CC BY
39
УДК 617-001.17-06:616.98:579.22
ОСОБЕННОСТИ МИКРОБНОгО ПЕЙЗАЖА «ПОГРАНИЧНОЙ» ОЖОгОвОЙ РАНЫ в РАЗНЫЕ фАЗЫ раневого ПРОЦЕССА
К.В. Митряшов1, С.В. Охотина2, П.А. Грибань2, Е.В. Шмагунова1, Г.И. Туркутюкова1, Т.Н. Обыденникова2, А.Ю. Киселев3, В.В. Усов3
1 Дальневосточный окружной медицинский центр Федерального медико-биологического агентства России (690022 г. Владивосток, пр-т 100 лет Владивостоку, 161), 2 Тихоокеанский государственный медицинский университет (690950, г. Владивосток, пр-т Острякова, 2), 3 Школа биомедицины Дальневосточного федерального университета (690950, г. Владивосток, ул. Суханова, 8)
Ключевые слова: ожог, микрофлора, монокультура, микробные ассоциации.
FEATURES OF THE MICROBIAL LANDSCAPE 'BORDER' OF BURN WOUNDS IN DIFFERENT PHASES OF WOUND PROCESS
K.V. Mitryashov1, S.V. Okhotina2, P.A. Griban2, E.V. Shmagunova1, G.I. Turkutyukova1, T.N. Obydennikova2, A.Yu. Kiselev3, VV. Usov3 1 Far Eastern Regional Center of Federal Medical-Biological Agency of Russia (161 100th anniv.of Vladivostok Ave. 690022 Russian Federation), 2 Pacific State Medical University (2 Ostryakova Ave. Vladivostok 690950 Russian Federation), 3 School of Biomedicine Far Eastern Federal University (8 Sukhanova St. Vladivostok 690950 Russian Federation)
Background. The research objective is an analysis of the species composition of bacterial flora of 'border' burn wounds in the different phases of wound process.
Methods. It was conducted the analysis of 571 studies results of microbiological composition of bacterial flora in surface burns in 509 patients. Time of biomaterial sampling ranged from 1 to 60 days after injury. Species identification and antibiotic sensitivity of the isolated microorganisms was determined spectrophotometrically. Results. It was found 50 species of pathogenic and conditionally pathogenic flora in traumatic discharge. Microbial wounds landscape was varied and presented to gram-positive and gram-negative flora, but the dominant species were Staphylococcus aureus and Pseudomonas aureginosa. Dissemination of conditionally pathogenic flora to the surrounding skin on the surface of the deified is the main route of contamination of wounds in the first days after the injury. When analyzing antibiotic grams strains of Staphylococcus epidermidis and Staphylococcus haemolyticus, sown in the first day, were susceptible to methicillin, oxacilline, cefazolin, and micro-organisms found in the later periods were resistant to these antibiotics. Conclusions. Saprophytic and conditionally pathogenic flora, often represented by associations, less monoculture prevails in the first phase of wound process in the 'border' burn wound. Methicillin-resistant staphylococci, gram-negative bacteria and P. aureginosa Acinetobacter baumannii dominates, and the amount of associative flora increases at the second and third phases of wound process in the 'border' burn wound. Most often in the 'boundary' burn wounds in the second and third phases of wound healing are encountered S. aureus, P. aureginosa and A. baumannii - 65,8 % of all pathogens. These pathogens are the most clinically important in the regeneration phase and the epithelialization.
Keywords: burn wound, bacterial flora, monoculture, microbial associations.
Pacific Medical Journal, 2016, No. 1, p. 59-62.
Все ожоговые раны бывают либо инфицированными первично, либо обсемененными микрофлорой в первые часы после травмы [7, 10]. Однако эта микрофлора не всегда является возбудителем инфекционного процесса [1, 5]. Исследования многих авторов показывают,
Митряшов Константин Владимирович - врач-хирург ожогового отделения ДВОМЦ ФМБА России; e-mail: [email protected]
что в течение короткого промежутка времени после травмы ожоговые раны колонизируются госпитальной микрофлорой, активность которой определяет развитие инфекционных осложнений и оказывает значимое влияние на процесс репарации и используемые раневые покрытия [8, 13, 15]. Бактериальные ферменты способствуют окислительной деструкции раневых покрытий, ускоряя этот процесс [4].
Активная хирургическая тактика, которая лежит в основе лечения «пограничных» ожогов, направленная на одномоментное удаление большей части ожогового струпа и основной массы некротических тканей, позволяет значительно снизить микробную обсемененность, но не ликвидирует ее полностью [11, 12].
