CC BY
15
MELIORATION
URL: https://www.nkj.ru/archive/articles/13930/
11. Романченко В. ЗР-технология с применением активных затворных очков. URL: https://3dnews.ru/586586/page-4.html.
12. Параллаксный барьер - 3D без очков // Вокруг 3D. URL: http://vokrug3d. ru/tehnologii/pa rallaksnyi-barer-3d-bez-och kov.html
13. Романченко В. Сотово-матричная технология Masterlmage 3D с парал-лаксным барьером. URL: https://3dnews.ru/629875/page-2.html
14. Наймушин А., Горюнов Г. Стереоскопическое изображение в промышленной электронике, или несколько слов о применении 3D TFT-панелей // Компоненты и технологии. 2012. № 9. С. 30. URL: https://www.eltech.spb.ru/ ckfinder/userfiles/files/cTaTbfl%20h^MyLiJHHa.pdf.
15. Романченко В. Стереоскопия без очков: проблемы и решения. URL: https://3dnews.ru/629875/page-2.html.
Literatura:
1. Karpyk А.Р. Elektronnoe heoprostranstvo - sushchnost у kontseptualnye osnovy // Heodezyia y kartohrafyia. 2009. # 5. S. 41-44.
2. Kozachenko T.I., Parkhomenko P.O., Molochko A.M. Kartohrafichne modeliuvannia. Vinnytsia: Antek-U, 1999. 328 s.
3. Lysytskyi D.V. Perspektyvy razvytyia kartohrafyy: ot systemy «Tsyfrovaia zemlia» ksysteme vyrtualnoi heorealnosty//Vestnyk SHHA. 2013. Vyp. 2 (22). S. 8-16.
4. Lysytskyi D.V., Katsko S.Yu. Yzmenenye roly kartohrafycheskykh yzobrazhenyi
v protsesse formyrovanyia edynoho elektronnoho heoprostranstva // Yzvvestyia vuzov. Heodezyia y aerofotos"emka. 2012. # 2/1. S. 156-161.
5. Nazarov A.S. Fotohrammetryia. Mynsk: TetraSystems, 2006. 368 s.
6. Orobynskyi, V.S. Osnovy aerofotoheodezyy. Vladymyr: Yzdatelstvo Vladymyrskoho hosudarstvennoho unyversyteta, 2005. 72 s.
7. Salyshchev K.A., Hedymyn A.V. Kartohrafyia. Moskva: Heohrafhyz, 1985. 408 s.
8. Aktyvnoe y passyvnoe 3D, sposoby poluchenyia ob"emnoho yzobrazhenyia. URL: http://rem-tv.net/publ/4-l-0-43.
9. Kablov E. Shestoi tekhnolohycheskyi uklad // Nauka y zhyzn. 2010. #4. URL: http: // www.nkj.ru/archive/articles/17800.
10. Holubev A. V myre poliaryzovannoho sveta // Nauka y zhyzn # 5. 2008. URL: https://www.nkj.ru/archive/articles/13930/
11. Romanchenko V. 3D-tekhnolohyia s prymenenyem aktyvnykh zatvornykh ochkov. URL: https://3dnews.ru/586586/page-4.html.
12. Parallaksnyi barer - 3D bez ochkov // Vokruh 3D. URL: http://vokrug3d.ru/ tehnologii/pa rallaksnyi-barer-3d-bez-ochkov.html
13. Romanchenko V. Sotovo-matrychnaia tekhnolohyia Masterlmage 3D s parallaksnym barerom. URL: https://3dnews.ru/629875/page-2.html
14. Naimushyn A., Horiunov H. Stereoskopycheskoe yzobrazhenye v promyshlennoi elektronyke, yly neskolko slov o prymenenyy 3D TFT-panelei // Komponenty y tekhnolohyy. 2012. # 9. S. 30. URL: https://www.eltech.spb.ru/ ckfinder/userfiles/files/statia%20Naimushyna.pdf.
15. Romanchenko V. Stereoskopyia bez ochkov: problemy y reshenyia. URL: https://3dnews.ru/629875/page-2.html.
€. П. КОПИЛОВ УДК 579.264:631.461:633.12
доктор бюл. наук, старший науковий сгпвроб1тник, 1нститут стьськогосподарськоТ мкробюлоги та агропромислового виробництва НААН
А. С. Кислинська
асгпрант, провщний мкробюлог, 1нститут альськогосподарськоТ мкробюлогм та агропромислового виробництва НААН
ФОРМУВАННЯ М1КОЦЕНОЗУ KOPEHEBOÍ ЗОНИ ГРЕЧКИ П0С1ВН01 ЗА ДП САПРОТРОФНОГО ГРИБА
CHAETOMIUM COCHLIODES
Анотацт. Вивчено кшьк/'сний i як/'сний склад гриб/'в чорноземного вилугованого слабоглеюватого легкосуглинкового грунту на селi кореневоТ зони гречки nociBHOi та дослщжено вплив на м/'коценоз кореневоТ зони гриба-антогон1ста Chaetomium cochliodes 3250 Palliser. Всгановлено, що в едафосферi траплялися представники 14, в ризосферi - 8 род/'в MiKpoMiueriB, з поверхнi корен/'в було видшено гриби род/'в Rhizopus Ehrenb. (1,9%), Trichoderma Pers (33,6%) та Penicillium Link (43,9%). За використання С. cochliodes 3250 для передпоавно)' обробки наа'ння гречки спостер/'галось ¡стотне зниження ктькосл представниюв род/'в Fusarium Link, Bipolaris Shoemaker, Alternaría Nees, Aspergillus Tiegh., Cladosporium Corda, якi можуть викпикати симптоми кореневих хвороб рослин гречки. Ключов'г слова: м/коценоз, антагон/'ст, гречка поа'вна, С. cochliodes 3250.
