CC BY
165
УДК 619:616-078:616.995.1:636.2+636.3
ГЕЛЬМИНТООВОСКОПИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА ТРЕМАТОДОЗОВ И ПУТИ УЛУЧШЕНИЯ ЕЕ ЭФФЕКТИВНОСТИ
Лутфуллин М.Х., Латыпов Д.Г., Никифоров П.Г.
Казанская государственная академия ветеринарной медицины
Ключевые слова: трематодозы, диагностика, эффективность.
Key words: trematodozy, diagnostics, efficiency.
Основой профилактики гельминтозов являются профилактические и лечебные дегельминтизации, целесообразность проведения которых определяется результатами гельминтоовоскопических исследований животных.
В практических условиях для гельминтоовоскопических исследований при трематодозах (фасциолез, дикроцелиоз,
парамфистоматоз) у крупного рогатого скота, в основном, применяют метод последовательных смывов. Предложены также многочисленные флотационные и комбинированные методы. Однако данные исследований многих авторов о диагностической эффективности этих методов противоречивые.
Нами была изучена диагностическая эффективность седиментационного и некоторых флотационных и комбинированных методов для диагностики фасциолеза крупного рогатого скота.
Испытывали существующие флотационные и комбинированные методы Щербовича, Вереты, Маллори, Котельникова-Хренова, Вишняускаса, Вольфа, Сафиуллина, Котельникова-Вареничева и Демидова. В качестве контроля использовали седиментационный метод последовательных промываний.
Для стандартизации исследований в работе использовали один и тот же материал и идентичную посуду (стаканчики объемом 30 мл, центрифужные пробирки объемом 10 мл). Отстаивание и центрифугирование проб проводили в течение одного и того же времени. Удельный вес приготовленных флотационных растворов определяли с помощью денсиметра при температуре окружающей среды 20°С.
Собранные из маток гельминтов яйца фасциол закладывали в количестве 100 экз. в пробы фекалий крупного рогатого скота весом 1 г, которые были изначально свободны от яиц трематод. Всплывшие яйца диагностировали путем снятия их с поверхностной пленки с помощью металлической петли и подсчитывали их сначала в одной капле, а затем в 1 мл флотационной жидкости. Работали петлями с диаметром кольца 0,9 мм. Подсчет яиц вели с использованием сетки Акбаева, внося на нее 0,2 мл (5
капель) поверхностной пленки. Каждую пробу исследовали 5 раз, внося в общей сложности 25 капель (1 мл) поверхностного слоя пленки. Зная количество заложенных в пробах фекалий яиц трематод, оценку осуществляли количественным методом.
Исследования проводили в десяти повторностях, а полученные результаты подвергали статистическому анализу.
Данные о сравнительной эффективности различных гельминтоово-скопических методов диагностики трематодозов крупного рогатого скота с искусственной закладкой яиц показаны в таблице 1.
Установлено, что флотационные методы Щербовича с нитратом натрия, Маллори оказались не эффективными при диагностике фасциолеза у крупного рогатого скота (таблица 1).
С помощью флотационного метода Котельникова-Хренова с нитратом свинца удалось обнаружить 1,5% яиц фасциол. Методом Вереты в комбинации солей нитрата аммония с хлоридом натрия диагностировали в среднем 0,7% яиц фасциол, а методом Вишняускаса - 0,5% трематод.
Несколько выше была диагностическая эффективность комбинированных методов Щербовича и Вольфа. Так, при использовании в качестве флотационной жидкости сульфата магния, методом Щербовича было обнаружено в среднем 2,1% яиц фасциол, а при использовании тиосульфата натрия - 2,8%. Методом Вольфа с карбонатом калия выявили в среднем 2,2% яиц фасциол. При использовании комбинированного метода Демидова обнаружено в среднем 1,4 ± 0,05% яиц фасциол.
Широко применяемый на практике для диагностики трематодозов седиментационный метод последовательных смывов проявил сравнительно низкую диагностическую эффективность, этим методом выявлено в среднем 1,0 ± 0,03% яиц фасциол.
Диагностическая эффективность комбинированного метода Котельникова-Вареничева была намного выше по сравнению с другими методами. При его использовании выявлено в среднем 20% яиц фасциол в 1 мл поверхности взвеси.
С помощью метода Сафиуллина, где в состав флотационной жидкости входят насыщенные растворы хлорида цинка и хлорида натрия в соотношении 1:2, обнаружено в среднем 14% заложенных яиц фасциол.
Таким образом, наибольшую диагностическую эффективность при фасциолезе показали методы, в состав флотационной жидкости которых, входит хлорид цинка.