Под воздействием различных факторов бактериальная экосистема ожоговых стационаров постоянно меняется, снижается чувствительность микроорганизмов к отдельным антибиотикам, дезинфектан-там и средствам антисептики. Данные постоянного мониторинга используются здесь для рационального выбора антибиотиков и дезинфицирующих средств, а также служат основой для создания эффективных программ профилактики внутрибольничной инфекции, для выработки стратегии и тактики антибактериальной терапии и подбора препаратов для местного консервативного лечения [3, 6, 9, 14].
Цель настоящего исследования - анализ видового состава микрофлоры «пограничных» ожоговых ран в разные фазы раневого процесса.
Материал и методы. Проанализированы результаты 571 микробиологической пробы с поверхности ожоговых ран у 509 пациентов в возрасте от 15 до 60 лет с ожогами общей площадью от 1 до 30 % (в среднем - 9,7 %) поверхности тела и глубиной поражения ШЛ-ШБ степени, находившихся на стационарном лечении в ожоговом отделении Дальневосточного окружного медицинского центра ФМБА России в 2013-2015 гг. Бактериологическое исследование выполнили однократно в 457, двукратно - в 44, трехкратно - в 6 и четырехкратно - в 2 случаях.
Площадь ожоговых ран определяли по правилу «ладони», глубину ожога - по наличию характерных макроскопических изменений в ране, наличию участков сформировавшейся грануляционной ткани на площади не более 50 % от общей площади ран, по преобладанию
60
Тихоокеанский медицинский журнал, 2016, № 1
островковой эпителизации и сроков самостоятельного заживления ран не менее 16 дней. В работе использована классификация фаз раневого процесса М.И. Кузина (1990). Средние сроки перехода одной фазы в другую оценивались на основании личного опыта и данных литературы [2].
Исследование раневого отделяемого проводили согласно приказу МЗ СССР от 22.04.1985 г. № 535 «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях ЛПУ».
Видовая идентификация и антибиотикограммы выделенных микроорганизмов проводились в бактериологической лаборатории ДВОМЦ ФМБА России на микробиологическом анализаторе Microscan AutoScan 4 (Siemens, США) и панелей Rapid Breakpoint Combo Panel.
Индекс встречаемости (C) представителей отдельных видов рассчитывали по формуле:
C = p (бак) x 100 % : P (общ.),
где p (бак.) - число проб, в которых обнаружены бактерии данного вида, P (общ.) - общее число проанализированных проб. Обработку полученных данных проводили с помощью методов вариационной статистики.
Результаты исследования. Рост микрофлоры был зарегистрирован в 488 пробах (88,5 О). В 348 случаях был выявлен один вид микроорганизмов (48 %), в 128 -ассоциация двух, в 11 - ассоциация трех и в 1 - ассоциация четырех видов микроорганизмов. Общий удельный вес микробных ассоциаций составил 44,8 %.
В раневом отделяемом было обнаружено 50 видов патогенной и условно-патогенной флоры: 12 видов рода Staphylococcus (aureus, epidermidis, haemolyticus, auricularis, hominis, sciuri, schleiferi, simulans, hyicus, intermedius, saprophiticus, xylosus), 8 видов рода Streptococcus (agalactiae, dysgalactiae, hemolyticus, milleri, pyo-genes, viridans, enterococcus faecalis и faecium), 5 видов рода Pseudomonas (aeruginosa, fluorescens, oryzihabitans, stutzeri, mosselii), 4 вида рода Enterobacter (aerogenes, faecalis, cloacae, agglomerans), 3 вида рода Klebsiella (oxy-toca, planticola, pneumoniae), по 3 вида родов Proteus (mirabilis, vulgaris, penneri) и Cedecea (davisae, neteri, lapegei) и 2 вида рода Acinetobacter (baumannii, lwoffii). Также были обнаружены Yersinia pseudotuberculosis, Stenotrophomonas maltophilia, Serratia plymuthica, Providencia stuartii, Morrganella morganii, Escherichia coli, Chryseobacterium meningosepticum, Burkholderia cepacia, Empedobacter brevis, Achromobacter xylosoxidans.
В общей структуре микрофлоры доля Staphylococcus составила 56,9 % (aureus - 33,4 %, epidermidis - 11,5 %, haemolyticus - 8,6 %, остальные - 3,4 %), Pseudomonas - 13,6 % (aeruginosa - 12,6 %, Pseudomonas spp. - 1 %), Enterobacter -10,4 % (aerogenes - 3,1 %, остальные примерно в равных долях - 3,3 %, Enterococcus - 4,2 %), Acinetobacter - 9 % (Acinetobacter baumannii - 8,7 %, Acinetobacter spp. - 0,3 %), E. coli - 1,9 %, Proteus spp. - 1,6 %, Klebsiella spp. - 1,6 %. Доля остальных микроорганизмов составила чуть более 5 %.