Е. П. Копылов
доктор биол. наук, старший научный сотрудник, Институт сельскохозяйственной микробиологии и агропромышленного производства НААН А. С. Кислинская
аспирант, ведущий микробиолог, Институт сельскохозяйственной микробиологии и агропромышленного производства НААН
ФОРМИРОВАНИЕ МИКОЦЕНОЗА КОРНЕВОЙ ЗОНЫ ГРЕЧКИ ПОСЕВНОЙ ПОД ВЛИЯНИЕМ САПРОТРОФНОГО ГРИБА CHAETOMIUM COCHLIODES
Аннотация. Изучен количественный и качественный состав грибов черноземной выщелоченной слабоглеювой легкосуглинковой почвы на лессе корневой зоны гречки посевной и исследовано влияние на микоценоз корневой зоны гриба-антагониста Chaetomium cochliodes 3250 Palliser. Установлено, что в эдафосфере встречались представители 14, в ризосфере - 8 родов, с поверхности корней были выделены представители родов Rhizopus Ehrenb. (1,9%), Trichoderma Pers (33,6%) и Penicillium Link (43,9%). При использовании С. cochliodes 3250'для предпосевной обработки семян гречки наблюдалось существенное снижение числа представителей родов Fusarium Link, Bipolaris Shoemaker, Alternaría Nees, Aspergillus Tiegh., Cladosporium Corda, которые могут вызывать симптомы корневых болезней растений гречки. Ключевые слова: м/'коценоз, антагонист, гречка поа'вна, С. cochliodes 3250. Е. P. Kopilov
Doctor of Biological Sciences, Institute of Agricultural Microbiology and Agro-Industrial Production of NAAS A. S. Kyslynska
Postgraduate Student, Institute of Agricultural Microbiology and Agro-Industrial Production of NAAS
THE INFLUENCE OF SAPROTROPHIC MOLD CHAETOMIUM COCHLIODES ON MYCOCENOSIS IN
BUCKWHEAT ROOT ZONE
Abstract. The quantitative and qualitative mold composition in buckwheat root zone on leached sluggish light-sagged chernozem soil on loess was investigated and the influence of mold-antagonist Chaetomium cochliodes 3250 Palliser on mycocenosis of buckwheat root zone had been explored. There were 14 genus representatives isolated from the aisle of the
В1СНИК УМАНСЬКОГО НАЦЮНАЛЬНОГО УНИВЕРСИТЕТУ САД1ВНИЦТВА №2, 2017
culture and 8 genus representatives isolated from rhizosphere. From the root surface there were isolated Rhizopus Ehrenb. (1,9%), Trichoderma Pers (33,6%) and Pénicillium Link (43,9%). The usage of C. cochliodes 3250 for buckwheat seeds presowing treatment led to a significant decrease of molds Fusarium Link, Bipolaris Shoemaker, Alternaría Nees, Aspergillus Tiegh., Cladosporium Corda which are able to provoke the symptoms of root diseases of buckwheat. Key words: mycocenosis, antagonist, buckwheat, C. cochliodes 3250.
Постановка проблеми. Одшею з основних культур агроценозш Украши е гречка. Гречана крупа використовуеться як продукт дгётичного харчуван-ня завдяки значному вмюту бшюв, жирш, вуглеводш, мшеральних солей (зал1за, фосфору, кальц1ю, m¡a¡), оргашчних кислот (лимонноТ, яблучноТ, щавлевоТ), BÍTaM¡h¡b (Р, РР, В1( В2, рутину) [1, 19]. При цьому, вона вщр1зняеться збалансованим bmíctom арпшну i л1зину в амшокислотному склад1 бшюв та може збер1гатись про-тягом тривалого часу за рахунок високоТ ктькосп жирш, стшких до окиснення [7, 12, 17, 18,]. Рослини гречки в фаз1 цвтння можуть використовуватись як сировина для одержання рутину [11]. Важливе значения гречка мае як медонос, що приваблюе ентомофапв [19].
Необхщним фактором формування високого урожаю гречки е повноцшне надходження елементш мшерального живлення до рослини та вщсутшсть ураження патогенами. В1домо, що збудники захворювань призводять до зниження урожаю гречки на 7-47% [20]. Стввщношення ф1топатогенноТта антагошстичноТ мкрофлори у ф1тосфер1 обумовлюеться значною кшьюстю факторш: ф1зико-x¡m¡4hhmh умовами середовища, способами оброб1тку Грунту, видами рослин та 'ix розвитком, рослинами по-передниками [14, 16, 29].
