Научная статья на тему 'ФИТОЭСТРОГЕНЫ В ГИНЕКОЛОГИИ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)'

ФИТОЭСТРОГЕНЫ В ГИНЕКОЛОГИИ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ) Текст научной статьи по специальности «Фундаментальная медицина»

CC BY
4311
326
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
ФИТОЭСТРОГЕНЫ / ГЕНИСТЕИН / ДАЙДЗЕИН / ГЛАБРИДИН / БИОКАНИН А / ФОРМОНОНЕТИН / РЕСВЕРАТРОЛ / ПИКНОГЕНОЛ / ЭНТРОЛАКТОН / ЭНТРОДИОЛ / ФИТОТЕРАПИЯ / КЛИМАКС / МАСТАЛГИИ / ПРЕДМЕНСТРУАЛЬНЫЙ СИНДРОМ / ДИССМЕНОРЕИ / ПОЛИЦИСТИЧЕСКИЙ ОВАРИАЛЬНЫЙ СИНДРОМ

Аннотация научной статьи по фундаментальной медицине, автор научной работы — Халимова Фариза Турсунбаевна, Кароматов Иномджон Джураевич, Исоева Бахринисо Исмонкуловна

Клинические и экспериментальные исследования фитоэстрогенов выявили ряд свойств, которые перспективны для практического применения их в медицине: Эстрогенная активность и возможность применения в заместительной гормональной терапии при заболеваниях и состояниях, сопровождающихся снижением естественных эстрогенов у женщин (климакс, искусственной менопаузы и другие). Противоопухолевая активность в отношении гормонозависимых новообразований органов женской репродуктивной системы за счет их способности ингибировать активность ряда ферментов (тирозинкиназы и других протеинкиназ, ароматазы), усиливающих образование половых стероидов, посредством механизмов, не затрагивающих рецепторы эстрогенов. Фитоэстрогены оказывают влияние на активность клеточных ферментов, стимулируют дифференцировку клеток и тормозят ангиогенез.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

PHYTOESTROGENS IN GYNECOLOGY (LITERATURE REVIEW)

Clinical and experimental studies of phytoestrogons have revealed a number of properties that are promising for their practical application in medicine: Estrogenic activity and the possibility of use in hormone replacement therapy in diseases and conditions accompanied by a decrease in natural estrogens in women (menopause, artificial menopause, etc.). Antitumor activity against hormone-dependent neoplasms of the female reproductive system due to their ability to inhibit the activity of a number of enzymes (tyrosine kinase and other protein kinases, aromatases) that enhance the formation of sex steroids through mechanisms that do not affect estrogen receptors. Phytoestrogens influence the activity of cell enzymes, stimulate cell differentiation and inhibit angiogenesis.

Текст научной работы на тему «ФИТОЭСТРОГЕНЫ В ГИНЕКОЛОГИИ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)»

Фитотерапия

УДК: 615.322 + 618.173 ФИТОЭСТРОГЕНЫ В ГИНЕКОЛОГИИ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)

ХАЛИМОВА ФАРИЗА ТУРСУНБАЕВА

доктор медицинских наук, ассистент кафедры нормальной физиологии Таджикского государственного медицинского университета имени Абу али ибни Сино, г. Душанбе, Республика

Таджикистан. ORCID Ю 0000-0001-9310-7699 КАРОМАТОВ ИНОМДЖОН ДЖУРАЕВИЧ руководитель медицинского центра «Магия здоровья», ассистент кафедры народной медицины и профессиональных болезней Бухарского государственного медицинского института. Город Бухара. Республика Узбекистан.

ORCID Ю 0000-0002-2162-9823 ИСОЕВА БАХРИНИСО ИСМОНКУЛОВНА кандидат медицинских наук, заведующая кафедрой инфекционных болезней и дерматовенералогии Хатлонского Государственного медицинского университета. Город Дангара, Республики Таджикистан. ORCID Ю 0000-0002-7133-3457

АННОТАЦИЯ

Клинические и экспериментальные исследования фитоэстре-гонов выявили ряд свойств, которые перспективны для практического применения их в медицине:

Эстрогенная активность и возможность применения в заместительной гормональной терапии при заболеваниях и состояниях, сопровождающихся снижением естественных эстрогенов у женщин (климакс, искусственной менопаузы и другие).

Противоопухолевая активность в отношении гормонозави-симых новообразований органов женской репродуктивной системы за счет их способности ингибировать активность ряда ферментов (тирозинкиназы и других протеинкиназ, ароматазы), усиливающих образование половых стероидов, посредством механизмов, не затрагивающих рецепторы эстрогенов. Фито-эстрогены оказывают влияние на активность клеточных ферментов, стимулируют дифференцировку клеток и тормозят ангио-генез.

Антиоксидантная, антибактериальная противогрибковая активность фитоэстрогенов.

Ключевые слова: фитоэстрогены, генистеин, дайдзеин, глабридин, биоканин А, формононетин, ресвератрол, пикногенол, энтролактон, энтродиол, фитотерапия, климакс, масталгии, предменструальный синдром, диссменореи, полицистический овариальный синдром.

PHYTOESTROGENS IN GYNECOLOGY (LITERATURE REVIEW)

KHALIMOVA FARIZA TURSUNBAEVA

Doctor of Medical Sciences, Head of the Department of Normal Physiology, Abu Ali Ibni Sino Tajik State Medical University, Dushanbe, Republic of Tajikistan. ORCID ID 0000-0001-9310-7699 KAROMATOVINOMJON DZHURAEVICH Head of the Medical Center"Magic of Health," Assistant of the Department of Folk Medicine and Professional Diseases of the Bukhara State Medical Institute. City of Bukhara. Republic of Uzbekistan. ORCID ID 0000-0002-2162-9823 ISOEVA BAHRINISO ISMONKULOVNA Candidate of Medical Sciences, Head of the Department of Infectious Diseases and Dermatoveneralogy of Khatlon State

Medical University. City of Dangara, Republic of Tajikistan.

ORCID ID 0000-0002-7133-3457 ABSTRACT

Clinical and experimental studies of phytoestrogons have revealed a number of properties that are promising for their practical application in medicine:

Estrogenic activity and the possibility of use in hormone replacement therapy in diseases and conditions accompanied by a decrease in natural estrogens in women (menopause, artificial menopause, etc.).

Antitumor activity against hormone-dependent neoplasms of the female reproductive system due to their ability to inhibit the activity of a number of enzymes (tyrosine kinase and other protein kinases, aromatases) that enhance the formation of sex steroids through mechanisms that do not affect estrogen receptors. Phytoestrogens influence the activity of cell enzymes, stimulate cell differentiation and inhibit angiogenesis.

Antioxidant, antibacterial antifungal activity of phytoestrogens.

Key words: phytoestrogens, genistein, daizein, glabridine, biocanin A, formononetin, resveratrol, pycnogenol, entrolactone, entrodiol, herbal medicine, menopause, mastalgia, premenstrual syndrome, dissmenor-rhea, polycystic ovarian syndrome.

ГИНЕКОЛОГИЯДА ФИТОЭСТРОГЕНЛАР (АДАБИЁТЛАР ШАР^И)

ХАЛИМОВА ФАРИЗА ТУРСУНБАЕВА

Т.ф.д., нормал физиология кафедраси мудири, Абу али ибни Сино номидаги Тожикистон давлат тиббиёт университети, Душанбе ш., Тожикистон Республикаси.

ORCID ID 0000-0001-9310-7699

КАРОМАТОВ ИНОМДЖОН ДЖУРАЕВИЧ

«Магия здоровья» тиббий маркази бошлиги, халц табобати ва касб касалликлари кафедраси ассистенти, Бухоро давлат тиббиёт институти, Бухоро ш., Узбекситон Республикаси

ORCID Ю 0000-0002-2162-9823 ИСОЕВА БАХРИНИСО ИСМОНКУЛОВНА т.ф.н., юцумли касалликлар ва дерматовенерология кафедраси мудири, Хатлон давлат тиббиёт

университети, Дангара ш., Тожикистон Республикаси. ORCЮ Ю

0000-0002-7133-3457

АННОТАЦИЯ

Клиник ва экспериментал тадцицотлар фитоэстрогенлар-нинг тиббиётда цулланилиши истицболли булган бир цанча фойдали хусусиятларини аницлади:

Эстроген активлиги аёлларда эстроген мицдори камаядиган касалликларда (климакс, сунъий менопауза ва бошцалар) гормонотерапияни урнида ёки тикловчи терапия сифатида цулланилиши назарда тутилган.

Усмаларга царши активлик аёллар репродуктив тизимининг усмаларида турли ферментларни ингибирлаш (тирозинкиназа, протеинкиназа, ароматаза) цисобидан амалга оширилади. Жинсий стероидлар цосил булишини кучайтиради. Фитоэстрогенлар цужайра ферментлари активлигига таъсир этади, ангиогенезни тормозлайди.

Шунингдек, антиоксидант, антибактериал, замбуругларга царши таъсири цам аницланган.

Калит сузлар: фитоэстрогенлар, генистеин, дайдзеин, глабридин, биоканин А, формононетин, ресвератрол, пикногенол, энтролактон, энтродиол, фитотерапия, климакс, масталгия, предменструал синдром, диссменорея, овариал синдром.

Проблема профилактики и лечения репродуктивных заболеваний женщин является одной из актуальных и неотложных проблем современной медицины. Существует множество факторов, провоцирующих развитие гинекологических заболеваний - [226]. Основными факторами распространения заболеваний женских половых органов являются патологии, связанные с нарушениями выработки эндокринными железами половых гормонов - [94]. Так как причинами нарушения функций женской репродуктивной системы часто является гормональная недостаточность, то многие растительные препараты содержат компоненты, действующие как регуляторы гормональной активности, так называемые фитогормоны, а именно фитоэстрогены. - [32].

Современная фитотерапия выделяет три основных класса фитоэстрогенов:

1.Изофлавоны (генистеин, дайдзеин, глабридин, биоканин А, формононетин, ресвератрол, пикногенол). Изофлавоны присутствуют в бобовых (соя, фасоль), красном клевере, солодке, чечевице, в винограде (красное вино), хмеле, цимицифуге (клопогоне), витексе, диоскорее. Лучше всего изучены фитоэстрогены, содержащиеся в сое. Это в первую очередь изофлавоны генистеин и дайдзеин. Ещё один соевый фитоэстроген глицитеин накапливается преимущественно в проростках сои. Изофлавоны присутствуют в растениях в основном в виде гликозидов — соединений с сахарами. В кишечнике изофлавоноиды подвергаются гидролизу и дальнейшему метаболизму, в результате чего образуются соединения с эстрогенной активностью: формононетин, дейдзеин, генистейн, биоканин-А и др. Биоканин может метаболизироваться до генистейна, а формононетин - до дейдзеина и эквола, обладающих наибольшей эстрогенной активностью - [11; 91; 101; 20; 37].

2. Лигнаны (энтролактон, энтродиол). Структурно относятся к классу дифенолов. Лигнаны содержатся в большом количестве в семенах льна, меньше определяются в таких продуктах как рожь, рис, орехи и семена, фрукты (цитрусовые, яблоки, вишня), овощи (шпинат, морковь, брокколи, чеснок, петрушка) - [90; 48]. Лигнаны в кишечнике человека превращаются в энтеролактон и энтеродиол. По биологическому действию лигнаны схожи с изофлавонами. Лигнаны энтеродиолы и энтеролактон являются продуктами осуществляющегося под воздействием микробов кишечника метаболизма их предшественников - секоизоларицирезинола и метайрезинола, находящихся преимущественно в наружном слое зерен, особенно пшеницы, ржи и риса, пищевых растительных волокнах, семенах льна, орехах, в некоторых ягодах, фруктах (вишне, яблоках) и овощах (чесноке, петрушке, моркови и др.). Энтеродиол может окисляться в кишечнике до энтеролактона - наиболее часто встречающегося в организме млекопитающих фитоэстрогена - [11; 7].

3. Куместаны (куместрол), содержатся в красном клевере и люцерне.

Из некоторых плесневых грибов, в том числе поражающих растения, употребляемые в пищу животными и человеком, выделена дополнительная группа соединений, обладающих эстрогенными свойствами, например, зирэлинон и др., которые относят к фитоэстрогенам (микоэстрогенам) - [130].

Растения Центральной Азии богаты веществами с эстрогенной активностью. Выраженную эстрогеноподобную активность проявляют сложные эфиры терпеноидных спиртов (ферутидин и юнифердин), тритерпеновые гликозиды (медикозид А и медикозид С), алкалоиды (триацилгликоперин и хаплоперин), фурокумарин псоберан и некоторые фенольные соединения, относящиеся к

продуктам окисления лигнинов. Обнаружена гонадотропная активность у артемизинина, ацетилфолифидина, дезоксипеганина, северидина и псоберана - [97].

Особенность фитоэстрогенов из растительных источников состоит в том, что они способны уменьшить уровень человеческого эстрогена (эстрадиола-17-р), если он завышен, и увеличивать уровень эстрогена, что необходимо в период менопаузы. Фитоэстрогены оказывают как эстрогенное, так и противоэстрогенное действие, в зависимости от концентрации циркулирующих эндогенных эстрогенов в крови и чувствительности рецепторов эстрогена. Чем выше концентрация фитоэстрогенов, тем более выражен антиэстрогенный эффект - [10; 7; 79].

Биохимический анализ показал, что фитоэстрогены по структуре обладают определенным сходством с эндогенными эстрогенами животных и имеют близкую с ними молекулярную массу. Указанные свойства позволяют им «узнавать» эстрогенные рецепторы и связываться с ними - [10].

Если у женщины есть недостаток собственных эстрогенов, например, в период менопаузы, то фитоэстрогены могут соединиться со свободными рецепторами и частично компенсировать недостаток естественных гормонов. У женщины с нормальным уровнем собственных эстрогенов, фитоэстрогены начинают конкурировать с ее собственными гормонами, и занимать те рецепторы, которые могли бы занять естественные гормоны, оказывая антиэстрогенное воздействие. Фитоэстрогены не способны депонироваться в организме - [10].

Клинические и экспериментальные исследования фитоэстре-гонов выявили ряд свойств, которые перспективны для практического применения их в медицине:

• Эстрогенная активность и возможность применения в заместительной гормональной терапии при заболеваниях и состояниях, сопровождающихся снижением естественных эстрогенов у женщин (климакс, искусственной менопаузы и др.) - [102; 98].

• Противоопухолевая активность в отношении гормоно-зависимых новообразований органов женской репродуктивной системы за счет их способности ингибировать активность ряда ферментов (тирозинкиназы и других протеинкиназ, ароматазы), усиливающих образование половых стероидов, посредством механизмов, не затрагивающих рецепторы эстрогенов. Фитоэстро-гены оказывают влияние на активность клеточных ферментов, стимулируют дифференцировку клеток и тормозят ангиогенез - [7].

• Антиоксидантная, антибактериальная противогрибковая активность фитоэстрогенов.

Подтверждены эстрогенные свойства аниса (Anisum vulgare Goerth.) - [114; 40].

В незрелых плодах нута (Pisum sativum L.) определены фитоэстрогены - [267].

Определено, что масло косточек граната обладает эстрогенной активностью. Пуническая и олеостеарические кислоты, гранатового сока ингибируют эстрогенные рецепторы - [353; 29].

Фитоалексины красной фасоли киевитон и фазеолин обладают как эстрогенной, так и антиэстрогенной активностью - [138].

Фенхель (Foeniculum vulgare Mill.) обладает эстрогенными свойствами - [114; 263]. Считают, что таковые эффекты растения связаны с анетолом, дианетолом и фотоанетолом - [114].

Ферменты винограда и красного вина ингибируют процесс преобразования андрогенов в эстрогены - [337].

Вино также обладает вазодилятаторными свойствами, улучшает состояние эндотелия, посредством воздействия на эстрогенные рецепторы - [182; 122; 215; 241; 308; 137; 153].

Ресвератрол блокирует эстроген а-рецепторы, тормозит промежуточный метаболизм эстрадиола, предупреждает анти-митогенный эффект этого гормона - [170; 39]. Есть исследования, которые считают ресвератрол фито-эстрогеном - [186; 118; 39].

Сложные эфиры терпеноидных спиртов из надземной части Ferula tschimganica в дозе 1 мг/кг проявляют выраженный эстрогенный эффект как в опытах на неполовозрелых, так и на овариэктомированных крысах, сопоставимый с аналогичным действием тефэстрола и мало уступающий эффекту синтетического эстрогенного препарата синэстрола - [77].

Сезаминол (Sesamum indicum L.) обладает эстрогенной активностью - [121; 210].

8-пренилнарингенин хмеля (Humulus lupulus L.) считается самым мощным среди известных фитоэстрогенов - [382; 37].

Определены эстрогеноподобные свойства семян кардамона (Elettaria cardamomum) - [316].

В кожице плодов маклюры (Maclura aurantiaca Nutt.) определены фитоэстрогены - [260; 253].

Определена эстрогенная активность семян пажитника (Trigonella foenum-graecum L.) - [341].

Семена петрушки (Petroselinum crispum (Mill.)) содержат большое количество фитоэстрогенов - [380; 48].

[214] - сообщают об эстрогенных свойствах метельчатой полыни (Artemisia scoparia Woldst et Kit.).

Экспериментальные исследования показали, что экстракты чернобыльника (Artemisia vulgaris L.) оказывают эстрогенное и противозачаточное воздействие на животных женского пола - [331].

Эмодин ревеня (Rheum palmatum L.) также выражал высокую эстрогенную активность - [217; 218; 44].

Линолеическая кислота масла чернушки (Nigella sativa L.) обладает выраженными эстрогенными свойствами - [304; 47].

Глабридин пренилатный изофлавоноид корня солодки обладает эстрогенными, нейропротективными, анти-остеопоротичес-кими, антитирозиназными свойствами - [338].

Исследования показали, что ликвиритигенин, изоликвирити-генин, глабридин, каликосин, метоксихалкон, веститол, глиасперин C, глицикумарин, гликорицон корня солодки (Glycyrrhiza glabra L.) обладают эстрогенными свойствами - [194; 134].

У клубней сыти (Cyperus rotundus L.) определены эстрогенные свойства - [213; 33].

Водные и спиртовые экстракты тысячелистника (Achillea millefolium L.) обладают эстрогенной активностью - [208; 5].

В листьях шалфея (Salvia officinalis) определены также крахмал, белок, полисахариды, опиатные терпеноиды, камеди и эстрогенные вещества - [276].

У листьев шалфея определены гипогликемические и эстрогенные свойства - Perrot и Poris (1974), и потому перспективно его использование при гормональных нарушениях женской половой сферы.

Все растение якорцов (Tribulus terrestris L.) богато фитоэстрогенами, которые обладают гонотропными и анаболическими свойствами - [353].

Люпулиновые железки хмеля (Humulus lupulus L.) содержат до 3% эфирного масла, сесквитерпеновые спирты, наркотическое вещество хопеин, эстрогенное вещество - [89].

Благодаря наличию эстрогенов экстракты хмеля, в том числе пиво, в умеренных дозах оказывает вазорелаксирующее воздействие - [180].

Экстракты укропа (Anethum graveolensis L.) обладают эстро-генными свойствами. Экспериментальные исследования показали, что прием экстрактов укропа предупреждает нарушение когнитивных функций и памяти при климаксе, благодаря наличию фитоэстрогенов - [271; 30; 56].

