CC BY
984
Вестник защиты растений, 3, 2005
Литература
Благутяк А. Селективность пестицидов для паразитов некоторых видов кокцид и тлей. /Информац. бюлл. ВПС МОББ, 29, 1993, с.22-65.
Рославцева С.А., Еремина О.Ю. Исследование воздействия пестицидов на энтомо- и акарифагов. /Агрохимия, 7, 1989, с.123-136.
Сундуков О.В., Зильберминц И.В., Головкина Л.С. Характер наследования различий в эстеразной активности у резистентных к фосфорорганическим и карбаматным соединениям линий обыкновенного паутинного клеща. /Проблемы избирательности действия инсектицидов и акарицидов и ее значение в защите растений. Сб. науч. тр., Л., 1986, с.64-69.
Сухорученко Г.И, Толстова Ю.С. Современные инсектоакарициды и ресурсы их избирательности для полезных членистоногих. /Энтомол. обозр., 60, 4, 1981, с.745-753.
Толстова Ю.С., Сухорученко Г.И., Корнилов В.Г., Хохлов Н. Методические рекомендации по определению селективности действия инсектицидов и акарицидов для членистоногих. Л., 1984, 30 с.
Idris A.B., Grafius E. Pesticides Affect Immature Stages of Diadegma insulare {Hymenoptera: Ichneumonidae) and its Host, the Diamondback Motch (Lepidoptera: Plutellidae). /J.Econ. Entomol., 86, 4, 1993, p.1203-1212.
УДК 632.4(575.2)
ФИТОФТОРОЗ - РЕДКОЕ ЗАБОЛЕВАНИЕ ЭСПАРЦЕТА В КИРГИЗИИ
В.В.Котова*, А.Ш.Чакаева**, О.А.Загурская**
*Всероссийский НИИ защиты растений, Санкт-Петербург **Киргизский НИИ животноводства, ветеринарии и пастбищ, Бишкек
Эспарцет - одна из ведущих кормовых бобовых культур в Киргизии. Этот важный источник растительного белка имеет первостепенное значение для обеспечения потребностей животноводства. Эспарцет отличается высоким содержанием протеина 106 г/кг корма и по питательной ценности превосходит люцерну, так как содержит 0.54 кормовых единиц на 1 кг корма вместо 0.49 - у люцерны.
Эспарцет как и другие бобовые культуры поражается целым комплексом вредных организмов, среди которых особый вред причиняют такие болезни, как корневые гнили, фомоз, различные пятнистости вегетативных и генеративных органов, гнили семян и другие.
В последние годы широко распространилось новое и опасное заболевание - фитофтороз, вызываемый низшим грибом Phytophthora capsici Leomian. Впервые это заболевание зарегистрировано в 2001 г. По всей вероятности оно встречалось и ранее, однако из-за сложности диагностики болезни и трудности идентификации возбудителя в связи с заселением пораженных органов полусапро-
трофными видами Fusarium, Botrytis, Arternaria долгое время оставалось незамеченным.
Фитофторозом эспарцета чаще поражаются генеративные органы: цветки соцветия, плоды и семена, реже вегетативные органы (листья и стебли). При поражение цветков возбудителем болезни последние изменяют окраску от светло-розовой до светло-коричневой и по мере развития болезни привядают, сворачиваются трубочкой и постепенно засыхают. Возбудитель проникает в завязь, а затем в формирующиеся бобы и семена. Пораженные бобы изменяют окраску от светло-бурой до темно-бурой. Семена становятся мелкими, щуплыми с низкими посевными качествами. При сильном поражении семян их всхожесть снижается до 70%.
Главным диагностическим признаком поражения семян эспарцета фитофторо-зом служит образование возбудителем в пораженных створках бобов эспарцета большого количества ооспор гриба, способных сохраняться в семенах в течение ряда лет и представлять опасность как источник инфекции для культуры. В
Вестник защиты растений, 3, 2005 сильно зараженных семенах образуется огромное количество ооспор гриба (до 30 штук в препаратах под микроскопом при увеличении 7х10) от нескольких сотен до тысяч ооспор и более.
Ооспоры от светло-желтого, соломенно-желтого до темно-коричневого цвета, варьирующие по размеру в зависимости от сроков и условий образования, от 17 до 37.5 мкм в диаметре и более, возникают чаще по одной в оогонии, заполняя последний частично (аплеротические) и реже - по 2 ооспоры в оогонии. Сохраняющаяся оболочка оогония, размером 1.5-2.5 мкм, нередко с выростами от 3 до 17 мкм длиной, 2-4 мкм шириной в основании. Оболочка ооспоры гладкая, толщиною до 3-4 мкм. Оогоний с 2-я ооспо-рами достигает 52 мкм.
Ph. capsici был выделен на искусственные среды: картофельно-глюкозный, овсяный, фасолевые агары, что дало возможность исследовать его структурные и биологические особенности. Мицелий состоит из прямых, сравнительно тонких, изогнутых, извилистых гиф, по мере развития они становятся толще, нередко с короткими отростками от 2.5 до 10 мкм. Мицелий преимущественно торулезного типа с шаровидными и овальными или короткими и узловатыми по форме вздутиями - "везикулами" размером 3.6-8.2 мкм, сидящими гроздевидно или большими группами, тесно прижатыми друг к другу. При длительном выдерживании во влажной камере в каплях воды "везикулы" свободно отделяются от мицелия и некоторые из них, имеющие ядрышки, могут прорастать с образованием ростковых трубок.