Перспективним напрямком пщвищення продуктивное^ сшьськогосподарських культур, полтшення живлення рослин та захисту вщ збудниюв хвороб е застосування 6¡onpenapaT¡b з антагошстичним ефектом. Бюагентом мкробного препарату Хетомк, що рекомендований для захисту пшениц^ ячменю, люпину, coi, томатш, картопл1, соняшнику, цукрових буряюв та хмелю вщ кореневих хвороб, е гриб-антагошст Chaetomium cochliodes 3250
Palliser.
Саме тому, нами було проведено вивчення впливу гриба С. cochliodes 3250 на мкоценоз кореневоТ зони гречки посшноТ.
Анал1з оста нн ix дослщжень та публ1кац1й.
Ендоф1тн1 гриби, яю безсимптомно живуть в тканинах рослин, е джерелами природних сполук, що здшснюють р1зномаштний б1олопчний вплив на макрооргашзм. Сп1в1снування м1ж ендоф1том та рослиною господарем е взаемовиг1дним для обох партнерш [30]. Ниш широко використовуються метабол™, що продукуються ендоф1тними мкрооргашзмами, це дае змогу подолати зростаючий ршень резистентност1 збудниюв хвороб та недостатню к1льк1сть антибютиюв [33].
1ншим, важливим фактором запоб1гання поширенню хвороб рослин е функцюнування у ^рунт! MiKpoopraHi3MiB-антагон1ст1в ф1топатогешв. Високу ефективн1сть про-являють представники родш Pseudomonas, Bacillus, Trichoderma Pers., Chaetomium Kunze та ¡ним [10].
Chaetomium Kunze - один з великих родш родини Chaetomiaceae, який представлений бшьше н1ж 100 видами [25]. Серед грибш цього роду виявлеш активн1 аген-ти бюлопчноТ боротьби, що пригн1чують piCT бактер1й та гриб1в шляхом прямо! конкуренци, м1кропаразитизму або антиб1озу [22, 23, 35]. В1домо понад 200 сполук продуктш метабол1зму Chaetomium sp., як1 виявляють б1олопчну активн1сть, водночас велика кшьюсть цих з'еднань мае високий антагошстичний потенц1ал [25]. Мкромщет С. atrobrunneum L.M. Arnes продукуефунпциди - фускоатро-зид i хетеатрозин [24], С. cochliodes Palliser - антибютик хетомш [26], С. globosum Kunze ex Fr. - ф1тотоксин азофтон та хетомогтш D i J [34], антибютичн1 речо-
Таблиця 1
MÍKo6iQTa лучно-чорноземного вилугованого 1*рунту кореневоУ зони гречки nociBHOÏ_
Pifl Чисельшсть, тис./%
Едафосфера Ризосфера Ризоплана
Контроль Обробка С. cochliodes 3250 Контроль Обробка С. cochliodes 3250
Absidia Tiegh. 0,4/0,4 - - - -
Acremonium Link 2,9/2,8 - - - -
Alternaría Nees 3,4/3,2 11,6/13,5 - - -
Aspergillus P. Micheli ex Haller 1,5/1,4 1,5/1,7 - - -
Bipolaris Shoemaker 2,9/2,8 10,8/12,7 - - -
Chaetomium Kunze - - 11,6/11,8 - 1,9/3,9
Cladosporium Corda 2,9/2,8 2,9/3,5 2,9/3,1 - -
Dematiaceae - - 9,7/9,9 - -
Fusarium Link 3,7/3,5 3,4/3,9 1,9/1,9 - -
Cliocladium Corda 6,7/6,3 - - - 19,6/40,9
Mortierella Coem. 7,5/7,0 - 1,5/1,5 - -
Mucor Micheli ex Fr. 7,8/7,4 - - - -
Pénicillium Link 27,9/26,4 21,3/24,9 27,9/28,6 17,7/43,9 7,5/15,8
Rhizopus Ehrenb. 2,2/2,1 2,6/3,1 4,1/4,3 0,8/1,9 -
Stachybotrys Corda 1,5/1,4 - - - -
Trichoderma Pers. 20,1/19,0 18,3/21,4 26,1/26,7 13,5/33,6 12,04/25,2
Ihlüí rpnön 14,2/13,4 13,1/15,3 11,9/12,2 8,3/20,6 6,8/14,2
MICROBIOLOGY
вини хетомш та xeTOBipifliH [21, 32]. С. gracile Udagawa - антимкробний хетохромш А [28]. Хетоми е одним з найбшьш вивчених мкрооргашзмш у промисловосп для виробництва бюлопчно активних препаратш [27]. Проте визначати характер взаемоди мкрооргашзмш з рослиною неможливо без вивчення ïx р1зномашття в кореневш 30h¡.
3 огляду на вище зазначене метою нашо!' роботи було дослщити вплив гриба-антогошста С. cochliodes Palliser 3250 на склад грибного ценозу в кореневш зош гречки постно!'.