Линолевая кислота плодов Vitex agnus-castus может связываться с рецепторами эстрогена и индуцировать определенные гены, индуцируемые эстрогеном - [247].

Фитоэстрогены очень широко используются при лечении предменструального синдрома - ПМС.

Этанольный экстракт Vitex agnus-castus действует как агонист в мю-опиатном рецепторе, поддерживая его благотворное действие при ПМС - [367].

Клинические рандомизированные исследования показали, что препараты шафрана (Crocus sativus L.) эффективны при лечении симптомов предменструального синдрома - [108].

Прутняк (Vitex agnus-castus) очень широко используется в лечении предменструального синдрома (ПМС) - [131; 249; 202; 325; 319; 252; 310; 14; 169; 144; 85; 82; 99; 212]. Особенно эффективно считают сочетание травы зверобоя (Hypericum perforatum L.) и витекса (Vitex agnus-castus) - [356; 236]. Клинические исследования показали, что растительный препарат, содержащий 4 мг сухого экстракта плодов прутняка обыкновенного (Vitex agnus-castus), эффективен при лечении женщин со среднетяжелым или тяжелым течением ПМС - [73].

Проведенные неоднократные рандомизированные исследования показали эффективность витекса (Vitex agnus-castus) при ПМС

- [199; 255; 256; 157; 30; 266; 161; 326; 381; 285; 209]. Мета анализ показал, что препараты Vitex agnus-castus эффективны в снижении симптомов ПМС: женщины, принимающие Vitex agnus-castus, в 2,57 (95% ДИ 1,52-4,35) раза чаще испытывают ремиссию по сравнению с теми, кто принимает плацебо - [159].

Систематический обзор научной литературы показал, что препараты Vitex agnus являются безопасным и эффективным лечением ПМС и предменструального дисфорического расстройства

- [149]. Клиническое исследование показало, что пациенты с предменструальным дисфорическим расстройством хорошо реагируют на лечение как флуоксетином, так и экстрактом витекса. Однако флуоксетин был более эффективен для психологических симптомов, в то время как экстракт уменьшал физические симптомы

- [127].

Рандомизированные, клинически контролируемые исследования показали, что прием препаратов прутняка уменьшает частоту головных болей при мигренозном пременструальном синдроме -[120; 119]. Препараты витекса, благодаря допаминергическим свойствам, достоверно понижали концентрацию пролактина в крови, которая является основной причиной масталгий при предменструальном синдроме - [373; 193; 374; 270; 81; 63; 312; 1; 87; 12].

При предменструальном синдроме, и дисменореях эффективно вдыхание запаха шафрана (Crocus sativus L.) - [183; 51].

Така, как нарушения гормонального баланса играют основную роль в развитии диссменорей, фитоэстрогены перспективны при лечении данных заболеваний.

Рандомизированные, плацебо контролируемые клинические исследования показали, что укроп (Anethum graveolensis L.) был столь же эффективен как мефенамическая кислота в уменьшении выраженности боли при первичной диссменорее - [200; 56].

Клинические изучения 2% экстракта фенхеля (Foeniculum vulgare Mill.) показали, что он также эффективен при лечении симптомов первичной диссменореи, как мефетаминовая кислота -[295; 277; 301; 133; 192; 50].

Успешно душица (Origanum tuttahantum Gontsch.) использована при лечении аменореи - [25].

Благодаря эстрогенным свойствам, экстракты сельдерея (Apium graveolens L.) эффективны при лечении первичных дисменорей - [348].

Получены положительные результаты при лечении дисменорей экстрактами травы укропа (Anethum graveolensis L.) - [306].

Отмечена эффективность применения препаратов витекса (Vitex agnus-castus) при диссменореях - [70; 92]. Рандомизированные, плацебо контролируемые клинические исследования показали, что назначение циклодинона может рассматриваться как вариант терапии у больных с функциональными расстройствами менструального цикла, предположительно связанными с нарушениями секреции пролактина - [357; 69]. Такие же свойства определены у лекарственного средства Префемин на основе экстракта плодов Vitex agnus castus Zе 440 - [19].

Клубни сыти (Cyperus rotundus L.) оказывают терапевтическое воздействие при первичных дисменореях - [155].

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Клинические исследования показали, что Vitex agnus-castus был так же эффективен, как мефенаминовая кислота, в снижении тяжести боли при диссменорее у женщин с врожденными аномалиями репродуктивного тракта и способствовал такому же, как мефе-наминовая кислота, значительному улучшению качества жизни -[364].

Рандомизированные, плацебо контролируемые исследования показали, что прием семян пажитника (Trigonella foenum-graecum L.) эффективно при альгодиссменореях - [306; 207; 46].

Рандомизированные клинические исследования показали, что травяной чай Fomentex (Foeniculum vulgare/Mentha longifolia/Vitex agnus-castus) 11,2 г/день в 2 раздельных дозах в течение 2 недель, является безопасным, хорошо переносимый и эффективный выбор в индукции кровотечения и поддержания регулярных кровотечений у женщин с олиго/аменореей - [278; 175]. Клинические исследования показали, что эффективность Fructus agni casti у пациентов с первичной дисменореей была аналогична эффективности этинил-эстрадиола/ дроспиренона - [113].

Систематический анализ рандомизированных клинических исследований показал, что потребление препаратов витекса в группе вмешательства не оказало значительного влияния на менструальное кровотечение по сравнению с группой плацебо - [284].

Укроп нормализует нарушенный менструальный цикл и может использоваться как противозачаточное средство - [286].

Перспективны фитоэстрогены и при лечении сексуальности и плодовитости у женщин.

Экспериментальные исследования показали, что водный экстракт укропа (Anethum graveolensis L.) оказывает терапевтическое воздействие при бесплодии у крыс самок, в то время как некоторые фракции экстракта могут оказывать антифертильное воздействие -[262; 288].

Благодаря эстрогенным свойствам, экстракты фенхеля (Foeniculum vulgare Mill.) стимулируют процессы фоликулогенеза -[227; 50].

Экспериментальными исследования установлено, что под влиянием экстракта шафрана (Crocus sativus L.) у 12-месячных

животных уровень ФСГ в крови уменьшается по сравнению с аналогичным показателем у животных того же возраста, не получавших экстракт, и приближается к уровню, который отмечается у 6-месячных животных, достоверное увеличение количества потомства от самок, получавших экстракт шафрана в период до спаривания - [16; 197; 51].

Простая душица содержит фитоэстрогены. Экспериментальные исследования показали, что экстракты растения стимулируют овариальный оогенез и гонатропные клетки - [129].

Префенилфлавоноиды хмеля (Humulus lupulus L.) ксантохумол и изоксантохумол ингибируют ароматазу (эстроген синтазу), тем самым благотворно влияя на состояния, при которых повышается синтез эстрогенов - [151; 289; 37].

Рандомизированные, плацебо контролируемые клинические исследования показали, что прием V. agnus-castus в течение 16 недель было более эффективным, чем плацебо, в улучшении сексуальной дисфункции у женщин в репродуктивном возрасте -[201].

Запатентованная смесь, состоящая из комбинации Vitex, Maca и активного фолата, регулирует менструальный цикл, стимулирует овуляцию и увеличивает вероятность забеременеть - [123].

Препараты, содержащие экстракты якорцов (Tribulus terrestris) стимулируют репродуктивную систему - [316] при воспалительных заболеваниях женской половой сферы - [17; 18].

Трава якорцов применяется как афродизиак и для женщин -[112; 371; 43]. Якорцы (Tribulus terrestris) оказывают терапевтическое воздействие и при сексуальных нарушениях у женщин - [269; 184; 187]. Определены гонадотропиноподобное воздействие экстрактов якорцов - [107; 165].

Рандомизированные, плацебо контролируемые клинические исследования показали, что экстракты якорцов (Tribulus terrestris) могли бы быть безопасной альтернативой для лечения фригидности у пременопаузальных женщин - [164; 354; 43]. Такие же результаты получены при нарушениях сексуальной активности у женщин менопаузального возраста - [309].

[211; 110] успешно использовали экстракт фенхеля (Foeniculum vulgare Mill.) в виде 2-3% крема при лечении гирсутизма - оволосения по мужскому типу у женщин.

Исследования показали, что крокин (Crocus sativus L.), на гипоталамическом уровне, уменьшает выражение гена KISS-1, это может предотвращать фолликулярную атрезию и уменьшения уровни эстрогенов и прогестерона в сыворотке крови - [384; 35].

Экспериментальные исследования показали, что крокин оказывает антиоксидантное воздействие, стимулирует синтез глютатиона, тем самым защищает клетки ооцитов от оксидативного напряжения - [280]. Экстракт шафрана (Crocus sativus L.) стимулирует созревание и процент оплодотворения ооцитов мышей -[281].

Особое место занимают фитоэстрогены в профилактике и лечении симптомов при климаксе.

Экспериментальные исследования показали, что семена N. sativa обладают эстрогенными свойствами и могут служить альтернативой гормональной терапии постменопаузальных симптомов - [305].

Рандомизированные, плацебо контролируемые исследования показали, что ежедневный прием по 330 мг. семян аниса, в течение 4 недель достоверно уменьшали частоту приливов у климактерических женщин - [293].

Благодаря своим эстрогенным свойствам фасоль предупреждает развитие остеопороза при менопаузе - [336; 64; 95].

Рандомизированные, клинические, контролируемые исследования показали, что масло косточек граната не уменьшает явления прилива у женщин климактерического периода - [128]. Экстракты косточек граната обладают утеротоническим действием - [311; 7].

Спиртовые экстракты семян кумина (Cuminum cyminum L.) уменьшает вымывание с мочой кальция при менопаузе, что связывают с его эстрогено-подобным воздействием - [335; 59].

Благодаря эстрогенным свойствам семена льна оказывают терапевтическое воздействие при симптомах климактерического синдрома - [62; 158]. Экспериментальные исследования показали, что прием муки семян льна (Linum usitatissimum L.) улучшает состояние кости, у мышей после лактационного периода - [7; 317]. Циклические пептиды льняного семени ингибируют процесс дифференцирования остеокластов - [216]. Прием семян льна с малыми дозами эстрогенов предупреждает развитие остеопороза у овари-эктомированных крыс - [320; 321]. Систематический обзор статей показал, что в настоящее время недостаточно данных, для утверждения, что потребление семян льна предупреждает развитие остеопороза при менопаузе - [167; 111].

Экспериментальные исследования выявили эстрогенные свойства водных экстрактов Agrimonia procera, что открывает перспективы для использования травы при лечении пост-менопаузальных расстройств - [239].

Некоторые исследователи считают, что экстракты корней родиолы (Rhodiola gelida Schrenk) являются модулятором рецепторов эстрогенов, и рекомендуют в лечении и профилактике симптомов, сопровождающих менопаузу - [188; 60].

Выжимки винограда улучшают минеральный обмен, предупреждают развитие остеопороза у овариэктомированных животных - [204]. Экспериментальные исследовния показали, что нарингин останавливает процесс вымывания кальция из костной ткани у овариэктомированных крыс - [242].

Умеренное потребление красного вина уменьшает риск переломов костей - [235], в частности переломов шейки бедра у женщин климактерического периода - [231].

В последние годы, появилось много публикаций об эффективности препаратов клевера лугового (Trifolium pretense L.) при лечении климактерического синдрома - [206; 251; 136; 146; 147; 152; 154; 7; 83] и эти свойства травы объясняются наличием в его составе фито-эстрогенов (изофлавонов) - [135; 291; 245; 329; 261; 340; 254]. Экстракты травы клевера предупреждает развитие остеопороза у женщин климактерического периода - [148; 34]. Бразильские врачи выявили, что ежедневный 40 мг. травы клевера (в течение года) дает значительное улучшение при климактерических симптомах и сексуальном удовлетворении - [166]. Рандомизированные, плацебо контролируемые клинические исследования показали, что 12 недельный прием экстрактов клевера лугового (Trifolium pretense L.) достоверно уменьшает проявление симптомов климактерического синдрома - [332]. Трава уменьшает депрессивный синдром и выраженность беспокойства у женщин постме-нопаузального возраста - [246]. Мета анализ рандомизированных, плацебо контролируемых исследований показал, что экстракты клевера лугового достоверно уменьшали проявление приливов при климактерическом синдроме - [102; 185; 23; 34]. Хотя ранее сообщалось, что фитоэстрогены не оказывают достоверного уменьшения вазомоторных проявлений у женщин климактерического периода - [240].

В контролируемых, рандомизированных исследованиях лекарственного шалфея (Salvia officinalis) выявлены положительные результаты при лечении травой болезненных проявлений климакса -[163].

Рандомизированные, плацебо контролируемые клинические исследования показали, что шафран - безопасное и эффективное терапевтическое средство для лечения приливов и депрессивных состояний у здоровых женщин климактерического периода - [220; 51].

Высушенная кожура плодов мандарина улучшает минеральный и липидный обмен у овариэктомированных мышей - [244; 41].

Экспериментальные исследования показали, что пеонифлорин, извлеченный из корня Paeonia lactiflora ингибируя активацию остеокластов и стимулируя остеобластогенез, предотвращает развитие остеопороза у овариэктомированных мышей - [367].

Потребление корня лакрицы (Glycyrrhiza glabra L.) предупреждает развитие метаболических нарушений после овариэктомии -[257].

Экстракты хмеля (Humulus lupulus L.) предупреждают развитие остеопороза у овариэктомированных животных - [222; 37].

Экспериментальные исследования показали, что прием водного экстракта зеленого чая увеличивает массу кости и запрещает трабекулярную потерю кости у овариэктомированных крыс - [372]. Катехины черного чая предупреждает развитие остеопороза у менопаузальных женщин - [298; 333].

Экспериментальные исследования показали, что экстракт семян чернушки (Nigella sativa L.) оказывает выраженное заживляющее воздействие на костную ткань при экспериментальной остео-поротической модели и у овариэктомированных животных - [330; 174; 36; 49].

Экстракты хмеля (Humulus lupulus L.) могут служить безопасной заменой гормональной терапии у женщин, при менопаузе - [224; 355]. Клинические рандомизированные контролируемые исследования показали эффективность стандартизированных экстрактов хмеля, в лечении болезненных состояний при менопаузе - [203; 366]. Рандомизированные, плацебо контролируемые исследования показали, что препараты хмеля (Humulus lupulus L.) эффективны при вазомоторных симптомах (приливах) при менопаузе - [109; 103]. Вагинальный гель на основе экстрактов хмеля эффективно при различных урогенитальных нарушениях при менопаузе - [88; 339]. Горелова (1966) открыла у шишек хмеля эстрогенную активность. Эти свойства очень перспективны при лечении различных патологических состояний, сопровождающих гипоэстрогенемию в постменопаузе - [273; 274; 249; 307; 152; 26; 303; 67; 223; 75].

Рандомизированные, плацебо контролируемые исследования препарата Aphrodit (40 мг Tribulus terrestris, 12,27 мг Zingiber officinale, 3 мг шафрана и 11 мг Cinnamomum zeylanicum) показали его эффективность в лечении болезненных симптомом у климактерических женщин - [351; 350].

Препараты зверобоя (Hypericum perforatum L.) оказывают эстрогеноподобное воздействие, предупреждают развитие остео-пороза при менопаузе - [379]. Получены хорошие результаты при лечении пременструального синдрома препаратами зверобоя - [314]. Экспериментальные исследования показали, что прием зверобоя предотвращает развитие ожирения при менопаузе. При этом не наблюдается стимулирование роста эпителия матки - [380; 100].

Трава прутняка улучшает состояние больных при климактерическом синдроме - [358; 22; 297; 225; 173]. Долгосрочная терапия экстрактами магнолии и прутняка улучшает вазомоторные симптомы, расстройства настроения, нарушения сна, гемо-

динамические измерения и кардиометаболические маркеры риска у здоровых женщин в постменопаузе - [258].

Экспериментальные исследования показали, что экстракт Vitex agnus-castus обладает нейропротекторными свойствами и может уменьшить поражение инсультом у мышей с овариэктомией, вызванной модели постоянной окклюзии средней мозговой артерии, благодаря противовоспалительным и эстрогенным свойствам - [115]. Экстракт Vitex Agnus Castus улучшает обучение и память у крыс с овариэктомией - [116].

Неочищенный экстракт и бутанольная фракция из Vitex agnus-castus эффективны в профилактике неалкогольной жировой болезни печени и окислительного стресса, которые являются частыми причинами аномальных функций печени в постменопаузальном периоде - [290].

Масляные экстракты листьев и цветков прутняка в клинических исследованиях показали положительные результаты при лечении симптомов, сопровождающих менопаузу - [140; 156]. Препараты растения также уменьшали концентрацию пролактина в стадии лютеальных дефектов - [9; 272]. 8-недельное двойное слепое рандомизированное плацебо-контролируемое исследование показало, что комбинация Nigella sativa и Vitex agnus-castus с циталопрамом оказывает терапевтическое воздействие при приливах при климаксе - [283].

Контролируемое клиническое исследование показало, что прием препаратов витекса и магнолии в сочетании с изофлавонами сои + лактобацилл могут эффективно и безопасно использоваться у женщин в постменопаузе, в основном, когда качество сна является наиболее тревожной жалобой - [28; 162; 54].

Пион (Paeonia officinalis Rets.) перспективен при лечении климактерических расстройств - [105].

Ромашка (Matricaria chamomile L.), в сборе с травой дудника уменьшает чувства прилива при климаксе - [234; 38].

Рандомизированные, клинические исследования показали, что применение Nigella sativa и Vitex agnus-castus с циталопрамом эффективно при лечении приливов у климактерических женщин -[282].

Фенхель (Foeniculum vulgare Mill.) предупреждает развитие остеопороза при менопаузе, обладает остеопротективными свойствами - [229; 259].

Рандомизированные, плацебо контролируемые клинические исследования показали, что прием семян фенхеля (Foeniculum vulgare Mill.) оказывает терапевтическое воздействие при климактерических симптомах у менопаузальных женщин - [313]. Прием травы фенхеля оказывает терапевтическое воздействие при вагинальной атрофии у менопаузальных женщин, хотя результаты статистически недостоверны - [191]. Статистически достоверна при этом эффективность крема с маслом фенхеля (Foeniculum vulgare Mill.) при вагинальном применении - [376]. Рандомизированные, плацебо контролируемые клинические исследования показали, что прием фенхеля оказывает терапевтическое и профилактическое воздействие при остеопорозе и депрессивных расстройствах у менопаузальных женщин - [190; 189].

Препараты семян пажитника (Trigonella foenum-graecum L.) эффективны при лечении климактерического синдрома - [104; 292; 343; 219]. Рандомизированные, плацебо контролируемые клинические исследования показали, что прием FenuSMART ™ (экстракт семян пажитника в дозе 1000 мг) достоверно увеличивает концентрацию эстрадиола в крови, оказывает терапевтическое воздействие при симптомах климактерического синдрома - [334].

Водный экстракт граната, при пероральным применении, вызывал антидепрессантные действия, опосредованные рецепторами эстрогена, что открывает перспективы как альтернатива замене терапии эстрогеном при лечении депрессии, связанной с менопаузой - [27].

Экстракт семян граната проявляет терапевтический потенциал при нарушениях памяти у овариэктомированных крыс благодаря его фитоэстрогенным, а также антиоксидантным свойствам - [29].

