protein from Flammulina velutipes induces interferon-gamma production through p38 mitogen-activated protein kinase signaling pathway - J. Agric. Food Chem. 2004, May 5, 52(9), 27212725.
302. Wang Q., Mu H., Zhang L., Dong D., Zhang W., Duan J. Characterization of two water-soluble lignin metabolites with antiproliferative activities from Inonotus obliquus - Int. J. Biol. Macromol. 2015, Mar., 74, 507-514.
303. Wasser S.P., Weis A.L. Therapeutic effects of substances occurring in higher Basidiomycetes mushrooms: a modern perspective -Crit. Rev. Immunol. 1999, 19(1), 65-96.
304. Watanabe N., Obuchi T., Tamai M., Araki H., Omura S., Yang J.S., Yu D.Q., Liang X.T., Huan J.H. A novel N6-substituted adenosine isolated from mi huan jun (Armillaria mellea) as a cerebral-protecting compound - Planta Med. 1990, Feb., 56(1), 48-52.
305. Witkowska A.M., Zujko M.E., Mironczuk-Chodakowska I. Comparative study of wild edible mushrooms as sources of antioxidants -Int. J. Med. Mushrooms 2011, 13(4), 335-341.
306. Wolff E.R., Wisbeck E., Silveira M.L., Gern R.M., Pinho M.S., Furlan S.A. Antimicrobial and anti-neoplasic activity of Pleurotus ostreatus
- Appl. Biochem. Biotechnol. 2008, Dec., 151(2-3), 402-412.
307. Won D.P., Lee J.S., Kwon D.S., Lee K.E., Shin W.C., Hong E.K. Immunostimulating activity by polysaccharides isolated from fruiting body of Inonotus obliquus - Mol. Cells. 2011, Feb., 31(2), 165-173.
308. Wu H.T., Lu F.H., Su Y.C., Ou H.Y., Hung H.C., Wu J.S., Yang Y.C., Chang C.J. In vivo and in vitro anti-tumor effects of fungal extracts -Molecules 2014, Feb 21, 19(2), 2546-2556.
309. Wu J., Zhou J., Lang Y., Yao L., Xu H., Shi H., Xu S. A polysaccharide from Armillaria mellea exhibits strong in vitro anticancer activity via apoptosis-involved mechanisms - Int. J. Biol. Macromol. 2012, Nov., 51(4), 663-667.
310. Wu J.Y., Chen C.H., Chang W.H., Chung K.T., Liu Y.W., Lu F.J., Chen C.H. Anti-Cancer Effects of Protein Extracts from Calvatia lilacina, Pleurotus ostreatus and Volvariella volvacea - Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2011, 2011, 982368.
311. Wu L., Wu Z., Lin Q., Xie L. [Purification and activities of an alkaline protein from mushroom Coprinus comatus] - Wei. Sheng. Wu. Xue. Bao. 2003, Dec., 43(6), 793-798.
312. Wu M., Luo X., Xu X., Wei W., Yu M., Jiang N., Ye L., Yang Z., Fei X. Antioxidant and immunomodulatory activities of a polysaccharide from Flammulina velutipes - J. Tradit. Chin. Med. 2014, Dec., 34(6), 733740.
313.Xia Z. Preparation of the oligosaccharides derived from Flammulina velutipes and their antioxidant activities - Carbohydr. Polym. 2015, Mar 15, 118, 41-43.
314. Xu B., Li C., Sung C. Telomerase inhibitory effects of medicinal mushrooms and lichens, and their anticancer activity - Int. J. Med. Mushrooms 2014, 16(1), 17-28.
315.Xu H.Y., Sun J.E., Lu Z.M., Zhang X.M., Dou W.F., Xu Z.H. Beneficial effects of the ethanol extract from the dry matter of a culture broth of Inonotus obliquus in submerged culture on the antioxidant defence system and regeneration of pancreatic beta-cells in experimental diabetes in mice - Nat. Prod. Res. 2010, Apr., 24(6), 542-553.
316.Xu T., Beelman R.B., Lambert J.D. The Cancer Preventive Effects of Edible Mushrooms - Anticancer. Agents. Med. Chem. 2012, May 2.
317.Xu X., Li J., Hu Y. Polysaccharides from Inonotus obliquus sclerotia and cultured mycelia stimulate cytokine production of human
peripheral blood mononuclear cells in vitro and their chemical characterization - Int. Immunopharmacol. 2014, Aug., 21(2), 269-278.
318.Yan B., Jing L., Wang J. A polysaccharide (PNPA) from Pleurotus nebrodensis offers cardiac protection against ischemia-reperfusion injury in rats - Carbohydr. Polym. 2015, Nov 20, 133, 1-7.
319. Yan G., Jin G., Li L., Qin X., Zheng C., Li G. [Protective effects and mechanism of Inonotus obliquus on asthmatic mice] - Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2011, Apr., 36(8), 1067-1070.