Методика дослщження. Зразки г'рунту вщбирали з орного шару (0-20 см) едафосфери (г'рунту м1жрядь), ризосфери (г'рунту що безпосередньо оточуе коршь), ризоплани (коренш рослин) та пстосфери (внутр1шн1х тканин рослинних корешв) гречки посшно! сорту Антарт. Грунт - чорнозем вилугований слабоглеюва-тий легкосуглинковий на леа (дослщне поле 1нституту сшьськогосподарсько! мкробюлогм та агропромислово-го виробництва НААН), який характеризуется такими arpoxiMNHHMH показниками: bmíct гумусу в орному luapi становить 3,56%, pH сольво!' витяжки - 5,2-5,6%, азот, що легко пдрол1зуеться - 95-100 мг (за КЬрнфшьдом) на 100 г г'рунту, рухомих форм фосфору - 251-256 мг на 100 г г'рунту (за Юрсановим) i обмшного кал1ю - 108-111 мг К20 на 1 кг г'рунту (за Юрсановим). Розмф постно!' дтянки - 8 м2, облковоТ - 6,4 м2, повторшсть - чоти-рьохразова. Агротехшка вирощування загальноприйнята для зони Полюся. Фосфорн1 та калшш добрива вносили в норм! Р30К45, азотн1 добрива не вносили. Дослщ заклада-ли за схемою: 1 - контроль (обробка насшня водопнною водою), 2 - передпосшна обробка насшня С. cochliodes 3250 з розрахунку 40 тисяч колошеутворюючих одиниць (КУО) на 1 насшину.
Biflöip фунтових зразкш, видшення грибш та ïx обл1к здшснювали за загальноприйнятими методиками [13]. Визначення чисельносп здшснювали за методом внесения г'рунтовоТ суспензи в товщу поживного середовища. Культурально-морфолог1чн1 ознаки грибш вивчали на сусло-arapi. 1дентиф1кували за вщповщними для кожно!' групи визначниками [3-6].
Ochobhí результати дослщження. Як видно з таблиц! 1, до найбшьш поширених род1в м1кромщетш лучно-чорноземного вилугованого г'рунту належать гри-би род1в Trichoderma Pers. i Pénicillium Link з чисельшстю 19,0% i 26,4% вщповщно. Типовими представниками едафосфери е гриби род1в Mucor Micheli ex Fr., Mortierella Coem., Gliocladium Corda, Fusarium Link.
Загальновщомо, що специфка кореневих видшень визначае склад грибш у ризосферк М1ж рослинами та м1кроорган1змами здшснюеться молекулярний зв'язок, який г"рунтуеться на o6m¡h¡ i транспорт! метаболтв. Разом з тим, спостер1гаеться як ¡нпбування, так i стимулювання певних видш грибш за рахунок ф1зюлопчно активних ре-човин, що видшяються коренями рослин [8, 15].
У ризосфер! гречки переважали гриби, яю належали до бшьш шж 8 родш, найвища кшьюсть в1дм!чена для представниюв Pénicillium Link (24,9%), Trichoderma Pers. (21,4%), Bipolaris Shoemaker (12,7%), Alternaria Nees (13,5%). На поверхш коренш траплялися гриби pOfliB Rhizopus Ehrenb. (1,9%), Trichoderma (33,6%) та Pénicillium Link (43,9%).
Серед BiflOMHx симптомш захворювань гречки значна частина мае грибну ет1олопю. Зокрема фузар1озна коричнева гниль Fusarium heterosporum Nees, фузарюзне в'янення F. oxysporum Schltdl, F. solani Sacc., F moniliforme J. Sheld., оливкова пл1снява - Cladosporium herbarum (Pers.) Link, альтернарюз - Alternaria alternata (Fr.) Keissl., A. fasciculata (Cooke & Ellis) L.R. Jones & Grout, A. tenuis Nees [31].
Антагошстичний вплив мкрооргашзмш на фтопатогени обумовлюеться низкою мехашзмш, таких як антибюз (¡нпбування антибютиками, токсинами чи по-верхнево активними речовинами) та конкуренцт за дже-рела живлення, поверхню колошзаци [22, 23, 35].
Ефективним засобом обмеження поширення ф1топатогенш може бути застосування сапротрофно-го гриба С. cochliodes 3250, що характеризуеться ви-сокою антагошстичною активн1стю. В ризосфер! гречки nociBHOÏ ¡статно зменшуеться ктьюсть представник1в pofliB Alternaria Nees, Aspergillus P. Micheli ex Haller, Bipolaris Shoemaker за впливу гриба антагошста. Та-кож простежуеться тенденцт до зменшення грибш роду Cladosporium Corda та Fusarium Link.
ГНдвищення стшкосп рослин до хвороб, можливо, також шляхом ¡ндукування захисних реакцш оргашзму, що передбачае здатн1сть рослинних тканин швидше та ¡нтенсившше реагувати на проникнення патогена. Застосування елюитору - apaxiflOHOBOï кислоти, може стиму-лювати 3axncHÍ механ1зми рослин [2]. 3 попередшх poöiT BiflOMO, що С. cochliodes 3250 продукуе арахщонову кислоту [9].