У крыс после овариоэктомии экстракт семян льна (Linum usitatissimum L.) повышал антиагрегантную активность сосудистой стенки и потенцировал эндотелийзависимую вазолилатацию - [2].

Бициклические терпены плодов витекса (Vitex Agnus Castus) способны оказывать допаминэргическое действие на клетки-лактотрофы передней доли гипофиза, сокращая синтез цАМФ и секрецию пролактина - [84; 68].

Применение препарата Циклодинона (экстракта Vitex Agnus Castus) у пациенток с СПКЯ после хирургического вмешательства при исходном уровне пролактина 500-1000 МЕ/л приводит к статистически значимому снижению содержания пролактина, увеличению уровня прогестерона и частоты овуляторных циклов - [3; 13].

[195; 145; 168; 275; 65; 181; 300; 302; 383] в клинических, рандомизированных исследованиях показали большую эффективность экстрактов прутняка (Vitex Agnus Castus) при лечении циклических масталгий.

Мастодинон, созданный на основе экстракта Vitex Agnus Castus является эффективным и безопасным при лечении масталгии, обусловленной применением КОК - [74; 72; 15; 8; 80; 71; 93].

Плоды расторопши, при приеме во внутрь выражено увеличивают концентрацию пролактина в крови у животных женского

пола посредством воздействия на допамин D2 рецепторы - [142; 143; 58; 61].

Пионофлорин (Paeonia officinalis Rets.) и ликвиритин оказывают терапевтическое воздействие при гиперпролактемии - [369; 78].

Фитоэстрогены оказывают влияние на активность клеточных ферментов, стимулируют дифференцировку клеток и тормозят ангиогенез. Кроме того, они выражают противоопухолевая активность в отношении гормонозависимых новообразований органов женской и мужской репродуктивной системы за счет их способности ингибировать активность ряда ферментов (тирозинкиназы и других протеинкиназ, ароматазы), усиливающих образование половых стероидов и посредством механизмов, не затрагивающих рецепторы эстрогенов.

Прутняк, благодаря наличию эстрогенов оказывает положительное воздействие при лечении гиперплазии и опухоли простаты - [370; 377; 24]. У плодов Vitex agnus castus выявлены антиангиогенические свойства - [150; 132].

Благодаря фито-эстрогенам трава клевера (Trifolium pretense L.) оказывает терапевтическое воздействие при раке молочной железы - [264; 34].

Мета-анализ показал, что потребление кофе связано с уменьшенным риском постменопаузального рака молочной железы -[237; 238; 53].

Умеренное (2-4 чашки/день) и высокое (более 5 чашек/дня) потребление кофе были связаны с меньшим риском заболевания рака молочной железы, по сравнению с пациентами с низким потреблением (менее 1 чашки/день) - [318]. Хотя есть исследования, которые не получили данных о связи потребления кофе и риска заболевания раком молочной железы - [243; 42]. Исследование показало, что потребление высоко кофеинизированного кофе связан

с более низким риском постменопаузального рака молочной железы - [139]. Исследование английских врачей показали, что потребление кофе повышает риск развития постменопаузальной опухоли молочной железы, которые употребляли гормоны - [375; 53; 45].

Фитоэстрогенный препарат Тефэстрола, созданный на основе ферутинина, выделенного из растений рода Feruta оказывает противоопухолевое воздействие при раке молочной железы - [6].

Благодаря эстрогенным свойствам, лигнан арктигенин семян лопуха (Arctium lappa L.) ингибирует процессы метастазирования при раке молочной железы - [205; 250; 268; 52; 31].

Благодаря эстрогенным свойствам, корни петрушки оказывают терапевтическое воздействие при мелкоклеточном раке молочной железы - [176; 328].

Антоцианы черной смородины (Ribes nigrum L.) оказывают фитоэстрогенное воздействие, благодаря чему оказывают противоопухолевое воздействие при раке молочной железы и человеческом эндометриальном раке - [298; 55].

Солодка (Glycyrrhiza glabra L.) содержит фитоэстрогены, благодаря которым оказывает противоопухолевое воздействие на некоторые виды новообразований - [307; 221; 347; 172; 21; 32].

Сухой экстракт якорцов (Tribulus terrestris) применяют в комплексном лечении миомы матки - [76].

Гранат, один из косвенных, но основных источников уроли-тинов, может действовать как селективный модулятор рецепторов эстрогена - [362; 29].

Экстракт перикарпа граната показывает профиль селективного модулятора рецептора эстрогена и может иметь потенциал для профилактики эстроген-зависимого рака молочной железы - [342; 363; 364].

Сок граната оказывает антиэстерогенное воздействие, тем самым предупреждая развитие рака молочной железы - [228; 106; 346].

Фитоэстрогены не только компенсируют сниженный уровень эндогенных половых гормонов, но и снижают риск связанных с эстрогенами злокачественных процессов, например, рака молочных желез, оказывают антиангиогеническое воздействие - [10; 66].

Ресвератрол и другие полифенолы вина предупреждают развитие гормон зависимых опухолей предстательной железы - [178; 31].

Определены и противоопухолевые, против рака простаты, свойства травы кипрея (Chamaenerion angustifolium L.) - [365; 230; 345; 344; 327; 57]. Эти свойства связывают с воздействием компонентов травы на эстроген рецепторы предстательной железы -[233; 232].

Экспериментальные исследования показали, что экстракт Vitagnus ингибировал подавление гена KISS-1 в гипоталамусе в модели синдрома поликистоза яичников у крыс - [179]. Препараты Vitex agnus-castus оказывают терапевтическое воздействие при гирсутизме, у больных синдромом поликистоза яичников, снижая уровень тестостерона и андрогена - [4; 117; 279; 265; 96; 299].

Экстракты семян пажитника (Trigonella foenum-graecum L.) оказывают терапевтическое воздействие при полицистическом овариальном синдроме - [198; 349; 46; 124].

Экспериментальные исследования показали, что экстракты ромашки (Matricaria chamomile L.) перспективны как терапевтическое средство при полицистическом овариальном синдроме - [177; 32].

Тимохинон (Nigella sativa L.) может служить профилактическим и терапевтическим средством при полицистическом овариальном синдроме - [126; 352].

Рандомизированные, плацебо контролируемые клинические исследования показали, что улучшение двигательного режима и прием лекарственных трав, в том числе травы якорцов (Tribulus terrestris) оказывает терапевтическое воздействие при овариальном полицистическом синдроме - [125].

Экспериментальные исследования показали, что водный экстракт семян фенхеля (Foeniculum vulgare Mill.) (в дозе 150 мг/кг веса тела) оказывает терапевтические воздействие при нарушениях функции почек при полицистическом овариальном синдроме - [322; 50].

Экспериментальные исследования показали, что сочетанное применение Withania somnifera (WS) и Tribulus terrestris оказывает терапевтическое воздействие при овариально полицистическом синдроме - [124; 324].

Фитоэстрогены, не смотря на небольшие дозы, могут оказывать побочные действия.

Так как препараты хмеля обладают фитоэстрогенными свойствами, они могут быть причиной эндометриальной гиперплазии и последующего вагинального кровотечения - [86; 360; 359].

Осторожно нужно применять препараты шалфея (Salvia officinalis) при беременности, из-за эстрогенной его активности. Экспериментальные исследования показали, что высокие дозы шалфея оказывают тормозящее воздействие на созревание ооцитов - [287]. У кормящих женщин, применение шалфея может привести к уменьшению количества молока. Отмечены случаи возникновения тоническо клонических судорог у новорожденных, при приеме масла шалфея - [196; 32].

Прием препаратов прутняка приводит к умеренному яичниковому синдрому гипервозбуждения в лютеальной фазе, что может неблагоприятно сказаться на процесс зачатия - [141]. Также

прием препаратов витекса нежелателен во время беременности и кормления грудью - [171; 294]. Данные клинических испытаний, постмаркетинговых исследований эпиднадзора, опросов, схем спонтанной отчетности, производителей и травяных организаций показывают, что нежелательные явления после лечения препаратами Vitex agnus castus являются легкими и обратимыми. Наиболее частыми побочными эффектами являются тошнота, головная боль, желудочно-кишечные нарушения, менструальные расстройства, прыщи, зуд и эритематозная сыпь - [160].

Прием препаратов хмеля понижает половую активность у мужчин. Экспериментальные исследования показали, что препараты хмеля оказывают анафродизиаковое воздействие на крыс мужского пола - [30; 32].

Список литературы:

1. Адамов Г.В., Сайбель О.Л., Даргаева Т.Д. Перспективы использования прутняка обыкновенного (Vitex agnus-castus L.) в качестве источника получения лекарственных средств // Традиционная медицина. 2018. № 1(52). 28-33.

2. Анищенко А.М. и др. Антитромбоцитарная и антитромбогенная активность фитоэстрогенов экстракта семян льна при экспериментальной овариоэктомии //Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. - 2013. - Т. 28. - №. 2. - С. 96-99.

3. Артымук Н.В. Устинова Т.А., Власова В.В. Опыт применения Vitex Agnus Castus в комплексе лечения пациенток с синдромом поликистозных яичников и бесплодием // Здоровье женщины. - 2015. - № 8(104). - С. 172.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

4. Артымук Н.В., Устинова Т.А., Власова В.В. Опыт применения Vitex Agnus Castus в комплексе лечения пациенток с синдромом поликистозных яичников и бесплодием // Российский вестник акушера-гинеколога. - 2011. - Т. 11. - № 2. - С. 61 -64.

5. Асланова Д., Кароматов И.Д. Тысячелистник обыкновенный в народной и научной фитотерапии //Биология и интегративная медицина 2018, 1(18), 167-186.

6. Ахмедов В.Н., Назруллаев С.С., Сыров В.Н., Гильдиева М.С., Абдувалиев А.А., Ахмедходжаева Х.С., Хушбактова З.А.

Цитотоксическая активность фитоэстрогена тефэстрола / Наука и инновации XXI века - Материалы III Всероссийской конференции молодых ученых. Том II. 2016 Сургут, 2016, 102-105.

7. Балан В.Е., Афаэлян И.В., Ковалева Л.А. Фитоэстрогены: терапевтические возможности //Медицинский совет. - 2012. - №. 7. -С. 16-19.

8. Баранов И.И. Возможности применения растительного препарата на основе экстракта Vitex аgnus сastus при патологии молочных желез: известные факты и новые сведения // РМЖ. Мать и дитя. - 2012. - Т. 20. - № 17. - С. 889-892.

9. Болдырева Н.В. Сравнительная характеристика пациенток с отягощенным и не отягощенным по гиперпролактинемии анамнезом в процессе сочетанного приема микродозированного кок с препаратом Витекса священного - //Репродукт. здоровье дет.и подр. 2008, 2, 19-26.

10. Ботоева Е.А. К вопросу о фитоэстрогенах (обзор литературы) //Acta Biomedica Scientifica. - 2010. - №. 2. - С. 234-238.

11. Ботоева Е.А., Убеева И.П., Николаев С.М. Биологическая роль фитоэстрогенов (обзор литературы) //Вестник Бурятского государственного университета. Медицина и фармация. - 2009. - №. 12. - С. 16-21.

12. Бурчаков Д.И., Ших Е.В. Витекс священный: от античных легенд к нейрофизиологии дофаминергического ответа на стрессовые стимулы // Женская клиника. - 2020. - № 1. - С. 17-23.

13. Вуттке В., Зайдлова-Вуттке Д., Ярри Г., Артымук Н.В. Роль Витекса священного (Vitex agnus castus) в гинекологической эндокринологии // Здоровье женщины. - 2016. - № 10(116). - С. 24.

14. Вуттке В., Ярри Г., Зайдлова-Вуттке Д., Уварова Е.В., Девятченко Т.Ф., Гуменюк Е.Г., Погодин O.K., Левенец С.А. Терапевтические возможности экстрактов из авраамова дерева (Vitex Agnus Castus) в гинекологической практике - //Проблемы репродукции - 2009, 4, 53-58.

15. Вуттке В., Зайдлова-Вуттке Д., Ярри Г., Артымук Н.В. Роль витекса священного (Vitex Agnus Castus) в гинекологической эндокринологии // Гинекология 2012, 14, 1, 8-11.

16. Гашимова У.Ф., Камилова Н.М., Бабаев Х.Ф., Шукюрова П.А., Гасанова С.И., Аббасов Р.Ю. Влияние шафрана (Crocus sativus L. Iridaceae) на уровень фолликулостимулирующего гормона в крови у самок крыс, количество потомства и динамику массы тела у крысят - //Успехи геронтологии 2017, 30, 3, 436-441.

17. Гопчук Е.Н. Трибестан в комплексной терапии воспалительных заболеваний органов малого таза у женщин -//Здоровье женщины 2014, 3 (89), 8.

18. Гопчук Е.Н. Фитотерапия воспалительных заболеваний в гинекологии. Трибестан - препарат с широким спектром терапевтических эффектов - //Здоровье женщины 2012, 1 (67), 90.

19. Грудницкая Е.Н., Поддубный А.А., Порфенович Н.В. Префемин - эффективное негормональное лечение менструальной дисфункции // Репродуктивное здоровье. Восточная Европа. 2022. -Т. 12, № 1, 140-147. DOI 10.34883/PI.2022.12.1.016.

20. Гулин А.В., Шукуров Ф.А., Халимова Ф.Т. Репродуктивное здоровье женщин разных этнических групп //Биология и интегративная медицина 2019, 9(37), 4-67.

21. Дадаев Х.А., Садырова М.А., Акилов Дж.Х. Лекарственное растение солодка голая //Биология и интегративная медицина 2021, 1(47), 250-263.

22. Диана Ван Ди М., Бургер Г.Г., Теэде Х.Д., Боун К.М. Vitex agnus-castus (Авраамово дерево/Витекс священный) в облегчении симптомов менопаузы // Здоровье женщины. 2018, № 9(135). 26.

23. Дикке Г.Б. Фитоэстрогены экстракта красного клевера: механизм действия и клиническая эффективность //Consilium Medicum. 2020, Т. 22, №. 6, 19-24. DOI: 10.26442/20751753.2020.6.200249.

24. Зотов А.С., Поступаленко А.В., Верещако Р.И. Фитоэстрогены: молекулярные механизмы действия в онкологическом контексте //Кл^чна ендокринолопя та ендокринна хiрургiя. - 2015. - №. 3 (51). - С. 7-16.

25. Зубайдова Т.М., Бахрамова З.Г., Шокирова Х.Ё., Хушназарова М.Б., Камолова О.К., Хайдарова С.Х., Хабирова С.З., Шомахмадова Ф.С., Бердиева Н.Б. Эффективность настоя травы душицы мелкоцветковой при лечении аменореи - /Проблемы фитотерапии и фитофармакологии - Материалы 1 съезда фитотерапевтов и фитофарм. Таджикистана, Душанбе 2008, 80-83.

26. Каленичина Е.В., Пелипенко Т.В. Эстрогеноподобные вещества СО2-экстракта хмеля - //Физ.-хим. анализ свойств многокомпонентных систем - 2007, 5, 12.

27. Карачева Ю.О., Кулишова Т.В., Гурьева В.А. Динамика когнитивных функций у больных с дисциркуляторной энцефалопатией и климактерическим синдромом на фоне комплексного лечения с включением озонотерапии и фитоэстрогенов // Профилактическая медицина 2021, 24, 5-2, 51.

28. Каримсакова Б.К., Салимова К.В. Фитоэстрогены в лечении климактерического синдрома // Медицинский Журнал Западного Казахстана 2011, 1(29), 66-67.

29. Кароматов И.Д. Гранат обыкновенный как профилактическое и лечебное средство при урогенитальных заболеваниях - //Биология и интегративная медицина 2022, 3(56), 200.

30. Кароматов И.Д. Простые лекарственные средства Бухара

2012.

31. Кароматов И.Д. Фитотерапия - руководство для врачей том 1 Бухара 2018.

32. Кароматов И.Д. Фитотерапия - руководство для врачей том 2 Бухара 2022.

33. Кароматов И.Д., Абдувохидов А.Т. Сыть круглая -перспективы применения в медицине //Биология и интегративная медицина 2018, 1(18), 296-314.

34. Кароматов И.Д., Абдулхаков И.У. Клевер луговой применение в медицине (обзор литературы) //Биология и интегративная медицина 2016, 5(5), 95-109.

35. Кароматов И.Д., Акрамова Н.Ш. Перспективное лекарственное растение - сафлор красильный (обзор литературы) //Биология и интегративная медицина 2018, 6(23), 68-95.

36. Кароматов И.Д., Акрамова Н.Ш. Чернушка посевная и мочеполовая система (обзор литературы) //Биология и интегративная медицина 2019, 2 (30), 125-134.

37. Кароматов И.Д., Атамурадова Ш.Т. Пищевое и лечебное значение растения хмель обыкновенный //Биология и интегративная медицина 2018, 1(18), 187-212.

38. Кароматов И.Д., Бадритдинова М.Н., Язмурадов Ф.А. Ромашка аптечная известное лекарственное растение //Биология и интегративная медицина 2018, 7(24), 4-26.

39. Кароматов И.Д., Баймурадов Р.Р., Шодиева М.С. Биологически активное вещество растительного происхождения ресвератрол - лечебные свойства (обзор литературы) //Биология и интегративная медицина 2018, 3(20), 178-198.

40. Кароматов И.Д., Гафаров А.С., Фахриев Р.С., Бозоров А.Г. Лекарственные растения анис, анис звездчатый //Биология и интегративная медицина 2021, 1(47), 318-338.

41. Кароматов И.Д., Джумаев К.Ш., Ибрагимов А.И. Лечебные свойства мандарина //Биология и интегративная медицина 2017, 4(10), 207-217.

42. Кароматов И.Д., Жалилов Н.А. Кофе и беременность //Биология и интегративная медицина 2019, 5 (33), 26-34.

43. Кароматов И.Д., Жумаева Х.Х. Якорцы стелющиеся -применение при нарушениях в сексуальной сфере //Биология и интегративная медицина 2019, 3 (31), 136-151.

44. Кароматов И.Д., Зокирова М.М., Хужакулова Д.Ч. Лечебные свойства лекарственного растения ревень (обзор литературы) //Биология и интегративная медицина 2017, 9(15), 98118.

45. Кароматов И.Д., Каримов М.Б. Кофе как лечебное и профилактическое средство - обзор литературы //Биология и интегративная медицина 2019, 3 (31), 152-173.

46. Кароматов И.Д., Каххорова С.И. Забытое лекарственное растение - пажитник сенный //Биология и интегративная медицина 2018, 2(19), 215-247.

47. Кароматов И.Д., Кобилова Д.С. Чернушка посевная - новая жизнь древнего лекарственного средства (мини обзор) //Биология и интегративная медицина 2018, 2(19), 248-271.

48. Кароматов И.Д., Кулдошева Д.Р. Петрушка огородная - как лечебное и профилактическое средство //Биология и интегративная медицина 2018, 4(21), 211-224.

49. Кароматов И.Д., Мавлонов А.А. Фармакология чернушки посевной - Чернушка посевная в древней, современной народной и научной медицине. LAP LAMBERT, Mauritius, 2022, 158 c.

50. Кароматов И.Д., Музаффарова С.К., Тураев П.Т. Лечебные свойства фенхеля //Биология и интегративная медицина 2017, 9(15), 23-43.