Таким образом, выявлены пять наиболее часто встречающихся микроорганизмов - возбудителей раневой инфекции: S. aureus (37,5 %), P. aeruginosa (14,2 %), S. epidermidis (12,9 %), А. baumannii (9,8 %), S. haemolyticus (9,6 %), вероятность выделения - 84 %.
При анализе микробных ассоциаций зарегистрировано, что в них наиболее часто встречаелись Staphylococcus spp. (82,2 %) и Pseudomonas spp. (42,2 %). При этом ассоциация Staphylococcus spp. и Pseudomonas spp. обнаружена в 27,2 %, Staphylococcus spp. и Acinetobacter spp. - в 24,3 %, Pseudomonas spp. и Acinetobacter spp. -5 % случаев. Сочетание Staphylococcus spp. c другими микроорганизмами было отмечено в 30,7 %, а Pseudomonas spp. с другой микрофлорой - в 15 % проб.
В первые пять суток после травмы микрофлора была обнаружена в 80,2 % проб, а спустя 6 суток и более - уже в 92,8 % проб. S. aureus встречался примерно одинаково, как в фазу воспаления, так и в фазу регенерации (31 и 35,5 %, соответственно). Другие виды стафилококка (S. epidermidis, S. haemolyticus, Staphylo-coccus spp.) в первые 5 суток после ожога встречались в 24,5 % случаев, что 2,5 раза чаще, чем спустя 6 суток и более. В 69,4 % наблюдений эта микрофлора была представлена монокультурой.
Вторая фаза раневого процесса отличалась увеличением удельного веса P. aeruginosa с 7,3 до 18,4 %, а А. baumannii - с 6 до 11,9 %. При этом снижался удельный вес микрофлоры кишечной группы (Enterobacter spp., Klebsiella spp., Proteus spp., Cedecea spp., E. coli) -с 44,8 до 19,5 %. Аналогичная тенденция отмечена при анализе состава микробных ассоциаций (табл.).
Таблица
Динамика микробного пейзажа «пограничной» ожоговой раны в зависимости от фазы раневого процесса
Количество наблюдений
Результат исследования 1-5-е сутки 6 суток и более
абс. % абс. %
Роста нет 66 19,8 17 7,2
Монокультура 207 62,0 141 59,5
Ассоциации 61 18,2 79 33,3
Всего: 334 100,0 237 100,0
S. aureus 104 31,4 110 35,5
S. epidermidis 54 16,5 20 6,5
S. haemolyticus 45 13,6 10 3,2
Staphylococcus spp. 15 4,5 7 2,3
P. aeruginosa 24 7,3 57 18,4
A. baumannii 20 6,0 37 11,9
Enterococccus spp. 22 6,6 7 2,3
Enterobacter spp. 22 6,6 16 5,2
Streptococus spp. 5 1,5 2 0,6
E. coli 5 1,5 7 2,3
Другие 15 4,5 37 11,8
Всего: 331 100,0 310 100,0
Штаммы стафилококка, высеваемые в 1-е сутки, были чувствительны практически ко всем антибиотикам, в том числе к метициллину, оксациллину и цефазолину, что может свидетельствовать об их принадлежности к нормальной микрофлоре пациентов, а также об условно-патогенном характере данных микроорганизмов. Как правило, контаминация ожоговой раны в 1-е сутки раневого процесса происходит за счет диссеминации условно-патогенной флоры с неповрежденной кожи на пораженную поверхность. В более поздние сроки уже 37,4 % культур, а через 6 дней - 80 % S. aureus были метициллин-резистент-ными.
Обсуждение полученных данных. Микробный пейзаж «пограничных» ожоговых ран разнообразен, и представлен как грамположительной, так и грамот-рицательной флорой. При этом, доминирующими видами остаются S. aureus и P. aureginosa, на их долю приходится 46 % всех выделенных бактерий, а в монокультуре их присутствие возрастает до 60,9 %. Эти два возбудителя являются членами 97,1 % всех микробных ассоциаций. Микст-инфекция в «пограничной» ожоговой ране была представлена S. aureus и P. aureginosa в 27,2 % случаев, сочетанием одного из этих возбудителей с A. baumannii - 29,3 % или с различными видами родов Streptococcus и Enterobacter - 25,7 % случаев.
Наши исследования свидетельствуют, что в первые 5 суток в ожоговых ранах преобладает сапрофитная микрофлора, характеризующаяся высокой чувствительностью к применяемым в стационаре антибиотикам. В процессе лечения происходит качественное изменение микробного пейзажа, увеличивается удельный вес антибиотикорезистентной микрофлоры, в том числе метициллин-резистентного стафилококка, что говорит о преобладающей роли госпитальной микрофлоры в последующие фазы раневого процесса.