Нередко в колониях гриба наблюдается образование тяжей, состоящих из рыхлых, густо переплетенных гиф мицелия с образованием многочисленных зоо-спорангиев. Спорангиеносцы простые, иногда слаборазветвленные. Зооспоран-гии образуются на всех изучаемых средах в больших количествах, по форме чаще овальные, эллипсоидные, обратног-рушевидные, нередко неправильной и несимметричной формы, иногда боком
сидящие на конидиеносной гифе, размером 19-36х19-24 мкм, чаще без сосочков или с слабовыраженным, реже с хорошо заметным выступающим одним сосочком, и крайне редко, с двумя сосочками. Зоо-спорангии нередко отрываются от спо-рангиеносцев с довольно длинным участком гифы (рис.). Имеются и хламидоспо-ры. Половое спороношение на используемых нами питательных средах почти не формировалось. Отмечено образование лишь отдельных оогониев, чаще с пара-гинными и реже с амгфигинными анте-ридиями и с формирующимися ооспора-ми. Оогонии на питательных средах шаровидные, округлые, размером - 16.6-18 мкм.; антеридии - 6.4x2.6 мкм.
Рис. Phytophthora capsici а - мицелий, б - зооспорангии, в - зооспоры, г - прорастающие цисты, д - оогонии с пара-гинными антеридиями и формирующимися ооспорами
При переносе кусочка мицелия (до 1 см) с развивающимися спорангиями в капле воды в чашку Петри и выдерживании колонии гриба во влажной камере в течение 7-10 дней и более спорангии прорастают в зооспоры. При таком методе культивирования зооспор образуется большое их количество. Последние округлые или овальные с 2 жгутиками, размером 12-18 мкм. После активного движения зооспоры останавливаются, превращаясь в неподвижные округлые цисты размером 9-1.4 мкм, спустя некоторое время они прорастают в росток мицелия.
РЬ capsici обладает высокой патогенно-стью для растения-хозяина. В полевых опытах 2004 г. (август) при искусственном заражении суспензией гриба (мицелий с зооспорангиями) методом опрыскивания
соцветий и формирующихся бобиков эспарцета симптомы заражения репродуктивных органов появились через 7-10 дней после инокуляции. Все цветки на обработанных суспензией гриба растениях побурели и впоследствии засохли. Недозрелые бобики приобретали коричневый цвет и приостанавливали свое развитие. При исследовании под микроскопом срезов пораженной ткани цветков были обнаружены мицелий гриба и многочисленные оогонии с формирующимися ооспорами.
Изучение морфологических структур и биологических особенностей гриба убеждает в том, что возбудитель Ph. capsici вполне укладывается в рамки вида, описание которого дано в монографии Н.С. Новотельновой по фитофторовым грибам (Новотельнова, 1974). В России этот вид фитофторы зарегистрирован на помидоре, и перце в Московской, Ярославской областях, Краснодарском крае (Осницкая, Козловская, 1953), на огурце
Вестник защиты растений, ,3, 2005 в Азербайджане (Ибрагимов, 1958). Следует указать, что Ph. capsici отмечен и как возможный патоген видов семейства Fabaceae (Новотельнова, 1974).
Небезынтересно отметить, что в Киргизии на бобовых культурах, в частности на люцерне, существенный вред наносит другой вид - Ph. megasperma Drechs. sp. medicaginis ЫЫ. (Чакаев, 1992). Это почвенный паразит, поражающий преимущественно молодые корни, проростки и основание стеблей растений люцерны, что приводит к изреживанию посевов.
Для борьбы с фитофторозами на люцерне и эспарцете, учитывая их биологические особенности и источники инфекции, один из рациональных и эффективных приемов, обеспечивающих защиту всходов и обеззараживание семян, - это протравливание семян химическими препаратами.
В качестве эффективных препаратов рекомендованы апрон голд ВЭ (350 г/л) -0.5 л/т, максим (25 г/л) - 1.5-2 л/г.
Новотельнова Н.С. Фитофторовые грибы. Наука, 1974, с. 117-120.
Осницкая Е.А., Козловская Е.В. Возбудитель фитофтороза помидоров в теплицах. /Защита овощных культур от вредителей и болезней, Сельхозгиз, 1953, с.81-88.
Ибрагимов У.А. Новые заболевания тыквенных культур в западных районах Азербайджанской ССР. Докл. АН АзССР, 1958, с.657.
Чакаев Д.Ш. Корневые гнили люцерны и обоснование мер борьбы с ними в условиях орошаемого земледелия Кыргызстана. Автореф. канд. дисс., СПб, 1992, 17 с.
УДК 632.5
АРЕАЛ И ЗОНА ВРЕДОНОСНОСТИ ЖИВОКОСТИ ПОЛЕВОЙ
Н.Н.Лунева*, И.А.Будревская**
*Всероссийский НИИ защиты растений, Санкт-Петербург **Картографическая фабрика ВСЕГЕИ, Санкт-Петербург
Живокость полевая (сокирки, рогатые васильки, грабельки, рогульки, топорики, Комаровы носики или ноги) Consolida regalis S.F. Gray (синоним Delphinium consolida L.) (Семейство Лютиковые Ranunculaceae Juss., род Живокость -Delphinium L.) - это однолетнее (иногда зимующее) растение из семейства Лютиковые. Сегетальный сорняк, произрастающий в посевах зерновых, главным образом
озимых, особенно ржи, а также в садах.
Семена созревают одновременно с культурными растениями и засоряют посевной материал. Поскольку одно растение образует до 67 тыс. семян, прорастающих с глубины до 4-6 см, необходимо применять меры к искоренению этого сорняка, особенно, когда его численность достигает 5-15 экз/м2 (Захаренко, Захаренко, 2005).
Живокость полевая произрастает в