51. Кароматов И.Д., Муродова М.М. Шафран приправа и лекарственное растение (обзор литературы) //Биология и интегративная медицина 2018, 3(20), 147-177.

52. Кароматов И.Д., Нурмухамедова Р.А., Бадриддинова М.Н. Лопух, репейник - перспективное растительное лекарственное средство (обзор литературы) //Биология и интегративная медицина 2017, 5(11), 163-182.

53. Кароматов И.Д., Очилова Д.А., Комилова Б.О., Гиязова М.М. Кофе и медицина - физиология, эпидемиология и клиника. М., 2021, 114 с.

54. Кароматов И.Д., Ражабова Г.Х., Файзиев Н. Магнолия крупноцветная //Биология и интегративная медицина 2017, 8(14), 91113.

55. Кароматов И.Д., Рустамова Г.Ю. Лечебные свойства смородины //Биология и интегративная медицина 2018, 5(22), 32-47.

56. Кароматов И.Д., Садирова Д.Р., Кадырова Г.Х. Перспективное лекарственное растение укроп //Биология и интегративная медицина 2017, 8(14), 23-40.

57. Кароматов И.Д., Тураева Н.И. Кипрей узколистый, иван -чай //Биология и интегративная медицина 2016, 6(6), 160-169.

58. Кароматов И.Д., Умурзокова Ш. Лечебные свойства флаволигнана расторопши силимарина //Биология и интегративная медицина 2018, 10(27), 115-146.

59. Кароматов И.Д., Халилова Р.С. Лечебные свойства приправы кумин //Биология и интегративная медицина 2021, 3(50), 185-202.

60. Кароматов И.Д., Юсупова Г.С. Растение адаптоген -родиола //Биология и интегративная медицина 2018, 6(23), 209.

61. Кароматов И.Д., Ярашова М.Д. Флаволигнан расторопши силибинин (силибин) //Биология и интегративная медицина 2018, 10(27), 147.

62. Карпович О.В., Гуменюк Р.Л., Ордиянц И.М., Радзинский В.Е., Орлова С.В. Перспективы применения фитоэстрогенов //Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Медицина. - 2005. - №. 4. - С. 154-158.

63. Кедрова А.Г., Леваков С.А. Фитопрепараты в лечении гинекологических больных с выраженной масталгией // Опухоли женской репродуктивной системы. - 2017. - Т. 13. - № 4. - С. 63-70. - DOI 10.17650/1994-4098-2017-13-4-63-70.

64. Койилова М.Д., Кароматов И.Д. Фасоль как лечебное средство (обзор литературы) //Биология и интегративная медицина 2017, 8(14), 114-133.

65. Коробов С.А., Хмара П.Г. Сравнение эффективности препаратов на основе экстракта Vitex agnus castus при циклической мастодинии // Вестник современных исследований. - 2018. № 6.3(21), 43-44.

66. Корсун Е.В., Корсун В.Ф. Лекарственные растения-ингибиторы опухолевого ангиогенеза. Роль фитоэстрогенов //Практическая фитотерапия. - 2016. - №. 3. - С. 46-57.

67. Кузнецова И.В. Фитоэстрогены в лечении климактерических расстройств //Гинекология. 2012, Т. 14, №. 6, 2023.

68. Кузнецова И.В., Бурчакова М.Н., Бурчаков Д.И. и др. Психогенные стресс-зависимые нарушения менструального цикла: роль негормональной коррекции // Здоровье женщины. - 2018. - № 10(136). - С. 68.

69. Кузнецова И.В., Успенская Ю.Б., Диль В.В., Гринева А.М. Использование растительных дофаминомиметиков у подростков и молодых женщин с нарушенным менструальным циклом // Здоровье женщины. - 2017, 10(126). - С. 43.

70. Кузнецова И.В., Успенская Ю.Б., Диль В.В., Гринева А.М. Использование растительных дофаминомиметиков у подростков и молодых женщин с нарушенным менструальным циклом // Акушерство и гинекология. 2015, 11, 70-77.

71. Кулагина Н.В. Фитотерапия циклической масталгии у пациенток с диффузной доброкачественной дисплазией молочных желез и предменструальным синдромом // Медицинский совет. -2019. - № 6. - С. 136-140. - DOI 10.21518/2079-701X-2019-6-136-140.

72. Ледина А.В., Прилепская В.Н. Масталгия. Лечение экстрактом Vitex Agnus Castus // Доктор.ру 2012, 1(69), 13-19.

73. Ледина А.В., Прилепская В.Н. Предменструальный синдром: возможности дифференцированного подхода к лечению // Акушерство и гинекология. 2018, № 11, 92-97. - DOI 10.18565/aig.2018.11.92-97.

74. Ледина А.В., Прилепская В.Н. Эффективность лечения масталгии, возникшей на фоне приема комбинированных оральных контрацептивов, препаратом экстракта Vitex Agnus Castus // Акушерство и гинекология 2011, 7-1, 63-67.

75. Мазитова М.И., Талипова И.Р., Мардиева Р.Р. Фитоэстрогены в лечении климактерического синдрома как альтернатива гормональной терапии //Акушерство, гинекология и репродукция. - 2020. - Т. 14. - №. 6. - С. 685-693.

76. Макарчук О.М., Мослем А.А. Комплексное лечение миомы матки у женщин с метаболическими нарушениями в репродуктивный период - //Здоровье женщины 2016, 7 (113), 135.

77. Маматханов А.У., Ахмедходжаева Х.С., Маматханова М.А., Халилов Р.М. Эстрогеноподобные вещества надземной части Ferula Tschimganica // Химико-фармацевтический журнал 2021,

5, 3, 28-33.

78. Муродова М.М., Кароматов И.Д. Лекарственное растение -пион лекарственный, уклоняющий //Биология и интегративная медицина 2018, 4(21), 130-146.

79. Нечай И.В., Нечай Ю.В. Фитоэстрогены в современной гинекологии //European Student Scientific Journal. - 2013. - №. 2.

80. Овсянникова Т.В., Куликов И.А. Эффективность фитотерапии доброкачественных заболеваний молочных желез в гинекологической клинике // Consilium Medicum. - 2017. - Т. 19. - №

6. - С. 62-65.

81. Прилепская В.Н., Довлетханова Э.Р. Предменструальный синдром и качество жизни женщины. Эффективность фитопрепаратов // Здоровье женщины. - 2018. - № 2(128). - С. 27.

82. Прилепская В.Н., Довлетханова Э.Р. Предменструальный синдром и качество жизни женщины. Эффективность фитопрепаратов. В помощь практическому врачу // Медицинский совет. - 2017. - № 13. 15-19. - DOI 10.21518/2079-701X-2017-13-15-19.

83. Радзинский В.Е., Хамошина М.Б., Шестакова И.Г., Осьмакова А.А. Менопаузальный синдром-терапия и профилактика: доказанные возможности фитоэстрогенов //Доктор. Ру. - 2015. - №. 14 (115). - С. 32-37.

84. Рожкова Н.И., Меских Е.В. Фитотерапия XXI века: доказательства эффекта. Применение Vitex agnus-castus при различных формах мастопатии // StatusPraesens. Гинекология, акушерство, бесплодный брак. - 2012. - № 1(7). - С. 39-43.

85. Рыжкова С.Н., Курбанова К.Ш., Габбас А.Ф., Нурллина А.А. Опыт клинического применения препарата "Vitex agnus castus" у пациенток с предменструальным синдромом //21 век: фундаментальная наука и технологии: материалы XI международной научно-практической конференции, North Charleston, 23-24 января 2017 года. - North Charleston: CreateSpace, 2017. - С. 43-44.

86. Самылина И.А., Булаев В.М., Ших Е.В. Лекарственные растения, обладающие гормональной активностью: проблема безопасности - //Фармация 2011, 1, 38-41.

87. Семичковский Л.А. Препараты на основе витекса священного в маммологии (аналитический обзор литературы) // Репродуктивное здоровье. Восточная Европа. 2019. - Т. 9. - № 4. -С. 521-529.

88. Синицина О.С., Рыженко И.М., Зайченко А.В., Бавыкина М.Л. Редукция симптомов гипоэстрогении у овариоэктомированных крыс под влиянием вагинального геля с экстрактом шишек хмеля -//УкраТнський бюфармацевтичний журнал 2015, 6 (41), 20-24.

89. Соколова Л.С., Павлова Е.В., Шушеначева А.М., Ефремов А.А. Особенности компонентного состава эфирного масла надземной части Phlomis tuberose L. и Humulus lupulus L - //Химия растительного сырья 2012, 2, 101-104.

90. Стасевич О.В., Михаленок С.Г. Фитоэстроген диглюкозид секоизоларицирезинола и его выделение из семян льна масличного / Теоретические и прикладные аспекты биохимии и биотехнологии растений - Сборник научных трудов III Международной научной конференции: к 50-летию Отдела биохимии и биотехнологии растений. Минск 2008, 508-511.

91. Тарумов Р.А., Гребенюк А.Н., Башарин В.А., Ковтун В.Ю. Биологические свойства фитоэстрогена генистеина (обзор литературы) // Медицина экстремальных ситуаций 2014, 2(48), 55-68.

92. Уварова Е.В. Использование фитопрепаратов на основе плодов витекса священного (Vitex agnus-castus) для лечения расстройств менструаций в раннем репродуктивном периоде жизни женщины (аналитический обзор) // Репродуктивное здоровье детей и подростков. - 2018. - № 3. - С. 74-91. - DOI 10.24411/1816-2134-201813006.

93. Уварова Е.В. Эффективность и безопасность применения растительного лекарственного препарата Циклодинон® для лечения нарушений менструального цикла у девочек-подростков: обзор опыта клинического применения // Репродуктивное здоровье детей и подростков. - 2021. - Т. 17. - № 2(91). - С. 51-64. - DOI 10.33029/18162134-2021-17-2-51-64.

94. Халимова Ф.Т., Шукуров Ф.А. Гормональный статус в оценке нарушения репродуктивного здоровья //Биология и интегративная медицина 2019, 10(38), 4-12.

95. Хамдамова М.Т., Ахматова Д.Ф. Остеопороз у молодых женщин репродуктивного возраста, факторы риска //Биология и интегративная медицина 2021, 1(47), 146-159.

96. Хикматова С., Аслонова Ш.Ж. Современные представления о синдроме поликистозных яичников (СПКЯ) //Биология и интегративная медицина 2017, 10(16), 4-22.

97. Хушбактова З.А., Назруллаев С.С., Ахмедходжаева Х.С., Нигматуллаев А.М., Сагдуллаев Ш.Ш., Сыров В.Н. Растения Центральной Азии - источники фитоэстрогенов - //Растительные ресурсы 2011, 47, 1, 136-160.

98. Чернявская М.А., Наркевич И.А. Биологические эффекты фитоэстрогенов: клиническая эффективность и перспективы применения в терапии проявлений климактерического синдрома //Фармакоэкономика. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология. 2020, Т. 13, №. 2, С. 164-169.

99. Шелленберг Р., Циммерманн К., Древе Ю. Дозозависимая эффективность экстракта Vitex Agnus Castus ZE 440 у пациенток с предменструальным синдромом // Репродуктивное здоровье. Восточная Европа. - 2020. - Т. 10. - № 4. - С. 387-399. - DOI 10.34883/PI.2020.10.4.002.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

100. Юлдашева Д.Ю., Усмонова А.О., Каюмова Д.Т. Сравнительная характеристика причин, рецидивирующих дисфункциональных маточных кровотечений у женщин в пременопаузальном периоде //Биология и интегративная медицина 2017, 2(8), 80-89.

101. Яргин С.В. Фитоэстрогены и продукты из сои: плюсы и минусы //Главный врач Юга России. 2019, №. 5 (69), С. 35-37.

102. Ярмолинская М.И., Тарасова М.А. Эффективность фитоэстрогенов в лечении климактерического синдрома //Журнал акушерства и женских болезней. 2009, Т. 58, №. 1, 71-77.

103. Abdi F., Mobedi H., Roozbeh N. Hops for Menopausal Vasomotor Symptoms: Mechanisms of Action - //J. Menopausal. Med. 2016, Aug., 22(2), 62-64. doi: 10.6118/jmm.2016.22.2.62.

104. Abedinzade M., Nasri S., Jamal Omodi M., Ghasemi E., Ghorbani A. Efficacy of Trigonella foenum-graecum Seed Extract in Reducing Metabolic and Inflammatory Alterations Associated With Menopause - //Iran. Red. Crescent. Med. J. 2015 Nov 16, 17(11), e26685. doi: 10.5812/ircmj.26685.

105. Adams J.D.Jr., Garcia C. Women's health among the Chumash - //Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2006, Mar., 3(1), 125-131.

106. Adams L.S., Zhang Y., Seeram N.P., Heber D., Chen S. Pomegranate ellagitannin-derived compounds exhibit antiproliferative and antiaromatase activity in breast cancer cells in vitro - //Cancer Prev. Res. (Phila). 2010, Jan., 3(1), 108-113.

107. Adderly B. Natural bliss - //Better nutrition 2002, 64, 2, 33-35.

108. Agha-Hosseini M., Kashani L., Aleyaseen A., Ghoreishi A., Rahmanpour H., Zarrinara A.R., Akhondzadeh S. Crocus sativus L. (saffron) in the treatment of premenstrual syndrome: a double-blind, randomised and placebo-controlled trial - //BJOG 2008, Mar., 115(4), 515519.

109. Aghamiri V., Mirghafourvand M., Mohammad-Alizadeh-Charandabi S., Nazemiyeh H. The effect of Hop (Humulus lupulus L.) on early menopausal symptoms and hot flashes: A randomized placebo-controlled trial - //Complement. Ther. Clin. Pract. 2016, May, 23, 130-135. doi: 10.1016/j.ctcp.2015.05.001.

110. Akha O., Rabiei K., Kashi Z., Bahar A., Zaeif-Khorasani E., Kosaryan M., Saeedi M., Ebrahimzadeh M.A., Emadian O. The effect of fennel (Foeniculum vulgare) gel 3% in decreasing hair thickness in idiopathic mild to moderate hirsutism, A randomized placebo controlled clinical trial - //Caspian. J. Intern. Med. 2014, Winter, 5(1), 26-29.

111. Akhmatova D.F., Khamdamova M.T. Analysis of the effectiveness of hormone therapy in patients with post-castration syndrome //Биология и интегративная медицина 2021, 3(50), 27-33.

112. Akhtari E., Raisi F., Keshavarz M., Hosseini H., Sohrabvand F., Bioos S., Kamalinejad M., Ghobadi A. Tribulus terrestris for treatment of sexual dysfunction in women: randomized double-blind placebo -controlled study - //Daru. 2014, Apr 28, 22, 40.

113. Aksoy A.N., Gozukara I., Kabil Kucur S. Evaluation of the efficacy of Fructus agni casti in women with severe primary dysmenorrhea: a prospective comparative Doppler study. //J. Obstet. Gynaecol. Res. 2014 Mar; 40(3): 779-784. doi: 10.1111/jog.12221.

114. Albert-Puleo M. Fennel and anise as estrogenic agents - //J. Ethnopharmacol. 1980, Dec., 2(4), 337-344.

115. Alimohamadi R., Fatemi I., Naderi S., Hakimizadeh E., Rahmani M.R., Allahtavakoli M. Protective effects of Vitex agnus-castus in ovariectomy mice following permanent middle cerebral artery occlusion. //Iran. J. Basic. Med. Sci. 2019 Sep; 22(9): 1097-1101. doi: 10.22038/ijbms.2019.31692.7625.

116. Allahtavakoli M., Honari N., Pourabolli I., Kazemi Arababadi M., Ghafarian H., Roohbakhsh A., Esmaeili Nadimi A., Shamsizadeh A. Vitex Agnus Castus Extract Improves Learning and Memory and Increases the Transcription of Estrogen Receptor a in Hippocampus of Ovariectomized Rats. //Basic Clin. Neurosci. 2015 Jul; 6(3): 185-192.

117. Alois M., Estores I.M. Hormonal Regulation In Pcos Using Acupuncture And Herbal Supplements: A Case Report And Review Of The Literature. //Integr. Med. (Encinitas). 2019 Oct; 18(5): 36-39.

118. Amaya S.C., Savaris R.F., Filipovic C.J., Wise J.D., Hestermann E., Young S.L., Lessey B.A. Resveratrol and Endometrium: A Closer Look at an Active Ingredient of Red Wine Using In Vivo and In Vitro Models - //Reprod. Sci. 2014, Mar 6.

119. Ambrosini A., Di Lorenzo C., Coppola G., Pierelli F. Use of Vitex agnus-castus in migrainous women with premenstrual syndrome: an open-label clinical observation. //Acta Neurol. Belg. 2013 Mar; 113(1): 2529. doi: 10.1007/s13760-012-0111-4.

120. Ambrosini A., Di Lorenzo C., Coppola G., Pierelli F. Use of Vitex agnus-castus in migrainous women with premenstrual syndrome: an open-label clinical observation - //Acta Neurol. Belg. 2012, Jul 12.

121. Anagnostis A., Papadopoulos A.I. Effects of a diet rich in sesame ( Sesamum indicum) pericarp on the expression of oestrogen receptor alpha and oestrogen receptor beta in rat prostate and uterus -//Br. J. Nutr. 2009, Sep., 102(5), 703-708.

122. Anselm E., Chataigneau M.,Ndiaye M.,Chataigneau T.,Schini-Kerth V.B. Grape juice causes endothelium-dependent relaxation via a redox-sensitive Src- and Akt-dependent activation of eNOS - //Cardiovasc. Res. 2007, Jan 15, 73(2), 404-413.

123. Antoine E., Chirila S., Teodorescu C. A Patented Blend Consisting of a Combination of Vitex agnus-castus Extract, Lepidium meyenii (Maca) Extract and Active Folate, a Nutritional Supplement for Improving Fertility in Women. //Maedica (Bucur). 2019 Sep; 14(3): 274279. doi: 10.26574/maedica.2019.14.3.274.

124. Arentz S., Abbott J.A., Smith C.A., Bensoussan A. Herbal medicine for the management of polycystic ovary syndrome (PCOS) and associated oligo/amenorrhoea and hyperandrogenism; a review of the laboratory evidence for effects with corroborative clinical findings - //BMC Complement. Altern. Med. 2014, Dec 18, 14, 511.

125. Arentz S., Smith C.A., Abbott J., Fahey P., Cheema B.S., Bensoussan A. Combined Lifestyle and Herbal Medicine in Overweight Women with Polycystic Ovary Syndrome (PCOS): A Randomized Controlled Trial - //Phytother. Res. 2017, Sep., 31(9), 13301340.

126. Arif M., Thakur S.C., Datta K. Implication of thymoquinone as a remedy for polycystic ovary in rat - //Pharm. Biol. 2016, 54(4), 674-685. doi: 10.3109/13880209.2015.1072565.

127. Atmaca M., Kumru S., Tezcan E. Fluoxetine versus Vitex agnus castus extract in the treatment of premenstrual dysphoric disorder. //Hum. Psychopharmacol. 2003 Apr;18(3):191-195. doi: 10.1002/hup.470.

128. Auerbach L., Rakus J., Bauer C., Gerner C., Ullmann R., Wimmer H., Huber J. Pomegranate seed oil in women with menopausal symptoms: a prospective randomized, placebo-controlled, double-blinded trial - //Menopause 2012, Apr., 19(4), 426-432.

