CC BY
120
ЭТИОЛОГИЯ МИКОЗОВ
ЭКЗОТИЧЕСКИХ РЕПТИЛИЙ
Р.С. Овчинников, М.Г. Маноян, А.Г. Гайнуллина
Федеральное государственное бюджетное учреждение «Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов»
(ФГБУ «ВГНКИ»). Москва, Россия
Введение
Экзотические рептилии (ящерицы, змеи, черепахи) в последние годы становятся все более популярными в качестве домашних питомцев, зачастую занимая нишу животных-ком-паньонов. Многие владельцы, не имея достаточного опыта, не могут обеспечить адекватные условия содержания и кормления для своих экзотических питомцев. Часто это приводит к снижению естественной резистентности организма животных, и, как следствие, к развитию инфекционных и паразитарных заболеваний.
Холоднокровные животные, в отличие от млекопитающих и птиц, в силу своих физиологических особенностей имеют естественную предрасположенность к микотическим заболеваниям (А. СаваЬеуа!!, 2005). При этом в качестве возбудителей высту-
пают в основном убиквитарные виды грибов, не обладающие специализированными факторами вирулентности (такими, как термотолерантность). Микозы у пресмыкающихся, начинающиеся, как правило, с инфицирования кожного покрова, впоследствии могут распространяться на внутренние ткани и органы, трансформируясь в фатальные системные поражения (J. Pare et al., 1997, A. Thomas et al., 2002 и др.) Диагностика данных заболеваний осложняется отсутствием характерных клинических предикторов, необходимостью детального микологического исследования, широким видовым разнообразием грибов-возбудителей. Важным этапом лабораторного исследования является определение чувствительности выделенной культуры возбудителя к набору антимикотиков, что позволяет выбрать оптимальное средство терапии.
Исследование
Нами был проведен микологический анализ патматериала, отобранного от 28 рептилий следующих видов: зеленая игуана (Iguana iguana) - 10 особей; черепаха красноухая (Trachemys scripta elegans) -
3, хамелеон ковровый (Chameleon lateralis) - 1; хамелеон европейский (Chameleon chamaleo) - 1; хамелеон леопардовый (Chameleon pardalis) - 1; черепаха средне-азиатская (Agrone-mis horsfeeldii) - 2; черепаха трио-никс (Trionyx chinesis) - 1; черепаха каспийская (Clemmys caspiсa) - 1; ящерица плащеносная (Chlamido-saurus kingi) - 1; змея молочная (Lampropeltis triangulum annulata) - 1; варан среднеазиатский (Varanus gri-seus) - 1; геккон толстохвостый (He-mitheconyx caudiscinctus) - 1; сцинк синеязыкий (Tiliqua scincoides) - 1; бородатая агама (Pogona vitticeps) - 1;
Рис. 1. Клинические проявления микозов у рептилий Рис. 2. Этиологическая структура микозов рептилий
Рис. 3. Клиническая картина дерматомикоза у зеленой игуаны, вызванного Chrysosporium-анаморфой Nannizziopsis vriesii (CANV)
шипохвост - (Uromastyx) - 1; змея листоносая (Phyllorhynchus brownii) - 1.
Микологический анализ включал микроскопию препаратов патмате-риала в КОН, посев образцов на селективные питательные среды, идентификацию выделенных культур в соответствии с атласом De Hoog et al. (2000) и определение чувствительности изолятов к набору антифунгальных препаратов (амфо-терицин В, нистатин, клотримазол, флуконазол, кетоконазол, итрако-назол) диско-диффузионным методом. Этиологическую роль гриба подтверждали при обнаружении в
патматериале вегетирующих грибных гиф и выделении нескольких однотипных культур, морфологически соответствующих грибным элементам в патматериале.
Результаты
В результате исследования микозы были диагностированы в 24 из 28 случаев (85,7%). Разнообразие наблюдавшихся клинических форм представлено на рисунке 1.
В большинстве случаев микозы у рептилий проявлялись как сквамоз-ные сухие дерматиты, очаги депиг-
ментации кожи, некротические поражения. Вместе с тем в 3-х случаях были диагностированы системные микозы, в 2-х из них - посмертно (возбудитель Penicillium chrysoge-num). В одном случае системный микоз внешне был выражен как некротическое кожное поражение (возбудитель Fusarium moniliforme), однако вскоре животное пало, и из внутренних органов были выделены культуры того же вида гриба. Этот случай подчеркивает необходимость своевременного диагностического исследования при подозрении на микотическое заболевание.