Наиболее распространенными микроорганизмами являются S. aureus и Р aeruginosa, которые обнаруживаются в большинстве проб, как в виде монокультуры, так и в составе микробных ассоциаций. Полученные данные совпадают с результатами исследований других авторов, в других ожоговых стационарах [3, 5, 6, 8, 9].
Выводы
1. В «пограничных» ожоговых ранах наиболее часто встречаются S. aureus, S. haemolyticus, S. epidermidis, P aeruginosa и A. baumannii, вероятность выделения которых составляет 84 %.
2. В первую фазу раневого процесса в «пограничных» ожоговых ранах преобладает сапрофитная и условно-патогенная микрофлора, представленная преимущественно монокультурой и в меньшей степени ассоциациями микроорганизмов, чувствительных к большинству антибиотиков, применяемых в ожоговом стационаре.
3. Во вторую фазу раневого процесса в ожоговых ранах преобладает госпитальная микрофлора, удельный вес микробных ассоциаций увеличивается до 33,3 %.
4. Большинство микроорганизмов, выделенных во вторую фазу раневого процесса, являются резистентными к большинству антибиотиков, а S. aureus в 80 % случаев представлен метициллин-резистент-ными штаммами.
Литература
1. Алексеев А.А., Крутиков М.Г., Яковлев В.П. Ожоговая инфекция. Этиология, патогенез, диагностика, профилактика и лечение. М.: Вузовская книга, 2010. 416 с.
2. Алексеев А.А., Бобровников А.Э., Хунафин С.Н. Лечение поверхностных и пограничных ожоговых ран с применением современных раневых повязок // Медицинский вестник Башкортостана. 2013. Т. 8, № 3. С. 25-30.
3. Андреева С.В., Бахарева Л.И., Нохрин Д.Ю. Видовой состав микрофлоры ожоговых ран пациентов Челябинского областного ожогового центра // Вестник Челябинского государственного университета. 2013. № 7 (298). С. 58-59.
4. Биосовместимые материалы: учебное пособие / под ред. В.И. Севастьянова и М.П. Кирпичникова. М.: МИА, 2011. 560 с.
5. Воробьева О.Н. Этиология гнойно-септических процессов у ожоговых больных // Бюллетень СО РАМН. 2010. Т. 30, № 6. С. 57-63.
6. Голубкова А.А., Трофимова Ю.Ю., Багин В.А. Клиническое значение микробиологического мониторинга в системе эпидемиологического надзора за гнойно-септическими инфекциями в отделении реанимации и интенсивной терапии ожогового центра // Медицинский альманах. 2014. № 4 (34). С. 38-41.
7. Зиновьев Е. В., Чичков О.В., Коваленко А.В., Коновалов С.В. Экспериментально-клиническая оценка эффективности местного лечения ожоговых ран мазью сульфадиазина серебра с эпидермальным фактором роста // Медицина XXI век. 2007. № 8, ч. 9. С. 48-54.
8. Самарцев В.А., Еньчева Ю.А., Кузнецова М.В., Карпуни-на Т.И. Особенности инфицирования ожоговых ран // Новости хирургии. 2014. Т. 22, № 2. С. 199-206.
9. Сахаров С.П., Козлов Л.Б., Иванов В.В. Анализ микробного пейзажа раневой инфекции при тяжелой термической травме у детей // Фундаментальные исследования. 2013. № 9. С. 468-471.
10. Яковлев С.В. Системная антибактериальная терапия ожоговой болезни // Фундаментальные исследования. 2013. № 3, ч. 1. С. 184-188.
11. Alp Me§e E., ^oruh A., Gunay G.K. [et al.] Risk factors for nosocomial infection and mortality in burn patients: 10 years of experience at a university hospital // J. Burn Care Res. 2012. Vol. 33, No. 3. P. 379-385.
12. Chong S.J., Ahmed S., Tay J.M. [et al.] 5 year analysis of bacteriology culture in a tropical burns // Burns. 2011. Vol. 37. No. 8. P. 1349-1353.
13. Taneja N., Chari P., Singh M. [et al.] Evolution of bacterial flora in burn wounds: key role of environmental disinfection in control of infection // Int. J. Burns Trauma. 2013. Vol. 18, No. 2. P. 102-107.
14. Tekin R., Dal T., Bozkurt F. Risk factors for nosocomial burn wound infection caused by multidrug resistant Acinetobacter baumannii // J. Burn Care Res. 2014. Vol. 35, No. 1. P. 73-80.
15. Vural M.K., Altoparlak U., Celebi D., Akcay M.N. Comparison of surface swab and quantitative biopsy cultures dependent on isolated microorganisms from burn wounds // Eurasian J. Med. 2013. Vol. 45, No. 1. P. 34-38.
Поступила в редакцию 12.11.2015.