129. Bagheri Ziari S., Naji T., Hosseinzadeh Sahafi H. Comparison of the effects of Origanum vulgare with LHRH-A2 and 17ß-estradiol on the ultrastructure of gonadotroph cells and ovarian oogenesis in immature Trichogaster trichopterus - //Anim. Reprod. Sci. 2015, Oct., 161, 32-39.

130. Barrett J.R. Mycotoxins: of molds and maladies //Environmental Health Perspectives. - 2000. - T. 108. - №. 1. - C. A20-A23.

131. Berger D., Schaffner W., Schrader E., Meier B., Brattstrom A. Efficacy of Vitex Agnus Castus L. extract ZE 440 in patients with premenstrual syndrome (PMS) - //Archives of Gynecology and Obstetrics

- 2000, 264, 3, 0150-0153.

132. Bischoff-Kont I., Brabenec L., Ingelfinger R., Nausch B., Fürst R. BNO 1095, a Standardized Dry Extract from the Fruits of Vitex agnus-castus, Impairs Angiogenesis-related Endothelial Cell Functions In Vitro. //Planta Med. 2021 Jul; 87(8): 611-619. doi: 10.1055/a-1351-1038.

133. Bokaie M., Farajkhoda T., Enjezab B., Khoshbin A., Karimi-Zarchi M. Oral fennel (Foeniculum vulgare) drop effect on primary dysmenorrhea: Effectiveness of herbal drug - //Iran. J. Nurs. Midwifery Res. 2013, Mar., 18(2), 128-132.

134. Boonmuen N., Gong P., Ali Z., Chittiboyina A.G., Khan I., Doerge D.R., Helferich W.G., Carlson K.E., Martin T., Piyachaturawat P., Katzenellenbogen J.A., Katzenellenbogen B.S. Licorice root components in dietary supplements are selective estrogen receptor modulators with a spectrum of estrogenic and anti-estrogenic activities -//Steroids. 2016, Jan., 105, 42-49. doi: 10.1016/j.steroids.2015.11.006.

135. Booth N.L., Overk C.R., Yao P., Burdette J.E., Nikolic D., Chen S.N., Bolton J.L., van Breemen R.B., Pauli G.F., Farnsworth N.R. The chemical and biologic profile of a red clover (Trifolium pratense L.) phase II clinical extract -//J. Altern. Complement. Med. 2006, Mar.,12(2), 133139.

136. Booth N.L., Piersen C.E., Banuvar S., Geller S.E., Shulman L.P., Farnsworth N.R. Clinical studies of red clover (Trifolium pratense) dietary supplements in menopause: a literature review - //Menopause 2006, Mar-Apr., 13(2), 251-264.

137. Botden I.P., Oeseburg H., Durik M., Leijten F.P., Van Vark-Van Der Zee L.C., Musterd-Bhaggoe U.M., Garrelds I.M., Seynhaeve A.L., Langendonk J.G., Sijbrands E.J., Danser A.H., Roks A.J. Red wine extract protects against oxidative-stress-induced endothelial senescence

- //Clin. Sci. (Lond). 2012, Oct 1, 123(8), 499-507.

138. Boue S.M., Burow M.E., Wiese T.E., Shih B.Y., Elliott S., Carter-Wientjes C.H., McLachlan J.A., Bhatnagar D. Estrogenic and antiestrogenic activities of phytoalexins from red kidney bean (Phaseolus vulgaris L.) - //J. Agric. Food Chem. 2011, Jan 12, 59(1), 112-120.

139. Bhoo-Pathy N., Peeters P.H., Uiterwaal C.S., Bueno-de-Mesquita H.B., Bulgiba A.M., Bech B.H., Overvad K., Tj0nneland A., Olsen A., Clavel-Chapelon F. et al. Coffee and tea consumption and risk of pre- and postmenopausal breast cancer in the European Prospective Investigation into Cancer and Nutrition (EPIC) cohort study -//Breast. Cancer. Res. 2015, Jan 31, 17, 15. doi: 10.1186/s13058-015-0521-3.

140. Burdette J.E. Evaluation of botanical dietary supplements for the treatment of menopausal symptoms - disser. DegreeYear: 2003.

141. Cahill D.J., Fox R., Wardle P.G., Harlow C.R. Case report: multiple follicular development associated with herbal medicine - //Human Reproduction -1994, 9, 8, 1469.

142. Capasso R. Effect of Silitidil, a standardized extract of milk thistle, on the serum prolactin levels in female rats - //Nat. Prod. Commun. 2014, Jul., 9(7), 943-944.

143. Capasso R., Aviello G., Capasso F., Savino F., Izzo A.A., Lembo F., Borrelli F. Silymarin BIO-C, an extract from Silybum marianum fruits, induces hyperprolactinemia in intact female rats - //Phytomedicine 2009, Sep., 16(9), 839-844.

144. Cappelli V., Morgante G., Di Sabatino A., Massaro M.G., De Leo V. Valutazione dell'efficacia di un nuovo preparato nutraceutico nel trattamento dei disturbi delle donne in postmenopausal [Evaluation of the efficacy of a new nutraceutical product in the treatment of postmenopausal symptoms]. //Minerva Ginecol. 2015 Dec; 67(6): 515-521.

145. Carmichael A.R. Can Vitex Agnus Castus be Used for the Treatment of Mastalgia? What is the Current Evidence? - //Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2008, Sep., 5(3), 247-250. doi: 10.1093/ecam/nem074.

146. Carroll D.G. Nonhormonal therapies for hot flashes in menopause - //Am. Fam. Physician. 2006, Feb., 1, 73(3), 457-464.

147. Cassidy A., Albertazzi P., Lise Nielsen I., Hall W., Williamson G., Tetens I., Atkins S., Cross H., Manios Y., Wolk A., Steiner C., Branca F. Critical review of health effects of soyabean phytooestrogens in postmenopausal women - //Proc. Nutr. Soc. 2006, Feb., 65(1), 76-92.

148. Cegiefa U., Folwarczna J., Pytlik M., Zgorka G. Effects of Extracts from Trifolium medium L. and Trifolium pratense L. on Development of Estrogen Deficiency-Induced Osteoporosis in Rats -//Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2012, 2012, 921684.

149. Cerqueira R.O., Frey B.N., Leclerc E., Brietzke E. Vitex agnus castus for premenstrual syndrome and premenstrual dysphoric disorder:

a systematic review. //Arch. Womens Ment. Health. 2017 Dec; 20(6): 713719. doi: 10.1007/s00737-017-0791-0.

150. Certo G., Costa R., D'Angelo V., Russo M., Albergamo A., Dugo G., Germano M.P. Anti-angiogenic activity and phytochemical screening of fruit fractions from Vitex agnus castus. //Nat. Prod. Res. 2017 Dec; 31(24): 2850-2856. doi: 10.1080/14786419.2017.1303696.

151. Chadwick L.R., Nikolic D., Burdette J.E., Overk C.R., Bolton J.L., van Breemen R.B., Frohlich R., Fong H.H., Farnsworth N.R., Pauli G.F. Estrogens and congeners from spent hops (Humulus lupulus) - //J. Nat. Prod. 2004, Dec., 67(12), 2024-2032.

152. Chadwick L.R., Pauli G.F., Farnsworth N.R. The pharmacognosy of Humulus lupulus L. (hops) with an emphasis on estrogenic properties - //Phytomedicine 2006, Jan.,13(1-2), 119-131.

153. Chalopin M., Soleti R., Benameur T., Tesse A., Faure S., Martinez M.C., Andriantsitohaina R. Red wine polyphenol compounds favor neovascularisation through estrogen receptor a-independent mechanism in mice -//PLoS One. 2014, Oct 9, 9(10), e110080.

154. Chedraui P., San Miguel G., Hidalgo L., Morocho N., Ross S. Effect of Trifolium pratense-derived isoflavones on the lipid profile of postmenopausal women with increased body mass index - //Gynecol. Endocrinol. 2008, Nov., 24(11), 620-624.

155. Chen H.Y., Lin Y.H., Su I.H., Chen Y.C., Yang S.H., Chen J.L. Investigation on Chinese herbal medicine for primary dysmenorrhea: implication from a nationwide prescription database in Taiwan -//Complement. Ther. Med. 2014, Feb., 22(1), 116-125. doi: 10.1016/j.ctim.2013.11.012.

156. Chopin Lucks B. Vitex agnus castus essential oil and menopausal balance: a research update [Complementary Therapies in Nursing and Midwifery 8 (2003) 148-154] - //Complement. Ther. Nurs. Midwifery. 2003 Aug., 9(3), 157-160. doi: 10.1016/S1353-6117(03)00020-9.

157. Ciotta L., Pagano I., Stracquadanio M., Di Leo S., Ando A., Formuso C. Aspetti psichici del disturbo disforico della fase luteale: nuove prospettive terapeutiche, il vitex agnus castus. Nostra esperienza [Psychic aspects of the premenstrual dysphoric disorders. New therapeutic strategies: our experience with Vitex agnus castus]. //Minerva Ginecol. 2011 Jun; 63(3): 237-245.

158. Colli M.C., Bracht A., Soares A.A., de Oliveira A.L., Boer C.G., de Souza C.G., Peralta R.M. Evaluation of the efficacy of flaxseed meal and flaxseed extract in reducing menopausal symptoms -//J. Med. Food. 2012, Sep., 15(9), 840-845.

159. Csupor D., Lantos T., Hegyi P., Benko R., Viola R., Gyöngyi Z., Csecsei P., Toth B., Vasas A., Marta K., Rostas I., Szentesi A., Matuz M. Vitex agnus-castus in premenstrual syndrome: A meta-analysis of

double-blind randomised controlled trials. //Complement. Ther. Med. 2019 Dec; 47: 102190. doi: 10.1016/j.ctim.2019.08.024.

160. Daniele C., Thompson Coon J., Pittler M.H., Ernst E. Vitex agnus castus: a systematic review of adverse events. //Drug Saf. 2005; 28(4): 319-332. doi: 10.2165/00002018-200528040-00004.

161. Dante G., Facchinetti F. Herbal treatments for alleviating premenstrual symptoms: a systematic review. //J. Psychosom. Obstet. Gynaecol. 2011 Mar; 32(1): 42-51. doi: 10.3109/0167482X.2010.538102.

162. De Franciscis P., Grauso F., Luisi A., Schettino M.T., Torella M., Colacurci N. Adding Agnus Castus and Magnolia to Soy Isoflavones Relieves Sleep Disturbances Besides Postmenopausal Vasomotor Symptoms-Long Term Safety and Effectiveness. //Nutrients. 2017 Feb 13; 9(2): 129. doi: 10.3390/nu9020129.

163. De Leo V., Lanzetta D., Cazzavacca R., Morgante G. Treatment of neurovegetative menopausal symptoms with a phytotherapeutic agent - //Minerva Ginecol. 1998, May, 50(5), 207-211.

164. de Souza K.Z., Vale F.B., Geber S. Efficacy of Tribulus terrestris for the treatment of hypoactive sexual desire disorder in postmenopausal women: a randomized, double-blinded, placebo-controlled trial - //Menopause. 2016, Nov., 23(11), 1252-1256.

165. Dehghan A., Esfandiari A., Bigdeli S.M. Alternative treatment of ovarian cysts with Tribulus ter-restris extract: a rat model - //Reprod. Domest. Anim. 2012, Feb., 47(1), 12-15.

166. del Giorno C., Fonseca A.M., Bagnoli V.R., Assis J.S., Soares J.M. Jr., Baracat E.C. Effects of Trifolium pratense on the climacteric and sexual symptoms in postmenopause women - //Rev. Assoc. Med. Bras. 2010, Sep-Oct., 56(5), 558-562.

167. Dew T.P., Williamson G. Controlled flax interventions for the improvement of menopausal symptoms and postmenopausal bone health: a systematic review - //Menopause. 2013, Nov., 20(11), 1207-1215.

168. Ding T., Co§kun F. Comparison of fructus agni casti and flurbiprofen in the treatment of cyclic mastalgia in premenopausal women. //Ulus. Cerrahi Derg. 2014 Mar 1; 30(1): 34-38. doi: 10.5152/UCD.2014.2409.

169. Doll M. [The premenstrual syndrome: effectiveness of Vitex agnus castus] - //Med. Monatsschr. Pharm. 2009, May, 32(5), 186-191.

170. Dubey R.K., Jackson E.K., Gillespie D.G., Zacharia L.C., Imthurn B., Rosselli M. Resveratrol, a red wine constituent, blocks the antimitogenic effects of estradiol on human female coronary artery smooth muscle cells - //J. Clin. Endocrinol. Metab. 2010, Sep., 95(9), 9-17.

171. Dugoua J.J., Seely D., Perri D., Koren G., Mills E. Safety and efficacy of chastetree (Vitex agnus-castus) during pregnancy and lactation. //Can. J. Clin. Pharmacol. 2008 Winter; 15(1): e74-79.

172. Dunlap T.L., Wang S., Simmler C., Chen S.N., Pauli G.F., Dietz B.M., Bolton J.L. Differential Effects of Glycyrrhiza Species on Genotoxic Estrogen Metabolism: Licochalcone A Downregulates P450 1B1, whereas Isoliquiritigenin Stimulates It - //Chem. Res. Toxicol. 2015, Aug 17, 28(8), 1584-1594. doi: 10.1021/acs.chemrestox.5b00157.

173. Echeverría V., Echeverría F., Barreto G.E., Echeverría J., Mendoza C. Estrogenic Plants: to Prevent Neurodegeneration and Memory Loss and Other Symptoms in Women After Menopause. //Front Pharmacol. 2021 May 20; 12: 644103. doi: 10.3389/fphar.2021.644103.

174. Ezirganli S., Kazancioglu H.O., Özdemir H., Inan D.S., Tek M. The Effects of Nigella Sativa Seed Extract on Bone Healing in an Experimental Model - //J. Craniofac. Surg. 2016, Oct., 27(7), 1905-1909.

175. Falahat F., Ayatiafin S., Jarahi L., Mokaberinejad R., Rakhshandeh H., Feyzabadi Z., Tavakkoli M. Efficacy of a Herbal Formulation Based on Foeniculum Vulgare in Oligo/Amenorrhea: A Randomized Clinical Trial. //Curr. Drug Discov. Technol. 2020; 17(1): 6878. doi: 10.2174/1570163815666181029120512.

176. Farshori N.N., Al-Sheddi E.S., Al-Oqail M.M., Musarrat J., Al-Khedhairy A.A., Siddiqui M.A. Anticancer activity of Petroselinum sativum seed extracts on MCF-7 human breast cancer cells - //Asian. Pac. J. Cancer. Prev. 2013, 14(10), 5719-5723.

177. Farideh Z.Z., Bagher M., Ashraf A., Akram A., Kazem M. Effects of chamomile extract on biochemical and clinical parameters in a rat model of polycystic ovary syndrome - //J. Reprod. Infertil. 2010, Oct., 11(3), 169-174.

178. Ferruelo A., Romero I., Cabrera P.M., Arance I., Andrés G., Angulo J.C. Effects of resveratrol and other wine polyphenols on the proliferation, apoptosis and androgen receptor expression in LNCaP cells - //Actas. Urol. Esp. 2014, Jul-Aug., 38(6), 397-404.

179. Feyzollahi Z., Mohseni Kouchesfehani H., Jalali H., Eslimi-Esfahani D., Sheikh Hosseini A. Effect of Vitex agnus-castus ethanolic extract on hypothalamic KISS-1 gene expression in a rat model of polycystic ovary syndrome. //Avicenna J. Phytomed. 2021 May-Jun; 11(3): 292-301.

180. Figard H., Girard C., Mougin F., Demougeot C., Berthelot A. Effects of aqueous hop (Humulus Lupulus L.) extract on vascular reactivity in rats: mechanisms and influence of gender and hormonal status -//Phytomedicine 2008, Mar., 15(3), 185-193.

181. Fisher C.Y., Adams J., Frawley J.E., Hickman L.D., Sibbritt D.W. Is there a role for Western herbal medicine in treating cyclic perimenstrual pain and discomfort? //Aust. N. Z. J. Obstet. Gynaecol. 2019 Feb; 59(1): 154-156. doi: 10.1111/ajo.12883.

182. Fitzpatrick D.F., Hirschfield S.L., Coffey R.G. Endothelium-dependent vasorelaxing activity of wine and other grape products - //Am. J. Physiol. 1993, Aug., 265(2 Pt 2), 774-778.

183. Fukui H., Toyoshima K., Komaki R. Psychological and neuroendocrinological effects of odor of saffron (Crocus sativus) -//Phytomedicine. 2011, Jun 15, 18(8-9), 726-730.

184. Gama C.R., Lasmar R., Gama G.F., Abreu C.S., Nunes C.P., Geller M., Oliveira L., Santos A. Clinical Assessment of Tribulus terrestris Extract in the Treatment of Female Sexual Dysfunction - //Clin. Med. Insights. Womens Health. 2014, Dec 22, 7, 45-50.

185. Gartoulla P., Han M.M. Red clover extract for alleviating hot flushes in postmenopausal women: a meta-analysis - //Maturitas 2014, Sep., 79(1), 58-64.

186. Gehm B.D., McAndrews J.M., Chien P.Y., Jameson J.L. Resveratrol, a polyphenolic compound found in grapes and wine, is an agonist for the estrogen receptor - //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997, Dec 9, 94(25), 14138-14143.

187. Gelman F., Atrio J. Flibanserin for hypoactive sexual desire disorder: place in therapy - //Ther. Adv. Chronic. Dis. 2017, Jan., 8(1), 1625.

188. Gerbarg P.L., Brown R.P. Pause menopause with Rhodiola rosea, a natural selective estrogen receptor modulator -//Phytomedicine. 2016, Jun 15, 23(7), 763-769. doi: 10.1016/j.phymed.2015.11.013.

189. Ghazanfarpour M., Amini E., Khadivzadeh T., Babakhanian M., Nouri B., Rakhshandeh H., Afiat M. The Effect of Short-term Treatment with Fennel on Bone Density in Postmenopausal Women: A Randomized Controlled Trial - //J. Menopausal. Med. 2017, Aug., 23(2), 124-130.

190. Ghazanfarpour M., Mohammadzadeh F., Shokrollahi P., Khadivzadeh T., Najaf Najafi M., Hajirezaee H., Afiat M. Effect of Foeniculum vulgare (fennel) on symptoms of depression and anxiety in postmenopausal women: a double-blind randomised controlled trial - //J. Obstet. Gynaecol. 2017, Sep 11, 1-6.

191. Ghazanfarpour M., Shokrollahi P., Khadivzadeh T., Baharian Sharghi N., Mirzaii Najmabadi K., Babakhanian M., Jafarian A.H. Effect of Foeniculum vulgare (fennel) on vaginal atrophy in postmenopausal women: A double-blind, randomized, placebo-controlled trial - //Post. Reprod. Health. 2017, Jan 1, 2053369117733629.

192. Ghodsi Z., Asltoghiri M. The effect of fennel on pain quality, symptoms, and menstrual duration in primary dysmenorrheal - //J. Pediatr. Adolesc. Gynecol. 2014, Oct., 27(5), 283-286.

193. Gorkow C., Wuttke W., Marz R.W. Zur wirksamkeit von Vitex Agnus Castus - //Wiener Medizinische Wochenschrift -2002, 152, 15-16, 364-372.