320.Yan Z.F., Liu N.X., Mao X.X., Li Y., Li C.T. Activation effects of polysaccharides of Flammulina velutipes mycorrhizae on the T lymphocyte immune function - J. Immunol. Res. 2014, 2014, 285421.
321.Yan Z.F., Yang Y., Tian F.H., Mao X.X., Li Y., Li C.T. Inhibitory and Acceleratory Effects of Inonotus obliquus on Tyrosinase Activity and Melanin Formation in B16 Melanoma Cells - Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2014, 2014, 259836.
322.Yang J.S., Chen Y.W., Feng X.Z., Yu D.Q., He C.H., Zheng Q.T., Yang J., Liang X.T. Isolation and structure elucidation of armillaricin1
- Planta Med. 1989, Dec., 55(6), 564-565.
323.Yang J.S., Su Y.L., Wang Y.L., Feng X.Z., Yu D.Q., Cong P.Z., Tamai M., Obuchi T., Kondoh H., Liang X.T. Isolation and structures of two new sesquiterpenoid aromatic esters: armillarigin and armillarikin1
- Planta Med. 1989, Oct., 55(5), 479-481.
324.Yang J.S., Su Y.L., Wang Y.L., Feng X.Z., Yu D.Q., Liang X.T. [Chemical constituents of Armillaria mellea mycelium. VII. Isolation and characterization of chemical constituents of the acetone extract] - Yao Xue Xue Bao. 1991, 26(2), 117-122.
325.Yang J.S., Su Y.L., Wang Y.L., Feng X.Z., Yu D.Q., Liang X.T. [Studies on the chemical constituents of Armillaria mellea mycelium. V. Isolation and characterization of armillarilin and armillarinin] - Yao Xue Xue Bao. 1990, 25(1), 24-28.
326.Yang J.S., Su Y.L., Wang Y.L., Feng X.Z., Yu D.Q., Liang X.T., He C.H., Zheng Q.T., Yang J.J., Yang J. [Chemical constituents of Armillaria mellea mycelium. VI. Isolation and structure of armillaripin] -Yao Xue Xue Bao. 1990, 25(5), 353-356.
327. Yang Q., Huang B., Li H., Zhang C., Zhang R., Huang Y., Wang J. Gastroprotective activities of a polysaccharide from the fruiting bodies of Pleurotus ostreatus in rats - Int. J. Biol. Macromol. 2012, Jun 1, 50(5), 1224-1228.
328.Yeh M.Y., Ko W.C., Lin L.Y. Hypolipidemic and antioxidant activity of enoki mushrooms (Flammulina velutipes) - Biomed. Res. Int. 2014, 2014, 352385.
329. Yi C., Sun C., Tong S., Cao X., Feng Y., Firempong C.K., Jiang X., Xu X., Yu J. Cytotoxic effect of novel Flammulina velutipes sterols and its oral bioavailability via mixed micellar nanoformulation - Int. J. Pharm. 2013, May 1, 448(1), 44-50.
330.Yim H.S.Jr., Chye F.Y., Tan C.T., Ng Y.C., Ho C.W. Antioxidant Activities and Total Phenolic Content of Aqueous Extract of Pleurotus ostreatus (Cultivated Oyster Mushroom) - Malays. J. Nutr. 2010, Aug., 16(2), 281-291.
331.Yin H., Wang Y., Wang Y., Chen T., Tang H., Wang M. Purification, characterization and immuno-modulating properties of polysaccharides isolated from Flammulina velutipes mycelium - Am. J. Chin. Med. 2010, 38(1), 191-204.
332.Ying Y.M., Zhang L.Y., Zhang X., Bai H.B., Liang D.E., Ma L.F., Shan W.G., Zhan Z.J. Terpenoids with alpha-glucosidase inhibitory activity from the submerged culture of Inonotus obliquus -Phytochemistry 2014, Dec., 108, 171-176.
333.Yokota M.E., Frison P.S., Marcante R.C., Jorge L.F., Valle J.S., Dragunski D.C., Colauto N.B., Linde G.A. Iron translocation in Pleurotus ostreatus basidiocarps: production, bioavailability, and antioxidant activity - Genet. Mol. Res. 2016, Feb 22, 15(1).
334.Yoon T.J., Lee S.J., Kim E.Y., Cho E.H., Kang T.B., Yu K.W., Suh H.J. Inhibitory effect of chaga mushroom extract on compound 48/80-induced anaphylactic shock and IgE production in mice - Int. Immunopharmacol. 2013, Apr., 15(4), 666-670.
335.Youn M.J., Kim J.K., Park S.Y., Kim Y., Park C., Kim E.S., Park K.I., So H.S., Park R. Potential anti-cancer properties of the water extract of Inonotus [corrected] obliquus by induction of apoptosis in melanoma B16-F10 cells - J. Ethnopharmacol. 2009, Jan 21, 121(2), 221-228.