Безпосередньо на поверхш коренш гречки виявлено гриби Pénicillium Link, Trichoderma Pers., Rhizopus Ehrenb. У ризоплаш розвиваються як факультативы паразити, так i сапротрофш гриби, тобто р1зномашття míkoóíoth за-лежить Bifl конкурентно!' здатносп м1кромщетш. Важли-во BiflMiTHTH, що представники роду Chaetomium були виявлеш в ризосфер! та ризоплаш рослин гречки.
3 перепедшх вегетацшних досл!джень вщомо, що гриб С. cochliodes 3250 активно розвиваеться на коренях гречки i утворюе плодов! тша на кореневих волосках. Також виявлено проникнення пф гриба в кореш та коренев1 волоски рослин гречки [9]. Нами було тдтверджено проникнення грибш роду Chaetomium Kunze в пстосферу гречки в польових дослщженнях.
У контрольному BapiaHTi з внутршшх тканин коренш гречки були видшеш гриби родш Fusarium Link та VerticiHium Nees 9 та 4% вщповщно. В BapiaHTi з передпосшною обробкою насшня гречки грибом 75% м1кромщетш пстосфери складали представники роду Chaetomium Kunze. Видшеш гриби вщповщали на-ступним морфолопчним характеристикам: BepxiBKOBi вщростки двох ти п i в : прям1 знизу та з завитками звер-ху, шорсткуват1. Також ми спостер1гали плодов! т1ла (перитец||') вщ темно-зелених до темно-коричневих, з вщростками. Отже, ¡нтродукц1я в кореневу зону гречки С. cochliodes 3250 ¡статно зменшуе проникнення в кореш представниюв ¡нших родш ендоф1тних м1кром1цет1в шляхом прямо!' конкуренци та утворення асошацш з коренями рослин.
Висновки. Вивчено видовий склад мкромщетш луч-но-чорноземного вилугуваного г'рунту коренево!' зони гречки nociBHOÏ. Показано, що в едафосфер1 перева-жають гриби pofliB Trichoderma Pers. i Pénicillium Link. У ризосфер! також була виявлена значна кшьюсть Pénicillium Link, Trichoderma Pers., OKpiM того досить чи-сельними були представники pofliB Bipolaris Shoemaker та Alternaría Nees, яю часто е збудниками захворювань культурних рослин. Значно менша родова р1зномаштшсть вщмнена в ризоплаш рослин гречки (Rhizopus Ehrenb., Trichoderma Pers. та Pénicillium Link).
Функцюнування у г'рунт С. cochliodes 3250 -антагошста фтопатегенш, е важливим фактором запоб1гання поширенню хвороб. За передпосшно!' оброб-ки насшня гречки сапротрофним грибом в ризосфер! та ризоплаш гречки ¡статно зменшувалась кшьюсть грибш pofliB Alternaría Tiegh., Aspergillus P. Micheli ex Haller, Bipolaris Shoemaker, Cladosporium Corda та Fusarium Link. Також в riCTOŒfiepi гречки в BapiaHTi з передпосшною обробкою були виявлеш гриби роду Chaetomium Kunze, яю за морфолопчними характеристиками вщповщали виду С. cochliodes Palliser.
Отже, використання С. cochliodes 3250 для передпосшно!' обробки насшня гречки сприяе зменшен-ню ктькосп патогенно!' мкробюти у ф1тосфер1 рослин. Це особливо ефективно при вирощуванш зазначено! культури завдяки р1зновекторному впливу сапротроф-ного гриба: конкуренц1я за поверхню колошзаци, синтез бюлопчно активних речовин, ¡ндукцЫ захисних реакцш макрооргашзму.
Л1тература
1. Алексеева Е.С. Генетика, селекция и семеноводство гречихи / Е.С. Алексеева, З.П. Паушева. - К.: Вища школа, 1988. - 208 с.
2. Бекм axa нова Н.Е. Состояние проблемы устойчивости растения к грибковым патогенами / Н.Е. Бекмаханова, О.Н. Шемшура. //Доклады Национальной академии наук Республики Казахстана. - 2014. - В. 6. - №4. - С. 64-69.
3.Билай В.И. Фузарии. - К.: Наукова думка, 1977. - 442 с.
4. Грибы паразиты культурных растений. Определитель: В 3 т. /Н.М. Пидо-пличко. - К.: Наукова думка, 1978. - Т.З. - 296 с.
5. Грибы паразиты культурных растений. Определитель: В 3 т. /Н.М. Пидо-пличко. - К.: Наукова думка, 1977. - Т.1. - 295 с.
6. Грибы паразиты культурных растений. Определитель: В 3 т. /Н.М. Пидо-пличко. - К.: Наукова думка, 1978. - Т.2. - 300 с.
7. €ф1менко Д.Я. Гречка i просо в ¡нтенсивних авозмЫах / Д.Я. €ф1менко, I.B. Яшовський. - К.: Урожай, 1992. - 168 с.