194. Hajirahimkhan A., Simmler C., Yuan Y., Anderson J.R., Chen S.N., Nikolic D., Dietz B.M., Pauli G.F., van Breemen R.B., Bolton J.L. Evaluation of estrogenic activity of licorice species in comparison with hops used in botanicals for menopausal symptoms -//PLoS One. 2013, Jul 12, 8(7), e67947. doi: 10.1371/journal.pone.0067947.

195. Halaska M., Beles P., Gorkow C., Sieder C. Treatment of cyclical mastalgia with a solution con-taining a Vitex agnus castus extract: results of a placebo-controlled double-blind study - //Breast. 1999, Aug., 8(4), 175-181.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

196. Halicioglu O., Astarcioglu G., Yaprak I., Aydinlioglu H. Toxicity of Salvia officinalis in a newborn and a child: an alarming report - //Pediatr. Neurol. 2011, Oct., 45(4), 259-260.

197. Hashimova U.F., Kamilova N.K., Babaev K.F., Shukurova P.A., Hasanova S.I., Abbasov R.Y. [Effects of saffron (Crocus sativus l. iridaceae) on blood level of follicle-stimulating hormone, and number and dynamics of body weight of offspring in female rats] - //Adv. Gerontol. 2017, 30(3), 436-441.

198. Hassanzadeh Bashtian M., Emami S.A., Mousavifar N., Esmaily H.A., Mahmoudi M., Mohammad Poor A.H. Evaluation of Fenugreek (Trigonella foenum-graceum L.), Effects Seeds Extract on Insulin Resistance in Women with Polycystic Ovarian Syndrome - //Iran. J. Pharm. Res. 2013, Spring, 12(2), 475-481.

199. He Z., Chen R., Zhou Y., Geng L., Zhang Z., Chen S., Yao Y., Lu J., Lin S. Treatment for premen-strual syndrome with Vitex agnus castus: A prospective, randomized, multi-center placebo controlled study in China - //Maturitas 2009, May 20, 63(1), 99-103. doi: 10.1016/j.maturitas.2009.01.006.

200. Heidarifar R., Mehran N., Heidari A., Tehran H.A., Koohbor M., Mansourabad M.K. Effect of Dill (Anethum graveolens) on the severity of primary dysmenorrhea in compared with mefenamic acid: A randomized, double-blind trial - //J. Res. Med. Sci. 2014, Apr., 19(4), 326330.

201. Heirati S.F.D., Ozgoli G., KabodMehri R., Mojab F., Sahranavard S., Nasiri M. The 4-month effect of Vitex agnus-castus plant on sexual function of women of reproductive age: A clinical trial. //J. Educ. Health Promot. 2021 Aug 31; 10: 294. doi: 10.4103/jehp.jehp_63_21.

202. Henderson C.W. Study finds fruit extract is effective treatment for PMS - //Women's Health Weekly - 2001, 7.

203. Heyerick A., Vervarcke S., Depypere H., Bracke M., De Keukeleire D. A first prospective, rando-mized, double-blind, placebo-

controlled study on the use of a standardized hop extract to alleviate menopausal discomforts - //Maturitas 2006, May, 20, 54(2), 164-175.

204. Hohman E.E., Weaver C.M. A grape-enriched diet increases bone calcium retention and cortical bone properties in ovariectomized rats - //J. Nutr. 2015, Feb., 145(2), 253-259.

205. Hsieh C.J., Kuo P.L., Hsu Y.C., Huang Y.F., Tsai E.M., Hsu Y.L. Arctigenin, a dietary phytoestrogen, induces apoptosis of estrogen receptor-negative breast cancer cells through the ROS/p38 MAPK pathway and epigenetic regulation - //Free Radic. Biol. Med. 2014, Feb., 67, 159-170.

206. Huntley A. Drug-herb interactions with herbal medicines for menopause - //J. Br. Menopause Soc. 2004, Dec., 10(4), 162-165.

207. Inanmdar W., Sultana A., Mubeen U., Rahman K. Clinical efficacy of Trigonella foenum graecum (Fenugreek) and dry cupping therapy on intensity of pain in patients with primary dysmenorrheal - //Chin. J. Integr. Med. 2016, May 25.

208. Innocenti G., Vegeto E., Dall'Acqua S., Ciana P., Giorgetti M., Agradi E., Sozzi A., Fico G., Tome F. In vitro estrogenic activity of Achillea millefolium L. - //Phytomedicine 2007, 14(2-3), 147-152.

209. Izzo A.A., Hoon-Kim S., Radhakrishnan R., Williamson E.M. A Critical Approach to Evaluating Clinical Efficacy, Adverse Events and Drug Interactions of Herbal Remedies. //Phytother. Res. 2016 May; 30(5): 691 -700. doi: 10.1002/ptr.5591.

210. Jan K.C., Ku K.L., Chu Y.H., Hwang L.S., Ho C.T. Tissue distribution and elimination of estrogenic and anti-inflammatory catechol metabolites from sesaminol triglucoside in rats - //J. Agric. Food Chem. 2010, Jul 14, 58(13), 7693-7700.

211. Javidnia K., Dastgheib L., Mohammadi Samani S., Nasiri A. Antihirsutism activity of Fennel (fruits of Foeniculum vulgare) extract. A double-blind placebo controlled study - //Phytomedicine 2003, 10(6-7), 455-458.

212. Kamal N., Mio Asni N.S., Rozlan I.N.A., Mohd Azmi M.A.H., Mazlan N.W., Mediani A., Baharum S.N., Latip J., Assaw S., Edrada-Ebel R.A. Traditional Medicinal Uses, Phytochemistry, Biological Properties, and Health Applications of Vitex sp. //Plants (Basel). 2022 Jul 26; 11(15): 1944. doi: 10.3390/plants11151944.

213. Kamat S.K., Barde P.J., Raut S.B. Evaluation of the estrogenic activity of Indian medicinal plants in immature rats - //Anc. Sci. Life. 2015, Oct-Dec., 35(2), 90-95. doi: 10.4103/0257-7941.171669.

214. Kamboj V.P., Dhawan B.N. Research on plants for fertility regulation in India - //J. Ethnopharmacol. 1982, Sep., 6(2), 191-226.

215. Kane M.O., Anselm E., Rattmann Y.D., Auger C., Schini-Kerth V.B. Role of gender and estrogen receptors in the rat aorta endothelium-

dependent relaxation to red wine polyphenols - //Vascul. Pharmacol. 2009, Aug-Sep., 51(2-3), 140-146.

216. Kaneda T., Yoshida H., Nakajima Y., Toishi M., Nugroho A.E., Morita H. Cyclolinopeptides, cyclic peptides from flaxseed with osteoclast differentiation inhibitory activity -//Bioorg. Med. Chem. Lett. 2016, Apr 1, 26(7), 1760-1761.

217. Kang S.C., Lee C.M., Choi H., Lee J.H., Oh J.S., Kwak J.H., Zee O.P. Evaluation of oriental medi-cinal herbs for estrogenic and antiproliferative activities - //Phytother. Res. 2006, Nov., 20(11), 10171079. doi: 10.1002/ptr.1987.

218. Kang S.C., Lee C.M., Choung E.S., Bak J.P., Bae J.J., Yoo H.S., Kwak J.H., Zee O.P. Antipro-liferative effects of estrogen receptor-modulating compounds isolated from Rheum palmatum - //Arch. Pharm. Res. 2008, Jun., 31(6), 722-726.

219. Kargozar R., Azizi H., Salari R. A review of effective herbal medicines in controlling menopausal symptoms - //Electron. Physician. 2017, Nov 25, 9(11), 5826-5833. doi: 10.19082/5826.

220. Kashani L., Esalatmanesh S., Eftekhari F., Salimi S., Foroughifar T., Etesam F., Safiaghdam H., Moazen-Zadeh E., Akhondzadeh S. Efficacy of Crocus sativus (saffron) in treatment of major depressive disorder associated with post-menopausal hot flashes: a double-blind, randomized, placebo-controlled trial - //Arch. Gynecol. Obstet. 2018, Mar., 297(3), 717-724. doi: 10.1007/s00404-018-4655-2.

221. Kaur P., Kaur S., Kumar N., Singh B., Kumar S. Evaluation of antigenotoxic activity of isoliquiritin apioside from Glycyrrhiza glabra L. - //Toxicol. In. Vitro. 2009, Jun., 23(4), 680-686.

222. Keiler A.M., Helle J., Bader M.I., Ehrhardt T., Nestler K., Kretzschmar G., Bernhardt R., Vollmer G., NikoliC D., Bolton J.L., Pauli G.F., Chen S.N., Dietz B.M., van Breemen R.B., Zierau O. A standardized Humulus lupulus (L.) ethanol extract partially prevents ovariectomy-induced bone loss in the rat without induction of adverse effects in the uterus - //Phytomedicine. 2017, Oct 15, 34, 50-58. doi: 10.1016/j.phymed.2017.08.001.

223. Keiler A.M., Macejova D., Dietz B.M., Bolton J.L., Pauli G.F., Chen S.N., van Breemen R.B., Nikolic D., Goerl F., Muders M.H., Zierau O., Vollmer G. Evaluation of estrogenic potency of a standardized hops extract on mammary gland biology and on MNU-induced mammary tumor growth in rats - //J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 2017, Nov., 174, 234-241. doi: 10.1016/j.jsbmb. 2017.09.020.

224. Keiler A.M., Zierau O., Kretzschmar G. Hop extracts and hop substances in treatment of menopausal complaints -//Planta Med. 2013, May, 79(7), 576-579. doi: 10.1055/s-0032-1328330.

225. Kenda M., Glavac N.K., Nagy M., Sollner Dolenc M., On Behalf Of The Oemonom. Herbal Products Used in Menopause and for

Gynecological Disorders. //Molecules. 2021 Dec 8; 26(24): 7421. doi: 10.3390/molecules26247421.

226. Khamdamova M.T. Age echographic characteristics of the uterus and ovaries in women of the first and second period of middle age //Биология и интегративная медицина 2020, 2(42), 75-85.

227. Khazaei M., Montaseri A., Khazaei M.R., Khanahmadi M. Study of Foeniculum vulgare Effect on Folliculogenesis in Female Mice -//Int. J. Fertil. Steril. 2011, Oct., 5(3), 122-127.

228. Kim N.D., Mehta R., Yu W., Neeman I., Livney T., Amichay A., Poirier D., Nicholls P., Kirby A., Jiang W., Mansel R., Ramachandran C., Rabi T., Kaplan B., Lansky E. Chemopreventive and adjuvant therapeutic potential of pomegranate (Punica granatum) for human breast cancer - //Breast. Cancer. Res. Treat. 2002, Feb., 71(3), 203-217.

229. Kim T.H., Kim H.J., Lee S.H., Kim S.Y. Potent inhibitory effect of Foeniculum vulgare Miller extract on osteoclast differentiation and ovariectomy-induced bone loss - //Int. J. Mol. Med. 2012, Jun., 29(6), 1053-1059.

230. Kiss A., Kowalski J., Melzig M.F. Induction of neutral endopeptidase activity in PC-3 cells by an aqueous extract of Epilobium angustifolium L. and oenothein B - //Phytomedicine. 2006, Mar., 13(4), 284-289.

231. Kubo J.T., Stefanick M.L., Robbins J., Wactawski-Wende J., Cullen M.R., Freiberg M., Desai M. Preference for wine is associated with lower hip fracture incidence in post-menopausal women - //BMC Womens Health 2013, Sep 22, 13, 36.

232. Kujawski R., Bogacz A., Bartkowiak-Wieczorek J., Karasiewicz M., Mikolajczak P.L., Mrozikiewicz-Rakowska B., Wolski H., Czerny B., Grzeskowiak E., Mrozikiewicz P.M. Effect of Epilobium angustifolium and Serenoa repens extracts on regulation of non-genomic signaling pathway of kinases - //Ginekol. Pol. 2014, Apr., 85(4), 278-282.

233. Kujawski R., Mrozikiewicz P.M., Bogacz A., Cichocka J., Mikolajczak P.L., Czerny B. , Bobkiewicz-Kozlowska T., Grzeskowiak E. [Influence of standardized extract of Epilobium angustifolium on estrogen receptor alpha and beta expression in in vivo model] -//Ginekologia Polska 2010, 81(8), 600-605.

234. Kupfersztain C., Rotem C., Fagot R., Kaplan B. The immediate effect of natural plant extract, Angelica sinensis and Matricaria chamomilla (Climex) for the treatment of hot flushes during menopause. A preliminary report - //Clin. Exp. Obstet. Gynecol. 2003, 30(4), 203-206.

235. Kutlesa Z., Budimir Mrsic D. Wine and bone health: a review -//J. Bone Miner. Metab. 2015, Apr 2.

236. Laakmann E., Grajecki D., Doege K., zu Eulenburg C., Buhling K.J. Efficacy of Cimicifuga racemosa, Hypericum perforatum and Agnus castus in the treatment of climacteric complaints: a systematic review.

//Gynecol. Endocrinol. 2012 Sep; 28(9): 703-709. doi: 10.3109/09513590.2011.650772.

237. Lafranconi A., Micek A., De Paoli P., Bimonte S., Rossi P., Quagliariello V., Berretta M. Coffee Intake Decreases Risk of Postmenopausal Breast Cancer: A Dose-Response Meta-Analysis on Prospective Cohort Studies - //Nutrients. 2018, Jan 23, 10(2). pii: E112. doi: 10.3390/nu10020112.

238. Lafranconi A., Micek A., Galvano F., Rossetti S., Del Pup L., Berretta M., Facchini G. Coffee Decreases the Risk of Endometrial Cancer: A Dose-Response Meta-Analysis of Prospective Cohort Studies -//Nutrients. 2017, Nov 9, 9(11). pii: E1223. doi: 10.3390/nu9111223.

239. Lee Y.M., Kim J.B., Bae J.H., Lee J.S., Kim P.S., Jang H.H., Kim H.R. Estrogen-like activity of aqueous extract from Agrimonia pilosa Ledeb. in MCF-7 cells - //BMC Complement. Altern. Med. 2012, Dec 21, 12, 260.

240. Lethaby A., Marjoribanks J., Kronenberg F., Roberts H., Eden J., Brown J. Phytoestrogens for menopausal vasomotor symptoms -//Cochrane Database Syst. Rev. 2013, Dec 10, (12), CD001395.

241. Li H., Förstermann U. Resveratrol: a multifunctional compound improving endothelial function. Editorial to: "Resveratrol supplementation gender independently improves endothelial reactivity and suppresses superoxide production in healthy rats" by S. Soylemez et al. - //Cardiovasc. Drugs Ther. 2009, Dec., 23(6), 425-429.

242. Li N., Jiang Y., Wooley P.H., Xu Z., Yang S.Y. Naringin promotes osteoblast differentiation and effectively reverses ovariectomy-associated osteoporosis - //J. Orthop. Sci. 2013, May, 18(3), 478-485.

243. Li X.J., Ren Z.J., Qin J.W., Zhao J.H., Tang J.H., Ji M.H., Wu J.Z. Coffee consumption and risk of breast cancer: an up-to-date metaanalysis - //PLoS One. 2013, 8(1), e52681. doi: 10.1371/journal.pone.0052681.

244. Lim D.W., Lee Y., Kim Y.T. Preventive effects of Citrus unshiu peel extracts on bone and lipid metabolism in OVX rats - //Molecules 2014, Jan 9, 19(1), 783-794.

245. Lipovac M., Chedraui P., Gruenhut C., Gocan A., Kurz C., Neuber B., Imhof M. The effect of red clover isoflavone supplementation over vasomotor and menopausal symptoms in postmenopausal women - Gynecol. Endocrinol. 2012, Mar., 28(3), 203207.

246. Lipovac M., Chedraui P., Gruenhut C., Gocan A., Stammler M., Imhof M. Improvement of post-menopausal depressive and anxiety symptoms after treatment with isoflavones derived from red clover extracts - //Maturitas. 2010, Mar., 65(3), 258-261.

247. Liu J., Burdette J.E., Sun Y., Deng S., Schlecht S.M., Zheng W., Nikolic D., Mahady G., van Breemen R.B., Fong H.H., Pezzuto J.M.,

Bolton J.L., Farnsworth N.R. Isolation of linoleic acid as an estrogenic compound from the fruits of Vitex agnus-castus L. (chaste-berry). //Phytomedicine. 2004 Jan; 11(1): 18-23. doi: 10.1078/0944-7113-00331.

248. Liu J., Burdette J.E., Xu H., Gu C., van Breemen R.B., Bhat K.P., Booth N., Constantinou A.I., Pezzuto J.M., Fong H.H., Farnsworth N.R., Bolton J.L. Evaluation of estrogenic activity of plant extracts for the potential treatment of menopausal symptoms - //J. Agric. Food Chem. 2001, 49(5), 2472-2479.

249. Loch E.G., Selle H., Boblitz N. Treatment of premenstrual syndrome with a phytopharmaceutical formulation containing Vitex agnus castus - //J. Womens Health Gend. Based Med. 2000, 9(3), 315-320.

250. Lou C., Zhu Z., Zhao Y., Zhu R., Zhao H. Arctigenin, a lignan from Arctium lappa L., inhibits metastasis of human breast cancer cells through the downregulation of MMP-2/-9 and heparanase in MDA-MB-231 cells - //Oncol. Rep. 2017, Jan., 37(1), 179-184.

251. Low Dog T. Menopause: a review of botanical dietary supplements - //Am. J. Med. 2005, Dec., 19, 118(12 Suppl 2), 98-108.

252. Lucks B.C., S0rensen J., Veal L. Vitexagnus-castus essential oil and menopausal balance: a self-care survey. //Complement. Ther. Nurs. Midwifery. 2002 Aug; 8(3): 148-154. doi: 10.1054/ctnm.2002.0634.

253. Lungu G.F. Isolation and characterization of maclura pomifera phytoestrogen(s) - Degree: M.S. DegreeYear: 2004.

254. Lutter S., Schmalbach K., Esch H.L., Lehmann L. The isoflavone irilone contributes to the estrogenic potential of dietary supplements containing red clover - //Arch. Toxicol. 2014, Feb., 88(2), 309-321.

255. Ma L., Lin S., Chen R., Wang X. Treatment of moderate to severe premenstrual syndrome with Vitex agnus castus (BNO 1095) in Chinese women. //Gynecol. Endocrinol. 2010 Aug; 26(8): 612-616. doi: 10.3109/09513591003632126.

256. Ma L., Lin S., Chen R., Zhang Y., Chen F., Wang X. Evaluating therapeutic effect in symptoms of moderate-to-severe premenstrual syndrome with Vitex agnus castus (BNO 1095) in Chinese women - //Aust. N. Z. J. Obstet. Gynaecol. 2010, Apr., 50(2), 189-193.

257. Madak-Erdogan Z., Gong P., Zhao Y.C., Xu L., Wrobel K.U., Hartman J.A., Wang M., Cam A., Iwaniec U.T., Turner R.T., Twaddle N.C., Doerge D.R., Khan I.A., Katzenellenbogen J.A., Katzenellenbogen B.S., Helferich W.G. Dietary licorice root supplementation reduces diet-induced weight gain, lipid deposition, and hepatic steatosis in ovariectomized mice without stimulating reproductive tissues and mammary gland - //Mol. Nutr. Food Res. 2016, Feb., 60(2), 369-380. doi: 10.1002/mnfr.201500445.