336.Younis A.M., Wu F.S., El Shikh H.H. Antimicrobial Activity of Extracts of the Oyster Culinary Medicinal Mushroom Pleurotus ostreatus (Higher Basidiomycetes) and Identification of a New Antimicrobial Compound - Int. J. Med. Mushrooms 2015, 17(6), 579-590.
337.Yuan X.L., Yan L.H., Zhang Q.W., Wang Z.M. [Chemical constituents from fungus Armillaria mellea] - Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2013, Aug., 38(16), 2671-2674.
338. Yue Z., Xiuhong Z., Shuyan Y., Zhonghua Z. Effect of Inonotus Obliquu Polysaccharides on physical fatigue in mice - J. Tradit. Chin. Med. 2015, Aug., 35(4), 468-472.
339. Zaidman B.Z., Wasser S.P., Nevo E., Mahajna J. Coprinus comatus and Ganoderma lucidum interfere with androgen receptor function in LNCaP prostate cancer cells - Mol. Biol. Rep. 2008, Jun., 35(2), 107-117.
340. Zajac M., Muszynska B., Kala K., Sikora A., Opoka W. Popular species of edible mushrooms as a good source of zinc to be released to artificial digestive juices - J. Physiol. Pharmacol. 2015, Oct., 66(5), 763769.
341. Zavastin D.E., Mircea C., Aprotosoaie A.C., Gherman S., Hancianu M., Miron A. Armillaria mellea: phenolic content, in vitro antioxidant and antihyperglycemic effects - Rev. Med. Chir. Soc. Med. Nat. Iasi. 2015, Jan-Mar., 119(1), 273-280.
342. Zhang A., Xiao N., He P., Sun P. Chemical analysis and antioxidant activity in vitro of polysaccharides extracted from Boletus edulis - Int. J. Biol. Macromol. 2011, Dec 1, 49(5), 1092-1095.
343. Zhang S., Liu X., Yan L., Zhang Q., Zhu J., Huang N., Wang Z. Chemical compositions and antioxidant activities of polysaccharides from the sporophores and cultured products of Armillaria mellea -Molecules 2015, Mar 31, 20(4), 5680-5697.
344. Zhang Y., Dai L., Kong X., Chen L. Characterization and in vitro antioxidant activities of polysaccharides from Pleurotus ostreatus - Int. J. Biol. Macromol. 2012, Oct., 51(3), 259-265.
345. Zhang Y., Hu T., Zhou H., Zhang Y., Jin G., Yang Y. Antidiabetic effect of polysaccharides from Pleurotus ostreatus in streptozotocin-induced diabetic rats - Int. J. Biol. Macromol. 2016, Feb., 83, 126-132.
346. Zhang Z., Lv G., He W., Shi L., Pan H., Fan L. Effects of extraction methods on the antioxidant activities of polysaccharides obtained from Flammulina velutipes - Carbohydr. Polym. 2013, Nov 6, 98(2), 1524-1531.
347. Zhao F., Mai Q., Ma J., Xu M., Wang X., Cui T., Qiu F., Han G. Triterpenoids from Inonotus obliquus and their antitumor activities -Fitoterapia 2015, Mar., 101, 34-40.
348. Zhao F.Q., Yan L., Cui X.H., Lin S., Wang C., Zhang H., Kang X.Y., Ji B.S. [Triterpenoids from Inonotus obliquus protect mice against
oxidative damage induced by CCI4] - Yao Xue Xue Bao. 2012, May, 47(5), 680-684.
349. Zhao L.W., Zhong X.H., Sun Y.M., Yang S.Y., Shen N., Zhang Y.Z., Yang N.J., Ren K., Lu S.J. [Prevention of Inonotus obliquus polysaccharides for high power microwave radiation induced testicular injury in rats: an experimental research] - Zhongguo Zhong Xi Yi Jie He Za Zhi. 2014, Jul., 34(7), 864-868.
350. Zhao L.W., Zhong X.H., Yang S.Y., Zhang Y.Z., Yang N.J. Inotodiol inhabits proliferation and induces apoptosis through modulating expression of cyclinE, p27, bcl-2, and bax in human cervical cancer HeLa cells - Asian. Pac. J. Cancer. Prev. 2014, 15(7), 3195-3199.
351. Zhong X.H., Ren K., Lu S.J., Yang S.Y., Sun D.Z. Progress of research on Inonotus obliquus - Chin. J. Integr. Med. 2009, Apr., 15(2), 156-160.
352. Zhou G., Han C. The co-effect of vanadium and fermented mushroom of Coprinus comatus on glycaemic metabolism - Biol. Trace. Elem. Res. 2008, Jul., 124(1), 20-27.
353. Zjawiony J.K. Biologically active compounds from Aphyllo-phorales (polypore) fungi - J. Nat. Prod. 2004, Feb., 67 (2), 300-310.