8. Копилов 6.П. Видове р1зноман1ття мкромщепв лучно-чорноземно-го вилугуваного грунту коренево!' зони пшениш яро!' / €.П. Копилов. // Агроеколопчний журал. - 2010. - №3. - С. 55-59.
9. Копылов Е.П. Почвенные сапрофитные грибы - природные регуляторы роста, развития и устойчивость растений к возбудителям болезней /Е.П. Копылов. - Palmarium academic publishing, AV Akademikerverlag GmbH&Co. KG, 2013. - 104 c.
10. Курдиш I.K. Перспектива застосування м1кроб1в-антагон1спв у захисп агроекосистем вщ ф1топатоген1в / I.K. Курдиш // Стьськогосподарська мкробюлопя. - 2011. - Вип. 13. - С. 23-41.
11. Лихочвор В. В. Рослинництво: Технологи вирощування стьськогосподарських культур: Навч. поабник / В.В. Лихочвор. - Ки!'в : Центр навч. л-ри, 2004. - 808 с.
12. Лосев С.Н. Гречиха / С.Н. Лосев. - М.: Россельхозиздат, 1978. - 174 с.
13. Методы эксперементальной микологии: Справочник / Под ред. В.И. Би~ лай. - К.: Наукова думка, 1982. - 552 с.
14. Микроорганизмы - возбудители болезней растений. Справочник / Под ред. В.И. Билай. - К. Наукова думка, 1988. - 549 с.
15. Моргун В.В. Ростстимулирующие ризобактерии и их практическое применение / В.В. Моргун, С.Я. Коць, Е.В. Кириченко // Физиология и биохимия культурних растений. - 2009. - Т. 41. - № 3. - С. 187-207.
16. Полянская Л.М. Численость и структура микробных комплексов корневых систем тепличных роз / Полянская Л.М., Озерская С.М., Кочкина Г.А. и др. // Микробиология. - 2003. - Т.72, №4. - С. 554-562.
17. Степанов В.Н. Основы агрономии / В.Н. Степанов. - М.: «Колос», 1977.
- 352 с.
18. Тимчишин О.Ф. Продуктивнють гречки залежно вщ технологи них прийом1в вирощування в умовах Захщного Люостепу УкраТни / О.Ф. Тимчишин // Автореферат дис. на здобуття наук, ступеня канд. с.-г. наук : спец. 06.01.09. - «Рослинництво». - Ки!'в, 2015 - 20 с.
19. Шевчук В. Особливосп спйкосп cbîtoboï колекци coptib гречки Fagopyrum esculentum Moench. до збудника бактерюзу Pseudomonas syringae Van Hall. / В. Шевчук, А. Пголошвт1, Л. Юрчишин. // Bîchhk Льв1в. ун-ту. Серт бюлопчна. - 2010. - №52. - С. 179-184.
20. Шевчук В.К. Хвороби гречки та заходи обмеження !'х розвитку. Кам'янець-Подтьський, 2004, 62 с.
21. Antifungal activity against plant pathogenic fungi of chaetoviridins isolated from Chaetomium globosum / [J.H. Park, G.J. Choi, K.S. Jang та ¡н.]. // FEMS Microbiol. Letters. - 2005. - №252. - P. 309-313.
22. Antifungal metabolites from antagonistic fungi used to control tomato wilt fungus Fusarium oxysporum f. sp. Lycopersici / P.Sibounnavong, C. Charoenporn, S. Kanokmedhakul, K. Soytong. // African Journal of Biotechnology. - 2011. -№10. - P. 19714-19722.
23. Application of Chaetomium species (Ketomium) as a new broad spectrum biological fungicide for plant disease control / K. Soytong, S. Kanokmedhakul, V. Kukongviriyapan, M. Isobe. // Fungal Div.. - 2001. - №7. - P. 1-15.
24. Chaetoatrosin A, a novel chitin synthase II inhibitor produced by Chaetomium atrobrunneum F449 / [E.I. Hwang, B.S. Yun, YK. Kim та ¡н.]. // J. Antibiot.. -2000. - №53. - P. 248-255.
25. Chemical and bioactive diversities of the genus Chaetomium secondary metabolites / [Q. Zhang, H.Q. Li, S.C. Zong et al.]. // Int. J. Antimicrob. Agents.
- 2012. - P. 127-147.
26. Geiger W.B. Chaetomin, a new antibiotic substance produced by Chaetomium cochliodes. / W.B. Geiger, J.E. Conn, S.A. Waksman. // II. Isolation and concentration. J. Bacteriol. - 1944. - №48. - P. 531-536.
27. Genetics of mating in members of the Chaetomiaceae as revealed by experimental and genomic characterization of reproduction in Myceliophthora heterothalica / [M.I. Hutchinson, A.J. Powell, A. Tsang та ¡н.]. // Fungal Genet. Biol.. - 2016. - №86. - C. 9-19.
28. Isolation and identification of secondary metabolites from fungus Chaetomium gracile and their antimicrobial activités / H. Bai, L. Wu, T: Yang, G. Li. // Chin. J. Appl. Environ. Biol.. - 2015. - №21. - P. 274-278.