В качестве возбудителей микозов идентифицированы грибы 17 различных видов. Частота выделения различных видов грибов представлена на рисунке 2.
В большинстве случаев от рептилий были выделены «оппортунистические» возбудители - убикви-тарные потенциально-патогенные мицелиальные и дрожжевые грибы. Среди них доминировал вид Fusarium moniliforme (16,1%). Известно, что виды рода Fusarium -распространенные возбудители поверхностных и глубоких микозов у холоднокровных животных (P. Fre-lier et al., 1985F. Cabanes et al., 1997, F. Rose et al., 2001). Вторым по частоте встречаемости был вид Penicillium chrysogenum (12,9%). По литературным данным, грибы рода Penicillium также часто вызывают микозы рептилий (G. Migaki et al., 1984).
В 9,6% случаев заболевания рептилий были вызваны кератинофиль-ным видом - Chrysosporium-анаморфой Nannizziopsis vriesii (CANV - принятая в литературе аббревиатура). В данном исследовании CANV был выделен из очагов сквамозного дерматита у двух зеленых игуан и бородатой агамы (см. рис. 3-6). Впервые данный вид гриба был выделен в практике нашей лаборатории в 2007 г. (РС. Овчинников с соавт., 2007), более ранние случаи обнаружения CANV на территории РФ нам неизвестны. В отличие от большинства других возбудителей микозов рептилий, CANV является истинным патогеном, т.е., способен, подобно грибам-дерматофитам, самостоятельно вызывать инфекцию у здоровых иммуно-компетентных животных. На кожном покрове здоровых особей он практически не встречается. Также было показано, что данный вид высококонтагиозен, может передаваться как при непосредственном контакте, так и через инфицированные объекты внешней среды, а также через воздух (J. Pare et al., 2006). За рубежом CANV довольно часто диаг-
Рис. 4. Мицелий, артроспоры CANV в пораженных тканях (микроскопия в КОН)
Рис. 5. Колонии CANV, выделенные из патматериала (сусло-агар, 7 сутук роста)
Рис. 6. Мицелий, микроконидии культуры CANV
ностируют в качестве возбудителя микозов рептилий (J. Pare et al., 1997, M. Abarca et al., 2008). Что особенно важно, часто вызываемые CANV поверхностные инфекции распространяются на глубокие ткани, приводя к летальным исходам (M. Bowman et al. (2007), A. Thomas et al. (2002), D. Nichols et al. (1999), M. Bertelsen et al. (2005).
Кроме того, некоторые виды рода Chrysosporium в ряде стран являются распространенными возбудителями дерматомикозов людей (J. Kane et al., 1997). Хотя случаи заражения человека от рептилий в доступной литературе не описаны, такую вероятность исключать нельзя,учитывая высокий патогенный потенциал грибов рода Chrysosporium и их филогенетическое и физиологическое сродство с грибами-дерматофитами.
Среди других видов грибов в нашем исследовании были диагностированы грибы-оппортунисты Chaetomium globosum (9,6%), Tric-hosporon ovoides (9,6%), Acremo-nium spp. (6,4%), а также виды родов Geotrichum, Candida, Alternaría, Paecilomyces, Aspergillus, Phoma, Humicola.
Изучение чувствительности возбудителей к антифунгальным препаратам показало, что нистатин ингибировал рост 78% выделенных культур грибов,кетоконазол -67%, итраконазол - 59%, клотри-мазол - 33%, флуконазол - 19%, амфотерицин В - 11%. Активность препаратов в отношении различных видов грибов существенно варьировала, некоторые виды проявляли резистентность ко всем изученным препаратам. Это свидетельствует о необходимости индивидуального определения чувствительности гриба-возбудителя к ан-тимикотикам в каждом конкретном случае. Следует отметить, что на практике терапия микозов пресмыкающихся затрудняется ограниченностью научных данных по данному вопросу, слабой изученностью действия антимикотиков
(включая побочные эффекты) на организм животных различных видов.