258. Maffei S., Franchini M., Fortunato L., Guiducci L. Long-term effects of a combination of isoflavones, agnus castus and magnolia extracts on climacteric symptoms and cardiometabolic risk profile in

postmenopausal women. //Gynecol. Endocrinol. 2022 Apr; 38(4): 339344. doi: 10.1080/09513590.2022.2047171.

259. Mahmoudi Z., Soleimani M., Saidi A., Khamisipour G., Azizsoltani A. Effects of Foeniculum vulgare ethanol extract on osteogenesis in human mecenchymal stem cells - //Avicenna J. Phytomed. 2013, Spring, 3(2), 135-142.

260. Maier C.G.-A., Chapman K.D., Smith D.W. Phytoestrogens and floral development in dioecious maclura pomifera (raf.) Schneid. And morus rubra l. (moraceae) //Plant Science 1997, 130, 1, 27-40.

261. Mainini G., Torella M., Di Donna M.C., Esposito E., Ercolano S., Correa R., Cucinella G., Stradella L., Luisi A., Basso A., Cerreto F.V., Cicatiello R., Matteo M., De Franciscis P. Nonhormonal management of postmenopausal women: effects of a red clover based isoflavones supplementation on climacteric syndrome and cardiovascular risk serum profile - //Clin. Exp. Obstet. Gynecol. 2013, 40(3), 337-341.

262. Malihezaman M., Mojaba M., Elham H., Farnaz G., Ramin M. Anti-fertility effects of different fractions of Anethum graveolens L. extracts on female rats - //Afr. J. Tradit. Complement. Altern. Med. 2012, Apr 2, 9(3), 336-341.

263. Malini T., Vanithakumari G., Megala N., Anusya S., Devi K., Elango V. Effect of Foeniculum vul-gare Mill. seed extract on the genital organs of male and female rats - //Indian. J. Physiol. Pharmacol. 1985, Jan-Mar., 29(1), 21-26.

264. Mannella P., Tosi V., Russo E., Zullino S., Pancetti F., Gompal S., Polak K., Genazzani A.R., Genazzani A.D., Simoncini T. Effects of red clover extracts on breast cancer cell migration and invasion - //Gynecol. Endocrinol. 2012, Jan., 28(1), 29-33.

265. Manouchehri A., Abbaszadeh S., Ahmadi M., Nejad F.K., Bahmani M., Dastyar N. Polycystic ovaries and herbal remedies: A systematic review. //JBRA Assist Reprod. 2022 Aug 1. doi: 10.5935/15180557.20220024.

266. Marinov B., Pramatarova T., Andreeva A., Larukova N., Slavov A. [Our experience with management of inherited thrombophilia during pregnancy. Preliminary report]. //Akush. Ginekol. (Sofiia). 2011; 50(6): 1820.

267. Matscheski A., Richter D.U., Hartmann A.M., Effmert U., Jeschke U., Kupka M.S., Abarzua S., Briese V., Ruth W., Kragl U., Piechulla B. Effects of Phytoestrogen Extracts Isolated from Rye, Green and Yellow Pea Seeds on Hormone Production and Proliferation of Trophoblast Tumor Cells Jeg3. - //Horm. Res. 2006, Apr., 6, 65(6), 276288.

268. Maxwell T., Chun S.Y., Lee K.S., Kim S., Nam K.S. The anti-metastatic effects of the phytoestrogen arctigenin on human breast cancer

cell lines regardless of the status of ER expression - //Int. J. Oncol. 2017, Feb., 50(2), 727-735.

269. Mazaro-Costa R., Andersen M.L., Hachul H., Tufik S. Medicinal Plants as Alternative Treatments for Female Sexual Dysfunction: Utopian Vision or Possible Treatment in Climacteric Women? - //J. Sex. Med. 2010, Aug 16.

270. M^czekalski B., Czyzyk A. Vitex Agnus Castus w leczeniu hiperprolaktynemii i zaburzen cyklu miesi^czkowego - opis przypadku [Vitex Agnus Castus in the treatment of hyperprolactinemia and menstrual disorders - a case report]. //Pol. Merkur. Lekarski. 2015 Jul; 39(229): 4346.

271. Mesripour A., Rafieian-Kopaei M., Bahrami B. The effects of Anethum graveolens essence on scopolamine-induced memory impairment in mice - //Res. Pharm. Sci. 2016, Mar-Apr., 11(2), 145-151.

272. Milewicz A., Gejdel E., Sworen H., Sienkiewicz K., Jedrzejak J., Teucher T., Schmitz H. Vitex agnus castus extract in the treatment of luteal phase defects due to latent hyperprolactinemia. Results of a randomized placebo-controlled double-blind study -//Arzneimittelforschung 1993, 43(7), 752-756.

273. Milligan S.R., Kalita J.C., Heyerick A., Rong H., De Cooman L., De Keukeleire D. Identification of a potent phytoestrogen in hops (Humulus lupulus L.) and beer - //J. Clin. Endocrinol. Metab. 1999, Jun., 84(6), 2249-2252.

274. Milligan S.R., Kalita J.C., Pocock V., Van De Kauter V., Stevens J.F., Deinzer M.L., Rong H., De Keukeleire D. The endocrine activities of 8-prenylnaringenin and related hop (Humulus lupulus L.) flavornoids - //J. Clin. Endocrinol. Metab. 2000, Dec., 85(12), 4912-4915.

275. Mirghafourvand M., Mohammad-Alizadeh-Charandabi S., Ahmadpour P., Javadzadeh Y. Effects of Vitex agnus and Flaxseed on cyclic mastalgia: A randomized controlled trial. //Complement. Ther. Med. 2016 Feb; 24: 90-95. doi: 10.1016/j.ctim.2015.12.009.

276. Miura K., Kikuzaki H., Nakatani N. Apianane terpenoids from Salvia officinalis - //Phytochemistry 2001, Dec., 58(8), 1171-1175.

277. Modaress Nejad V., Asadipour M. Comparison of the effectiveness of fennel and mefenamic acid on pain intensity in dysmenorrhoea - //East. Mediterr. Health. J. 2006, May-Jul., 12(3-4), 423427.

278. Moini Jazani A., Hamdi K., Tansaz M., Nazemiyeh H., Sadeghi Bazargani H., Fazljou S.M.B., Nasimi Doost Azgomi R. Herbal Medicine for Oligomenorrhea and Amenorrhea: A Systematic Review of Ancient and Conventional Medicine. //Biomed. Res. Int. 2018 Mar 18; 2018:3052768. doi: 10.1155/2018/3052768.

279. Moini Jazani A., Nasimi Doost Azgomi H., Nasimi Doost Azgomi A., Nasimi Doost Azgomi R. A comprehensive review of clinical

studies with herbal medicine on polycystic ovary syndrome (PCOS). //Daru. 2019 Dec; 27(2): 863-877. doi: 10.1007/s40199-019-00312-0.

280. Mokhber Maleki E., Eimani H., Bigdeli M.R., Ebrahimi B., Shahverdi A.H., Golkar Narenji A., Abedi R. A comparative study of saffron aqueous extract and its active ingredient, crocin on the in vitro maturation, in vitro fertilization, and in vitro culture of mouse oocytes -//Taiwan J. Obstet. Gynecol. 2014, Mar., 53(1), 21-25. doi: 10.1016/j.tjog.2012.11.004.

281. Mokhber Maleki E., Eimani H., Bigdeli M.R., Golkar Narenji A., Abedi R.Effects of Crocin Supplementation during In Vitro Maturation of Mouse Oocytes on Glutathione Synthesis and Cytoplasmic Maturation

- //Int. J. Fertil. Steril. 2016, Apr-Jun., 10(1), 53-61.

282. Molaie M., Darvishi B., Jafari Azar Z., Shirazi M., Amin G., Afshar S. Effects of a combination of Nigella sativa and Vitex agnus-castus with citalopram on healthy menopausal women with hot flashes: results from a subpopulation analysis. //Gynecol. Endocrinol. 2019 Jan; 35(1): 5861. doi: 10.1080/09513590.2018.1499086.

283. Molaie M., Darvishi B., Jafari Azar Z., Shirazi M., Amin G., Afshar S. Effects of a combination of Nigella sativa and Vitex agnus-castus with citalopram on healthy menopausal women with hot flashes: results from a subpopulation analysis - //Gynecol. Endocrinol. 2018, Aug 21, 1-4. doi: 10.1080/09513590.2018.1499086.

284. Mollazadeh S., Mirghafourvand M., Abdollahi N.G. The effects of Vitex agnus-castus on menstrual bleeding: A systematic review and meta-analysis. //J. Complement. Integr. Med. 2019 Jul 31; 17(1): /j/jcim.2019.17.issue-1/jcim-2018-0053/jcim-2018-0053.xml. doi: 10.1515/jcim-2018-0053.

285. Momoeda M., Sasaki H., Tagashira E., Ogishima M., Takano Y., Ochiai K. Efficacy and safety of Vitex agnus-castus extract for treatment of premenstrual syndrome in Japanese patients: a prospective, open-label study. //Adv. Ther. 2014 Mar; 31(3): 362-373. doi: 10.1007/s12325-014-0106-z.

286. Monsefi M., Ghasemi M., Bahaoddini A. The effects of Anethum graveolens L. on female reproducetive system - //Phytother. Res. 2006, Oct., 20(10), 865-868.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

287. Monsefi M., Nadi A., Alinejad Z. The effects of Salvia officinalis L. on granulosa cells and in vitro maturation of oocytes in mice - //Int. J. Reprod. Biomed. (Yazd). 2017, Oct., 15(10), 649-660.

288. Monsefi M., Ghasemi A., Alaee S., Aliabadi E. Effects of Anethum graveolens L. (dill) on Oocyte and Fertility of Adult Female Rats - //J. Reprod. Infertil. 2015, Jan-Mar., 16(1), 10-17.

289. Monteiro R., Becker H., Azevedo I., Calhau C. Effect of hop (Humulus lupulus L.) flavonoids on aromatase (estrogen synthase) activity

- //J. Agric. Food. Chem. 2006, Apr., 19, 54(8), 2938-2943.

290. Moreno F.N., Campos-Shimada L.B., da Costa S.C., Garcia R.F., Cecchini A.L., Natali M.R., Vitoriano Ade S., Ishii-Iwamoto E.L., Salgueiro-Pagadigorria C.L. Vitex agnus-castus L. (Verbenaceae) Improves the Liver Lipid Metabolism and Redox State of Ovariectomized Rats. //Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2015; 2015:212378. doi: 10.1155/2015/212378.

291. Mu H., Bai Y.H., Wang S.T., Zhu Z.M., Zhang Y.W. Research on antioxidant effects and estrogen-nic effect of formononetin from Trifolium pratense (red clover) - /Phytomedicine. 2009, 4, 314-319.

292. Nagulapalli Venkata K.C., Swaroop A., Bagchi D., Bishayee A. A small plant with big benefits: Fenugreek (Trigonella foenum-graecum Linn.) for disease prevention and health promotion - //Mol. Nutr. Food Res. 2017, Jun., 61(6). doi: 10.1002/mnfr.201600950.

293. Nahidi F., Kariman N., Simbar M., Mojab F. The Study on the Effects of Pimpinella anisum on Relief and Recurrence of Menopausal Hot Flashes - //Iran. J. Pharm. Res. 2012, 11(4), 1079-1085.

294. Najib F.S., Poordast T., Mahmudi M.S., Shiravani Z., Namazi N., Omrani G.R. Does Vitex Agnus-Castus L. Have Deleterious Effect on Fertility and Pregnancy Outcome? An Experimental Study on Rats for Prediction of Its Safety. //J. Pharmacopuncture. 2022, Jun 30; 25(2): 106113. doi: 10.3831/KPI.2022.25.2.106.

295. Namavar Jahromi B., Tartifizadeh A., Khabnadideh S. Comparison of fennel and mefenamic acid for the treatment of primary dysmenorrhea - //Int. J. Gynaecol. Obstet. 2003, Feb., 80(2), 153-157.

296. Nanashima N., Horie K., Tomisawa T., Chiba M., Nakano M., Fujita T., Maeda H., Kitajima M., Takamagi S., Uchiyama D., Watanabe J., Nakamura T., Kato Y. Phytoestrogenic activity of blackcurrant (Ribes nigrum) anthocyanins is mediated through estrogen receptor alpha - //Mol. Nutr. Food. Res. 2015, Dec., 59(12), 2419-2431. doi: 10.1002/mnfr.201500479.

297. Naseri R., Farnia V., Yazdchi K., Alikhani M., Basanj B., Salemi S. Comparison of Vitex agnus-castus Extracts with Placebo in Reducing Menopausal Symptoms: A Randomized Double-Blind Study. //Korean J. Fam. Med. 2019 Nov; 40(6): 362-367. doi: 10.4082/kjfm.18.0067.

298. Nash L.A., Ward W.E. Comparison of black, green and rooibos tea on osteoblast activity - //Food. Funct. 2016, Feb., 7(2), 1166-1175. doi: 10.1039/c5fo01222h.

299. Nasri S., Oryan S., Rohani A.H., Amin G.R. The effects of Vitex agnus castus extract and its interaction with dopaminergic system on LH and testosterone in male mice - //Pak. J. Biol. Sci. 2007, Jul 15, 10(14), 2300-2307. doi: 10.3923/pjbs.2007.2300.2307.

300. Niazi A., Rahimi V.B., Hatami H., Shirazinia R., Esmailzadeh-Dizaji R., Askari N., Askari V.R. Effective Medicinal Plants in the Treatment

of the Cyclic Mastalgia (Breast Pain): A Review. //J. Pharmacopuncture. 2019 Sep; 22(3): 131-139. doi: 10.3831/KPI.2019.22.017.

301. Omidvar S., Esmailzadeh S., Baradaran M., Basirat Z. Effect of fennel on pain intensity in dysmenorrhoea: A placebo-controlled trial -//Ayu. 2012, Apr., 33(2), 311-313.

302. Ooi S. L., Watts S., Mcclean R., Pak S.C. Vitex Agnus-Castus for the Treatment of Cyclic Mastalgia: A Systematic Review and Meta-Analysis // Journal of Women's Health. - 2020. - Vol. 29. - No 2. - P. 262278. - DOI 10.1089/jwh.2019.7770.

303. Overk C.R., Guo J., Chadwick L.R., Lantvit D.D., Minassi A., Appendino G., Chen S.N., Lankin D.C., Farnsworth N.R., Pauli G.F., van Breemen R.B., Bolton J.L. In vivo estrogenic comparisons of Trifolium pratense (red clover) Humulus lupulus (hops), and the pure compounds isoxanthohumol and 8-prenylnaringenin - //Chem. Biol. Interact. 2008, Oct 22, 176(1), 30-39.

304. Parhizkar S., Latiff L.A. Supplementary health benefits of linoleic Acid by improvement of vaginal cornification of ovariectomized rats - //Adv. Pharm. Bull. 2013, 3(1), 31-36. doi: 10.5681/apb.2013.006.

305. Parhizkar S., Latiff L.A., Parsa A. Effect of Nigella sativa on reproductive system in experimental menopause rat model -//Avicenna J. Phytomed. 2016, Jan-Feb., 6(1), 95-103.

306. Pattanittum P., Kunyanone N., Brown J., Sangkomkamhang U.S., Barnes J., Seyfoddin V., Marjoribanks J. Dietary supplements for dysmenorrhoea - //Cochrane Database Syst. Rev. 2016, Mar 22, 3, CD002124. doi: 10.1002/14651858.CD002124.pub2.

307. Piersen C.E. Phytoestrogens in botanical dietary supplements: implications for cancer - //Integr. Cancer Ther. 2003, Jun., 2(2), 120-138.

308. Porteri E., Rizzoni D., De Ciuceis C., Boari G.E., Platto C., Pilu A., Miclini M., Agabiti Rosei C., Bulgari G., Agabiti Rosei E. Vasodilator effects of red wines in subcutaneous small resistance artery of patients with essential hypertension - //Am. J. Hypertens. 2010, Apr., 23(4), 373378.

309. Postigo S., Lima S.M., Yamada S.S., dos Reis B.F., da Silva G.M., Aoki T. Assessment of the Effects of Tribulus Terrestris on Sexual Function of Menopausal Women - //Rev. Bras. Ginecol. Obstet. 2016, Mar., 38(3), 140-146.

310. Prilepskaya V.N., Ledina A.V., Tagiyeva A.V., Revazova F.S. Vitex Agnus Castus: successful treatment of moderate to severe premenstrual syndrome - //Maturitas - 2006, 55, Suppl.

311. Promprom W., Kupittayanant P., Indrapichate K., Wray S., Kupittayanant S. The effects of pomegranate seed extract and beta-sitosterol on rat uterine contractions - //Reprod. Sci. 2010, Mar., 17(3), 288-296.

312. Rafieian-Kopaei M., Movahedi M. Systematic Review of Premenstrual, Postmenstrual and Infertility Disorders of Vitex Agnus Castus. //Electron. Physician. 2017 Jan 25; 9(1): 3685-3689. doi: 10.19082/3685.

313. Rahimikian F., Rahimi R., Golzareh P., Bekhradi R., Mehran A. Effect of Foeniculum vulgare Mill. (fennel) on menopausal symptoms in postmenopausal women: a randomized, triple-blind, placebo-controlled trial - //Menopause. 2017, Sep., 24(9), 1017-1021.

314. Rapkin A.J., Lewis E.I. Treatment of premenstrual dysphoric disorder - //Womens Health. (Lond). 2013, Nov., 9(6), 537-556.

315. Real M., Molina-Molina J.M., Jimenez J., Diéguez H.R., Fernández M.F., Olea N. Assessment of hormone-like activities in Ginkgo biloba, Elettaria cardamomum and Plantago ovata extracts using in vitro receptor-specific bioassays - //Food Addit. Contam. Part A Chem. Anal. Control. Expo. Risk Assess. 2015, Sep., 32(9), 1531-1541.

316. Riaz A., Khan R.A., Ahmed S., Afroz S. Assessment of acute toxicity and reproductive capability of a herbal combination - //Pak. J. Pharm. Sci. 2010, Jul., 23(3), 291-294.

317. Ribeiro D.C., Pereira A.D., da Silva P.C., dos Santos A.de S., de Santana F.C., Boueri B.F., Pessanha C.R., de Abreu M.D., Mancini-Filho J., da Silva E.M., do Nascimento-Saba C.C., da Costa C.A., Boaventura G.T. Flaxseed flour (Linum usitatissinum) consumption improves bone quality and decreases the adipocyte area of lactating rats in the post-weaning period - //Int. J. Food Sci. Nutr. 2016, 67(1), 29-34.

318. Rosendahl A.H., Perks C.M., Zeng L., Markkula A., Simonsson M., Rose C., Ingvar C., Holly J.M., Jernstrom H. Caffeine and Caffeic Acid Inhibit Growth and Modify Estrogen Receptor and Insulinlike Growth Factor I Receptor Levels in Human Breast Cancer - //Clin. Cancer. Res. 2015, Apr 15, 21(8), 1877-1887. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-14-1748.

319. Russell L., Hicks G.S., Low A.K., Shepherd J.M., Brown C.A. Phytoestrogens: a viable option? - //Am. J. Med. Sci. 2002, Oct., 324(4), 185-188.