29. Kavino M. Rhizosphere and endophytic bacteria for induction of systemic resistance of banana against bunchy top virus / [Kavino M., Harish S., Kumar N. et al.] // Soil Biology and Biochemistry. - 2007. - Vol. 39, № 5. - P. 1087-1098.
30. Kogel К.H. Endophyte or parasite - what decides? / K.H. Kogel, P. Franken, R. Huckelhoven. // Curr. Opin. Plant Biol.. - 2006. - №9. - P. 358-363.
31. Neskovic M. Buckwheat (Fagopyrum esculentum Moench.) / M. Neskovic, V. Srejovic, R. Vujicic // Crops I. - Springer Berlin Heidelberg, 1986. - P. 579-602.
32. Role of antibiotics produced by Chaetomium globosum in biocontrol of Pythium ultimum, a causal agent of damping-off / A.Di Petro, M. Gut-Rella, J.P. Pachlatko, F.J. Schwinn. // Phytopathology. - 1992. - №82. - P. 131-135.
33. Song J.H. What's new on the antimicrobial horizon? / H. Song. // Int. J. Antimicrob. Agents. - 2008. - №32. - P. 207-213.
34. Two phytotoxyc aza phi lone derivatives from Chaetomium globosum, a fungal endophyte isolated from Amaranthus viridis leaves / [K. Piyasena, W. Wickramarachchi, N. Savitri Kumar та ¡н.]. // Mycology. - 2015. - №6. - С. 158-160.
35. Zhang H. Expressed sequence tags-based identification of genes in the biocontrol agent Chaetomium cupreum / H. Zhang, Q. Yang. // Applied Microbiology and Biotechnology. - 2007. - №74. - P. 650-658.
References
1. Alekseeva E., Pausheva Z. (1988). Genetika, selektsiya i semenovodstvo grechihi. Kiev: Vischa shkola, 1988. 208 s. (in Russian).
2. Bekmahanova N.E., Shemshura O.N. (2014). Sostoyanie problemyi ustoychivosti rasteniya k gribkovyim patogenami. Dokladyi Natsionalnoy akademii nauk Respubliki Kazahstana, 2014, V. 6. no.4, pp. 64-69. (in Russian).
3. Bilay V.l. (1977). Fuzarii. Kiev: Naukova dumka, 1977. 442 s. (in Russian).
4. Pidoplichko N.M. (1978). Gribyi parazityi kulturnyih rasteniy. Opredelitel. 3 T: Kiev: Naukova dumka, 1978. 296 s. (in Russian).
5. Pidoplichko N.M. (1977). Gribyi parazityi kulturnyih rasteniy. Opredelitel. 1 T: Kiev: Naukova dumka, 1977. 296 s. (in Russian).
6. Pidoplichko N.M. (1978). Gribyi parazityi kulturnyih rasteniy. Opredelitel. 2 T: Kiev: Naukova dumka, 1978. 296 s. (in Russian).
7. Yefimenko D. Ya., Yashovskyi I.V. (1992). Hrechka i proso v intensyvnykh sivozminakh Kyiv: Urozhai, 1992. 168 s. (in Ukrainian).
8. Kopylov E.P. (2010). Vydove riznomanittya mikromicetiv luchno-chornozemnogo vyluguvanogo gruntu korenevoyi zony pshenyci yaroyi. Agroekologichnyj zhurnal, 2010, no. 3, pp. 55-59. (in Ukrainian).
9. Kopyilov E.P. (2013). Pochvennyie saprofitnyie gribyi - prirodnyie regulyatoryi rosta, razvitiya i ustoychivost rasteniy k vozbuditelyam bolezney. Palmarium academic publishing: AV Akademikerverlag GmbH&Co.KG, 2013. 104 r. (in Russian).
10. Kurdysh I.K. (2011). Perspektyva zastosuvannya mikrobiv-antagonistiv u zaxysti agroekosystem vid fitopatogeniv. SiP s" kogospodars" ka mikrobiologiya, 2011, no. 13, rr. 23-41. (in Ukrainian).
11. Lykhochvor V.V. (2004). Roslynnytstvo: Tekhnolohii vyroshchuvannia silskohospodarskykh kultur: Navch. posibnyk. Kyiv: Tsentr navch. i-ry, 2004. 808 s. (in Ukrainian).
12. Losev S.N. (1978). Hrechykha. Moskva: Rosselkhozyzdat, 1978. 174 s. (in Russian).
13. Bilay V.l. editors. (1982). Metodyi eksperementalnoy mikologii: Spravochnik. Kiev: Naukova dumka, 1982. 552 s. (in Russian).
14. Bilay V.l. editors. Mikroorganizmyi - vozbuditeli bolezney rasteniy. Spravochnik. Kiev: Naukova dumka, 1988. 549 s. (in Russian).
15. Morgun V.V., Kots S. Ya. et al. (2009). Roststimuliruyuschie rizobakterii i ih prakticheskoe primenenie. Fiziologiya i Dionimiya kulturnih rasteniy, 2009, V. 41. no. 3, pp. 187-207. (in Russian).