Выводы
Полученные данные демонстрируют, что среди рептилий, содержащихся в домашних условиях, микотические заболевания представляют существенную проблему, требующую пристального внимания ветеринарных врачей и специалистов-герпетоло-гов. Для достоверной диагностики микозов рептилий необходимо проведение лабораторного микологического исследования, включая выделение культуры гриба и определение его чувствительности к набору антимикотиков. Следует учитывать, что экзотические животные, ввозимые из-за рубежа, могут являться вектором распространения эндемичных видов грибов, патогенных как для животных, так и для человека.
Литература
1. Овчинников Р.С., Маноян М.Г., Гайнуллина А.Г. Этиологическая роль грибов-недерматофитов при поверхностных микозах животных. -Сборник научных трудов ВГНКИ. М.: 2007; т. 68. стр. 148-153.
2. Abarca, M., Martorell J., Castella G., Ramis A., Cabanes F. Cutaneous hya-lohyphomycosis caused by a Chrysosporium species related to Nannizziopsis vriesii in two green iguanas (Iguana iguana). Med. Mycol. 2008; 46: 349-354.
3. Bertelsen M., Crawshaw G., Sigler L., Smith D. Fatal cutaneous mycosis in tentacled snakes (Erpeton tentacu-latum) caused by the Chrysosporium anamorph of Nannizziopsis vriesii. J Zoo Wildl Med. 2005; 36(1): 82-7.
4. Bowman M., Paré J., Sigler L. Deep fungal dermatitis in three inland bearded dragons (Pogona vitticeps) caused by the Chrysosporium anamorph of Nannizziopsis vriesii. Med Mycol. 2007; 45(4): 371-6
5. Cabanes F., Alonso J., Castella G. Cutaneous hyalohyphomycosis cau-
sed by Fusariun solani in a loggerhead sea turtle (Caretta caretta). J.Clin.Mic-robiol. 1997; 35(12): 3343-3345.
6. Casadevall A. Fungal virulence, vertebrate endothermy, and dinosaur extinction: is there a connection? Fungal Genet.Biol. 2005; 42: 98-106.
7. de Hoog G., Guarro J., Gene J., Fi-gueras M. Atlas of clinical fungi // Centraalbureau voor Schimmelcultu-res, Utrecht / Universitat Rovira I Vir-gilii, Reus. 2000. 1126 P.
8. Frelier P., Sigler R., Nelson P. Mycotic pneumonia caused by Fusarium moniliformis in an alligator. Sabo-uraudia. 1985; 23(6): 399-402.
9. Kane J., Summerbell R., Sigler L., Krajden S. Land G., eds. Laboratory Handbook of Dermatophytes: A Clinical Guide and Laboratory Manual of Dermatophytes and Other Filamentous Fungi from Skin, Hair, and Nails. 1997.
10. Migaki G., Jacobson E.R., Casey H. Fungal diseases in reptiles, in Hoff G.L., Frye F.L., Jacobson E.R. Diseases of amphibians and reptiles. Plenum Press, London, New York, 1984. pp. 183-204.
11. Nichols D., Weyant R., Lamirande E. Fatal mycotic dermatitis in captive brown tree snakes (Boiga irregularis). J Zoo Wildl Med. 1999; 30(1): 111-8
12. Pare J., K. Coyle A, Sigler L. Pathogenicity of the Chrysosporium Anamorph of Nannizziopsis vriesii for veiled chameleons (Chamaeleo ca-lyptratus). Medical Mycology. 2006; 44: 25-31
13. Pare J., Sigler L., Hunter D. Cutaneous mycoses in chameleons caused by the Chrysosporium anamorph of Nannizziopsis vriesii (Apinis) Currah. J Zoo Wildl Med. 1997; 28(4): 443-53
14. Rose F., Koke J., Koehn R., Smith .Identification of the etiological agent for necrotizing scute disease in the Texas tortoise. J Wildl Dis. 2001; 37(2): 223-8.
15. Thomas A., Sigler L., Peucker S. Chrysosporium anamorph of Nanniz-ziopsis vriesii associated with fatal cutaneous mycoses in the salt-water crocodile (Crocodylus porosus). Med Mycol. 2002; 40(2): 143-51.