320. Sacco S.M., Chen J., Ganss B., Thompson L.U., Ward W.E. Flaxseed enhances the beneficial effect of low-dose estrogen therapy at reducing bone turnover and preserving bone microarchitecture in ovariectomized rats - //Appl. Physiol. Nutr. Metab. 2014, Jul., 39(7), 801810.

321. Sacco S.M., Jiang J.M., Thompson L.U., Ward W.E. Flaxseed does not enhance the estrogenic effect of low-dose estrogen therapy on markers of uterine health in ovariectomized rats -//J. Med. Food. 2012, Sep., 15(9), 846-850. doi: 10.1089/jmf.2011.0314.

322. Sadrefozalayi S., Farokhi F. Effect of the aqueous extract of Foeniculum vulgare (fennel) on the kidney in experimental PCOS female rats - //Avicenna J. Phytomed. 2014, Mar., 4(2), 110-117.

323. Saidov S., Mavlonov A., Karomatov I. Tribulus terrestris - use at metabolic disorders, hormonal and other diseases - experience of ancient, modern traditional and scientific medicine (The review of literature) - //Slovak international scientific journal 2018, 13. voi.1, 45-56.

324. Saiyed A., Jahan N., Makbul S.A.A., Ansari M., Bano H., Habib S.H. Effect of combination of Withania somnifera Dunal and Tribulus terrestris Linn on letrozole induced polycystic ovarian syndrome in rats - //Integr. Med. Res. 2016, Dec., 5(4), 293-300.

325. Schellenberg R. Treatment for the premenstrual syndrome with agnus castus fruit extract: prospective, randomised, placebo controlled study - //BMJ 2001, Jan., 20, 322(7279), 134-137.

326. Schellenberg R., Zimmermann C., Drewe J., Hoexter G., Zahner C. Dose-dependent efficacy of the Vitex agnus castus extract Ze 440 in patients suffering from premenstrual syndrome -//Phytomedicine. 2012, Sep 27.

327. Schepetkin I.A., Ramstead A.G., Kirpotina L.N., Voyich J.M., Jutila M.A., Quinn M.T. Therapeutic Potential of Polyphenols from Epilobium Angustifolium (Fireweed) - //Phytother. Research 2016, 30, 8, Aug., 1287-1297.

328. Schröder L., Koch J., Mahner S., Kost B.P., Hofmann S., Jeschke U., Haumann J., Schmedt J., Richter D.U. The Effects of Petroselinum Crispum on Estrogen Receptor-positive Benign and Malignant Mammary Cells (MCF12A/MCF7) - //Anticancer. Res. 2017, Jan., 37(1), 95-102.

329. Seidlova-Wuttke D., Jarry H., Wuttke W. Plant derived alternatives for hormone replacement therapy (HRT) - //Horm. Mol. Biol. Clin. Investig. 2013, Dec., 16(1), 35-45.

330. Seif A.A. Nigella sativa attenuates myocardial ischemic reperfusion injury in rats - //J. Physiol. Biochem. 2013, Dec., 69(4), 937944. doi: 10.1007/s13105-013-0272-5.

331. Shaik A., Kanhere R.S., Cuddapah R., Nelson K.S., Vara P.R., Sibyala S. Antifertility activity of Artemisia vulgaris leaves on female Wistar rats - //Chin. J. Nat. Med. 2014, Mar., 12(3), 180-185.

332. Shakeri F., Taavoni S., Goushegir A., Haghani H. Effectiveness of red clover in alleviating menopausal symptoms: a 12-week randomized, controlled trial - //Climacteric 2015, 18(4), 568-573.

333. Shalan N.A., Mustapha N.M., Mohamed S. Noni leaf and black tea enhance bone regeneration in estrogen-deficient rats -//Nutrition. 2017, Jan., 33, 42-51. doi: 10.1016/j.nut.2016.08.006.

334. Shamshad Begum S., Jayalakshmi H.K., Vidyavathi H.G., Gopakumar G., Abin I., Balu M., Geetha K., Suresha S.V., Vasundhara

M., Krishnakumar I.M. A Novel Extract of Fenugreek Husk (FenuSMART™) Alleviates Postmenopausal Symptoms and Helps to Establish the Hormonal Balance: A Randomized, Double-Blind, Placebo-Controlled Study - //Phytother. Res. 2016, Nov., 30(11), 1775-1784. doi: 10.1002/ptr.5680.

335. Shirke S.S., Jadhav S.R., Jagtap A.G. Methanolic extract of Cuminum cyminum inhibits ovaryec-tomyinduced bone loss in rats - //Exp. Biol. Med (Maywood). 2008, Nov., 233(11), 1403-1410.

336. Shirke S.S., Jadhav S.R., Jagtap A.G. Osteoprotective effect of Phaseolus vulgaris L in ovariec-tomy-induced osteopenia in rats -//Menopause 2009, May-Jun., 16(3), 589-596.

337. Shufelt C., Merz C.N., Yang Y., Kirschner J., Polk D., Stanczyk F., Paul-Labrador M., Braunstein G.D. Red versus white wine as a nutritional aromatase inhibitor in premenopausal women: a pilot study - //J. Womens Health (Larchmt). 2012, Mar., 21(3), 281-284.

338. Simmler C., Pauli G.F., Chen S.N. Phytochemistry and biological properties of glabridin - //Fitoterapia. 2013, Oct., 90, 160-184. doi: 10.1016/j.fitote.2013.07.003.

339. Sinitsyna O.S., Zaychenko G.V., Ryzhenko I.M., Laryanovska Yu.B. The effect of a vaginal gel with hop cones phytoestrogens on the hormonal state and morphostructure of the reproductive organs in spayed rats - //K^iHNHa $apMa^a 2016, 20, 1, 34-38.

340. Spagnuolo P., Rasini E., Luini A., Legnaro M., Luzzani M., Casareto E., Carreri M., Paracchini S., Marino F., Cosentino M. Isoflavone content and estrogenic activity of different batches of red clover (Trifolium pratense L.) extracts: an in vitro study in MCF-7 cells -//Fitoterapia 2014, Apr., 94, 62-69.

341. Sreeja S., Anju V.S., Sreeja S. In vitro estrogenic activities of fenugreek Trigonella foenum graecum seeds - //Indian. J. Med. Res. 2010, Jun., 131, 814-819.

342. Sreeja S., Santhosh Kumar T.R., Lakshmi B.S., Sreeja S. Pomegranate extract demonstrate a selective estrogen receptor modulator profile in human tumor cell lines and in vivo models of estrogen deprivation. //J. Nutr. Biochem. 2012, Jul., 23(7), 725-732. doi: 10.1016/j.jnutbio.2011.03.015.

343. Steels E., Steele M.L., Harold M., Coulson S. Efficacy of a Proprietary Trigonella foenum-graecum L. De-Husked Seed Extract in Reducing Menopausal Symptoms in Otherwise Healthy Women: A Double-Blind, Randomized, Placebo-Controlled Study - //Phytother. Res. 2017, Sep., 31(9), 1316-1322. doi: 10.1002/ptr.5856.

344. Stolarczyk M., Naruszewicz M., Kiss A.K. Extracts from Epilobium sp. herbs induce apoptosis in human hormone-dependent prostate cancer cells by activating the mitochondrial pathway - //J. Pharmacy and pharmacologu - 2013, July, 65, 7, 1044-1054.

345. Stolarczyk M., Piwowarski J.P., Granica S., Stefanska J., Naruszewicz M., Kiss A.K. Extracts from Epilobium sp. Herbs, Their Components and Gut Microbiota Metabolites of Epilobium Ellagitannins, Urolithins, Inhibit Hormone-Dependent Prostate Cancer Cells-(LNCaP) Proliferation and PSA Secretion - //Phytother. Research 2013, 27, 12, Dec., 1842-1848.

346. Sturgeon S.R., Ronnenberg A.G. Pomegranate and breast cancer: possible mechanisms of prevention - //Nutr. Rev. 2010, Feb., 68(2), 122-128.

347. Su Wei Poh M., Voon Chen Yong P., Viseswaran N., Chia Y.Y. Estrogenicity of glabridin in Ishikawa cells - //PLoS One. 2015, Mar 27, 10(3), e0121382. doi: 10.1371/journal.pone.0121382.

348. Sultana A., Lamatunoor S., Begum M., Qhuddsia Q.N. Management of Usr-i-Tamth (Menstrual Pain) in Unani (Greco-Islamic) Medicine - //J. Evid. Based Complementary Altern. Med. 2015, Dec 30.

349. Swaroop A., Jaipuriar A.S., Gupta S.K., Bagchi M., Kumar P., Preuss H.G., Bagchi D. Efficacy of a Novel Fenugreek Seed Extract (Trigonella foenum-graecum, Furocyst) in Polycystic Ovary Syndrome (PCOS) - //Int. J. Med. Sci. 2015, Oct 3, 12(10), 825-831. doi: 10.7150/ijms.13024.

350. Taavoni S., Ekbatani N., Kashaniyan M., Haghani H. Effect of valerian on sleep quality in post-menopausal women: a randomized placebo-controlled clinical trial - //Menopause 2011, Sep., 18(9), 951-955.

351. Taavoni S., Ekbatani N.N., Haghani H. Effect of Tribulus terrestris, ginger, saffron, and Cinnamomum on menopausal symptoms: a randomised, placebo-controlled clinical trial - //Prz. Menopauzalny. 2017, Mar., 16(1), 19-22.

352. Taghvaee Javanshir S., Yaghmaei P., Hajebrahimi Z. Thymoquinone ameliorates some endocrine parameters and histological alteration in a rat model of polycystic ovary syndrome - //Int. J. Reprod. Biomed. (Yazd). 2018, Apr., 16(4), 275-284.

353. Tran H.N., Bae S.Y., Song B.H., Lee B.H., Bae Y.S., Kim Y.H., Lansky E.P., Newman R.A. Pome-granate (Punica granatum) seed linolenic acid isomers: concentration-dependent modulation of estrogen receptor activity - //Endocr. Res. 2010, Jan., 35(1), 1-16.

354. Vale F.B.C., Zanolla Dias de Souza K., Rezende C.R., Geber S. Efficacy of Tribulus Terrestris for the treatment of premenopausal women with hypoactive sexual desire disorder: a randomized double-blinded, placebo-controlled trial - //Gynecol. Endocrinol. 2017, Nov 27, 14.

355. van Breemen R.B., Yuan Y., Banuvar S., Shulman L.P., Qiu X., Alvarenga R.F., Chen S.N., Dietz B.M., Bolton J.L., Pauli G.F., Krause E., Viana M., Nikolic D. Pharmacokinetics of prenylated hop phenols in women following oral administration of a standardized extract of hops -

//Mol. Nutr. Food Res. 2014, Oct., 58(10), 1962-1969. doi: 10.1002/mnfr.201400245.

356. van Die M.D., Bone K.M., Burger H.G., Reece J.E., Teede H.J. Effects of a combination of Hypericum perforatum and Vitex agnus-castus on PMS-like symptoms in late-perimenopausal women: findings from a subpopulation analysis - //J. Altern. Complement. Med. 2009, Sep., 15(9), 1045-1048.

357. van Die M.D., Burger H.G., Teede H.J., Bone K.M. Vitex agnus-castus extracts for female reproductive disorders: a systematic review of clinical trials. //Planta Med. 2013 May; 79(7): 562-575. doi: 10.1055/s-0032-1327831.

358. van Die M.D., Burger H.G., Teede H.J., Bone KM. Vitex agnus-castus (Chaste-Tree/Berry) in the treatment of menopause-related complaints - //J. Altern. Complement. Med. 2009, Aug., 15(8), 853-862.

359. van Hunsel F., van de Koppel S., van Puijenbroek E. Post-Menopausal Vaginal Hemorrhage Related to the Use of a Hop-Containing Phytotherapeutic Product - //Drug Saf. Case Rep. 2015, Dec., 2(1), 14.

360. van Hunsel F.P., Kampschöer P. [Postmenopausal bleeding and dietary supplements: a possible causal relationship with hop- and soy-containing preparations] - //Ned. Tijdschr. Geneeskd. 2012, 156(41), A5095.

361. Veresnyuk N.S., Pyrohova V.I., Piniazhko O.B. Efficacy of herbal and nonsteroidal anti-inflammatory drugs in the therapy of dysmenorrhea in women with congenital uterus anomalies // CBiT Mefli^HHM Ta 6io^orii. - 2019. - Vol. 15. - No 4(70). - P. 35-39. - DOI 10.26724/2079-8334-2019-4-70-35-39.

362. Vini R., Azeez J.M., Remadevi V., Susmi T.R., Ayswarya R.S., Sujatha A.S., Muraleedharan P., Lathika L.M., Sreeharshan S. Urolithins: The Colon Microbiota Metabolites as Endocrine Modulators: Prospects and Perspectives. //Front Nutr. 2022, Feb 2, 8, 800990. doi: 10.3389/fnut.2021.800990.

363. Vini R., Juberiya A.M., Sreeja S. Evidence of pomegranate methanolic extract in antagonizing the endogenous SERM, 27-hydroxycholesterol. //IUBMB Life. 2016, Feb., 68(2), 116-121. doi: 10.1002/iub.1465.

364. Vini R., Sreeja S. Punica granatum and its therapeutic implications on breast carcinogenesis: A review. //Biofactors. 2015, Mar-Apr., 41(2), 78-89. doi: 10.1002/biof.1206.

365. Vitalone A., McColl J., Thome D., Costa L.G., Tita B. Characterization of the effect of Epilobium extracts on human cell proliferation - //Pharmacology. 2003, Oct., 69(2), 79-87.

366. Wang S., Dunlap T.L., Howell C.E., Mbachu O.C., Rue E.A., Phansalkar R., Chen S.N., Pauli G.F., Dietz B.M., Bolton J.L. Hop (Humulus lupulus L.) Extract and 6-Prenylnaringenin Induce P450 1A1

Catalyzed Estrogen 2-Hydroxylation - //Chem. Res. Toxicol. 2016, Jul 18, 29(7), 1142-1150. doi: 10.1021/acs.chemrestox.6b00112.

367. Wang Y., Dai J., Zhu Y., Zhong W., Lu S., Chen H., Chai Y. Paeoniflorin regulates osteoclastogenesis and osteoblastogenesis via manipulating NF-kB signaling pathway both in vitro and in vivo -//Oncotarget. 2017, Dec 27, 9(7), 7372-7388. doi: 10.18632/oncotarget.23677.

368. Webster D.E., Lu J., Chen S.N., Farnsworth N.R., Wang Z.J. Activation of the mu-opiate receptor by Vitex agnus-castus methanol extracts: implication for its use in PMS. //J. Ethnopharmacol. 2006, Jun 30; 106(2): 216-221. doi: 10.1016/j.jep.2005.12.025.

369. Wei Y., La L., Wang L., Batey R., Wang C., Li Y. Paeoniflorin and liquiritin, two major constituents in Chinese herbal formulas used to treat hyperprolactinemia-associated disorders, inhibits prolactin secretion in prolactinoma cells by different mechanisms - //J. Ethnopharmacol. 2017, May 23, 204, 36-44. doi: 10.1016/j.jep.2017.03.054.

370. Weisskopf M., Schaffner W., Jundt G., Sulser T., Wyler S., Tullberg-Reinert H. A Vitex agnus-castus extract inhibits cell growth and induces apoptosis in prostate epithelial cell lines - //Planta Med. 2005, Oct., 71(10), 910-916. doi: 10.1055/s-2005-871235.

371. West E., Krychman M. Natural Aphrodisiacs-A Review of Selected Sexual Enhancers - //Sex. Med. Rev. 2015, Oct., 3(4), 279-288.

372. Wu X., Xie C.Q., Zhu Q.Q., Wang M.Y., Sun B., Huang Y.P., Shen C., An M.F., Zhao Y.L., Wang X.J., Sheng J. Green tea (Camellia sinensis) aqueous extract alleviates postmenopausal osteoporosis in ovariectomized rats and prevents RANKL-induced osteoclastogenesis in vitro - //Food Nutr. Res. 2018, Oct 8, 62. doi: 10.29219/fnr.v62.1478.

373. Wuttke W. Phytotherapy in the treatment of mastodynia, premenstrual symptoms and menstrual cycle disorders - //Der Gynäkologe -2000, 33, 1, 36-39.

374. Wuttke W., Jarry H., Christoffel V., Spengler B., Seidlova-Wuttke D. Chaste tree (Vitex agnus-castus) - pharmacology and clinical indications - //Phytomedicine 2003, May, 10(4), 348-357.

375. Yaghjyan L., Rich S., Mao L., Mai V., Egan K.M. Interactions of coffee consumption and postmenopausal hormone use in relation to breast cancer risk in UK Biobank - //Cancer. Causes. Control. 2018, Jun., 29(6), 519-525. doi: 10.1007/s10552-018-1028-x.

376. Yaralizadeh M., Abedi P., Najar S., Namjoyan F., Saki A. Effect of Foeniculum vulgare (fennel) vaginal cream on vaginal atrophy in postmenopausal women: A double-blind randomized placebo-controlled trial - //Maturitas. 2016, Feb., 84, 75-80.

377. Yarne E. Abascal K. Holistic approaches to prostate cancer -//Altern. and Complemen. Therap. 2008, 14, 4, 164-180.

378. Yoshikawa M., Uemura T., Shimoda H., Kishi A., Kawahara Y., Matsuda H. Medicinal foodstuffs. XVIII. Phytoestrogens from the aerial part of Petroselinum crispum MIll. (Parsley) and structures of 6"-acetylapiin and a new monoterpene glycoside, petroside - //Chem. Pharm. Bull. (Tokyo) 2000, Jul., 48(7), 1039-1044.

379. You M.K., Kim D.W., Jeong K.S., Bang M.A., Kim H.S., Rhuy J., Kim H.A. St. John's Wort (Hypericum perforatum) stimulates human osteoblastic MG-63 cell proliferation and attenuates trabecular bone loss induced by ovariectomy - //Nutr. Res. Pract. 2015, Oct., 9(5), 459-465.

380. You M.K., Rhuy J., Jeong K.S., Bang M.A., Kim M.S., Kim H.A. Effect of St. John's Wort (Hypericum perforatum) on obesity, lipid metabolism and uterine epithelial proliferation in ovariectomized rats -//Nutr. Res. Pract. 2014, Jun., 8(3), 292-296.

381. Zamani M., Neghab N., Torabian S. Therapeutic effect of Vitex agnus castus in patients with premenstrual syndrome - //Acta. Med. Iran. 2012, 50(2), 101-106.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

382. Zanoli P., Zavatti M. Pharmacognostic and pharmacological profile of Humulus lupulus L. - //J. Ethnopharmacol. 2008, Mar 28, 116(3), 383-396.

383. Zeqiri A., Dermaku-Sopjani M., Sopjani M. The mechanisms underlying the role of Vitex agnus-castus in mastalgia. //Bratisl. Lek. Listy. 2022; 123(12): 913-918. doi: 10.4149/BLL_2022_147.

384. Zohrabi D., Parivar K., Sanati M.H., Hayati Roodbari N. Effects of Crocin on The Pituitary-Gonadal Axis and Hypothalamic Kiss-1 Gene Expression in Female Wistar Rats - //Int. J. Fertil. Steril. 2018, Apr., 12(1), 56-60. doi: 10.22074/ijfs.2018.5139.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.