16. Polyanskaya L.M., Ozerskaya S.M. et al. (2003). Chislenost i struktura mikrobnyih kompleksov kornevyih si stem teplichnyih roz. Mikrobiologiya, 2003, T:72, no 4, pp. 554-562. (in Russian).
17. Stepanov V.N. (1977). Osnovyi agronomii. - Moskva: «Kolos», 1977. 352s. (in Russian).
18. Tymchyshyn O.F. (2015). Prod uktyvn ist hrechky zalezhno vid tekhnolohichnykh pryiomiv vyroshchuvannia v umovakh) Zakhidnoho Lisostepu Ukrainy. Avtoreferat dys. na zdobuttia nauk. stupenia kand. s.-h. nauk : spets. 06.01.09. . - «Roslynnytstvo». Kyiv, 2015. 20 s. (in Ukrainian).
19. Shevchuk V., Gigoloshvlil A. et al. (2010). Osoblivosti stiykosti svitovoyi kolektsiyi sortiv grechki Fagopyrum esculentum Moench. do zbudnika bakteriozu Pseudomonas syringae Van Hall. Visnik Lviv. un-tu. Seriya biologichna, 2010, no
52, pp. 179-184 (in Ukrainian).
20. Shevchuk V.K. (2004). Khvoroby hrechky ta zakhody obmezhennia yikh rozvytku. Kam ia nets-Pod il sky i, 2004, 62 s. (in Ukrainian).
21. Park J.H., Choi G.J. at el. (2005). Antifungal activity against plant pathogenic fungi of chaetoviridins isolated from Chaetomium globosum. FEMS Microbiol. Letters, 2005, no. 252, pp. 309-313. (in English).
22. Sibounnavang P., Charoenporn C. et al. (2011). Antifungal metabolites from antagonistic fungi used to control tomato wilt fungus Fusarium oxysporum f. sp. Lycopersici. African Journal of Biotechnology, 2011, no. 10(85), pp. 1971419722. (in English).
23. Soytong K., Kanokmedhakul S. et al. (2001). Application of Chaetomium species (Ketomium) as a new broad spectrum biological fungicide for plant disease control. Fungal Div, 2001, no. 7, pp 1-15. (in English).
24. Hwang E.I., Yun B.S. et al. (2000). Chaetoatrosin A, a novel chitin synthase II inhibitor produced by Chaetomium atrobrunneum F449. J. Antibiot, 2000, no.
53, pp. 248-255. (in English).
25. Zhang Q., Li H.Q. et al. (2012). Chemical and bioactive diversities of the genus Chaetomium secondary metabolites. Mini Rev. Med. Chem, 2012, no. 12, pp. 127-147. (in English).
26. Geiger W.B., Conn J.E. et al. (1944). Chaetomin, a new antibiotic substance produced by Chaetomium cochliodes. II Isolation and concentration. J. Bacteriol, 1944, no. 48, pp. 531-536. (in English).
27. Hutchinson M.I., Powell A.J. et al. (2016). Genetics of mating in members of the Chaetomiaceae as revealed by experimental and genomic characterization of reproduction in Myceliophthora heterothalica. Fungal Genet. Biol, 2016, no. 86, pp. 9-19. (in English).
28. Bai H., Wu L. et al. (2015). Isolation and identification of secondary metabolites from fungus Chaetomium gracile and their antimicrobial activités. Chin. J. Appl. Environ. Biol, 2015, no. 21, pp. 274-278. (in English).
29. Kavino M., Harish S. et al. (2007). Rhizosphere and endophytic bacteria for induction of systemic resistance of banana against bunchy top virus. Soil Biology and Biochemistry, 2007, V. 39, no. 5, pp. 1087-1098 (in English).
30. Kogel K.H., Franken P. et al. (2008). Endophyte or parasite - what decides? Curr. Opin. Plant Biol., 2006, no.9, pp. 358-363. (in English).
31. Neskovic M., Srejovic V. et al. (1986). Buckwheat (Fagopyrum esculentum Moench.) Crops I. Springer Berlin Heidelberg, 1986, pp. 579-602. (in English).
32. Di Petro A., Gut-Rella M. at el. (1992). Role of antibiotics produced by Chaetomium globosum in biocontrol of Pythium ultimum, a causal agent of damping-off. Phytopathology, 1992, no. 82, pp. 131-135. (in English).
33. Song J. H. (2008). What's new on the antimicrobial horizon? Int. J. Antimicrob. Agents, 2008, no. 32, pp. 207-213. (in English).
34. Piyasena K.G.N.P., Wickramarachchi W.A.R.T: et al. (2015). Two phytotoxyc azaphilone derivatives from Chaetomium globosum, a fungal endophyte isolated from Amaranthus viridis leaves. Mycology, 2015, no. 6, pp. 158-160. (in English).
35. Zhang H., Yang Q. (2007). Expressed sequence tags-based identification of genes in the biocontrol agent Chaetomium cupreum. Applied Microbiology and Biotechnology, 2007, no. 74, pp. 650-658. (in English).
