CC BY
1357 Sugiyama N., Obinata M., Matsui Y. Bcl-2 inhibits apoptosis of spermatogonia and growth of spermatogonia! stem cells in a cell-intrinsic manner // J. Mol. Reprod. Dev. 2001. Vol. 58 (1). P. 30-8.
58 Tanimoto K., Yoshida E., Mita S., Nibu Y., Murakami K., Fukamizu A. Human activin beta-A gene: identification of novel 5-prime exon, functional promoter, and enhancers // J. Biol. Chem. 2012. Vol. 271. P. 32760-32769.
59 Tumuluri V., Thomas G.A., Fraser I.S. Analysis of the Ki-67 antigen at the invasive tumour front of human oral squamous cell carcinoma // J. Oral. Pathol. Med. 2002. Vol. 31. P. 598-604.
60 Ulirsch J., Fan Ch., Knafl G., Ming Jing Wu, Coleman B., Perou Ch., Swift-Scanlan T. Vimentin DNA methylation predicts survival in breast cancer // Breast Cancer Research and Treatment. 2013. Vol. 137 (2). P. 383-96.
61 Vigueras-Villaseñor R.M., Cortés-Trujillo L., Chávez-Saldaña M., Vázquez F.G., Carrasco-Daza D., Cuevas-Alpuche O., Rojas-Castañeda J.C. Analysis of POU5F1, c-Kit, PLAP, AP2y and SALL4 in gonocytes of patients with cryptorchidism // Acta Histochem. 2015. Vol. 117 (8). P. 752-61.
62 Wrobel K.H., Bickel D., Kujat R. Immunohistochemical study of seminiferous epithelium in adult bovine testis using monoclonal antibodies against Ki-67 protein and proliferating cell nuclear antigen (PCNA) // J. Cell Tissue Res. 1996. Vol. 283(2). P. 191-201.
63 Yan W., Huang J., Lax A-S., Pelliniemi L. Overexpression of Bcl-w in the Testis Disrupts Spermatogenesis: Revelation of a Role of BCL-W in Male Germ Cell Cycle Control // J. Molecular Endocrinology. 2013. Vol. 17, Iss. 9. P. 45-57.
Статья принята в печать 5 декабря 2015 г.
Рецензент Гелашвили П.А., доктор медицинских наук, профессор кафедры морфологии и
патологии «Медицинский университет «Реавиз».
УДК 611.663/. 664-092.9 (045)
© 2015 Г.Н. Суворова, Ю.В. Григорьева, С.Н. Чемидронов, В.А. Ваньков
ГИСТОСТРУКТУРНАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ СТЕНКИ ВЛАГАЛИЩА В МЕСТЕ ЕГО ПЕРЕХОДА В УРОГЕНИТАЛЬНЫЙ СИНУС У КРОЛИКОВ
Методом световой микроскопии уточнено гистологическое строение стенки нижней трети влагалища в месте его перехода в урогенитальный синус. Установлено, что на уровне стыка полового и уретрального синусов слизистая оболочка влагалища, высланная однослойным призматическим реснитчатый эпителием, резко сменяется многослойным переходным эпителием, наблюдаемым в слизистой оболочке уретры. Мышечная оболочка влагалища этой области характеризуется увеличением объема циркулярного слоя и формированием сфинктера.
Ключевые слова: кролик, влагалище, урогенитальный синус, матка, сфинктер.
Одним из наиболее сложных и актуальных вопросов животноводства является проблема воспроизводства. Поэтому всестороннее и глубокое изучение половых органов сельскохозяйственных животных, в частности кролика, необходимо для решения вопросов коррекции и управления процессами репродуктивной функции [3, 5].
Кролики являются не только удобным биологическим объектом в проведении различных экспериментов для моделирования процессов размножения, но и хорошо разводимыми в неволе животные, мясо которых в данное время оценено населением как ценный и питательный продукт.
Однако большинство сведений о морфологических и гистохимических показателях половой системы этих животных носят фрагментарный характер, многие вопросы практически не освещены [4], поэтому каждое дает новые данные, достойные внимания клиницистов-ветеринаров и практиков искусственного осеменения [5, 6, 7].
Цель настоящего исследования - с помощью световой микроскопии изучить гистологическое строение участка перехода нижней трети влагалища в урогенитальный синус кролика.
Материалы и методы. В работе использованы нерожавшие крольчихи в возрасте 7-8 месяцев, в количестве 6 особей. Объектами изучения явились влагалище и урогенитальный синус. Исследование выполнено в соответствии с «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных». Материал фиксировали в 10 % растворе формалина на фосфатном буфере фирмы ООО «Биовитрум». Проводку материала осуществляли в гистологическом процессоре замкнутого типа с вакуумом Leica ASP 300. Заливали материал в парафин «Histomix» фирмы Bio Optica. Срезы готовили на роторном микротоме толщиной 6-7 мкм. В работе использован метод световой микроскопии с окраской срезов гематоксилином и эозином.
Результаты исследований и их обсуждение. Урогенитальный тракт кроликов имеет ряд морфологических отличий в сравнении с другими плацентарными [9, 10]. Во-первых, в то время как у большинства млекопитающих формируются три отдельных отверстия: анальное, влагалища и уретры, у крольчих имеется только два естественных отверстия - анальное и урогенитального синуса. Во-вторых, матка кролика в своем строении имеет парные рога, двойные тело и шейки, которые открываются двумя самостоятельными отверстиями в общее удлиненное влагалище [1, 2]. Тело влагалища представлено длинным, широким и неэластичным непарным органом [8, 10, 11].