Однако необходимо отметить, что из-за большого удельного веса насыщенного раствора хлорида цинка, поверхностная пленка после центрифугирования взвеси, бывает сильно засорена непереваренными остатками корма, что в определенной степени затрудняет просмотр материала. Поэтому в целях устранения этих недостатков мы апробировали разные флотационные жидкости из хлорида цинка, приготовленные
как из одного ингредиента, так и в комбинации с насыщенным раствором хлорида натрия, отрабатывая их оптимальное соотношение. Нами был модифицирован комбинированный метод Котельникова-Вареничева с насыщенным раствором хлорида цинка (на 1 л воды 2 кг 7иС12, имеющий плотность 1,82 при 20°С), который приняли за базовый. К этому раствору добавляли насыщенный раствор поваренной соли (второй базовый раствор - на 1 л воды 420 г КаС1), имеющий плотность 1,19 при 20°С в соотношениях 1:0,5, 1:1, 1:1,5, 1:2, 1:2,5, 1:3, 1:4.
Результаты изучения сравнительной эффективности метода Котельникова-Вареничева с различными моно- и комбинированными 2-х компонентными флотационными жидкостями показали, что по методу Котельникова-Вареничева с насыщенным раствором хлоридом цинка было выявлено в среднем 18% заложенных в пробу фекалий яиц фасциол. При использовании базисных растворов хлорида цинка и хлорида натрия в соотношении 1:0,5 было обнаружено в среднем 32% яиц фасциол, комбинированный раствор этих же солей в соотношении 1:1 дал возможность обнаружить 21 ± 0,7% яиц фасциол. Флотационные растворы в соотношении 1:1,5 и 1:2 выявили в среднем 19% заложенных яиц фасциол.
При использовании комбинированных растворов с более низким удельным весом (1,32 - 1,41) яйца фасциол не всплывали на поверхность жидкости. Так, при соотношении базисных растворов 1:2,5 было обнаружено в среднем 1% яиц фасциол, в соотношении 1:3 и 1:4 яйца фасциол в этих растворах не были выявлены.
Таким образом, использование при методе Котельникова-Вареничева 2-х компонентной флотационной жидкости, состоящей из насыщенных растворов хлорида цинка и хлорида натрия в соотношении 1:0,5 вместо однокомпонентной флотационной жидкости (насыщенного раствора хлорида цинка), дало возможность повысить процент выявления яиц фасциол от 18 до 32%. Кроме того, при этом отмечено увеличение времени кристаллизации исследуемой капли до 3-х часов, а поверхностная пленка после центрифугирования становится чистой.
Следующим этапом наших исследований явилось усовершенствование метода Котельникова-Вареничева при гельминтоовоскопии яиц фасциол, используя разные флотационные жидкости, приготовленные из 3х ингредиентов. Ими служили насыщенные растворы хлорида цинка (на 1 л воды 2 кг /иС12, имеющий плотность 1,82 при 20°С), хлорида натрия (на 1 л воды 420 г КаС1, имеющий плотность 1,19 при 20°С), сахара (на 1 л воды 1670 г сахара, имеющий плотность 1,28 при 20°С). Диагностическую эффективность метода Котельникова-Вареничева определяли в разных соотношениях базовых растворов, которые использовались в качестве флотационных жидкостей.
1. Сравнительная эффективность различных гельминтоовоскопических методов диагностики трематодозов
крупного рогатого скота с искусственной закладкой яиц
Реактив Количество Количество Процент выявленных яиц фасциол
№ п/п Методы исследований Хим. формула Норма расхода на 1 л Удельный вес раствора заложенных в 1 пробе яиц фасциол обнаруженных в 1 пробе яиц фасциол
1 Котельникова-Хренова Вишняускаса РЬ (N03)2 650 1,5 100 1,5 ± 0,02 1,5 ± 0,02
2 Щербовича 2и804 450 1,39 100 0,5 ± 0,01 0,5 ± 0,01
3 Щербовича NN03 1000 1,38 100 - -
4 Щербовича М§Б04 920 1,28 100 2,1 ± 0,06 2,1 ± 0,06
5 Вереты №28203 1750 1,40 100 2,8 ± 0,14 2,8 ± 0,14
6 Вольфа N^N03+^01 550+250 1,27 100 0,7 ± 0,02 0,7 ± 0,02
7 Маллори К2С03 600 1,42 100 2,2 ± 0,07 2,2 ± 0,07
8 Котельникова- С12Н22011 1670 1,28 100 - -
9 Вареничева Сафиуллина 2иС12 2000 1,82 100 20,0 ± 1,0 20,0 ± 1,0
10 Демидова 2иСІ2+№С1 666+280 1,49 100 14,0 ± 0,6 14,0 ± 0,6
11 Последовательных ШС1 420 1,19 100 1,4 ± 0,05 1,4 ± 0,05
12 смывов Н20 1000 1,0 100 1,0 ± 0,03 1,0 ± 0,03
Исследования показали, что по методу Котельникова-Вареничева с использованием флотационной жидкости, состоящей из 3-х ингредиентов -насыщенных солей хлорида цинка, хлорида натрия и сахара в соотношении 2:1:1 (удельный вес 1,63) было выявлено в среднем 60,2% заложенных яиц фасциол.