Гистологическое исследование стенки нижней трети влагалища кролика на уровне формирования общего урогенитального синуса показывает, что она состоит из трех оболочек: слизистой, мышечной и адвентициальной.
Слизистая оболочка нижней трети влагалища состоит из эпителиальной пластинки - однослойного призматического реснитчатого эпителия и собственной пластинки, представленной рыхлой волокнистой соединительной тканью. В свою очередь слизистая образует рельеф в виде пальцевидных складок (рис. 1).
Эпителий этих складок морфологически различен: в области выпячивания складок - однослойный однорядный призматический реснитчатый, в отдельных участках углублений складок - однослойный двурядный. На уровне слияния влагалища с урогенитальным синусом отмечается переход однослойного призматического реснитчатого эпителия в многослойный переходный эпителий (рис. 2). Таким образом, здесь формируется стык двух морфологически и гистогенетически разных типов эпителия.
Собственная пластинка слизистой оболочки влагалища в этой области истончается, а подлежащая мышечная оболочка практически вплотную подходит в базальной мембране эпителия.
Мышечная оболочка нижней трети влагалища на уровне формирования урогенитального синуса образована тремя неравномерно выраженными слоями, и образует неполностью сформированный сфинктер. В месте соединительнотканной перегородки, разделяющей уретральный синус и половой синус, мышечная оболочка истончается.
Особенностью строения слоев мышечной оболочки является его тканевая гетерогенность. Два его слоя, - внутренний и средний - представлены гладкой мышечной тканью. Пучки гладких миоцитов здесь располагаются однонаправлено. Наружный слой имеет про-
тивоположное направление, представлен как гладкими миоциами, так и тонкими волокнами поперечнополосатой мышечной ткани (рис. 3). Границы между слоями четкие, они разграничены друг от друга прослойками рыхлой волокнистой соединительной ткани, по которой проходят вены и артерии мышечного типа.
Рис. 3. Наружный слой мышечной оболочки нижней трети влагалища. Волокна поперечнополосатой мышечной ткани (указано стрелкой). Окраска: гематоксилин и эозин. Увел. 400Х
Появление в наружном слое мышечной оболочки волокон поперечнополосатой мышечной ткани, вероятно, может быть объяснено их проникновением в стенку урогенитального синуса из мышц, формирующих тазовое дно.
Полость влагалища отделена от полости урогенитального синуса соединительнотканной перегородкой. В просвет урогенитального синуса вдается множество складок слизистой оболочки.
На основании результатов данного гистологического исследования установлено, что участок перехода влагалища в урогенитальный синус характеризуется наличием стыка двух различных эпителиев, а именно, переходом однослойного призматического реснитчатого эпителия в многослойный переходный. Мышечная оболочка в участке перехода увеличена по ширине и напоминает сфинктер.
Рис. 1. Рельеф слизистой оболочки нижней трети влагалища. Окраска: гематоксилин и эозин. Увел.
Рис. 2. Переход эпителия нижней трети влагалища в эпителий урогенитального синуса кролика (указано стрелкой). Окраска: гематоксилин и эозин. Увел. 400Х
400Х
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1 Григорьева Ю.В., Ямщиков Н.В., Бормотов А.В, Гарифуллина К.Ф. Особенности строения миометрия нижнего сегмента матки лабораторных крыс // Фундаментальные исследования. 2012. № 12 (часть 1). С. 48-51.
2 Григорьева Ю.В., Ваньков В.А., Качаев О.Ю. Гистоструктурная организация стенки нижнего сегмента матки кролика // Вестник медицинского института «РЕАВИЗ». Реабилитация, врач и здоровье. 2013. № 4 (12). С. 7-12.
3 Дорош М.В. Болезни кроликов и нутрий. М. : Вече, 2007. С. 11-12.
4 Коробенко Е.Н. Морфофункциональные изменения половых органов крольчих при беременности: автореф. ... канд. биол. наук. Улан - Удэ, 2005. 118 с.
5 Battles AH. The biology, care and diseases of the Syrian hamster // Comp Cont Ed Pract Vet. 1985. Vol. 7. P. 815-824.
6 Castelan F. (Eds.). Morphometry of paravaginal ganglia from the pelvic plexus: impact of multiparity, primiparity, and pregnancy // European journal of Obstetrics & Gynecology and Reproductive biology. 2013. Vol. 170. P. 286-292.
7 Capello V. Surgical techniques for orchiectomy of the pet rabbit // ExoticDVM. 2005. Vol. 7 (5). P. 23-32.
8 Finnie EP. Monotremesand marsupials-reproduction // Fowler ME, ed. Zoo and Wild Animal Medicine.2nd ed. Philadelphia, PA: WB Saunders; 1986. P. 592-593.
9 Popesko P, Rajtovà V, Horak J. (Eds.) A Color Atlas of Anatomy of Small Laboratory Animals.Published by Saunders Ltd: U.S.A., 1990.
10 Steven H. The Biology of the Laboratory Rabbit.N.Y., USA: Academic press, 1974.P. 496.
11 Wallach JD, Boever WJ. Marsupialia and monotremes // Diseases of Exotic Animals: Medical and Surgical Management. Philadelphia, PA: WB Saunders; 1983. P. 574-611.
Статья принята в печать 13 декабря 2015 г.
Рецензент Дробышева Р.А. доктор медицинских наук, профессор кафедры морфологии и
патологии «Медицинский университет «Реавиз».