При уменьшении удельного веса флотационной жидкости из 3-х ингредиентов снижалась и диагностическая эффективность этого метода. Так, при соотношении базисных растворов 2:1:2 (при удельном весе 1,60) было обнаружено в среднем 52,6% яиц фасциол, а соотношение ингредиентов 2:2:1 (при удельном весе 1,58) позволило выявить в среднем 40,8% яиц гельминтов.
Наименьшее число яиц фасциол (28,6%) было выявлено с помощью флотационного раствора в соотношении ингредиентов 1:1:1, удельный вес которого составил 1,55.
На последнем этапе наших изысканий была изучена эффективность упрощенного варианта гельминтоовоскопического метода, с использованием 3-х ингредиентной флотационной смеси, отличающегося однократным центрифугированием. Этим методом было выявлено 58,7% яиц фасциол.
Заключение. В контролируемых опытах с искусственной закладкой яиц фасциол установлено, что из 12 гельминтоовоскопических методов диагностики фасциолеза крупного рогатого скота, наиболее высокой разрешающей способностью обладают методы, в состав флотационной жидкости которых входит хлорид цинка.
Метод с флотационной жидкостью, состоящей из насыщенных растворов хлорида цинка, хлорида натрия и сахара в соотношении 2:1:1, с однократным и двукратным центрифугированием, позволяет выявить от 58,7 ± 1,1 до 60 ± 1,2% заложенных яиц фасциол. Метод с однократным центрифугированием позволяет значительно сократить время, затраченное на исследование.
ГЕЛЬМИНТООВОСКОПИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА ТРЕМАТОДОЗОВ И ПУТИ УЛУЧШЕНИЯ ЕЕ ЭФФЕКТИВНОСТИ
Лутфуллин М.Х., Латыпов Д.Г., Никифоров П.Г.
Резюме
Изучена эффективность различных методов при диагностике фасциолеза жвачных животных. Установлено, что наиболее эффективными являются методы, в состав флотационной жидкости которых входит хлорид цинка.
GELMINTOOVOSKOPICHESKAYA TREMATODOZOV DIAGNOSIS AND WAYS OF IMPROVING ITS EFFICIENCY
Lutfullin M.H., Latypov D.G., Nikiforov, P.G.
Summary
Efficiency of various methods is studied at diagnostics of fasciolosis ruminants. It is established, that the most effective are methods, the structure which flotation liquids includes chloride of zinc.
УДК 619:616.995.1+612.12:636.4
ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЕ И БИОХИМИЧЕСКИЙ ПОКАЗАТЕЛИ У ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНО ИНВАЗИРОВАННЫХ ПОРОСЯТ ПОСЛЕ ВВЕДЕНИЯ НЕКОТОРЫХ ПРЕПАРАТОВ
Мавлиханов Р.Ф., Никифоров П.Г.
Казанская государственная академия ветеринарной медицины
Ключевые слова: гельминтозы, кровь, поросята.
Key words: helminthiasis, blood, pig.
Эффективность антигельминтиков, рекомендуемых при
гельминтозах, нельзя оценивать только на основании изучения интенс- и экстенсэффективности, при этом также важно учитывать изменения основных гематологических показателей после введения данных препаратов в организм животных.
В опыте использовали 25 поросят 2-х месячного возраста средней живой массой 14 кг. 20 животных предварительно заразили смешанной культурой инвазионных яиц кишечных нематод (Ascaris suum, Trichocephalus suis), а также личинками 3-й стадии рода Oesophagostomum в дозе 300 экз. на 1 кг массы тела, которые были разделены на 4 группы (по 5 животных в каждой). Из 5 здоровых животных сформировали интактную группу.
Спустя 30 дней после заражения, животным первой группы задавали дегельм-16, второй - КС-дегельм, третьей - ивермек. Животным четвертой группы препараты не задавались, они служили контролем.
До и через 7, 15 и 30 дней после введения препаратов у поросят брали кровь для гематологических и биохимического исследований.
Перед лечением у поросят, инвазированных кишечными нематодозами количество эритроцитов составило в первой группе 3,84 ±
